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细胞移植。2022年1月至12月;31: 09636897221081479.
2022年2月28日在线发布。 数字对象标识:10.1177/09636897221081479
预防性维修识别码:项目经理9114726
PMID:35225027

评估Circ-Sirt1对Sirt1和Sirt1表达的影响其在肺动脉高压病理中的作用

关联数据

补充材料

摘要

肺动脉高压(PAH)是一种主要困扰患者的疾病目前还没有有效的治疗方法疾病。肺动脉平滑肌细胞的增殖和迁移(PASMC)是肺血管重塑的病理基础肺动脉高压。过去的研究表明,CircRNA参与其中在肺部和心血管疾病的病理学中。然而,这里很少有研究分析了CircRNA与多环芳烃。本研究的目的是通过使用大鼠PAH来探讨这种关系模型。本研究构建了缺氧性PAH大鼠模型随后产生的低氧诱导大鼠PASMC细胞用于证明沉默信息的环状RNA表达减少调节因子2相关酶1(circ-Sirt1)和Sirt1 mRNA对缺氧,通过细胞功能测试、细胞拯救测试和物理测试。我们发现PAH大鼠模型中circ-Sirt1和Sirt1的表达降低缺氧引起的。研究还表明,circ-SIRT1的过度表达增加SIRT1水平,但抑制转化生长的表达因子(TGF)-β1、Smad3和Smad7,并削弱PASMC细胞活力,扩散和迁移能力。本研究的结果表明circ-Sirt1调节Sirt1 mRNA的表达并抑制TGF-β1/Smad3/Smad7介导PASMC的增殖和迁移。这提供了肺动脉血管分子机制的新认识PAH的重塑,可能有助于开发新的治疗方案用于管理PAH。

关键词:高血压、肺动脉、RNA、平滑肌、血管重塑、血管收缩

介绍

肺动脉高压(PAH)的特点是在导致肺血管收缩的肺组织和肺动脉血管随着肺血管阻力的逐渐增加,最终导致重塑在许多情况下最终导致右心衰竭 1 报告的多环芳烃发病率为每百万2.0至7.6例成年人每年 2 虽然有几种临床模式可以缓解症状,这种病理学的不可治愈性使其无法逆转疾病的进展,因此PAH患者的预后是贫穷的,4。由于由于缺乏有效的治疗方案,该领域一直备受关注多年来的研究热点。

PAH的发病机制很复杂,但目前的共识支持缺氧以肺血管重构为主要病理机制动脉平滑肌细胞(PASMC)被认为是受此影响的关键细胞条件。在缺氧条件下,PASMC的增殖和迁移起着在肺血管结构重建中的重要作用 5 。有多种内部因素在增殖和迁移PASMC;研究表明,DNA甲基化、组蛋白修饰和非编码RNA失调可能发挥重要作用1,6,但确切的分子机制尚不清楚。

CircRNA是一种高度稳定的共价闭环结构,几乎没有蛋白质编码能力。研究逐渐表明,CircRNA具有多种生物活性并参与一些肺部疾病的病理学以及心血管疾病 7 沉默信息调节因子2相关酶1(sirtuin 1,SIRT1)据报道参与血液的炎症细胞反应血管,同时显示转化生长因子(TGF)-β1、Smad3和Smad7在血管重塑中发挥关键作用8,9此外,研究还发现表明circ_0006872在慢性病中调节miR-145-5p/NF-κB通路阻塞性肺疾病,促进肺血管细胞凋亡,炎症和氧化应激 10 然而,几乎没有任何研究探讨过这种关系在CircRNA和PAH之间。

在本实验中,我们构建了缺氧性PAH大鼠模型,并利用随后产生低氧诱导的大鼠PASMC细胞以证明其减少通过细胞表达circ-Sirt1和Sirt1 mRNA以应对缺氧功能测试、细胞拯救测试和物理测试。这一发现表明circ-Sirt1和Sirt1可能与PAH有关。

材料和方法

研究伦理学

按照“护理和使用指南”进行动物护理和使用实验动物的使用”(国家卫生研究院出版物85-23,1996年修订)。所有动物实验均按照NIH进行所有涉及动物的程序都得到了蚌埠市实验动物管理与伦理委员会医学院(中国安徽蚌埠)。

