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神经科学杂志。2002年8月15日;22(16): 7027–7044.
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PMID:12177200

NMDA受体激活钙调神经磷酸酶和树突状肌动蛋白重塑对A激酶锚定蛋白79/150–cAMP-依赖性蛋白激酶突触后靶向性的调节

摘要

在谷氨酸能突触的突触后膜上,cAMP依赖性蛋白激酶(PKA)、蛋白激酶C(PKC)和钙调神经磷酸酶(CaN)锚定蛋白AKAP79/150通过突触后密度(PSD)-95家族膜相关鸟苷酸激酶(MAGUK)支架蛋白招募到NMDA和AMPA谷氨酸受体。这些信号支架复合体可能在突触可塑性中调节受体磷酸化。因此,了解AKAP79/150对突触的靶向性调控以及对PSD–MAGUK复合体的招募非常重要。AKAP79通过结合磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸(PI-4,5-P)的N末端碱性结构域靶向质膜2)并受PKC磷酸化和钙调蛋白结合调节。在这里,我们证明了同样的结构域也以钙调素和PKC调节的方式结合F-actin,靶向富含F-actin和PI-4,5-P的膜皱褶2在COS7细胞中,定位于海马神经元中含有F-actin和PSD–MAGUK的树突棘。肌动蛋白聚合的抑制破坏了AKAP79对PKA和CaN的靶向性,扰乱了COS7细胞中PKA、CaN和PSD–MAGUKs对内源性AKAP79/150树突棘的定位。AKAP79/150突触后定位由NMDA受体通过CaN激活和F-actin重塑快速调节,进一步表明AKAP79/120信号支架的靶向依赖于actin动力学。NMDA受体激活还调节PKA和CaN的树突棘定位,以及AKAP79/150-PKA复合物与PSD–MAGUKs的关联。由于AMPA受体PKA磷酸化和突触定位受到与海马长期抑郁相关的类似NMDA受体-CaN信号通路的调节,因此调节AKAP79/150突触后靶向可能对突触可塑性很重要。

关键词:突触后密度、肌动蛋白、PSD-95 MAGUKs、AKAP、PKA、钙调神经磷酸酶、NMDA和AMPA受体

NMDA和AMPA谷氨酸受体在突触后密度(PSD)中与细胞骨架和支架蛋白形成复合物(肯尼迪,1997年;Ziff,1997年). 这些支架中最突出的是PSD-95家族膜相关鸟苷酸激酶(PSD-MAGUKs),包含突触后密度-95、大圆盘、闭塞带-1(PDZ)、Src同源性-3(SH3)和鸟苷酸酶(GK)结构域。通过结合MAGUK和其他蛋白质,受体与细胞内信号通路和肌动蛋白细胞骨架相联系(Sheng和Scala,2001年). 据信,这种分子结构的调控对于控制海马长时程增强(LTP)和长时程抑制(LTD)突触可塑性中的谷氨酸受体至关重要(Luscher等人,2000年;Tomita等人,2001年).

最近的研究表明,在NMDA受体依赖性LTP过程中,AMPA受体通过胞吐迅速被招募到突触中,而在LTD过程中,通过PDZ支架和F-actin的途径,通过胞内吞迅速从突触中清除AMPA受体(Carroll等人,2001年;Sheng和Lee,2001年). 在LTP和LTD期间,AMPA受体活性和磷酸化也受到钙/钙调素依赖性蛋白激酶II(CaMKII)、cAMP依赖性蛋白酶(PKA)、蛋白磷酸酶2B-钙调素(CaN)和蛋白磷酸酶1(PP1)的双向调节(Mulkey等人,1994年;Barria等人,1997年,Lee等人,1998年,2000;Morishita等人,2001年). 重要的是,这些激酶和磷酸酶也调节可塑性的受体运输;例如,在LTP期间AMPA受体的突触传递需要CaMKII(Hayashi等人,2000年;Shi等人,2001年). 此外,在LTD条件下AMPA受体内吞需要CaN,受体再循环需要PKA(Beattie等人,2000年;埃勒斯,2000年).

调节PKA和CaN定位的机制可能对协调AMPA受体磷酸化和贩运很重要,但尚未得到广泛研究。人A激酶锚定蛋白(AKAP)79/大鼠AKAP150(AKAP79/150)是PKA和CaN的突触后支架蛋白,可能在这些过程中发挥重要作用(Bregman等人,1989年;Carr等人,1992年;Coghlan等人,1995年). AKAP79/150分别在与NMDA和AMPA受体的复合物中与PSD-95和突触相关蛋白(SAP)97 MAGUK结合(Colledge等人,2000年). AKAP–PKA锚定通过SAP97调节海马神经元AMPA受体活性和转染细胞中GluR1亚基磷酸化(Rosenmund等人,1994年;Colledge等人,2000年;Tavalin等人,2002年). 因此,在这里我们试图描述AKAP79/150靶向机制,这些靶向机制控制PKA和CaN信号,并与PSD–MAGUK关联。

AKAP79通过结合酸性磷脂的三个N-末端碱基区域靶向质膜,包括磷脂酰二磷酸-4,5-二磷酸(PI-4,5-P2) (Dell'Acqua等人,1998年). 这些基本区域中的每一个都与肉豆蔻酰化富含丙氨酸的C激酶底物(MARCKS)的效应域相似,该底物结合膜PI-4,5-P2和F-actin(阿德雷姆,1992年;Tall等人,2000年;Wang等人,2001年). 这里我们证明AKAP79 N末端结构域结合F-actin和靶向PI-4,5-P2以及富含肌动蛋白的膜皱褶和神经元树突棘。我们表明,F-actin是AKAP79/150与PKA、CaN和PSD–MAGUKs突触后定位所必需的。重要的是,我们证明AKAP79/150–PKA复合物与PSD–MAGUKs的关联受F-actin动力学和NMDA受体–CaN信号通路的调节,其他人在LTD期间参与了AMPA受体的调节。

材料和方法

大鼠海马神经元的原代培养和转染从Sprague-Dawley新生大鼠(0-1天)的大脑中分离海马并通过木瓜蛋白酶消化分离。在MEM中以低密度(75–100000个细胞/ml)将神经元电镀,在聚乙烯上以10%FBS(Invitrogen,Rockville,MD)电镀-d日-赖氨酸、层粘连蛋白涂层玻璃盖玻片,并通过以下夹心培养方法与之前涂敷在单独盖玻片上(在六孔板中)的胶质细胞共培养Goslin等人(1998年)(参见图。图11A类). 1天后,用补充有B-27(Invitrogen)和有丝分裂抑制剂[尿苷+氟脱氧尿苷(Ur+FdUr)]的Neurobased替换培养基。然后在第4天更换一半培养基,给神经元喂食Neurobased、B-27、Ur+FdUr,然后在培养的1-4周内每周两次。在剩下的实验中,将神经元以中高密度(200–300000个细胞/ml)放在MEM中,10%FBS放在12孔板的盖玻片上。1天后,用Neurobasic、B-27、Ur+FdUr替换培养基。然后在第4天更换一半培养基给神经元喂食,然后在第11天和第18天每周喂食。在第16-20天,对神经元进行药物治疗并进行免疫细胞化学固定。对于免疫印迹和免疫沉淀实验,将神经元以高密度(300–400000个细胞/ml)接种在6cm培养板上。对于AKAP79–绿色荧光蛋白(GFP)融合蛋白(如下所述的载体)的表达,12-14 d在体外在12孔板中以中高密度培养的(DIV)神经元通过Helios Gene Gun Biolistic方法(Bio-Rad,Hercules,CA)转染,每孔涂上~1μg cDNA,0.6-1.0μm金颗粒,注入120-160 psi。转染后36–48小时,固定神经元并进行免疫荧光显微镜染色(如下所述)。

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AKAP79/150在海马神经元兴奋性突触的突触后定位。A、,AKAP79/150与MAGUK PSD-95共定位的发育调控。对低密度培养指定天数的大鼠新生海马神经元进行AKAP150染色(红色)和突触后密度MAGUK PSD-95(绿色). 这个小面板是树枝晶的放大。B类,AKAP79/150与PSD-95在树突棘上的点状共定位:AKAP79/120点状与突触前终末的邻近性,突触素染色,而GABA染色的抑制性突触后元件不染色A类受体。以中高密度培养的神经元(2-3周龄)用抗鼠AKAP150染色(红色)抗PSD-95、抗突触素或抗GABAA类接收器(全部输入绿色). 共分布被视为黄色-范围在合成图像中。这个红色绿色箭头分别指向AKAP150和PSD-95的点,即使在“成熟”树突中也没有共定位。所示图像代表了每种情况下三次以上实验中拍摄的多个神经元图像。

