Front Endocrinol(洛桑)。2019; 10: 660.
猪出生后生长迟缓与肠道激素、免疫和抗氧化功能受损相关
,1,2 ,1,三,* ,1 ,1,2 ,1 ,4和1
明奇
1动物营养生理与代谢过程实验室,亚热带农业生态过程重点实验室,中国科学院亚热带农业研究所畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
2中国科学院北京大学
Bie Tan公司
1动物营养生理与代谢过程实验室,亚热带农业生态过程重点实验室,中国科学院亚热带农业研究所畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
三湖南农业大学动物科学与技术学院,长沙,中国
王静(音译)
1动物营养生理与代谢过程实验室,亚热带农业生态过程重点实验室,中国科学院亚热带农业研究所畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
廖思孟
1中国科学院亚热带农业研究所动物营养生理与代谢过程实验室、亚热带农业生态过程重点实验室、畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
2中国科学院北京大学
李建军
1动物营养生理与代谢过程实验室,亚热带农业生态过程重点实验室,中国科学院亚热带农业研究所畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
尹玉龙
1动物营养生理与代谢过程实验室,亚热带农业生态过程重点实验室,中国科学院亚热带农业研究所畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
1中国科学院亚热带农业研究所动物营养生理与代谢过程实验室、亚热带农业生态过程重点实验室、畜禽生产污染控制与废弃物利用国家工程实验室,长沙
2中国科学院北京大学
三湖南农业大学动物科学与技术学院,长沙,中国
4美国加州大学戴维斯分校动物科学系
编辑:中国海洋大学贺根
审核人:瑞士苏黎世大学Elisabeth Eppler;Chad D.Foradori,美国奥本大学
这篇文章被提交给《内分泌前沿》杂志的实验内分泌部分
2019年7月2日收到;2019年9月11日接受。
这是一篇根据知识共享署名许可证(CC BY)条款发布的开放存取文章。允许在其他论坛上使用、分发或复制,但前提是原创作者和版权所有人得到了认可,并且根据公认的学术惯例引用了本期刊中的原始出版物。不允许使用、分发或复制不符合这些条款的内容。
摘要
导致猪出生后生长迟缓(PGR)的因素是复杂的;然而,代谢和免疫系统损伤似乎也参与其中。本研究旨在研究PGR猪血液参数、激素水平、抗氧化能力和免疫反应的变化。采集42日龄PGR和健康猪的血液和小肠粘膜样本。结果表明,与健康组相比,PGR猪脾脏和肾脏的相对重量较大,但肝脏重量较轻(P(P)< 0.05). PGR猪血清丙氨酸转氨酶、尿素氮、血氨、IgG和补体4升高,但葡萄糖和白蛋白降低(P(P)< 0.05). PGR猪血清瘦素(LEP)和甲状腺素(T4)水平较高,胰岛素样生长因子-1(IGF-1)、5-羟色胺(5-HT)、生长抑素(SS)和促甲状腺激素基因相关蛋白(AgRP)水平较低(P(P)< 0.05). 与血清激素水平一致,PGR猪肠粘膜中肠道激素及其受体的mRNA水平也发生了变化(P(P)< 0.05). PGR猪的血浆中白细胞介素-1β(IL-1β)、白细胞介素-6、IL-8和转化生长因子β(TGFβ)浓度较高(P(P)< 0.05). 然而,PGR猪小肠粘膜中几种细胞因子的mRNA表达较低(P(P)< 0.05). 在PGR猪血清中观察到异常的抗氧化指数,这与PGR猪小肠粘膜中几个抗氧化基因的mRNA表达减少有关(P(P)< 0.05). 这些数据表明,肠道激素系统异常、免疫功能障碍和抗氧化能力下降可能是导致猪PGR的原因。这些变化可以为动物和人类出生后生长迟缓的调节提供一个有价值的靶点。
关键词:出生后生长迟缓、激素分泌、食欲、免疫反应、抗氧化能力、血液参数
介绍
出生后生长迟缓(PGR)仔猪是指未能实现其遗传决定的生长潜力的仔猪(1). PGR与体重减轻以外的终身后果相关,包括代谢紊乱和免疫功能受损(2). 宫内生长受限(IUGR)猪的肠道微生物群也表现出较低的多样性和不同的分类丰度(三). 虽然PGR的可能原因已经讨论过,例如胎盘功能不全(4)、病原体负荷(5),肠粘膜屏障功能障碍(6)、父母遗传中断(7)和异常的母体乳分泌程序(8)对于PGR猪和正常生长猪之间的共同标记物的评估,问题基本上仍未解决。重要的是要寻求可能的干预目标,以提高表现不佳的仔猪的生长,确保断奶后的良好生长速度(9,10).
血液特征,如急性期蛋白,已用于评估猪群健康、免疫状态和猪的生长潜力(11,12). 生长迟缓儿童和健康儿童的血糖浓度存在显著差异,胎儿生长受限儿童的某些氨基酸显著降低(13). IUGR儿童和仔猪的多种激素水平,如生长激素(GH)、甲状腺素(T4)和瘦素(LEP)也发生了变化(14,15). 这些合成代谢激素在许多生物活动中发挥重要作用,包括细胞存活、器官成熟、抗炎和抗氧化(16,17). 限制蛋氨酸的摄入可以提高IUGR猪的胰岛素敏感性(18). 因此,PGR出生后发育过程中其分泌或功能的紊乱会导致组织生长和功能的长期变化,并产生持续的有害影响(15). 据报道,IUGR猪的抗氧化能力受损,免疫系统紊乱(19,20). 血清促炎细胞因子水平的升高,如白细胞介素-8(IL-8),反映了猪的严重炎症反应(21,22).