缺氧动物模型的建立

十二只无特定病原体(SPF)级Sprague-Dawley(SD)雄性大鼠从蚌埠实验动物中心获得150-200 g医学院。所有大鼠在25±1°C的温度下进行12小时的光/暗循环免费提供食物和水。大鼠被随机分为两组组:正常组和缺氧组,随后在以下条件下保存正常氧和缺氧按分配组。喂食环境温度设定为22°C至24°C,相对湿度设定为50%。这个正常组大鼠保持常压(21%O2)对于40天,而缺氧组则保存在缺氧培养箱中(10%2)持续时间相同。此后,所有的老鼠安乐死后,他们的肺组织被隔离并妥善保存以备日后使用使用。

血流动力学实验

通过右心室收缩压测量血流动力学参数(RVSP)通过右颈静脉右心插管,使用YPJ01压力传感器(中国成都仪器厂)和RM6240系列生理信号采集处理系统(成都中国成都仪器厂)。在分析血液动力学数据后打开胸腔。心脏和肺部被转移到无菌培养皿中含有冷磷酸盐缓冲盐水(PBS)的盘子。右心室通过分析右心室/左心室的比率来评估肥厚指数心室+隔膜(RV/LV+S)。一半的肺组织固定在4%多聚甲醛,另一半储存在-80°C下实验。

苏木精、伊红染色和免疫荧光分析

将大鼠肺组织样本脱水、清除并包埋在石蜡中。这个石蜡块被切割成4-µm厚的切片,用于H&E染色分析。大鼠肺标本(大鼠PASMC)用10%福尔马林固定,经过处理,嵌入石蜡中,并以4µm的厚度切片。章节用3%H处理2215分钟以阻止内源性过氧化物酶活性,然后用初级抗体。所有使用的初级抗体都是从Affinity购买的美国俄亥俄州辛辛那提的生物科学公司如下:α-SMA(AF1032),VCAM-1(DF6082)、PCNA(AF0239)、ICAM-1(AF6088)和Vimentin(AF7013)。之后去除一级抗体,将切片与二级抗体孵育抗体IgG(A0516,Beyotime Biotechnology Co.,Ltd.,中国上海)37°C保持30分钟,然后用二氨基联苯胺染色。非特异性结合用5%的正常山羊血清阻断10分钟。最后切片用苏木精染色。然后对所得切片进行处理用抗荧光猝灭剂,在荧光下观察显微镜。

获取原始细胞

取6周龄SPF雄性SD大鼠腹腔内麻醉注射氨基甲酸乙酯(0.6 mL/100g);麻醉后,处死大鼠并进行消毒。打开大鼠的胸腔,心脏和肺组织取出并置于预冷无菌磷酸盐缓冲液钠(PBS)中。之后将左右肺小动脉分开,沿着用眼科剪刀测量动脉管纵轴。一把小刀用来轻轻地刮几次内壁以去除内皮细胞,然后将管壁切成1×1mm2纸巾碎片。

细胞培养和治疗

将切下的组织块放在培养瓶中,其中20%为胎牛将血清(FBS)添加到Dulbecco改良Eagle's培养基(DMEM)中,并进行培养采用组织补片法。当细胞生长并融合到大约80%,用胰蛋白酶进行传代。免疫荧光用于检测α-SMA以鉴定培养的PASMC的细胞纯度。通过将细胞保持在5%的CO中,使其暴露于常压下221%O237°C时。对于缺氧暴露,PASMC在缺氧培养箱(YCP-80/S,中国巢洪)(3%O2)24小时。

RNA干扰与细胞转染

PASMC接种在6孔细胞培养板(1×10)中5密度),并在含有10%FBS的DMEM培养基中培养24小时细胞融合至约80%,培养基替换为0.5%FBSDMEM培养基和细胞同步可以持续12小时。这个circ-Sirt1过表达质粒和Sirt1 mRNA特异性RNAi寡核苷酸(siRNA)由中国上海汉生物有限公司设计合成。对于siRNA的序列,参见补充材料.