COS7细胞培养和转染用磷酸钙沉淀法转染20–50%合流的COS7细胞(在6孔板中的玻璃盖玻片上电镀24–48小时后),并在5%CO下转染适当的cDNA表达结构(每个质粒1-2μg)4–6小时2,37°C。然后用PBS清洗细胞两次,喂入DMEM、10%FBS、1%青霉素/链霉素(Invitrogen),并在固定和免疫化学染色之前生长24–48小时,如下所述。pEGFPN1–AKAP79WT全长和(1-153)碱性靶向结构域载体的构建已有描述(Dell'Acqua等人,1998年). 将缺乏基本靶向结构域的AKAP79(150-427)片段亚克隆到Pst(磅/平方英尺)I–巴姆HI-digested pEGFPC2(Clontech,Palo Alto,CA)在细胞中表达GFP-(150–427)N末端融合蛋白。小鼠PKA–RIIα编码序列从pET11–RII亚克隆(Hausken等人,1996年)PCR作为Hin公司dIII–巴姆HI片段进入pEGFPN3(Clontech)。pECFPN1–AKAP79和(1–153)由巴姆HI–高不是GFP与氰基荧光蛋白(CFP)的交换。pEGFPN1–磷脂酶C-δpleckstrin-homology结构域(PLCδ-PH)由Ed Tall和Mario Rebecchi(纽约州立大学,Stonybrook,NY)提供(Tall等人,2000年); pEYFPN1–PLCδ-PH由巴姆HI–高不是我用黄色荧光蛋白(YFP)交换GFP。

免疫细胞化学和数字荧光显微镜培养的海马神经元或玻璃盖玻片上的COS7细胞在PBS中洗涤,在3.7%甲醛/PBS中固定(10分钟),并用0.2%Triton X-100在PBS内渗透(10分钟。然后用PBS清洗细胞,并在PBS+10%BSA中封闭30–60分钟。一级抗体在PBS+BSA中室温下孵育1–2小时。使用的一级抗体如下:1:500兔抗AKAP150,1:1000兔抗AKAP 79(Yvonne Lai博士,ICOS,Bothel,WA);1:100小鼠抗PSD-95(ABR、Golden、CO);1:500小鼠抗突触素(Chemicon,Temulca,CA);1:100鼠抗GABAA类受体(Chemicon);1:200 anti-myc-9E10(圣克鲁斯生物技术公司,加利福尼亚州圣克鲁斯);1:100兔抗GluR1(UBI,纽约州普莱西德湖);1:200小鼠pan-anti-PSD-MAGUK家族(UBI);1:200小鼠抗PKA-RIIβ(加州洛杉矶转导实验室);1:500小鼠抗CaNB(UBI)。与一级抗体孵育后,在PBS+BSA中广泛清洗细胞,并用荧光二级抗体结合物[山羊抗鼠或山羊抗兔-Texas Red 1:250,-FITC 1:500,或-Cy5 1:250(Molecular Probes,Eugene,or,或Jackson ImmunoResearch,West Grove,PA)孵育1小时或Texas Red-phalloidin 1:200(分子探针)]。然后在PBS和水中清洗盖玻片,并使用Pro-long(分子探针)将其安装在玻璃载玻片上。对于AKAP79–CFP/PLCδ-PH–YFP共定位研究,COS7细胞被放置在一个小室(分子探针)中进行活细胞成像。使用配备Micromax或Sensicam数字CCD相机和Slidebook 3.0软件(科罗拉多州丹佛市智能成像创新公司)的尼康TE-300倒置显微镜(100Xplan-apo,oil,1.4数字孔径),使用色度滤光片组检测特定间接荧光和固有GFP、CFP或YFP荧光。图像从Slidebook导出为TIFF文件,并使用Adobe Photoshop 5.5进行组装。

在Slidebook中使用蒙板和分割进行图像量化。简而言之,为了计算免疫染色的归一化平均荧光强度,将红色-Texas红色和绿色-FITC通道分割在一起,以生成一个总神经元掩码(T),其中仅包括与感兴趣的细胞相对应的连续像素区域,并去掉背景。为胞体(S)绘制单独的掩模,并从T掩模中减去,以生成树枝晶(D)掩模。根据每个通道的D和S掩模计算平均荧光强度,并以比率(%D/S)表示,并归一化为T掩模的相应值(%D/T或%S/T)。从多个图像计算的这些归一化平均强度比在结果或图中的条形图中表示为平均百分比±SEM。对于AKAP79–GFP神经元表达研究,手动绘制每个图像中树突棘头部和树突轴的单独掩模。然后计算每个图像的这些掩模的平均荧光强度,以生成脊椎/轴GFP荧光的标准化比率。然后对多个图像的这些标准化比率进行平均,并在文本中报告±SEM。非靶向GFP的平均脊柱/轴比为1;因此,AKAP–GFP的比率>1反映了树突棘的相对富集。

通过生成分段树突状点状掩模来测量免疫染色的树突状斑点共定位,该掩模显示荧光强度大于AKAP150和感兴趣标记物(即PSD-95、F-actin、RIIβ、CaN)平均树突状荧光50%的连续像素的离散区域。最后,使用“and”功能生成一个仅显示AKAP150和标记的点状树突状共定位区域的掩码。然后分别计算AKAP150共定位面罩和标记特异性树突状点状面罩中标记的积分强度值。然后通过划分积分强度来生成标记的AKAP150共定位指数。这些综合共定位指数(即150-RII有限公司,150立方厘米有限公司,功率密度有限公司)根据每个条件下的多张图像计算得出的结果在图中以百分比±SEM表示,在图中以条形图表示。注意,这种定量方法虽然比手工计数点子数量更客观,但实际上低估了重叠但大小和形状有所不同的点子的真正共定位。尽管如此,这些共定位指数清楚地衡量了数据的再现性(如小SEM值所示),并允许在不同处理条件之间进行有意义的比较。在上述所有测量中,通过对大量类似结构进行采样以及使用比率进行归一化,可以控制图像中焦点和体积的微小变化的影响。

培养神经元和COS7细胞的药物治疗将神经元或COS7细胞贴在盖玻片(用于免疫细胞化学)或皮氏培养板(用于生化分析)上,在所有处理的正常生长培养基中培养。结果和图例中详细描述了各种处理方法。试剂来自以下来源:-谷氨酸、NMDA、AP-V、S-AMPA和CNQX(西格玛/RBI,密苏里州圣路易斯);latrunculin A和jasplakinolide(分子探针);细胞松弛素D、H-89、双吲哚甲酰胺I、螯合卟啉(CHE)、KN-62、环孢菌素A(CsA)、FK506、雷帕霉素和5,6-二氯-1-β-核糖呋喃氧基苯并咪唑(DRB)(Calbiochem,加州拉霍亚)。电泳试剂来自Bio-Read。其他通用化学品和试剂来自Sigma或Fisher Scientific(德克萨斯州休斯顿)。

F-肌动蛋白结合分析重组AKAP79WT、(1–153)和(154–427)表达为His6-标记的融合蛋白[pET16B中的AKAP79;pET30a中的(1-153)和(154-427)]大肠杆菌如前所述,通过Ni-Agarose色谱纯化(Dell'Acqua等人,1998年). 然而,在当前研究中,(1–153)在pET30的C末端被His标记,而不是像以前的研究那样在N末端,以去除含有外源磷酸化位点的N末端T7表位标签。对于肌动蛋白结合研究,N-His-AKAP79WT、N-His(154–427)或(1–153)C-His与F-actin孵育,然后通过共沉淀分析结合。简单地说,F-actin是从纯化的G-actin(10μ; 西格玛)在体外在125米范围内保持30分钟氯化钾,2.5米氯化镁2,0.2米ATP,2米Tris,pH 7.6(F-缓冲液)。肌动蛋白(2 mg/ml)在4°C下储存在对照G缓冲液(0.2 m)中ATP,0.2米氯化镁2,2米Tris,pH 7.6)。然后用AKAP79WT(700 ng)、(1–153)(250 ng)或(154–427)(500 ng)培养F-actin丝或未聚合的G-actin 10 min,然后离心(20 min、100000×). AKAP片段在含有G-actin的上清液(未结合部分)和含有F-actin的颗粒(结合部分)之间的分布通过兔抗AKAP79 918I,1:2000(ICOS)免疫印迹测定,这些免疫印迹如图所示图3B类和55A类,B类,D类.