因此,我们假设血液剖面的变化、异常的肠道激素分泌、免疫功能障碍和抗氧化能力的降低可能与猪的PGR有关。本研究旨在比较PGR猪与健康猪在血液参数、肠道激素谱、抗氧化能力和免疫反应方面的差异,为动物和人类调节PGR提供有价值的靶点。
材料和方法
动物与实验设计
本研究是按照中国科学院亚热带农业研究所的指导方针进行的。所有实验方案均经中国科学院亚热带农业研究所动物伦理委员会批准(2013020)。
本研究选用21日龄断奶的同父系杜洛克×长白×大约克郡杂交猪。所有猪都被关在有硬塑料板条地板的围栏里,饲养24小时随意获得饲料和水。室温保持在26±1°C,湿度控制在50%至60%之间。按照国家研究委员会(2012年)推荐的营养要求,用相同的商业饲料喂养猪(23). 在42日龄时,选择6头PGR猪(体重5.40±0.38 kg)和6头健康猪(对照)(体重11.01±0.40 kg)配对进行取样,并与窝产猪配对。体重小于平均体重70%的猪被视为PGR,没有明显的疾病或损伤特征。隔夜禁食后,早上从颈静脉采集血样(18). 用含有150 U肝素钠的无菌带帽试管从颈静脉采集约10 mL血液,并定期采集另外10 mL血液。血清和血浆样本通过2000×g离心在4°C下10分钟获得。这些样品立即储存在−80°C下,用于分析生化特征、抗氧化能力、激素特征和细胞因子生成。所有猪均用戊巴比妥钠(20mg/kg体重)麻醉,并通过颈静脉穿刺杀死。取肝、肾、脾、心和肺并称重。每个器官的相对重量计算为器官重量除以体重(g/kg)。刮取空肠和回肠粘膜的样品,立即用液氮进行snap冷冻,并将其储存在−80°C下,以提取RNA。
血清生化指标测定
免疫球蛋白(IgG和IgM)以及生化指标(总蛋白、白蛋白等)使用仪器(生化分析仪器,Beckman CX4,Beckman-Coulter Inc.,Brea,CA)和商用试剂盒(Sino-German Beijing Leadman Biotech Ltd.,中国北京)进行测量。
血清激素的测定
血清GH、T4、LEP、5-羟色胺(5-HT)、生长抑素(SS)、胰岛素(INS)、胰岛素样生长因子-1(IGF-1)、胰高血糖素样肽1(GLP-1)、促尿激素基因相关蛋白(AgRP)和原阿片黑皮素(POMC)浓度根据制造商的说明(中国江苏美棉实业有限公司)使用ELISA试剂盒进行测定。
血浆细胞因子的测定
使用市售猪酶联免疫吸附试验(ELISA)测定血浆中白细胞介素-1β(IL-1β)、白细胞介素-6、IL-8、IL-10、IL-12、肿瘤坏死因子α(TNFα)、转化生长因子β(TGFβ)和干扰素γ(IFNγ)的浓度套件符合制造商的说明(中国江苏美棉实业有限公司)。
血清抗氧化能力
血清抗氧化指标,包括谷胱甘肽过氧化物(GSH-PX)、谷胱甘肽S-转移酶(GST)、总抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)活性、丙二醛(MDA)、一氧化氮(NO)含量和总一氧化氮合酶(TNOS)根据制造商的说明,使用商用试剂盒(中国南京建成生物工程研究所)进行测量。
实时定量RT-PCR
根据制造商的说明,使用TRIZOL试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA,USA)从液态氮粉末肠粘膜样品中分离出总RNA,并通过1%琼脂糖凝胶电泳定量,在260和280 nm处测量光密度。用5×PrimeScript Buffer2和PrimeScript-逆转录酶酶混合1(中国大连塔卡拉生物科技(大连)有限公司)合成第一链(cDNA)。如前所述,根据猪的基因序列,使用Primer 5.0(PREMIER Biosoft International,Palo Alto,CA,USA)设计引物,以产生扩增产物(24). 用于扩增基因的引物如所示. β-肌动蛋白被用作看家基因以使目标基因转录水平正常化(21). 将得到的cDNA稀释并用作PCR模板来评估基因表达。反应体积为10μL(LightCycler®480 Real-Time PCR System,瑞士罗氏)。将1μL cDNA模板添加到总体积为10μL的溶液中,其中含有5μL SYBR Premix Ex Taq II(中国大连塔卡拉)、3.2μL蒸馏水和0.4μmol/L正向和反向引物。反应在384孔光学板中培养(瑞士罗氏)。我们使用了以下方案:(i)预变性程序(95°C下30 s),(ii)重复40个周期的放大和量化程序(95℃下5 s,60℃下20 s用于退火),以及(iii)熔化曲线程序(60–95°C,加热速率为0.1°C/s,荧光测量)。所有样品均进行了一式三份的测试。所选基因相对于参考基因(β-肌动蛋白)使用2进行计算-ΔΔCt方法(25). β的表达无变化-肌动蛋白在两组的肠粘膜中观察到(数据未显示)。数据表示为健康猪的相对值。
统计分析
所有统计分析均由独立样本进行吨-使用SPSS软件20.0进行测试(SPSS Inc.,伊利诺伊州芝加哥)。P(P)-取<0.05表示有统计学意义。
结果
内脏器官的体重和相对重量
如所示,PGR的平均体重显著低于年龄匹配的健康猪(P(P)< 0.01). 与健康猪相比,PGR猪所有器官样本的绝对重量显著降低(P(P)< 0.01). 与健康猪相比,PGR猪脾脏和肾脏的相对重量增加,但肝脏的相对重量降低(P(P)< 0.05).