腺病毒表达载体和质粒构建

通过将整个大鼠将circ-Sirt1序列导入pcDNA3.1circRNA Mini Vector(Addgene)。的一部分通过PCR扩增绿色荧光蛋白(GFP)片段并克隆到pcDNA3.1 circRNA Mini载体作为对照质粒。腺病毒载体设计并合成了circ-Sirt1编码和GFP控制Hanbio有限公司,中国上海。

定量实时PCR

根据TRIzol试剂盒(15596018,Thermo Fisher,收集细胞颗粒,提取RNA并纯化后,去除基因组DNA并进行反应以获得cDNA模板荧光定量。此后,荧光定量PCR在反应体系和条件下进行反应。PCR扩增使用实时PCR系统(加利福尼亚州福斯特市应用生物系统,美国)。mRNA和circ-Sirt1的表达用β-actin标准化2-∆∆电流互感器用于相对定量。请参阅补充材料每个反应底漆。

Western Blot分析

收集肺动脉组织和PASMC后,100 uL NP-40细胞裂解物(BL504a,BioSharp,USA)添加到6孔培养板的每个孔中以12000转/分的转速离心15分钟。得到的蛋白质样品为收集,5x SDS(S8010,Solarbio Science&Technology Co.,Ltd.,北京,中国)-PAGE(T8090,Solarbio科技有限公司,中国北京)已添加到这些中。煮沸和冷却后,装载蛋白质样品进入样品孔。膜转移后,5%脱脂奶粉添加,并将样品在室温下密封2 h。此后用一级抗体(ZB-2305,Zs-BIO,中国北京)和二级抗体(ZB-2301,Zs-BIO,中国北京)按照制造商说明。与二级抗体孵育2小时后,添加洗涤液PBST,将所有样品洗涤3次(10 min每个)。最后,将ECL a溶液和ECL B溶液(34094,ThermoFisher,Rochester,NY,USA)在暗室中准备的食物被添加到盘子中让其充分反应1-2分钟,然后剩余溶液取出后,钢板露出。

细胞增殖CCK8

消化大鼠PASMC后,将100µl培养基添加到为了使细胞重新悬浮,每个培养板的细胞密度组为1 x 105然后把盘子放在培养箱里隔夜在5%CO中孵化2在37℃的温度下。之后培养不同时间,10µl CCK8(BB-4202-01,Bebo,上海,将中国)添加到每个孔中,并继续培养1小时在450nm的光密度下测量每个孔的吸光度酶联免疫分析。

划痕试验

用记号笔在6孔板,每行间距1cm,至少5行画过每个洞。约5 x 105将个单元格添加到每个第二天,用吸管尖端垂直于在板背面画的水平线。细胞清洗3次使用PBS。去除标记细胞并添加无血清培养基这些细胞。最后,将其置于37°C的培养箱中,温度为5%一氧化碳2和栽培。采样时间分别为0、24和48小时拍摄了相应的照片。

流式细胞术

用胰蛋白酶(C0201,Beyotime Biotechnology Co.,Ltd。,中国上海)和PBS(SH30256.01,Hyclone,Logan City,Utah,USA),固定,用预冷PBS清洗两次,然后以2000 rpm离心5分钟然后添加500µl PBS并将细胞移至1.5 ml Eppendorf(EP)管,然后20µl RNase(BB-4104,中国上海贝博)(储存浓度25 mg/ml,PBS稀释至1 mg/ml,工作浓度50 ug/ml)添加到EP管中。在水浴中重新悬浮细胞后,40µl PI将染色溶液加入重悬的细胞中,并在4将细胞彻底混合,用200毫升过滤过滤器,并使用流式细胞仪进行细胞周期检测。

动物试验

随机放置18只6周龄雄性SD大鼠,体重150-200g分为三组:缺氧组、缺氧+空腺病毒组(pcDNA3.1-NC)和缺氧+环孢素1腺病毒组(pcDNA3.1-circ-Sort1)。缺氧组注射1mL生理盐水用微量注射器注入大鼠的尾静脉。用于缺氧+空腹腺病毒组,1*108将空腺病毒的CFU注射到带有微型注射器的大鼠尾静脉。最后,对于缺氧+循环1腺病毒组,1*108腺病毒CFU用微量注射器注入大鼠尾静脉。病毒滴度为14–20天,每20天注射一次,并进行实验治疗40天后进行。喂食条件、实验方法血流动力学和右心室肥厚指数同上。安乐死后,切除肺组织和肺血管保存以备将来使用。