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AKAP79 N末端基本结构域结合F-actin在体外并使用PI-4,5-P进行定位2以及COS7细胞中的皮质F-Actin:PKA和CaN靶向膜褶皱。A类,显示用于肌动蛋白结合研究的AKAP79WT(1-427)、(1-153)和(154-427)蛋白结构的图。三者的位置(A类,B类,C类)指出了基本的膜靶向/磷脂结合区域以及CaNA和PKA-RII锚定域。B类,AKAP79WT和一个N末端(1–153)片段,但不是一个C末端(154–427)片段与F-actin结合在体外纯化的全长AKAP79WT、(1–153)或(154–427)片段与(+)或在有利于单体G-actin的缓冲液中没有(−)纯化的actin(G公司)或F-actin聚合(F类). 与聚合F-actin的结合被检测为颗粒组分中AKAP79免疫反应的沉淀(P(P))离心后。所示数据代表了在多次(三次以上)独立实验中获得的结果。C类,AKAP79–GFP与COS7细胞中的皮层/膜F-actin共定位。在对照组未经处理的COS7细胞中,AKAP79–GFP重叠(绿色)和F-actin(TxRd–磷灰石;红色)在质膜上皱褶被视为黄色-范围在合成图像中。肌动蛋白聚合抑制剂细胞松弛素D(5μ,4-5小时)(+冠心病)破坏肌动蛋白细胞骨架和膜皱褶中的AKAP79–GFP/F-actin共定位。D类、AKAP79(1–153)–GFP(绿色)N-末端靶向结构域也与皮质F-actin共定位(红色)细胞松弛素D中的皱褶(+冠心病)-敏感的态度。E类GFP–AKAP79(150–427)(绿色)含有CaNA和PKA锚定结构域但缺乏基本靶向结构域的C末端片段定位于细胞质,且未与皮质F-actin共定位(红色)在COS7细胞中。PKA-RII–GFP(F类,绿色)和mycCaNA(抗myc;G公司,红色)在COS7细胞中单独表达时,在细胞质中发现。H(H),AKAP79(抗79,红色)目标PKA-RII–GFP(绿色)细胞松弛素D的质膜皱褶(+冠心病)-敏感的态度。,AKAP79–GFP的共表达(绿色)靶向mycCaNA(抗myc;红色)细胞松弛素D的质膜皱褶(+冠心病)-敏感的态度。J型、结肠化(蓝绿色)AKAP79–CFP的(蓝色)带PI-4,5-P2由PLCδ-PH–YFP检测(绿色)活COS7细胞的膜皱褶。K(K)、结肠化(蓝绿色)AKAP79(1–153)-CFP N末端靶向域(蓝色)带PI-4,5-P2由PLCδ-PH–YFP检测(绿色)活COS7细胞的膜皱褶。中显示的图像C类K(K)代表每种情况下在三个独立实验中成像的多个细胞。Tx道路德克萨斯州红。

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磷酸化和钙对AKAP79靶向结构域F-actin结合的调控2+-钙调素结合。A类钙对AKAP79(1–153)F-actin结合的调节2+–钙。如图所示,将AKAP79(1-153)孵育10分钟(+)或不含(−)CaM(1μ),钙2+(100 μ)或EGTA(5米)在通过共沉淀分析F-actin结合之前。B类,通过PKC磷酸化调节AKAP79(1–153)F-actin结合。AKAP79(1–153)在通过共沉淀分析F-actin结合之前被磷酸化。对照孵育在没有激酶的情况下进行。C、,Ca之间的竞争2+–AKAP79(1–153)靶向结构域的CaM结合和PKC磷酸化。AKAP79(1–153)被[γ−32P] PKC的ATP(控制),含Ca2+–存在CaM或CaM和EGTA。D类,先前与F-actin孵育通过PKC磷酸化和Ca抑制AKAP79(1–153)F-actin结合的调节2+–CaM绑定。顶部面板,AKAP79(1–153)在与F-actin孵育前被PKC磷酸化(肌动蛋白2; 如中所示B类)或先用F-actin孵育,然后用PKC孵育(肌动蛋白1)然后检测F-actin共沉积。底部面板,AKAP79(1–153)靶向结构域片段也与钙孵育2+–与F-actin孵育前的CaM(肌动蛋白2; 如中所示A类)或者先用F-actin孵育,然后用Ca孵育2+–CaM公司(肌动蛋白1)然后检测F-actin共沉积。所示数据代表了至少三个独立实验的结果。A类,B类、和D类是免疫印迹(IB公司:);C类是自动放射自显影(第32页).

PKC磷酸化和CaM结合对(1–153)F-actin结合的调节对于肌动蛋白结合调节研究,(1–153)C-His未磷酸化或PKC用未标记的ATP磷酸化,如下所述,或用1μ含(+)或不含(−)Ca的CaM(钙生物化学)2+(0.1米)或EGTA(5米)与F-肌动蛋白孵育,然后通过共沉淀分析肌动蛋白结合。对于PKC磷酸化顺序实验,如上所述,(1–153)C-His用PKC磷酸化合15分钟,然后用F-actin孵育10分钟,或者在离心前加入等量的PKC孵育15分钟,再用F-actin培养10分钟(注:F-缓冲液已经含有0.2 mATP)。对于CaM-结合顺序实验,(1–153)C-His或与1μCaM,0.1米2+在加入1μCaM,0.1米2+离心前10分钟。

体外(1–153)靶向结构域的磷酸化。如前所述,重组(1–153)C-His(1μg)基本上被PKC磷酸化(Dell'Acqua等人,1998年)除了使用PKC组成型活性催化胰蛋白酶片段(PKC-M,20ng)(由科罗拉多大学健康科学中心的Michael Browning博士提供)。对于直接可视化(1–153)C-His的PKC磷酸化,600 cpm/pmol[γ−32P] 包括ATP,然后通过SDS-PAGE分析反应,并使用分子动力学风暴磷光成像仪成像。看看Ca之间的竞争2+-使用或不使用0.1 m进行CaM结合和PKC磷酸化,PKC对(1–153)进行磷酸化2+,5米EGTA和1μ如图所示的CaM。

海马神经元提取物中AKAP79/150复合物的免疫沉淀高密度培养的海马神经元未经处理,用5μlatrunculin A 4小时,或用50μNMDA 10分钟,然后在PBS中洗涤两次。将未经处理的对照或处理条件下的两到五(6 cm)个培养皿中的细胞混合在1–2 ml 4°C Triton裂解缓冲液(TLB)(0.5%Triton X-100,20 m)中进行裂解HEPES,pH 7.4,0.1KCl,30米NaPPi,50米氟化钠,1米EDTA,1米EGTA,2μg/ml亮氨酸肽/胃蛋白酶抑制素,1 m苯甲脒,1米4-(2-氨基乙基)苯磺酰基氟化物),然后进行均匀化,以制备全细胞提取物。将100微升的这些全细胞提取物用于未经处理的对照和处理的条件。通过离心(20000×,15分钟,4°C)。将产生的上清液分为两到四个蛋白质含量相等的独立试管,然后在4°C下用5μg兔抗AKAP150抗体(ICOS)孵育每一试管过夜。该培养后,用蛋白A-琼脂糖培养1-2小时(25μl,50%的浆液在TLB中平衡;UBI)。然后通过微离心(3000×g,1 min)将免疫复合物制成丸,并在TLB 6×1 ml中洗涤小球。最后用SDS样品缓冲液洗脱免疫复合物,用SDS-PAGE和细胞提取物(12.5–25μg)分离,并用兔抗AKAP150(1:2000)进行免疫印迹分析,小鼠泛抗PSD–MAGUK家族(1:1000,UBI),或小鼠抗PKA RIIβ(1:2000;转导实验室)。

结果

先前的研究表明,AKAP79/150是PSD中的主要AKAP(Carr等人,1992年),与PSD–MAGUK共免疫沉淀,并直接与SAP97和PSD-95 MAGUKs结合在体外(Colledge等人,2000年). AKAP79与MAGUK的关联在体外涉及未映射的中央AKAP域与MAGUK SH3和GK域之间的直接绑定(Colledge等人,2000年). 然而,这些支架的适当膜定位显然涉及到额外的靶向决定因素,例如PSD-95中的棕榈酰化位点和AKAP79中的N末端基础区域(Lue等人,1994年,1996;Li等人,1996年;Dell'Acqua等人,1998年;Wu等人,1998年;Craven和Bredt,2000年;El-Husseni等人,2000a). 与这些独立的靶向机制一致,尽管AKAP79/150在海马神经元的树突棘上与PSD-95表现出广泛的点状共定位,但它也更广泛地分布在树突棘和轴膜上(图。(图1)。1). 因此,AKAP79/150在突触与PSD–MAGUK形成支架复合体的能力体内可能首先依赖于AKAP独立靶向质膜和树突棘的主要机制。我们之前已经确定了三个与PI-4,5-P结合的N末端基本区域2并且对于将GFP靶向人胚胎肾(HEK)-293细胞和皮层神经元的质膜是必要和充分的(Dell'Acqua等人,1998年). 这些基本区域都与结合两个膜PI-4,5-P的MARCKS的基本效应域相似2和皮质F-actin(阿德雷姆,1992年;Bubb等人,1999年;Wang等人,2001年); 然而,目前尚不清楚AKAP79靶向结构域是否也与F-actin结合。虽然F-actin对HEK-293细胞中AKAP79的一般膜靶向性来说不是必需的,但与F-actin的相互作用很可能会进一步将膜定位的AKAP导向更特殊的结构,如树突棘(Li等人,1996年;Dell'Acqua等人,1998年). 为了评估这种可能性,我们对AKAP79/150在低密度海马神经元培养物中的定位进行了发育分析,分析了突触最初形成然后成熟为富含肌动蛋白的棘状突触的时间段。

AKAP79/150在海马神经元树突状棘上的突触后定位

在培养8 DIV的神经元中,AKAP79/150在体细胞和树突中显示出不均匀的膜定位,包括精细的丝足结构(图。(图11A类). 然而,在8 DIV时,AKAP79/150几乎没有共同分布,PSD-95的点状物主要位于树状轴上。到16 DIV时,AKAP79/150和PSD-95 punta的共同定位更加广泛(图。(图11A类). 在培养的第三周,AKAP79/150和PSD-95的体脂共定位发展得更多,到22-26 DIV时,大多数PSD-95点刺与AKAP79/120点刺重叠,尤其是在树突棘上(图。(图11A类). 然而,即使在22–26 DIV时,仍有AKAP79/150染色的部位未对PSD-95染色呈阳性,反之亦然(图。(图11A类; 看见箭头放大复合板)。在中高密度神经元培养物中也获得了类似的结果,这些培养物比低密度培养物形成更多的突触并更快成熟。在中高密度培养2–3周的神经元显示AKAP79/150与PSD-95广泛但仍未完全的树突状共定位(图。(图11B类,箭头). 神经元对AKAP79/150和突触蛋白的协同作用表明,在这些树突中看到的大多数AKAP79/120点与突触前终末密切相反(图。(图11B类). AKAP79/150定位于兴奋性抑制性突触的特异性在树突状AKAP79/120和GABA之间几乎没有重叠A类受体穿孔(图。(图11B类).