表2
健康(对照)和出生后生长迟缓(PGR)猪的体重和内脏重量(n个= 6)一。
项目 | 控制 | PGR公司 | 扫描电镜 | P(P)-价值 |
---|
体重,千克 | 11.01 | 5.40 | 0.57 | <0.01 |
心脏 |
重量,克 | 54.62 | 27.26 | 3.40 | <0.01 |
相对重量,g/kg | 4.95 | 5.24 | 0.23 | 0.257 |
肝脏 |
重量,克 | 328.61 | 122.16 | 15.12 | <0.01 |
相对重量,g/kg | 29.92 | 23.71 | 1.72 | <0.01 |
脾脏 |
重量,克 | 22.67 | 14 | 2.48 | <0.01 |
相对重量,g/kg | 2.05 | 2.60 | 0.19 | 0.015 |
肺 |
重量,g | 160.54 | 90.09 | 3.78 | <0.01 |
相对重量,g/kg | 14.69 | 17.18 | 1.53 | 0.136 |
肾 |
重量,克 | 66.58 | 35.96 | 4.18 | <0.01 |
相对重量,g/kg | 5.78 | 6.92 | 0.39 | 0.016 |
血清生化指标
与健康猪相比,PGR猪的血清IgG和补体4(C4)浓度较高(P(P)< 0.05). PGR猪的血清丙氨酸转氨酶、血尿素氮和血氨浓度升高,但白蛋白、碱性磷酸酶和葡萄糖降低(P(P)< 0.05). 两组在总蛋白、天冬氨酸转氨酶、乳酸脱氢酶和乳酸方面没有差异(P(P)> 0.05) ().
表3
健康(对照)和出生后生长迟缓(PGR)猪的血清生化指标(n个= 6).
项目 | 控制 | PGR公司 | 扫描电镜 | P(P)-价值 |
---|
IgG,g/L | 1.14 | 1.83 | 0.22 | 0.011 |
IgM,g/L | 0.54 | 0.57 | 0.09 | 0.787 |
补体3,mg/L | 20 | 20 | 5 | 0.515 |
补体4,mg/L | 20 | 30 | 3 | 0.011 |
总蛋白质,g/L | 49.70 | 48.98 | 1.40 | 0.617 |
白蛋白,g/L | 27.50 | 21.94 | 1.33 | 0.002 |
碱性磷酸酶,U/L | 357.80 | 107.20 | 26.83 | <0.01 |
丙氨酸转氨酶,U/L | 36.27 | 58.06 | 4.21 | <0.01 |
天冬氨酸转氨酶,U/L | 52.60 | 80 | 13.36 | 0.067 |
乳酸脱氢酶,U/L | 803 | 859.50 | 38.20 | 0.170 |
葡萄糖,mmol/L | 6.18 | 4.50 | 0.49 | 0.006 |
血尿素氮,mmol/L | 2.02 | 2.32 | 0.10 | 0.014 |
血氨,μmol/L | 414.98 | 547.13 | 38.51 | 0.006 |
乳酸,mmol/L | 9.81 | 7.76 | 0.95 | 0.055 |
血清中的激素浓度
如所示PGR猪血清IGF-1、5-HT和AgRP浓度显著低于健康猪(P(P)< 0.05). 然而,与健康猪相比,PGR显著增加了血清中LEP、SS和T4的水平(P(P)< 0.05). 两组患者的血清GH、INS、GLP-1和POMC浓度无显著差异(P(P)> 0.05).
表4
健康(对照)和出生后生长迟缓(PGR)猪的血清激素浓度(n个= 6).
项目 | 控制 | PGR公司 | 扫描电镜 | P(P)-价值 |
---|
生长激素(ng/mL) | 18.43 | 21.53 | 2.06 | 0.163 |
IGF-1,纳克/毫升 | 91.14 | 81.77 | 2.87 | <0.01 |
5-羟色胺,pg/mL | 1630.72个 | 1,312.29 | 121.49 | 0.026 |
LEP,纳克/毫升 | 12.31 | 14.64 | 1 | 0.042 |
INS,mIU/L | 27.99 | 30.65 | 2.68 | 0.344 |
T4,pmol/L | 22.52 | 29.12 | 2.43 | 0.022 |
SS,微微克/毫升 | 55.32 | 73.32 | 6.40 | 0.018 |
GLP-1,pmol/L | 12.23 | 13.12 | 1.23 | 0.489 |
AgRP(微微克/毫升) | 2,803.26 | 2,159.39 | 232.78 | 0.020 |
POMC(纳克/毫升) | 11.82 | 12.66 | 1.54 | 0.596 |
血浆细胞因子
IL-6、IL-1β、IL-8和TGFβ的血浆浓度显著升高(P(P)与健康猪相比,PGR猪<0.05)。PGR中IL-10、IL-12、TNFα和IFNγ的血浆浓度不受影响(P(P)> 0.05) ().
健康猪(对照组)和出生后生长迟缓猪(PGR)的血浆细胞因子浓度。数据表示为平均值±SEM。n个= 6. *P(P)与健康猪相比<0.05。
血清抗氧化指数
T-AOC、SOD、MDA、GSH-PX、GST、NO和TNOS的血清浓度见与健康猪相比,PGR猪的血清T-AOC、SOD、GSH-PX和TNOS浓度降低,但MDA浓度显著升高(P(P)< 0.05). 然而,两组之间的血清GST和no浓度没有差异(P(P)> 0.05).
健康猪(对照组)和产后生长迟缓猪(PGR)的血清抗氧化能力。数据表示为平均值±SEM。n个= 6. *P(P)与健康猪相比,<0.05。
肠道激素、免疫和抗氧化相关基因的相对mRNA表达
激素相关基因的相对mRNA表达如; 前列腺素受体诱导的mRNA水平降低IGF-1型,生长激素受体(GHR公司)、胆囊收缩素(CCK公司),5-羟色胺转运体(SERT公司)和胰高血糖素样肽1受体(GLP-1R型)空肠和回肠粘膜与健康猪的比较(P(P)< 0.05). 与健康猪相比,胰岛素样生长因子-1受体的相对mRNA水平(IGF-1R型),生长激素释放肽(GHRL公司),和5-羟色胺受体4(5-HTR4型)空肠粘膜明显低于PGR猪(P(P)<0.05),而AgRP公司和胰岛素受体(INSR公司)在PGR猪回肠粘膜中下调(P(P)< 0.01). 然而,PGR显著增加不锈钢回肠粘膜中的水平与健康猪的比较(P(P)< 0.01).