统计分析

所有统计分析均使用GraphPad Prism 8.0(GraphPat软件,加利福尼亚州圣地亚哥,美国)。数据显示为平均值±标准值偏差(SD)。通过应用Student’st吨-检验或单向方差分析(ANOVA),然后适当的Tukey测试。P(P)数值<0.05具有统计学意义。

结果

低氧诱导肺损伤大鼠的Circ-Sirt1和Sirt1降低高血压

低氧诱导肺动脉高压后进行右心导管插入术建立高血压模型(图1A). 与常压相比组,RVSP和右心室肥大指数在低氧诱导大鼠(图。1B年,,C)。肺的C类).肺动脉血管增厚和管腔狭窄也见于低氧诱导的PAH大鼠模型(图1D),这表明动物模型是成功的。Western blot和RT-PCR分析显示circ-Sirt1和Sirt1在缺氧诱导大鼠PAH模型中的表达正常组(图。1E级,,F)。基于F类).基于此,我们推测circ-Sirt1和Sirt1可能与PAH有关。

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低氧诱导肺动脉高压时circ-Sirt1和Sirt1下降在大鼠体内。(A) 右心导管插入术操作示意图颈静脉插管。(B) 右心室收缩压(RVSP),(比例尺=2.5s,n=5)。(C) 右心室/左心室心室+隔膜(RV/LV+S)比率(n=6)。(D) H&E染色和α-SMA显示肺小血管的形态学改变每组(原始放大倍数,×200,×400;比例尺=50µm;n=6). (E) Western blot检测SIRT1蛋白在肺组织(n=3)。(F) qRT-PCR检测mRNA表达肺组织中的circ-Sirt1和Sirt1(n=6)。表达的层次被归一化为β-actin。数值以平均值±标准差表示。H&E:苏木精伊红染色;DAPI:4ʹ,6-二氨基-2-苯基吲哚,2-(4-氨基苯基)-1H-吲哚-6-甲酰胺;α-SMA:α-平滑肌肌动蛋白;定量RT-PCR:定量实时聚合酶链反应;Nor:正常;欢呼声:缺氧*P(P)与正常组相比,<0.05。

原发性肺动脉平滑肌的获取与培养细胞

在我们的实验中,我们能够成功分离出原代大鼠PASMC,并且用组织补片法培养(图2A). 我们还观察了信徒PASMC的生长。免疫荧光法检测α-SMA以确认细胞纯度。视野中的大多数细胞被染色α-SMA为正(图。2B型).

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肺动脉平滑肌原代细胞的获取与培养肌肉细胞。(A) 获取和培养原发性肺动脉平滑肌细胞。(B) 免疫荧光方法用于检测α-SMA(绿色)的表达大鼠PASMC标记物(原始放大倍数,×400)。α-SMA:a-光滑肌肌动蛋白;DAPI:4ʹ,6-二氨基-2-苯基吲哚,2-(4-氨基苯基)-1H-吲哚-6-甲酰胺。

Circ-Sirt1的过度表达抑制了细胞的增殖和迁移肺动脉平滑肌细胞

大鼠PASMC在缺氧条件下培养,转染circ-Sirt1后对过表达质粒、western blot和RT-PCR检测进行了比较与对照组。可以看出,circ-Sirt1的过度表达,上调大鼠PASMC中circ-Sirt1的表达。此外,SIRT1 mRNA蛋白质水平也相应增加,而表达水平TGF-β1、Smad3和Smad7的含量降低。PASMC标记的表达水平,VCAM-1和α-SMA也降低(图3A,,B)。B类). 流式细胞术检测大鼠PASMC的细胞周期,发现细胞成分G2/S期细胞数量显著减少G0/G1期。这表明circ-Sirt1的过度表达抑制了细胞大鼠PASMC增殖(图3C). CCK8方法用于检测24小时时的细胞活力小时、48小时和72小时,以及大鼠PASMC的细胞活力circ-Sirt1的过度表达显著减少(图3D). 划痕试验用于测定细胞在24小时和48小时后的迁移能力注意到当circ-Sirt1过度表达时,大鼠PASMC的迁移能力被明显抑制(图3E). 免疫荧光实验表明α-SMA和大鼠PASMC中VCAM-1在circ-Sirt1过度表达后降低(图3F). 这些结果表明circ-Sirt1可能在控制扩散和通过TGF-β1/Smad3/Smad7影响SIRT1 mRNA对大鼠PASMC迁移的影响调节通路,从而参与肺部疾病的进展高血压。