AKAP79/150突触后定位依赖于树突状肌动蛋白细胞骨架

AKAP79/150与PSD-95共定位的发展过程与其他人阐明的形成富含F-actin的树突状棘和谷氨酸受体和PSD-95向棘突触募集的时间进程密切相关(Rao等人,1998年;Pickard等人,2000年;Okabe等人,2001年;张和本森,2001). 重要的是,AMPA受体的突触后定位依赖于F-actin,并被actin聚合抑制剂latrunculin A破坏(Allison等人,1998年,2000;Shen等人,2000年;Zhou等人,2001年). 与先前关于AMPA受体的研究一致,作为阳性对照,latrunculin a治疗导致GluR1-AMPA受体与PSD-95的树突状共定位减少(图。(图2A)。2A) ●●●●。与AKAP79/150可能针对突触后肌动蛋白的靶向性一致,在未经处理的神经元中,AKAP79/120在树突状棘上与含鬼臼苷的F-actin和PSD-95共定位(图。(图22B类,C类). 在latrunculin治疗后,AKAP79/150在树突中呈现出更为弥漫的模式,几乎没有F-actin共定位(图。(图22B类,C类). 重要的是,latrunculin治疗也破坏了AKAP79/150与PSD-95的共分布(图。(图22B类,C类)如之前的研究所示,它仍然是点状的(Allison等人,1998年,2000). latrunculin对AKAP79/150与F-actin和PSD-95在树突状棘上共定位的这些影响在去除药物和恢复期后是可逆的,以允许脊椎actin的重新聚合(图。(图22B类). 这些发现表明,与AMPA受体一样,树突状F-actin细胞骨架对维持AKAP79/150突触后定位很重要。

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AKAP79/150与F-actin、PSD-95、PKA和钙调神经磷酸酶在树突棘上的共定位依赖于肌动蛋白细胞骨架:用latrunculin A破坏。A类,AMPA受体GluR1(红色)与PSD-95的树突状共定位(绿色)被latrunculin A预处理破坏(+中校A; 5 μ,2小时)。B类,海马神经元中的树突状棘共定位(见白色在里面复合板)AKAP79/150的(红色)含F-actin(绿色)和PSD-95(蓝色)被latrunculin A治疗(2μ; 2小时),并且在药物洗脱和恢复(16小时)后是可逆的。C类,AKAP79/150的树突状脊柱共定位(红色)带有CaN和PKA以及PSD-95和F-actin(标记;全部在绿色)被latrunculin A(5μ,2小时)。显示了树枝晶的放大。定量见结果。

多个实验中神经元的定量(n个=3-5)显示F-actin的AKAP150整合共定位指数(见材料和方法)为65±9%,PSD-95(PSD)为66±3%有限公司)在未经处理的神经元中。latrunculin治疗后,F-肌动蛋白和PSD的这些指数分别降至22±6%和19±6%有限公司分别是。这种AKAP79/150从PSD的缺失可能会导致锚定在其上的PKA和CaN的定位发生相应的变化。在对照神经元中,PKA-RIIβ和CaNB染色都显示出与AKAP79/150在树突棘上的广泛点状共分布,共定位指数为150-RII有限公司=73±4%和150-CaN有限公司分别=68±3%(图。(图22D类) (n个= 3–5). 然而,用latrunculin处理神经元后,PKA和CaN与AKAP79/150的点状共分布丢失,所有三种蛋白都主要表现为弥漫性树突定位(图。(图22D类). 在latrunculin治疗后,如果没有大量AKAP150、PKA-RIIβ或CaNB puncta进行定量,则无法计算准确的共定位指数。然而,归一化平均荧光值的计算(见材料和方法;D/T比)显示,对AKAP150[81±3%对照;63±3%latrunculin A(LtrA)]、PKA-RIIβ(70±3%对照)、53±2%LtrA和CaNB(76±4%对照)进行latrunculan治疗后,树突整体定位相应减少了17–21%;55±3%LtrA),表明大量PKA和CaN可能与AKAP作为一个单位移动。因此,肌动蛋白细胞骨架对于维持AKAP79/150支架多组分的正确树突状定位是必要的。

AKAP79 N末端基本结构域结合F-actin并介导靶向COS7细胞的皮层膜细胞骨架

根据这些latrunculin研究的结果以及AKAP N末端基本结构域与MARCKS效应域的相似性,我们分析了纯化的重组AKAP79WT、N末端靶向结构域(1-153)片段和C末端(154-427)控制片段(图。(图3A类)使用共沉淀法与F-actin直接结合。我们观察到AKAP79与F-actin的直接结合,如AKAP79在F-而非G-actin颗粒组分中的共沉淀所示(图。(图3B类). 对非特异性聚集的另一个控制是,AKAP79在G-或F-缓冲液条件下,在没有肌动蛋白的情况下不会沉积。重要的是,与先前映射的基本膜靶向和PI-4,5-P相对应的重组N末端(1–153)片段2结合域也表现出与F-actin的特异性共沉积(图。(图3B类). 相反,C末端(154-427)控制片段缺乏基本结构域,但包含CaN和PKA锚定结构域(图。(图3A类)未与F-actin共沉淀(图。(图3B类).

接下来,我们试图确定这个结合F-actin的N-末端基本结构域是否在体外在模型细胞系统中,可能也足以靶向膜肌动蛋白细胞骨架。我们用GFP标记的全长AKAP79转染COS7细胞(钱,1998)然后将F-肌动蛋白与阴茎倍体蛋白进行共染色(图。(图3C类). 在对照细胞中,AKAP79–GFP表现出质膜定位,其特征是在膜皱褶中显著富集F-actin,而不是细胞质应力纤维(图。(图3C类). 在用聚合抑制剂细胞松弛素D破坏F-actin后,AKAP79–GFP与F-actin的共定位被消除,AKAP呈弥漫性质膜定位,在细胞膜结构和聚集物中显著积累(图。(图3C类). 重要的是,N-末端(1-153)-GFP蛋白也显示出对F-肌动蛋白褶皱的特异性定位,并且这种定位对细胞松弛素D的破坏敏感(图。(图3D类). 相反,缺乏N末端基本结构域的GFP-(150–427)控制融合蛋白是细胞质的,在COS7细胞中没有与膜或皮质肌动蛋白的定位(图。(图3E类). 因此,AKAP79的N末端基本区域对于靶向细胞中的皮层/膜肌动蛋白结构似乎是必要和充分的。

我们的上述发现表明,抑制神经元中的F-actin聚合可能通过AKAP79/150的错误定位破坏PKA和CaN的树突棘定位。为了支持这个模型,当在COS7细胞中单独表达时,PKA–RII–GFP和mycCaNA亚基是细胞质的(图。(图3F类,G公司)但当与AKAP79共压制时,靶向膜并富含褶边(图。(图3H(H),). 重要的是,细胞松弛素D对F-actin的破坏导致PKA或CaN与AKAP79的膜皱褶定位丢失、扩散质膜定位以及这些蛋白在细胞内结构中的出现(图。(图3H(H),). 因此,阻断突触后靶向AKAP79/150(PSD中主要的AKAP)也可能改变PKA和CaN在神经元中的树突棘定位,如图所示图2。2此外,从所有这些COS7研究的结果来看,在latrunculin处理的神经元中,AKAP79/150、PKA和CaN的弥漫性树突定位似乎是突触外侧膜扩散和细胞内膜重新分布的产物。