健康猪(对照组)和出生后生长迟缓猪(PGR)空肠和回肠粘膜中激素相关基因的相对mRNA丰度。数据表示为平均值±SEM,n个=6*P(P)与健康猪相比<0.05**P(P)与健康猪相比,<0.01。
如所示,mRNA的相对表达白介素-1β,IL-4、IL-6、IL-8、IL-10、IFNγ、 toll样受体4(TLR4型)和髓系分化初级反应88(我的D88)在空肠粘膜和白介素-10和干扰素与健康猪相比,PGR中回肠粘膜中的γ下调(P(P)< 0.05).
健康猪(对照组)和出生后生长迟缓猪(PGR)空肠和回肠粘膜中细胞因子的相对mRNA丰度。数据表示为平均值±SEM,n个= 6. *P(P)与健康猪相比,<0.05。
在空肠粘膜中,核因子样-2的相对mRNA表达(编号2),血红素加氧酶1(HO-1型),NAD(P)H脱氢酶1(NQO1号机组)雷帕霉素激酶的机制靶点(mTOR公司),真核翻译起始因子4E结合蛋白1(第4期EBP1)和核糖体蛋白S6激酶β-1(P70S6K系列)显著减少(P(P)与健康猪相比,PGR猪<0.05)。在回肠黏膜中,PGR猪的丝氨酸-苏氨酸蛋白激酶表达较低(阿克特),mTOR,4EBP1,P70S6K、和NQO1号机组mRNA水平高于健康猪(P(P)< 0.05) ().
健康猪(对照组)和出生后生长迟缓(PGR)猪空肠和回肠粘膜中抗氧化相关基因和mTOR信号通路的相对mRNA丰度。数据表示为平均值±SEM,n个=6*P(P)与健康猪相比,<0.05。
讨论
PGR导致饲料利用效率降低和死亡率增加(26)在养猪业中很常见。几项研究表明,与较重的PGR相比,PGR的生长性能较差(2,27). 研究表明,PGR可导致单个器官的异速生长(28). PGR猪肝、脾、肾相对重量的变化与IUGR羔羊肝、脾和肾相对重量下降而肾相对重量增加,低出生体重仔猪脾相对重量增加的报道一致(2,28). 许多研究表明,肝脏相对重量的减少表明肝脏有促炎信号,脾脏相对重量的增加可能与高度炎症反应有关,如抗炎细胞因子的分泌增加(29,30). 血液尿素氮、氨、C4等生化指标的变化在一定程度上反映了器官的损伤(31). 过度炎症激活可能导致肝脏损伤(32). PGR猪血清丙氨酸转氨酶升高反映了肝脏完整性下降,这与之前的研究一致,即脂多糖注射引起的严重炎症导致小鼠血清丙氨酸转氨酶活性升高(33). 此外,PGR猪的血清葡萄糖显著降低。葡萄糖是胎儿生长的主要能量来源,能量限制会导致可预测的生长减退(28). 在免疫方面,PGR猪表现出较高的血浆IgG浓度和一些炎性细胞因子。血清IgG升高可能表明生物体存在毒性或氧化损伤(34,35).
激素在生长和器官成熟的调节中起着至关重要的作用。PGR中激素水平及其受体活性的变化可能会对器官发育和功能产生持续影响(36). 据报道,IUGR新生儿的激素水平与非IUGRs不同(36). 在我们的研究中,对健康猪和PGR猪的激素水平及其受体活性进行了测试,尤其是肠道激素,如5-HT、LEP,发生了显著变化。这表明肠道激素可能是导致PGR的关键因素之一。生长激素是调节生长和新陈代谢的关键因素(37). GH的多功能作用取决于GHR的丰度(37). 在我们的研究中,健康猪和PGR猪之间的GH水平没有显著差异,但表达量减少GHR公司在PGR猪中观察到。这表明GHR公司但GH的分泌不起作用。此外,许多研究表明IGF-1在不同动物的器官发育中起着重要作用。例如,IGF-1系统与小鼠的新生儿生长有关(38),大鼠肝脏发育(39),猪的乳房成熟(40)和鸡的骨重塑(41). IGF-1和GLP-1还控制胃肠道发育,抑制哺乳动物细胞凋亡,增强抗炎和抗氧化能力(17,36,42). 在我们的研究中,IGF-1的血清浓度和IGF-1、IGF-1R、和GLP-1R型与健康猪相比,PGR猪的肠粘膜中的蛋白质含量降低。这与之前的研究一致,即在IUGR猪中观察到GLP-1的血浆浓度降低和IGF-1的低循环水平(17,43). IGF-1和GLP-1缺乏导致肠粘膜成熟延迟,如肠屏障功能受损和刷状边界酶活性降低,这可能是PGR的主要致病因素之一(43,44). 此外,在我们的研究中,PGR猪血清中T4水平升高可能导致氧化剂产生增加和线粒体氧化损伤(45). 5-HT是胃肠道和其他器官系统的重要调节因子。肠源性5-HT参与各种生物过程,包括肠道运动和液体分泌(46),免疫反应(47)和骨骼发育(48). 5-HT对肠运动神经元的作用由5-HT受体(如5-HT4R)转导,5-HT主要在胃肠组织中表达(49,50). SERT决定最终5-HT的可用性,其功能障碍与各种肠道疾病有关(51). 我们的研究表明,PGR降低了血清5-HT水平和5-HT4R型和SERT公司肠粘膜。与之前的报道一致,5-HT信号的改变导致肠道疾病的肠道和肠外症状,例如,下调SERT公司和5-HT4R型诱发功能性肠道疾病,如结肠炎(49,52,53). 肠道激素包括LEP、INS、SS、AgRP、CCK和GHRL,通过控制消化和饱腹感来调节食欲(54,55). AgRP的刺激食欲作用被LEP的分泌抑制,并被GHRL激活(56). CCK通过刺激消化酶的活性来催化营养物质来调节消化,而营养物质被SS分泌抑制(57). 在我们的研究中,我们发现LEP和SS水平升高,但血清中AgRP水平降低CCK、INSR、和GHRL公司与健康猪相比,PGR猪的肠粘膜中存在。这与之前的研究一致,即INSR公司与正常体重的猪相比,IUGR仔猪肠粘膜中的mRNA往往较低(58). 食欲抑制和消化能力受损可能会导致PGR。上述结果可以很好地解释PGR猪肠粘膜成熟延迟的原因。
炎症前细胞因子(包括IL-1β、IL-6和IL-8)是感染期间启动炎症反应所必需的(59). 在本研究中,PGR猪血浆中IL-1β、IL-6、IL-8和TGFβ的浓度显著升高。这与之前的研究一致,激活的免疫反应可导致血浆中细胞因子的高浓度(21). 然而,PGR猪肠粘膜中几种细胞因子的基因表达较低。这反映了PGR猪肠道免疫系统的不成熟,这与一项研究一致,该研究发现IUGR仔猪小肠中细胞因子的相对mRNA表达降低(60).