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过度表达circ-Sirt1质粒对肺动脉平滑肌的影响肌肉细胞。(A) circ-Sirt1过度表达后,western blot用于检测SIRT1、TGF-β1、Smad3、Smad7、,大鼠PASMC中的VCAM-1和α-SMA。(B) qRT-PCR检测mRNAcirc-Sirt1、Sirt1、TGF-β1、Smad3、Smad7、VCAM-1和α-SMA的表达在大鼠PASMC中。(C) 用流式细胞仪测定PASMC的细胞周期细胞术。(D) 采用CCK-8法检测PASMC的细胞活力。(E)刮伤试验用于测定24小时和48小时后的细胞。(F),α-SMA,VCAM-1免疫荧光大鼠肺动脉染色。(原始放大倍数,×100)。表达水平归一化为β-肌动蛋白。所有值均为表示为平均值±SD(n=3)。转化生长因子-β1:转化生长因子-β1;VCAM-1:重组人血管细胞黏附分子1;α-SMA:α-平滑肌肌动蛋白;PASMC:肺动脉平滑肌细胞;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;CCK-8:细胞计数试剂盒-8;OE:过度表达;NC:阴性对照;DAPI:4',6-二氨基-2-苯基吲哚,2-(4-氨基苯基)-1H-吲哚-6-甲酰胺;OD:光密度*P(P)<0.05,与对照组比较。

SIRT1的SiRNA抑制逆转过度表达的Circ-SIRT1对肺动脉平滑肌细胞的增殖

为了证实circ-Sirt1对大鼠PASMC影响的机制,我们在用siRNA转染的细胞中进行拯救试验以抑制SIRT1circ-Sirt1过表达质粒。RT-PCR和western blot测试表明si-SIRT1可以显著抑制circ-SIRT1对SIRT1的增强作用。同样,si-SIRT1可以显著恢复circ-Sirt1对TGF-β1/Smad3/Smad7以及PASMC标记物VCAM-1水平的影响和α-SMA(图4A,,B)。B类). 流式细胞术,CCK8方法和划痕实验表明,circ-Sirt1的过度表达抑制大鼠PASMC的细胞增殖、细胞活力和迁移si-SIRT1逆转了这种效应(图4C4厘米E类). 免疫荧光实验表明,在circ-Sirt1、α-SMA和VCAM-1过度表达后大鼠PASMC减少,SIRT1-siRNA抑制这种作用(图4F). 以上内容研究结果表明,circ-Sirt1正向调节SIRT1 mRNA,从而抑制TGF-β1/Smad3/Smad7参与对照大鼠PASMC的增殖和迁移,并参与肺动脉高压的进展。

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siRNA抑制SIRT1在大鼠肺动脉平滑肌中的作用细胞。(A) Western blot检测SIRT1、,大鼠PASMC中的TGF-β1、Smad3、Smad7、VCAM-1和α-SMA。(B) 定量RT-PCR检测SIRT1、TGF-β1、Smad3、Smad7、VCAM-1和大鼠PASMC中的α-SMA。(C) 用流式细胞仪测定PASMC的细胞周期细胞术。(D) 用CCK-8法检测PASMC的细胞活力。(E)划伤试验用于确定24h和48h后的细胞(F)α-SMA、VCAM-1免疫荧光染色大鼠肺动脉损伤。(原始放大倍数,×100)。级别表达量归一化为β-actin。所有值都表示为平均值±SD(n=3)。TGF-β1:转化生长因子-β1;SiRNA,小干扰RNA;VCAM-1:重组人血管细胞粘附分子1;α-SMA:α-平滑肌肌动蛋白;PASMC:肺动脉平滑肌细胞;qRT-PCR,定量实时聚合酶链反应;CCK-8:细胞计数套件-8;OE:过度表达;NC:阴性对照;OD:光密度;DAPI:4',6-二氨基-2-苯基吲哚,2-(4-氨基苯基)-1H-吲哚-6-甲酰胺*P(P)<0.05,与对照组比较#P(P)< 0.05,与OE-circ-Sirt1组相比。