我们之前的研究表明,AKAP79碱性靶向结构域,如MARCKS效应结构域,可以通过非特异性静电相互作用与含有酸性磷脂(如PI-4,5-P)的膜结合2有趣的是,使用PLCδ-PH的细胞成像研究,其与PI-4,5-P以高亲和力和特异性结合2,显示PI-4,5-P富集2质膜皱褶中含有肌动蛋白(Tall等人,2000年). 因此,我们想研究AKAP79 N末端基本结构域是否也可能与PI-4,5-P共定位2在膜褶边。为了使这一调查成为可能,我们生成了AKAP79全长和(1–153)标记的氰基CFP和标记黄色YFP的PLCδ-PH域,用于活细胞同步成像。AKAP79–CFP的共表达(图。(图3J型)或(1–153)–CFP(图。(图3K(K))通过PLCδ-PH–YFP显示CFP和YFP荧光在COS7活细胞膜皱褶中广泛共分布。AKAP79和(1–153)-CFP的一些胞内囊泡膜定位也与PH-PLCδ-YFP无关(图。(图3J型,K(K)). 然而,褶边中AKAP79(1–153)与PLCδ-PH的广泛重叠清楚地表明AKAP靶向结构域和PI-4,5-P的显著富集2在相同的质膜结构中。这些发现表明,三个AKAP79 N端碱基区域(如MARCKS碱基结构域)的多重静电相互作用可能使AKAP连接质膜PI-4,5-P2褶边中的皮质肌动蛋白。

AKAP79 N末端基本结构域介导靶向海马神经元树突状棘

接下来,我们想建立针对皮质肌动蛋白和PI-4,5-P的相同N末端基本区域2COS7细胞的膜结构也参与了AKAP79靶向神经元树突状棘的过程。以前,我们证明该区域可以靶向显微注射的皮层神经元中的体脂质膜;然而,在突触与F-actin或PSD–MAGUK的特异性共定位没有得到解决(Dell'Acqua等人,1998年). 全长AKAP79–GFP或(1–153)–GFP的表达仅包含N末端基本结构域,导致GFP靶向转染神经元胞体和树突的质膜部位(图。(图44A类). 相比之下,GFP本身明显是细胞质的,弥散分布于胞体和树突(图。(图44A类). AKAP79和(1–153)的树突状定位以树突状棘上的点状富集为特征(图。(图44A类),其中可以看到与F-actin或PSD-95的共定位(图。(图44B类). 通过AKAP79的平均棘/轴归一化平均荧光比高30-50%(1.55±0.1;n个=10)和(1-153)–GFP(1.33±0.03;n个=13)仅相对于GFP(1.05±0.06;n个=11),表明树突棘和树干之间分布均匀。这些发现表明,N-末端基本结构域足以将AKAP79靶向海马神经元的树突状棘。

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AKAP79 N末端基本结构域靶向海马神经元的树突状棘。A类,靶向AKAP79–GFP和N末端基本结构域(1–153)–GFP,但不单独靶向GFP(均在绿色)转染神经元的树突状棘。B类AKAP79–GFP和(1–153)–GFP的克隆化绿色)含F-actin和PSD-95(两者红色)树突棘上。有关定量和详细信息,请参见结果和材料与方法。

通过磷酸化和钙调素结合调节AKAP79靶向结构域与F-肌动蛋白的结合

AKAP79靶向结构域的三个基本区域包含丝氨酸/苏氨酸磷酸化位点和结合Ca2+–CaM公司(Faux和Scott,1997年;Dell'Acqua等人,1998年). 我们之前已经表明在体外AKAP79(1–153)靶向结构域与PI-4,5-P的结合2受PKC磷酸化和钙调节2+–CaM绑定(Dell'Acqua等人,1998年). 因此,AKAP79靶向结构域和F-actin的结合也可能受到PKC和CaM的调节。与这些预期一致,AKAP79(1–153)与CaM在Ca存在下预孵育2+在共沉淀试验中抑制与F-actin的结合(图。(图55A类). CaM的这种抑制作用是Ca2+依赖性且在缺乏钙的情况下未观察到2+加上螯合剂EGTA。同样与之前的工作一致,以前用PKC磷酸化(1–153)(很容易在电泳迁移率变化中看到)也抑制了F-actin的共沉积(图。(图55B类). 对于MARCKS蛋白,效应域和Ca的PKC磷酸化2+–CaM结合,两者调节目标功能,相互竞争(阿德雷姆,1992年). 为了评估AKAP79的这种可能性,我们在钙的存在下用PKC磷酸化(1–153)2+–钙。钙显著抑制PKC磷酸化2+–CaM,但不是CaM和EGTA(图。(图55C类). 这些发现表明,CaM与AKAP基本靶向结构域的结合阻止了对PKC磷酸化位点的访问。因此,在细胞中,磷酸化、多种CaM结合事件或通过三个基本区域作用的两个过程的某种组合可能调节AKAP79膜/细胞骨架相互作用,以响应Ca2+信号。

F-actin与磷酸化和钙调蛋白结合竞争调节AKAP79靶向结构域

因为F-actin结合、磷酸化和CaM结合都集中在相同的三个基本区域,所以当靶向结构域与细胞中的皮质肌动蛋白结合时,基本区域可能不容易进行磷酸化或CaM结合。这种情况可以解释为什么在以前的研究中PKC或CaM的活化从HEK-293膜组分中释放出很少AKAP79(Dell'Acqua等人,1998年). 为了从生物化学角度验证这个想法,我们改变了(1–153)靶向结构域与PKC或Ca的孵育顺序2+–CaM和F-actin。与上述结果一致,在控制条件下,大多数(1–153)用F-actin沉淀,(1–151)用PKC磷酸化或用Ca孵育2–与F-actin孵育前的CaM强烈抑制了这种沉积(图。(图55D类). 相反,先前用F-actin孵育(1–153)显著减弱PKC或Ca的能力2+–CaM然后从F-actin中释放靶向结构域,如上清液和颗粒之间几乎相等的分布所示(图。(图55D类). 总的来说,这些发现有助于确认介导膜靶向和PI-4,5-P的相同基本区域2结合还调节与F-肌动蛋白的相互作用。

谷氨酸对树突F-肌动蛋白和AKAP79/150突触后靶向的调节

根据观察,AKAP79靶向可能受到钙离子的调节2+信号和肌动蛋白聚合,我们想看看AKAP79/150的突触后定位是否能被升高Ca的神经元信号通路调节2+重组树突状肌动蛋白细胞骨架。我们用50μ谷氨酸作用10分钟,然后固定并染色,以可视化AKAP79/150相对于F-actin、PSD–MAGUK(包括PSD-95和SAP97;pan-PSD–MAGU抗体)和突触蛋白的定位(图。(图6)。6). 对海马神经元进行类似的谷氨酸处理已被证明可以刺激AMPA受体的快速内吞和树突状F-actin的重组(Halpain等人,1998年;卡罗尔等人,1999b;Lissin等人,1999年;Beattie等人,2000年;Zhou等人,2001年). 与早期的研究一致,谷氨酸暴露导致树突中F-actin的重组,表现为树突棘上F-actin点的丢失和沿树突轴的肌动蛋白丝染色增加(图。(图66A类) (Halpain等人,1998年). 同样与之前的工作一致,谷氨酸治疗并没有显著改变突触后MAGUK的点状分布(图。(图66B类)或突触素标记的突触前终末(图。(图66C类) (Halpain等人,1998年). 谷氨酸处理还导致AKAP79/150的急剧重新分布,表现为体细胞性点状突起消失,树突轴染色弱且弥散,胞质荧光增强(图。(图66A类). AKAP79/150从树突定位到体细胞的这种转变反映在树突荧光降低(D/T=89±2%对照,n个= 6; D/T=56±4%谷氨酸,n个=5)和增加的体细胞荧光(S/T=131±6%对照;S/T=175±7%谷氨酸),可以一起表示为平均树突状荧光与体细胞荧光的比率降低(D/S=69±4%对照;D/S=32±2%谷氨酸)。重要的是,这种谷氨酸刺激的AKAP79/150重新分布导致与PSD–MAGUK失去共定位(图。(图66B类)(见下文)和突触蛋白(图。(图66C类).

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谷氨酸对海马神经元中AKAP79/150突触后定位和树突状棘F-actin的调节。A类海马神经元对谷氨酸的反应中AKAP79/150的重新分布和树突状F-actin的重组。B类谷氨酸处理后AKAP79/150与突触后PSD-95家族MAGUK支架的共定位丢失。C类突触素标记的突触前终末附近AKAP79/150定位的谷氨酸调节。使用(+)或不使用(−)谷氨酸(50μ)AKAP150染色前(红色)、F-肌动蛋白-指骨样蛋白、PSD-95家族成员(包括PSD-95和SAP97)或突触蛋白(均在绿色). 所示图像代表了在每种情况下的多个(>3)实验中拍摄的神经元图像。