与PGR猪的免疫功能受损一致,PGR降低了抗氧化能力。氧化应激可能导致仔猪健康状况恶化和生长性能下降(61). 在细胞水平上,活性氧化物质(ROS)过量会导致DNA、蛋白质和内源性脂质的广泛损伤(62). 在PGR中观察到血清MDA浓度升高,这与之前的研究结果类似,即IUGR仔猪肝脏中MDA浓度较高(19). SOD和GSH-PX是可用于评估仔猪抗氧化能力的主要抗氧化酶,它们通过将还原性谷胱甘肽氧化为氧化性谷胱甘肽来去除过氧化氢(63). 在本研究中,PGR猪的SOD和GSH-PX活性显著降低,这与之前的结果一致(2). TNOS和T-AOC反映了非酶抗氧化防御系统和抗氧化酶的水平。PGR诱导的氧化损伤可降低血清中的T-AOC和TNOS活性,这与之前的研究结果一致,即氧化应激导致该酶活性降低(19,64). 根据PGR猪血清中较低的抗氧化水平,抗氧化相关基因的表达较低,包括Nrf2、NQO1、和HO-1型也在PGR猪中观察到。我们进一步检测了Akt/mTOR通路中一些关键基因的表达。结果表明阿克特,mTOR,4EBP1、和P70S6k系列在PGR猪的肠粘膜中表达下调。这表明PGR可能会抑制肠上皮细胞增殖和蛋白质合成(65). PGR猪Akt/mTOR通路mRNA表达异常可能解释了抗氧化能力低下的原因(66).
总之,PGR猪血清丙氨酸转氨酶、尿素氮、血氨、IgG和补体4升高,但葡萄糖和白蛋白降低。此外,在PGR猪中观察到肠道5-HT通路受损和控制消化和肠道成熟的激素分泌异常。此外,PGR猪的血浆IL-1β、IL-6、IL-8和TGFβ浓度较高,血清T-AOC、SOD、GSH-PX和TNOS浓度较低。PGR猪小肠粘膜中几种抗氧化基因的mRNA表达也降低。这些结果表明,PGR表现出异常的激素水平、免疫功能障碍和抗氧化能力下降,这可能有助于调节动物和人类出生后的生长迟缓。
道德声明
该动物研究由中国科学院亚热带农业研究所动物伦理委员会审查批准(2013020)。
作者贡献
MQ、BT和YY设计了实验。MQ和JW进行了实验。SL和JL帮助进行了动物实验。MQ分析了数据并编写了原始草稿。YL和BT修改了手稿。所有作者阅读并批准了最终手稿。
利益冲突
作者声明,该研究是在没有任何可能被解释为潜在利益冲突的商业或金融关系的情况下进行的。
致谢
作者感谢长沙绿野生物科技有限公司院士专家工作站对生物饲料、饲料添加剂和动物肠道健康的支持。
词汇表
缩写
PGR公司 | 出生后生长迟缓 |
BW公司 | 体重 |
IL-1β | 白细胞介素-1β |
转化生长因子β | 转化生长因子β |
免疫球蛋白G | 免疫球蛋白G |
肿瘤坏死因子α | 肿瘤坏死因子α |
干扰素γ | 干扰素γ |
酶联免疫吸附试验 | 酶联免疫吸附试验 |
GH公司 | 生长激素 |
IGF-1型 | 胰岛素样生长因子-1 |
5-羟色胺 | 5-羟色胺 |
LEP公司 | 瘦素 |
INS(惯性导航系统) | 胰岛素 |
T4类 | 甲状腺素 |
不锈钢 | 生长抑素 |
GLP-1型 | 胰高血糖素样肽1 |
AgRP公司 | Agouti基因相关蛋白 |
POMC公司 | 阿片前胶原 |
IGF-1R型 | 胰岛素样生长因子-1受体 |
GHRL公司 | Ghrelin公司 |
5-HT4R型 | 5-羟色胺受体4 |
GHR公司 | 生长激素受体 |
CCK公司 | 胆囊收缩素 |
SERT公司 | 血清素转运体 |
INSR公司 | 胰岛素受体 |
GLP-1R型 | 胰高血糖素样肽1受体 |
GSH-PX公司 | 过氧化谷胱甘肽 |
消费税 | 谷胱甘肽硫转移酶 |
T-AOC公司 | 总抗氧化能力 |
草地 | 超氧化物歧化酶 |
MDA公司 | 丙二醛 |
不 | 一氧化氮 |
TNOS公司 | 总一氧化氮合酶 |
宫内发育迟缓 | 宫内生长迟缓 |
补体第四成份 | 补码4 |
ROS公司 | 活性氧物种 |
TLR4型 | toll样受体4 |
我的D88 | 髓系分化初级反应88 |
编号2 | 核因子样-2 |
HO-1型 | 血红素加氧酶1 |
NQO1号机组 | NAD(P)H脱氢酶1 |
阿克特 | 丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶 |
mTOR公司 | 雷帕霉素激酶的机制靶点 |
第4期EBP1 | 真核翻译起始因子4E结合蛋白1 |
P70S6K系列 | 核糖体蛋白S6激酶β-1。 |
脚注
基金。本研究由中国科学院前沿科学研究重点项目(QYZDY-SSW-SMC008)、国家自然科学基金(No.31672433,31501964,31560640)、中国农业研究系统专项基金(CARS-35)和中国科学院ISA青年创新团队项目(2017QNCXTD_TBE)资助。
工具书类
1Bamfo JE、Odibo AO。胎儿生长受限的诊断和处理。J怀孕。(2011)2011:640715. 10.1155/2011/640715[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 2Michiels J、De Vos M、Missoten J、Ovyn A、De Smet S、Van Ginneken C。完全断奶的低出生体重仔猪消化功能发育迟缓,血浆抗氧化能力下降。英国营养学杂志。(2013)109:65–75. 10.1017/S0007114512000670[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 三。张伟,马C,谢鹏,朱Q,王X,尹毅,等。。宫内生长受限新生仔猪肠道菌群多样性较低,分类丰度不同。应用微生物学杂志。(2019)127:354–69. 10.1111/果酱14304[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 4Ritaco G,Radecki SV,宾夕法尼亚州斯克内赫特。矮小猪的补偿性生长不受胰岛素样生长因子I介导。动画科学杂志。(1997)75:1237–43. 10.2527/1997.7551237倍[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 5Keusch GT、Denno DM、Black RE、Duggan C、Guerrant RL、Lavery JV等。。环境肠道功能障碍:发病机制、诊断和临床后果。临床传染病。(2014)59:S207–12。10.1093/cid/ciu485[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 6杜威公司。补充喂养期间满足婴幼儿营养需求的挑战:进化的观点。营养学杂志。(2013)143:2050–4. 10.3945/jn.113.182527[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 7Abi Habib W、Brioude F、Edouard T、Bennett JT、Lienhardt-Roussie A、Tixier F等。。致癌HMGA2-PLAG1-IGF2通路的基因破坏导致胎儿生长受限。基因医学。(2018)20:250–8. 2017.105年10月18日[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 8加利福尼亚州巴格内尔,Bartol FF。综述:猪的母体发育程序和泌乳假说。动物。