Circ-Sirt1过度表达在大鼠肺损伤模型中的作用高血压

为了验证肺动脉高压的潜在机制,我们年将circ-Sirt1腺病毒或空腺病毒注射到大鼠尾静脉低氧诱导的肺动脉高压模型。40天后低氧诱导、右心导管插入术测量RVSP并分析RV/LV+S比值。与缺氧组相比,缺氧+circ-Sirt1腺病毒组RVSP较低(图5A,,B)B类)和右心室肥厚索引(图5C). 逆转录聚合酶链反应Western blot检测肺组织。与缺氧相比组,缺氧+circ-Sirt1腺病毒的肺组织(pcDNA3.1-circ-Sirt1)组的circ-Sirt1水平显著升高,SIRT1的表达也增加(图5D第五天F类). mRNA和蛋白表达TGF-β1、Smad3和Smad7的水平随着PASMC标记(α-SMA和VCAM-1)(图5D第五天F类). ICAM-1的蛋白表达水平,肺组织中PCNA和波形蛋白也减少(图5G). 苏木精伊红染色表明缺氧组大鼠肺动脉增厚管腔变窄,而缺氧+circ-Sirt1腺病毒组血管厚度和管腔狭窄明显减少(图6A). 肺部用免疫荧光法检测大鼠的动脉,并与缺氧模型组,发现缺氧+circ-Sirt1腺病毒组α-SMA、ICAM-1、PCNA和波形蛋白减少(图6B,,C)。C类). 这表明在低氧诱导的肺动脉高压动物模型,增加circ-Sirt1的表达可以延缓肺动脉平滑肌的增殖和迁移从而减轻肺动脉高压的过程。

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腺病毒circ-Sirt1的过度表达延缓了低氧诱导大鼠多环芳烃。(A) 和(B)RVSP的变化(比例尺=5s,n=5、5、5和6)。(C) 右心室/左心室+的变化隔膜(RV/LV+S)比(n=6)。(D) qRT-PCR检测mRNAcirc-Sirt1、Sirt1、TGF-β1、Smad3、Smad7、VCAM-1和α-SMA的表达肺组织中(n=6)。(E) 和(F)Western blot用于检测SIRT1、TGF-β1、Smad3、Smad7、VCAM-1和α-SMA的蛋白变化肺组织(n=3)。(G) 蛋白质印迹检测肺组织中ICAM-1、PCNA和波形蛋白的变化(n=3)。级别表达量归一化为β-actin。值表示为平均值±标准差。PAH:肺动脉高压;转化生长因子-β1:转化生长因子β1;RVSP:右心室收缩压;RV:右心室;qRT-PCR:定量实时聚合酶链反应;VCAM-1:重组人血管细胞粘附分子1;α-SMA:a-平滑肌肌动蛋白;ICAM-1:细胞间粘附分子-1;PCNA:增殖细胞核抗原;Nor:正常;Hyp:缺氧;第页:pcDNA3.1;NC:阴性对照;LV+S:左心室+室间隔。*P(P)<0.05,与正常组比较;#P(P)与缺氧组相比,<0.05。

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各组大鼠肺组织H&E染色和免疫荧光。(A) H&E染色显示肺小细胞的形态学改变每组血管(原始放大倍数,×200,×400)。(B)大鼠肺动脉α-SMA免疫荧光染色(标度bar=50µm)。(C) ICAM-1、PCNA和波形蛋白免疫荧光染色大鼠肺动脉(比例尺=50µm)。H&E:苏木精&曙红染色;DAPI:4,6-二脒基-2-苯基吲哚,2-(4-氨基苯基)-1H-吲哚-6-甲酰胺;α-SMA:α-平滑肌肌动蛋白;ICAM-1:细胞间粘附分子-1;PCNA:增殖细胞核抗原;Nor:正常;Hyp:缺氧;第页:pcDNA3.1;NC:阴性对照;(n=6)。