NMDA受体激活对AKAP79/150突触后定位的调节

树突状棘F-actin的重组和AMPA受体的内吞都可以由NMDA或AMPA受体单独激活触发(Halpain等人,1998年;Carroll等人,1999b;Beattie等人,2000年;Lin等人,2000年;Man等人,2000年;Zhou等人,2001年). 然而,为了调节海马LTD的一些重要形式,Ca2+通过NMDA受体的流入被认为是关键的信号事件。与之前的研究一致,作为NMDA受体调节AMPA受体的阳性对照,NMDA治疗明显干扰了GluR1与PSD-95的树突状共定位(图。(图77A类). 如上所示,在未经处理的神经元中,AKAP79/150与PSD-95(PSD有限公司= 64 ± 3%;n个=6),谷氨酸处理导致AKAP79/150从树突快速重新分布(D/S=32±2%),表现为与PSD-95(PSD)失去树突共定位有限公司= 8 ± 3%;n个=5)(图。(图77B类,C类). 在EGTA存在下短暂预培养神经元以螯合细胞外钙2+主要阻止谷氨酸刺激的AKAP79/150从树突中重新分布(D/S=69±4%),并保持与PSD-95(PSD)的共定位有限公司= 56 ± 5%;n个=5)(图。(图77C类). 与钙的主要作用一致2+在这种反应中,通过NMDA受体内流,谷氨酸刺激的AKAP79/150重新分布被NMDA受体拮抗剂AP-V(100μ; D/S=65±6%;屏蔽门有限公司= 62 ± 4%;n个=6),添加AMPA受体拮抗剂CNQX(50μ; D/S=63±2%;屏蔽门有限公司= 67 ± 8%;n个=3)(图。(图77B类,C类). 此外,50μNMDA足以引起AKAP79/150从突触后特化的重新分布(D/S=40±4%;PSD有限公司= 7 ± 2%;n个=7)以AP-V敏感方式(D/S=64±4%;PSD有限公司= 58 ± 3%;n个=12)(图。(图77B类,C类). 因此,我们的结论是NMDA受体的激活对于钙的激活是必要的和充分的2+-调节AKAP79/150定位到突触后位点的依赖性信号通路。

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NMDA受体激活对AKAP79/150突触后定位的调节。A类,GluR1 AMPA-受体缺失(红色)与PSD-95的树突状共定位(绿色)在NMDA处理的神经元中。B类,AKAP79/150损失(红色)与PSD-95共定位(绿色)谷氨酸或NMDA处理的神经元。用谷氨酸(50μ)或NMDA(50μ). NMDAR拮抗剂AP-V(100μ,预处理15分钟)。大型面板在树突和胞体中分别显示AKAP150和PSD-95定位。这个放大倍率面板显示AKAP150、PSD-95和混合成的用于在单个树枝晶中定位的图像,以更好地显示细节。C类,树突和体细胞之间AKAP79/150平均荧光强度分布的定量(%D/S公司,红色)以及与PSD-95集成的协同定位(屏蔽门有限公司,蓝色)通过多次实验确定B类以及下面描述的其他条件。有关更多详细信息,请参阅结果、材料和方法。细胞外钙的螯合作用也阻断了AKAP79/150靶向性的谷氨酸调节2+带EGTA(5 m). 在存在谷氨酸和AP-V的情况下,AMPAR拮抗剂CNQX(50μ,预处理15分钟)。50μA选择性激活AMPA受体AMPA(存在100μAP-V)虽然对AKAP79/150突触后定位有一定影响,但并没有像NMDA或谷氨酸那样导致显著的重新分布(数据未显示)。NMDAR拮抗剂AP-V(100μ,预处理15分钟)。

激活磷酸酶钙调神经磷酸酶而非蛋白激酶是调节AKAP79/150靶向NMDA受体所必需的

钙的一个潜在重要靶点2+树突状棘F-actin的NMDA受体调节和AMPA受体定位涉及的内流是Ca2+-活性磷酸酶CaN-PP2B(Halpain等人,1998年;Beattie等人,2000年;埃勒斯,2000). CaN刺激树突状棘F-actin重塑可能在调节AKAP79/150细胞骨架连接(维持其在突触处)中发挥积极作用。与此假设一致,CsA对CaN的抑制作用(D/S=47±4%;PSD有限公司= 46 ± 4%;n个=8)或FK506(D/S=50±3%;PSD有限公司= 55 ± 3%;n个=9)与未经治疗相比,主要阻止了NMDA调节的AKAP79/150重新分布(对照组D/S=57±3%;PSD有限公司= 61 ± 2%;n个=14)和NMDA处理的细胞(NMDA D/S=37±3%;PSD有限公司= 4 ± 1%;n个=10)(图。(图88A类,B类). 雷帕霉素对NMDA处理的细胞没有影响,雷帕霉素是一种与CsA和FK506等免疫亲和素结合但不抑制CaN的药物(数据未显示)。重要的是,CaN直接锚定在AKAP79/150上,因此可能处于最佳位置以参与对NMDA受体激活的突触后肌动蛋白细胞骨架的调节。然而,NMDA受体Ca2+信号也可以激活激酶,如PKC、CaMKII和PKA(通过Ca2+-调节腺苷酸环化酶)。此外,前面的工作和研究表明,AKAP79靶向结构域的PKC磷酸化可以调节PI-4,5-P2和F-actin结合在体外(图。(图5)5) (Dell'Acqua等人,1998年). 然而,与对磷酸酶而非激酶的依赖性一致,NMDA介导的AKAP79/150再分布对白屈菜红素-CHE抑制PKC不敏感(D/S=34±3%;PSD有限公司= 5 ± 2%;n个=5),CaMKII与KN-62(D/S=29±2%;PSD有限公司= 5 ± 1%,n个=3),或PKA与H-89(D/S=33±3%;PSD有限公司= 5 ± 2%;n个=4)(图。(图88B类).

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蛋白磷酸酶-2B钙调神经磷酸酶的激活和F-actin的重组是NMDA受体调节AKAP79/150突触后定位所必需的。A类,CaN的激活和F-肌动蛋白的重组是NMDA调节AKAP79/150定位所必需的。神经元未经治疗或用指定的CaN–PP2B磷酸酶抑制剂CsA(1μ,30分钟)或FK506(1μ,30分钟),肌动蛋白稳定药物茉莉酮内酯(2μ或NMDA受体拮抗剂AP-V(100μ,30分钟),10分钟)。然后固定神经元,并对其进行AKAP79/150染色(红色)和PSD-95(绿色).大型面板在树突和胞体中分别显示AKAP150和PSD-95定位。这个放大倍率面板显示AKAP150、PSD-95和混合成的用于在单个树突中定位的图像,以更好地显示细节。B类钙调磷酸酶而非蛋白激酶活性是NMDA调节AKAP79/150定位所必需的。树突和体细胞之间AKAP79/150平均荧光强度分布的定量(%D/S公司,红色)以及与PSD-95集成的协同定位(屏蔽门有限公司,蓝色)通过多次实验确定A类以及下面描述的附加条件。有关更多详细信息,请参阅结果、材料和方法。神经元也用指示的PKA激酶抑制剂H-89(500 n)预处理30 min); PKC、CHE(10μ); 或CaMKII,KN-62(5μ)NMDA治疗前(50μ,10分钟)。酪蛋白激酶II抑制剂(DRB,50–100μ)或多种激酶抑制剂(H-89、CHE、KN-62、DRB)对NMDA处理的细胞中AKAP150的再分配没有影响(数据未显示)。

树突状棘F-actin的重组是NMDA受体调节AKAP79/150突触后定位的必要条件

CaN调节的F-actin重塑的NMDA受体激活肯定可以控制AKAP79/150的定位,如上所示,通过latrunculin阻断AKAP79/120突触后靶向性抑制肌动蛋白聚合(图。(图2)。2). 然而,尽管F-actin重组伴随着谷氨酸或NMDA处理后AKAP79/150的重新分布(图。(图66A类)(数据未显示),在这些实验中,AKAP似乎并不与F-actin直接运动。尽管如此,根据NMDA受体激活进行的肌动蛋白重塑可能是必要的第一步,使AKAP从PSD释放,并在膜外进行二次再分配(见下文)。为了测试F-actin的重组是否真的对NMDA受体调节的AKAP79/150的再分配是必要的,我们用茉莉糖苷预处理神经元,茉莉糖甙是一种稳定F-actin丝并阻止NMDA诱导的树突状棘F-actin重组的药物(Halpain等人,1998年). 预防用茉莉花苷内酯预处理2小时(D/S=59±3%;PSD有限公司= 46 ± 4%;n个=7)NMDA介导的AKAP79/150从PSD-95的重新分布(D/S=37±3%;PSD有限公司= 4 ± 1%;n个=10),类似于对CaN的抑制(见上文),并且几乎与AP-V的受体阻滞(D/S=64±4%;PSD有限公司= 58 ± 3%;n个=12)(图。(图88A类,B类). 因此,F-actin对CaN激活的反应重构可能会将AKAP79/150靶向结构域从突触后细胞骨架中解封。这些结果加上对激酶抑制的不敏感性,与F-actin重组使靶向结构域可用于后续Ca的模型最为一致2+–CaM粘结(图。(图55D类). CaM结合可介导AKAP79/150从质膜的二次再分配,并阻止NMDA受体激活后与树突状F-actin的再结合。不幸的是,这种预测的AKAP79/150易位中CaM结合的二次参与不能用CaM抑制剂进行研究,因为它们也抑制CaN活化。