(2019). 10.1017/S1751731119001654[Epub提前打印]。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 9Larriestra AJ、Wattaphansak S、Neumann EJ、Bradford J、Morrison RB、Deen J。与苗圃期死亡率和轻出栏体重相关的猪特征。Can Vet J。(2006)47:560–6.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 10Caperna TJ、Shannon AE、Blomberg le A、Stoll M、Ramsay TG。α-1酸性糖蛋白(AGP)作为新生仔猪生长障碍潜在标志物的鉴定。Reprod Fertil开发。(2013)25:1126–33. 10.1071/RD12103[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 11Chen HH、Lin JH、Fung HP、Ho LL、Yang PC、Lee WC等。。血清急性期蛋白与猪健康状况。Can J兽医研究。(2003)67:283–90.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 12Eurell TE、Bane DP、Hall WF、Schaeffer DJ。猪血清结合珠蛋白浓度作为体重增加的指标。Can J兽医研究。(1992)56:6–9.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 13Alberry M、Soothill P。胎儿生长受限的管理。Arch Dis儿童胎儿新生儿教育。(2007)92:F62–7。10.1136/adc.2005.082297[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 14Fattal-Valevski A、Toledano-Alhadef H、Golander A、Leitner Y、Harel S。宫内发育迟缓儿童的内分泌特征。《儿科内分泌代谢杂志》。(2005)18:671–6. 2005年10月15日/jpem日.18.7.671[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 15Attig L、Brisard D、Larcher T、Mickiewicz M、Guilloteau P、Boukthir S等。。产后瘦素促进IUGR仔猪器官成熟和发育。《公共科学图书馆·综合》。(2013)8:e64616.10.1371/journal.pone.0064616[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 16Albertson-Wikland K、Boguszewski M、Karlberg J。小于胎龄儿出生后的生长发育和激素状况。霍姆研究。(1998)49:7–13. 10.1159/000053080 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 17Martin-Estal I、de la Garza RG、Castilla-Cortazar I。宫内生长迟缓(IUGR)是胰岛素样生长因子-1(IGF-1)缺乏的新情况。生理学评论Bioch P。(2016)170:1–35.10.1007/12_2015_5001[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 18英智星,葛晓科,张华,苏伟平,李毅,周磊,等。。限制蛋氨酸摄入对49和105日龄宫内生长迟缓猪产后生长、胰岛素敏感性和葡萄糖代谢的影响。动画科学杂志。(2019)97:610–9. 10.1093/jas/sky457[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 19张华,李毅,王涛。完全断奶宫内生长迟缓仔猪的抗氧化能力和氧化还原活性微量矿物质浓度。动画科学与生物技术杂志。(2015)6:48.10.1186/s40104-015-0047-7[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 20陶S、白Y、李T、李N、王杰。出生时的低体重会恶化猪生长期的后肠上皮屏障功能。法赛布·J。(2019)33:9897–912. 10.1096/fj.201900204RR(右后)[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 21Tan B,Li XG,Kong X,Huang R,Ruan Z,Yao K等。。日粮中补充L-精氨酸可提高早期断奶仔猪的免疫状态。氨基酸。(2009年)37:323–31. 2007年10月10日/200726-008-0155-1[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 22杨华生,吴凤,龙麟,李天杰,熊X,廖鹏,等。。酵母制品对断奶仔猪肠道形态、屏障功能、细胞因子表达和抗氧化系统的影响。浙江大学理学学士。(2016)17:752–62. 10.1631/jzus。B1500192号[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 23理事会NR。猪的营养需求:第十一修订版华盛顿特区:国家学院出版社;(2012). 420页。[谷歌学者] 24王杰,李国荣,谭碧,熊X,孔XF,肖德福,等。。哺乳期口服腐胺和脯氨酸可改善仔猪早期断奶后的上皮恢复。动画科学杂志。(2015)93:1679–88. 10.2527/jas.2014-8230[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 25Livak KJ、Schmittgen TD。使用实时定量PCR和2(T)(-Delta Delta C)方法分析相关基因表达数据。方法。(2001)25:402–8. 10.1006/meth.2001.1262[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 26Wu G、Bazer FW、Wallace JM、Spencer TE。委员会邀请评审:宫内生长迟缓:对动物科学的影响。动画科学杂志。(2006)84:2316–37. 10.2527/2006年1月-156日[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 27Bruininx EMAM、van der Peet-Schwering CMC、Schrama JW、Vereijken PFG、Vesseur PC、Everts H等。。个体测量的群养断奶仔猪的采食量特征和生长性能:性别、初始体重和群内体重分布的影响。动画科学杂志。(2001)79:301–8. 10.2527/2001.792301年10月[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 28Greenwood PL,贝尔AW。宫内生长迟缓对出生后生长、代谢和病理生理学的影响。再生产供应。