讨论

PASMC是PAH发病机制中的关键细胞,参与PAH的发病肺血管重塑。然而,circRNA与PAH的相关性及其血管重塑的作用很少被研究。我们在低氧诱导PAH大鼠模型,circ-Sirt1和Sirt1表达降低,因此,我们预测circ-Sirt1和Sirt1与PAH相关。本研究旨在探讨这种关系。首先,从培养大鼠进行细胞功能实验。circ-Sirt1过度表达后,值得注意的是,SIRT1 mRNA和蛋白水平上调。然而,TGF-β1、Smad3和Smad7的表达受到抑制VCAM-1和α-SMA也降低。circ-Sirt1过度表达削弱PASMC细胞活性和增殖,抑制细胞周期进展和迁移能力。其次,通过救援实验,发现circ-Sirt1正相关调节SIRT1 mRNA的翻译过程,从而抑制TGF-β1/Smad3/Smad7,从而削弱大鼠PASMC的增殖和迁移。最后,通过实验大鼠模型验证了增加circ-Sirt1的表达可抑制PASMC的增殖和迁移患有多环芳烃的大鼠。

研究表明TGF-β1/Smad信号通路参与心肺疾病的发病机制9,11.之前的研究Tingting等人 12 证明七里强心可能抑制TGF-β1/Smad2/3信号转导减弱心房重构和改善心脏功能的途径疾病。Wang等人 13 发现8-氧鸟嘌呤DNA糖基化酶-1调节细胞TGF-β1诱导的转化,从而促进博莱霉素诱导的肺损伤小鼠肺纤维化与肺纤维化过程中p-Smad2/3的激活也通过与Smad7的部分相互作用。我们的研究结果表明TGF-β1、Smad3和Smad7的表达与表达变化一致VCAM-1和α-SMA。TGF-β1/Smad3/Smad7可能介导PASMC的变化。

研究发现,circRNA在多种疾病中发挥着关键作用,因此它可能成为未来许多疾病的新诊断或治疗靶点。例如,Zheng等人 14 发现circ-000595在患者组织中的表达增加并进一步研究了circ-00059抑制表达miR-19a在细胞中的表达并促进人主动脉平滑肌细胞的凋亡缺氧引起的。Xu等人 15 在他们的研究中敲下rno-circ_005717(circDiaph3),发现它可以上调透明度相关的formin-3的水平,从而促进血管平滑肌细胞(VSMC)向收缩和抵抗分化动脉内膜增生。在Gorski等人关于心力衰竭的研究中, 16 研究表明,SIRT1的药理学激活可以促进赖氨酸492的脱乙酰化与肌内质网活性的恢复Ca2+-APase(SERCA2a),从而降低心力衰竭的几率。Kong等人 17 发现circ-Sirt1与miR-132/212结合,干扰Sirt1 mRNA和促进宿主基因SIRT1的表达,从而影响炎症VSMC的表型转变。这表明circ-Sirt1在动脉粥样硬化的发病机制。之前的研究表明,过度表达circ-Sirt1在蛋白水平显著增加Sirt1的表达,这与我们的研究结果一致。此外,我们发现上调circ-Sirt1的表达可以抑制细胞增殖和PASMC的迁移,这是我们研究的一个新发现。