肌动蛋白聚合抑制和NMDA受体激活均调节AKAP79/150-PKA复合物与PSD–MAGUKs的关联

上述免疫细胞化学研究表明,肌动蛋白聚合的抑制和NMDA受体的激活都会导致突触AKAP79/150的丢失,表明与PSD–MAGUK复合物分离。为了独立证实AKAP79/150–MAGUK复合物的分解,我们从用latrunculin或NMDA处理的神经元制备的细胞提取物中免疫沉淀AKAP79/150,并通过免疫印迹分析免疫沉淀中的AKAP150、PSD–MAGUKs(泛PSD–MAGUK抗体)和PKA-RIIβ亚基。从未处理的对照神经元和latrunculin或NMDA处理的神经元制备的细胞提取物中,AKAP79/150、PSD–MAGUKs和PKA-RIIβ的水平基本相同,表明这些蛋白质没有因处理而显著的蛋白水解损失(图。(图99A、 B类). 在来自对照组和latrunculin或NMDA处理的神经元的AKAP150免疫沉淀物中检测到大约等量的AKAP15和PKA-RIIβ,表明这些处理后AKAP-PKA复合体仍然完好无损(图。(图99A类,B类). 相反,PSD–MAGUK蛋白很容易与来自对照神经元的AKAP150共沉淀,但在latrunculin或NMDA处理的神经元的AKAP 150沉淀物中无法检测到(图。(图99A类,B类)即使长时间曝光(数据未显示)。因此,由latrunculin治疗或NMDA受体激活引起的F-actin重组不仅导致免疫细胞化学观察到的AKAP79/150亚细胞靶向性的改变,还导致生化检测到的AKAP–MAGUK复合物的破坏。AKAP–MAGUK复合物的破坏反过来会破坏AKAP79/150与谷氨酸受体的连接。虽然我们无法通过共沉淀直接解决这个问题,因为从培养的神经元中提取了少量提取物,但我们的免疫细胞化学支持这一预测。Latrunculin A和NMDA都会触发AKAP79/150的丢失,以及GluR1与PSD-95的共定位,但GluR1s仍然呈点状,与向内体的转运一致(埃勒斯,2000)而AKAP79/150则变得更加分散和无目标(图。(图22,,77).

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通过抑制肌动蛋白聚合和NMDA受体活化,调节AKAP79/150-PKA与PSD–MAGUKs的关联。A类,用latrunculin A抑制F-actin聚合会破坏AKAP79/150与PSD–MAGUK的关联,但不会破坏从海马神经元细胞提取物分离的复合物中PKA的关联。B类NMDA受体激活破坏AKAP79/150与PSD–MAGUK的关联,但不破坏从海马神经元细胞提取物分离的复合物中PKA的关联。培养板上高密度生长的神经元要么未经治疗,要么用latrunculin A治疗(+中校A; 5 μ,4小时)(A类)或NMDA(50μ,10分钟)(B类)在收获和分解以制备全细胞提取物之前。然后免疫沉淀AKAP79/150(IP:阿卡普150)从这些提取物制备的Triton X-100可溶组分中提取。然后用免疫印迹法分析免疫沉淀物和全细胞提取物(国际银行:)用于AKAP150、PSD-MAGUK家族成员和PKA-RIIβ调节亚单位,如图所示。所示数据代表了在每种条件下对两到四个样品进行的三次实验。

NMDA受体对AKAP79/150突触后靶向及PKA和CaN再分布的调节

我们的结果支持的另一个预测是,在latrunculin或NMDA处理后,AKAP150和PKA-RIIβ的共沉淀相等,锚定PKA可能会从AKAP79/150复合物中的树突棘重新分布。如上所示(图。(图2),2)在未经处理的细胞中,PKA-RIIβ与AKAP79/150在树突状棘(150-RII)上表现出广泛的点状共分布有限公司= 68 ± 6%;n个=7)(图。(图1010A类). PKA-RIIβ在细胞体和近端树突轴中也显示出独立的定位,可能反映了在这些位置锚定到其他AKAP(图。(图1010A类). 用谷氨酸治疗后,RIIβ和AKAP79/150变得弥散,点状树突状棘共定位丢失,没有足够的点状蛋白用于定量(图。(图1010A类). 然而,作为对谷氨酸的反应,AKAP79/150的树突状荧光降低(对照组D/T=83±2%,n个= 6; 谷氨酸D/T=51±2%,n个=5)和RIIβ(对照组D/T=67±2%;谷氨酸D/T=54±2%)(图。(图1010A类). 所有治疗后,RIIβ在体细胞和近端树突状干中的显著定位没有改变,这表明NMDA受体活化选择性地调节与AKAP79/150结合的PKA库的定位。重要的是,NMDA受体拮抗剂AP-V抑制了谷氨酸对RIIβ和AKAP79/150定位(RII D/T=77±4%;AKAP150 D/T=86±2%)和脊柱共定位(150-RII)的影响有限公司= 50 ± 7%;n个=4)(图。(图1010A类).

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NMDA受体激活通过AKAP79/150调节PKA和CaN的树突状棘定位。A类,NMDA受体对PKA-RIIβ和AKAP79/150定位的调节。B类,破坏CaNB和AKAP79/150在NMDA受体激活下的树突状棘共定位。神经元(2–3周龄)未经治疗,用拮抗剂AP-V(100μ,30分钟),或用谷氨酸处理(50μ,10分钟)。对照组未经治疗和治疗的神经元染色AKAP79/150(红色)和PKA-RIIβ调节亚单位(绿色)英寸A类或CaNB(绿色)英寸B类. The较小的面板是树枝晶的放大。定量见结果。

根据图中显示的结果图8,8,AKAP79/150的重新分布涉及CaN的激活。CaN A,B全酶与AKAP79/150的锚定是通过催化CaNA亚基的结合以非竞争性抑制磷酸酶活性的方式介导的(Coghlan等人,1995年;Dell'Acqua等人,1998年;Kashishian等人,1999年). 因此,我们想了解AKAP–CaN相互作用是否受NMDA受体的调节。不幸的是,我们通过免疫沉淀法寻找AKAP79/150释放CaN的努力失败了,因为CaN抗体敏感性的局限性和从培养神经元获得的少量提取物(数据未显示)。然而,NMDA受体激活对CaN–AKAP79/150相互作用的调节可能表现为CaN相对于AKAP的树突状定位的变化。其他人观察到NMDA和谷氨酸处理后海马神经元中CaNA亚单位染色模式的变化,类似于此处所用的处理(Halpain等人,1998年). 在未经处理的神经元中,CaNB和AKAP79/150显示点状共定位(150-CaN有限公司= 58 ± 2%;n个=6)在树突棘上(图。(图1010B类); 然而,CaN更广泛地分布在整个细胞体的细胞质中。谷氨酸破坏点状树突状棘共同定位AKAP79/150和CaNB(150-CaN)治疗神经元有限公司= 3 ± 1%;n个=8),AKAP重新分布到树突和胞体中的弥散定位,如上所示(对照组D/T=74±3%,D/S=50±3%,S/T=149±7%;谷氨酸D/T=42±2%,D/S=22±1%,S/T=190±8%)(图。(图1010B类). AP-V预处理抑制了AKAP79/150(D/T=66±3%,D/S=40±3%,S/T=168±6%)相对于CaNB(150-CaN)的谷氨酸调节再分配有限公司= 44 ± 3%;n个=6),从而证实NMDA受体的参与(图。(图1010B类). 对谷氨酸的反应,点状CaNB染色明显减少(~45%);然而,与AKAP和PKA不同,与未经处理的神经元(D/T=67±4%,D/S=43±3%,S/T=159±8%)相比,整个CaNB染色仍分布在树突中,不再集中在胞体中(图。(图1010B类). AKAP79/150的破坏–树突棘上的CaN共定位,而没有CaN从树突向胞体的同时移动,可能表明从AKAP释放CaN。然而,另一种解释是,树突中的CaN仅超过AKAP。尽管如此,NMDA受体对AKAP79/150的调节–PKA定位(图。(图1010A类)也伴随着与CaN共定位的明显变化(图。(图1010B类).

讨论

我们发现AKAP79/150定位于兴奋性突触需要肌动蛋白细胞骨架。AKAP79/150的突触后细胞骨架系留可能涉及结合F-actin、酸性磷脂和靶向COS7细胞膜皱褶和神经元树突棘的N末端基本区域。该靶向结构域与F-actin和酸性脂质结合,将质膜与皮质actin连接,可以很容易地解释AKAP79如何像MARCKS一样富含膜皱褶。尤其是PI-4,5-P2是AKAP79靶向和MARCKS效应域结合的主要酸性磷脂之一,在褶边中富含肌动蛋白和AKAP79(Dell'Acqua等人,1998年;Tall等人,2000年;Wang等人,2001年). 早期对AKAP79/75在HEK-293细胞中定位的研究表明,皮层F-actin对膜靶向作用是不必要的(Li等人,1996年;Dell'Acqua等人,1998年). 事实上,AKAP79可以与支持直接膜结合的磷脂囊泡结合(Dell'Acqua等人,1998年). 事实上,即使在细胞松弛素D治疗后的COS7研究中,我们也发现AKAP79的弥漫性质膜定位以及更显著的细胞内膜定位与磷脂结合一致。然而,尽管先前对HEK-293细胞的研究也检测到细胞松弛素D处理后AKAP79/75膜靶向性,但他们没有探索对皱褶进行更特异定位的肌动蛋白需求。早期研究中没有认识到AKAP79定位的F-actin依赖性,这可能与COS7细胞与HEK-293细胞之间的形态学差异有关,后者更圆,褶皱更少。

我们目前的研究结果清楚地表明,在COS7细胞和神经元中,AKAP79/150、PKA和CaN在富含肌动蛋白的特殊膜结构中的滞留依赖于F-actin。此外,我们发现AKAP79/150突触后支架与PSD–MAGUKs的相互作用首先依赖于适当的AKAP膜/F-肌动蛋白靶向。我们发现,NMDA受体激活,重组树突状肌动蛋白,导致AKAP79/150-PKA复合物从PSD–MAGUK快速重新分布。对AKAP79/150调节的分析表明,钙依赖性2+可能涉及激活先前特征化的磷酸酶CaN和F-actin重塑途径的内流(Halpain等人,1998年).