(2003)61:195–206。10.1530/biosciprocs.5.015[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 29Fischer IP、Irmler M、Meyer CW、Sachs SJ、Neff F、Hrabe de Angelis M等。。肥胖史在肝脏和脂肪组织中留下炎症指纹。国际J Obes(伦敦)。(2018)42:507–17. 10.1038/ijo.2017.224[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 30Gotoh K、Fujiwara K、Anai M、Okamoto M、Masaki T、Kakuma T等人。。脾源性IL-10在预防肥胖所致全身低度炎症中的作用。恩多克J。(2017)64:375–8. 10.1507/内分泌EJ17-0060[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 31董杰、彭特、高杰、贾X、严庚、王毅。三种原发性肾小球肾炎免疫球蛋白和补体病理学和血清学水平的初步比较研究。BMC免疫学。(2018)19:18.10.1186/s12865-018-0254-z[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 32Nakamoto N、Amiya T、Aoki R、Taniki N、Koda Y、Miyamoto K等。。乳酸菌控制小鼠急性肝损伤的免疫耐受。单元格代表。(2017)21:1215–26. 2016年10月10日/j.celrep.2017.10.022[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 33崔毅,齐S,张伟,毛J,唐R,王C,等。。罗伊氏乳杆菌ZJ617培养上清减轻脂多糖诱导的小鼠急性肝损伤。营养学杂志。(2019). 10.1093/jn/nxz088[Epub提前打印]。[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 34Frehn L、Jansen A、Bennek E、Mandic AD、Temizel I、Tischendorf S等。。炎症性肠病患者血清和粪便中抗食物和微生物抗原的IgG和IgA的不同模式。《公共科学图书馆·综合》。(2014)9:e106750.10.1371/journal.pone.0106750[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 35Su Y、Sun Y、Ju D、Chang S、Shi B、Shan A。维生素C对仔猪玉米赤霉烯酮毒性的解毒作用。Ecotoxicol环境安全。(2018)158:284–92. 2016年10月10日/j.ecoenv.2018.04.046[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 36Ferenc K、Pietrzak P、Godlewski MM、Piwowarski J、Kilianczyk R、Guilloteau P等人。。作为人类模型的宫内生长迟缓仔猪——围产期肠道结构和功能发育的研究。生殖生物学。(2014)14:51–60。2016年10月10日/j.repbio.2014.01.005[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 37Bergan-Roller HE,马萨诸塞州Sheridan。生长激素信号系统:对协调生长激素合成代谢和分解代谢作用的见解。发电机补偿内分泌。(2018)258:119–33. 2016年10月10日/j.ygcen 2017年7月28日[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 38Cai C、Ahmad T、Valencia GB、Aranda JV、Xu J、Behary KD。新生大鼠肝脏生长激素和胰岛素样生长因子-I的间歇性低氧抑制。生长激素IGF研究。(2018)41:54–63. 2016年10月10日/j.ghir.2018.03.001[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 39Murphy LJ、Bell GI、Friesen HG。胰岛素样生长因子I和II信使核糖核酸在成年大鼠体内的组织分布。内分泌学。(1987)120:1279–82. 10.1210/endo-120-4-1279[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 40Quesnel H,农民C。猪初生结肠的营养和内分泌控制。动物。(2019)13:第26–34页。10.1017/S1751731118003555[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 41Bikle DD、Tahimic C、Chang W、Wang Y、Philippou A、Barton ER。IGF-I信号在肌骨相互作用中的作用。骨头。(2015)80:79–88. 2016年10月10日/j.bone.2015.04.036[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 42陈瑞杰、尹玉林、潘杰、高玉林、李天杰。宫内生长受限仔猪IGF和IGF受体的表达谱。畜牧科学。(2011)136:72–5. 2016年10月10日/j.livsci.2010.08.001[交叉参考][谷歌学者] 43Drozdowski L,Thomson AB。肠道激素和生长因子对小肠的影响。世界胃肠病杂志。(2009年)15:385–406. 10.3748/wjg.15.385[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 44Sangild PT、Malo C、Schmidt M、Petersen YM、Elnif J、Holst JJ等。。胰高血糖素样肽2在增加胎猪和早产猪营养吸收方面的功效有限。美国生理学杂志I。(2007)293:R2179–84。10.1152/日元条例.00395.2007[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 45Venditti P、Reed TT、Victor VM、Di Meo S。甲状腺功能亢进患者的胰岛素抵抗和糖尿病:氧和氮反应性物质的可能作用。自由基研究。(2019)53:248–68. 10.1080/10715762.2019.1590567 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 46Gershon医学博士,Tack J。5-羟色胺信号系统:从基础认识到功能性胃肠病药物开发。胃肠病学。(2007)132:397–414. 10.1053/j.gastro.2006.11.002[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 47Baganz NL,Blakely路。免疫系统和大脑之间的对话,用血清素的语言说。Acs化学神经科学。