许多研究表明,在ncRNA中,微小RNA和lncRNA参与PAH的原因。Kang等人 18 发现miR-124通过靶向多个基因(包括NFATc1、CAMTA1和PTBP1,从而削弱人类PASMC的增殖。Xing(兴)等, 19 在他们的研究中,发现lncRNA的上调在体内表达基因3(lncRNA-MEG3)促进低氧诱导的PASMC增殖迁移、细胞周期进展和PASMC凋亡减少。在他们的研究中,Li等人 20 发现lnc-Rps4l编码的肽RPS4XL参与PASMC缺氧诱导的增殖。作为转录后调节因子,circRNA在心肌发育中受到越来越多的关注损伤、心肌纤维化、心肌肥厚、心力衰竭和PAH。Zhou等人al发现hsa_circ_0016070、miR-942和CCND1在PAH患者。该领域的进一步研究表明,hsa_circ_0016070诱导PASMC通过miR-942-5p/CCND1轴增殖并参与PAH血管重塑 21 .Yang等人 22 发现mmucirc000790在两种缺氧性肺动脉高压中均上调肺血管组织和低氧PASMC,可竞争性结合miR-374c上调靶基因FOXC1,促进缺氧PASMCs的增殖并减少其凋亡,从而加速肺血管重塑多环芳烃小鼠。上述研究表明,ncRNAs在PAH的形成。我们研究的最重要发现是过度表达缺氧大鼠的circ-Sirt1明显减缓了细胞增殖因此,circ-Sirt1可能是一个新的治疗靶点用于PAH。

此外,许多研究表明,circRNAs可以调节mRNA23,24因此,circ-Sirt1调节的具体机制SIRT1 mRNA的表达是我们下一步的研究重点。

尽管该实验证明circ-Sirt1在大鼠体内的PAH,这一发现的下一步临床应用仍需实验验证。因此,需要在这一领域进行进一步的研究探讨circ-Sirt1在PAH中的临床价值和应用。

结论

我们的研究结果表明,circ-Sirt1调节Sirt1 mRNA的表达并抑制PASMC的增殖和迁移。这种影响可能被调节通过TGF-β1/Smad3/Smad7(图。7). 这些结果提供了关于分子PAH肺动脉血管重塑的机制及可能在开发新的有效的多环芳烃治疗方案。

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Circ-Sirt1/Sirt1调节TGF-β1/Smad3/Smad7通路的表达,从而影响肺的增殖和迁移模式缺氧诱导的动脉平滑肌细胞。

补充材料

sj-docx-2-cll-10.1177_09636897221081479–补充材料评估Circ-Sirt1对Sirt1表达的影响及其作用肺动脉高压病理学:

补充材料,sj-docx-2-cll-10.1177_09636897221081479,用于评估Circ-Sirt1对Sirt1表达的影响及其在肿瘤病理学中的作用《肺动脉高压》作者:刁文杰、刘戈、石超、蒋一尧、李海辉、,细胞移植领域的孟金进、史瑜、张明明和刘雪刚

sj-tif-1-cll-10.1177_09636897221081479–补充材料评估Circ-Sirt1对Sirt1表达的影响及其作用肺动脉高压病理学:

补充材料,sj-tif-1-cll-10.1177_09636897221081479,用于评估Circ-Sirt1对Sirt1表达的影响及其在肿瘤病理学中的作用《肺动脉高压》作者:刁文杰、刘戈、石超、蒋一尧、李海辉、,细胞移植领域的孟金进、史瑜、张明明和刘雪刚

脚注

道德批准:我们的研究得到了蚌埠医学院伦理审查委员会的批准,中国安徽省蚌埠市(协议编号:2017081)。

人权和动物权利声明:本研究中使用的所有实验程序均在按照蚌埠医疗机构动物护理指南中国大学,并通过了机构实验动物管理部门的批准和中国安徽省蚌埠医学院伦理委员会。

知情同意声明:这篇文章中没有人体主题。因此,知情同意是不适用。

研究协会:本文是山东文杰刁博士论文的一部分大学。

利益冲突声明:提交人声明本文的研究、作者和/或出版物。

基金:提交人披露收到了以下财务支持本文的研究、作者和/或出版物:由国家自然科学基金资助(81800214),安徽省科学技术研究项目(1804h08020280,1301042200)和高等学校自然科学研究项目安徽省高校(KJ2021A0820、KJ2019A0362)。

ORCID标识:刘雪刚保存图片、插图等的外部文件。对象名为10.1177_09636897221081479-img1.jpg https://orcid.org/0000-0001-6541-0682

补充材料:本文的补充材料可在网上获得。

工具书类

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文章来自细胞移植由以下人员提供SAGE出版物