(2013)4:48–63。10.1021/cn300186b[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 48Yadav VK、Ryu JH、Suda N、Tanaka KF、Gingrich JA、Schutz G等。。Lrp5通过抑制十二指肠内血清素的合成来控制骨形成。细胞。(2008)135:825–37. 2016年10月10日/j.cell.2008.09.059[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 49Mawe总经理,Hoffman JM。肠道中的血清素信号——功能、功能障碍和治疗靶点。Nat Rev胃肠肝素。(2013)10:473–86. 10.1038/nrgool.2013.105[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 50创伤MM、Farrugia G、Schemann M。Cajal间质细胞、平滑肌和肠神经上的5-HT受体。神经胃动力。(2007)19:5–12.10.1111/j.1365-2982.2007.00963.x[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 51Chen JX、Pan H、Rothman TP、Wade PR、Gershon MD。豚鼠5-HT转运体:克隆、表达、分布和在肠道感觉接收中的功能。美国生理学杂志。(1998)275:G433–48。[公共医学][谷歌学者] 52克劳威尔医学博士。5-羟色胺在肠易激综合征病理生理中的作用。英国药理学杂志。(2004)141:1285–93. 10.1038/sj.bjp.0705762[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 53Coates MD、Mahoney CR、Linden DR、Sampson JE、Chen J、Blaszyk H等。。溃疡性结肠炎和肠易激综合征患者粘膜5-羟色胺含量的分子缺陷和5-羟色宁再摄取转运体的减少。胃肠病学。(2004)126:1657–64。10.1053/j.gastro.2004.03.013[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 54何X,鲁Z,马B,张磊,李杰,姜瑜,等。。添加牛磺酸对慢性热应激肉鸡生长性能、空肠形态、食欲相关激素和基因表达的影响。家禽科学。(2019)98:2719–28. 10.3382/ps/pez054[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 55Willemen SA、De Vos M、Huygelen V、Fransen E、Tambuyzer BR、Casteleyn C等人。。围产期低体重和正常体重仔猪胃肠道和血液循环中的Ghrelin。动物。(2013)7:1978–84. 10.1017/S1751731113001742[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 56Enriori PJ、Evans AE、Sinnayah P、Jobst EE、Tonelli-Lemos L、Billes SK等。。饮食诱导的肥胖导致弓状黑素皮质素神经元产生严重但可逆的瘦素抵抗。单元格元数据。(2007)5:181–94. 2016年10月10日/j.cmet.2007.02.004[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 57拉盖。腔内释放因子对胆囊收缩素分泌的调节。美国生理学杂志。(1995)269:G319–27。10.1152/ajpgi.1995.269.3.G319[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 58王涛,霍英杰,施福,徐瑞杰,胡兹瑞杰。宫内生长迟缓对新生猪胃肠道发育的影响。生物新生儿。(2005)88:66–72. 10.1159/000084645 [公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 59Candel-Marti ME、Flichy-Fernandez AJ、Alegre-Domingo T、Ata-Ali J、Penarrocha-Diago MA。白细胞介素IL-6、IL-8、IL-10、IL-12与种植体周围疾病。更新。Med Oral Patol口腔颊。(2011)16:E518–21。10.4317/国内.16.e518[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 60董磊,钟X,艾哈迈德H,李伟,王永X,张磊,等。。宫内生长受限对新生仔猪小肠粘膜免疫的影响。组织化学与细胞化学杂志。(2014)62:510–8. 10.1369/0022155414532655[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 61Liu G、Yu L、Martinez Y、Ren W、Ni H、Abdullah Al-Dhabi N等。。饮食中添加酿酒酵母细胞壁提取物可缓解断奶仔猪的氧化应激并调节血清氨基酸组成。氧化介质细胞Longev。(2017)2017:3967439. 10.1155/2017/3967439[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 62Yu BP。细胞对活性氧损伤的防御。生理学评论。(1994)74:139–62。10.1152/physrev.1994.74.1.139[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 63Cecarini V、Gee J、Fioretti E、Amici M、Angeletti M、Eleuteri AM等。。蛋白质氧化与细胞内环境稳定:强调新陈代谢。Biochim生物物理学报。(2007)1773:93–104. 2016年10月10日/j.bbamcr.2006.08.039[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 64Lee J、Ryu H、Ferrante RJ、Morris SM、Ratan RR。精氨酸对诱导型一氧化氮合酶表达的翻译控制可以解释精氨酸悖论。美国国家科学院程序。(2003)100:4843–8. 10.1073/pnas.0735876100[PMC免费文章][公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 65Inoki K、Corradetti MN、Guan KL。人类疾病中TSC-mTOR通路的失调。自然遗传学。(2005)37:19–24. 10.1038/纳克1494[公共医学] [交叉参考][谷歌学者] 66孙SY,罗森博格LM,王X,周Z,岳P,傅H,等。。雷帕霉素介导的哺乳动物雷帕霉素抑制靶点激活Akt和eIF4E生存途径。癌症研究。(2005)65:7052–8. 10.1158/0008-5472.CAN-05-0917[公共医学] [交叉参考][谷歌学者]