AKAP79/150和AMPA受体突触定位的类似机制

有趣的是,我们阐明的AKAP79/150的靶向机制与其他人研究的AMPA受体的靶向机理非常相似,AMPA受体可以通过SAP97与AKAP连接(Colledge等人,2000年). 例如,AKAP79/150和AMPA受体突触后定位均通过用latrunculin抑制肌动蛋白聚合而被破坏,并通过用茉莉花内酯稳定F-肌动蛋白而被维持(Allison等人,1998年,2000;Shen等人,2000年;Zhou等人,2001年). AMPA–GluR1和SAP97都与4.1N/G-actin结合蛋白结合,提供了与细胞骨架的可能联系(Lue等人,1994年,1996;Wu等人,1998年;Shen等人,2000年). 然而,我们的研究结果表明,AKAP79/150可能为SAP97–GluR1复合物提供脊椎肌动蛋白的另一个附着点。重要的是,在LTP期间,AMPA受体向突触募集以响应NMDA受体和CaMKII激活需要SAP97识别的GluR1 C末端PDZ结合位点(Leonard等人,1998年;Hayashi等人,2000年;Passafaro等人,2001年;Shi等人,1999年,2001)以及F-actin(Kim和Lisman,1999年;Krucker等人,2000年). 因此,AKAP79/150与F-actin和SAP97结合可能在AMPA–GluR1受体的突触传递中发挥作用,这一过程似乎与PKA磷酸化有关(埃勒斯,2000;Lee等人,2000年).

AKAP79/150还通过PSD-95与NR2A/B结合与NMDA受体相连(Colledge等人,2000年). 然而,尽管PSD-95和NMDA受体也与肌动蛋白细胞骨架有关,但PSD-95与NMDA受体的突触定位并不需要F-actin,也不受谷氨酸的快速调节(Allison等人,1998年,2000;卡罗尔等人,1999b;Lissin等人,1999年). 尽管如此,AKAP79/150与PSD-95的复合物不仅对调节NMDA受体,而且对附近的AMPA受体的调节也很重要,这与SAP97的连接无关。事实上,虽然NMDA受体定位正常,但缺乏功能性PSD-95的小鼠表现出异常的海马突触可塑性,其特征是LTP增强而无LTD,这表明与AMPA受体调节通路的耦合发生改变(Migaud等人,1998年). PSD-95调节AMPA受体定位的一种方式是通过PDZ与AMPA受体相关的Stargazin结合(Chen等人,2000年;El-Husseni等人,2000b). 因此,AKAP79/150支架也可能通过PSD-95与AMPA受体相连。

与LTD共享的信号通路对AKAP79/150的NMDA受体调节和AMPA受体定位

重要的是,我们证明AKAP79/150-PKA与PSD–MAGUKs的关联受NMDA受体信号通路的调节,NMDA受体也控制AMPA受体的突触靶向。其他人的研究表明,NMDA激活CaN通过与LTD共享的机制调节PKA-磷酸化AMPA受体的内吞和去磷酸化(卡罗尔等人,1999a;Beattie等人,2000年;埃勒斯,2000年). 在图中图11,11,我们总结了AKAP79/150定位调控的研究结果,并推测它们可能与AMPA受体调节有关。在基础条件下,AKAP79/150–SAP97–AMPA受体复合物可能通过AKAP靶向结构域和GluR1–SAP97-4.1复合物与F-actin的相互作用而稳定在突触膜上(图。(图1111A类). 这些受体复合体中存在的任何CaN都会被AKAP至少部分抑制(Coghlan等人,1995年;Dell'Acqua等人,1998年;Kashishian等人,1998年). 在这种情况下,锚定在AKAP79/150上的PKA活性可能足以维持Ser 845上AMPA–GluR1的基础磷酸化(Lee等人,2000年)(图。(图1111A类). 然而,PKA和CaN活性的平衡可能是动态的,研究表明,海马神经元中PKA锚定与AKAP抑制肽的断裂通过CaN–PP1通路降低AMPA受体活性(Tavalin等人,2002年). 此外,AKAP79锚定的PKA和CaN已被证明以类似LTD的方式双向调节转染细胞中Ser845上SAP97连接的GluR1的活性和磷酸化(Colledge等人,2000年;Tavalin等人,2002年). 如上所述,AKAP79/150也存在于与NMDA受体、PSD-95和F-actin的膜复合物中,这些复合物可能对与SAP97无关的AMPA受体起类似的调节作用(Sans等人,2001年).

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通过NMDA受体信号通路调节AKAP79/150支架和AMPA受体的可能关系。A类C类《LTD的含义:NMDA受体和CaN介导的F-actin重组在调节AKAP79/150定位和AMPA受体磷酸化和定位中的可能作用模型》。为了简单起见,仅显示了AMPA受体–SAP97–AKAP79/150复合物。附近的NMDA受体–PSD-95–AKAP79/150复合体也可能参与这些信号事件。有关详细信息,请参阅讨论。

谷氨酸/NMDA处理神经元后,Ca的流入2+通过NMDA受体将触发CaM和CaN的激活,它们可能被激活到与AKAP结合的低水平,超过AKAP,或从AKAP中释放(图。(图1111B类). 无论如何,CaN激活导致F-actin的局部重组将使AKAP从细胞骨架中解封,从而破坏AKAP与MAGUK的复合物,包括SAP97和PSD-95(图。(图1111C类). 这种解栓可能会使AKAP侧向扩散,然后从膜和PI-4,5-P中释放出来2通过可能涉及钙的二次过程2+–CaM绑定到目标域(Dell'Acqua等人,1998年)(图。(图1111C类). 突触中AKAP79/150锚定的PKA的丢失,如PKA锚定抑制剂肽的断裂,将有利于CaN和突触锚定的PP1介导的去磷酸化事件(Mulkey等人,1994年;Rosenmund等人,1994年;Blitzer等人,1998年;Morishita等人,2001年;Tavalin等人,2002年). 此外,抑制性AKAP的运动有助于增加突触CaN的激活。磷酸酶对GluR1本身以及内吞蛋白(如dynamin)的作用可能有助于GluR1-Ser845去磷酸化,同时AMPA受体被招募到网格蛋白包被的凹坑中,以通过内吞清除(图。(图1111C类) (卡罗尔等人,1999b;Lai等人,1999年;Lin等人,2000年;Man等人,2000年;Beattie等人,2000年;埃勒斯,2000).

其他人提出了一个非常相似的从肌动蛋白中解离然后内吞的顺序模型,以解释谷氨酸/NMDA或latrunculin处理培养神经元后突触中AMPA受体丢失的机制(Zhou等人,2001年). 虽然在AMPA受体内吞作用中CaN活化和F-actin重组之间的机制联系尚不完全清楚[另见Beattie等人(2000年)]这些和其他研究表明,CaN、PP-1和GluR1-PKA去磷酸化在调节培养神经元中AMPA受体的运输和海马中LTD中起着重要作用(埃勒斯,2000;Lee等人,2000年;Morishita等人,2001年). 然而,最近的其他研究表明,GluR2亚单位与支架蛋白和分泌蛋白的调节性相互作用(不可能涉及AKAP79/150)对调节培养神经元和LTD期间AMPA受体的运输也很重要(Luthi等人,1999年;Chung等人,2000年;Daw等人,2000年;Osten等人,2000年). 尽管如此,含有GluR1和GluR2亚基的AMPA受体的内吞作用需要CaN活性(埃勒斯,2000;Lin等人,2000年). 因此,我们对NMDA受体触发的AKAP79/150-PKA复合体从突触中移除的研究结果与这些观察结果很吻合,因为它们显示了PKA和CaN信号事件的协调,可能调节AMPA受体去磷酸化和定位。重要的是,我们的结果表明,CaN可能以一种新的方式通过控制共同锚定蛋白AKAP79/150的突触定位来调节PKA信号。未来将有兴趣进一步研究AKAP79/150与F-actin,PI-4,5-P的相互作用2在突触可塑性中,CaM、锚定CaN和PKA与这些控制肌动蛋白细胞骨架和AMPA受体的复杂信号通路相适应。

脚注

这项工作得到了美国心脏协会(0130228N)和美国国立卫生研究院/国家神经疾病和中风研究所(NS40701)对医学博士的资助。我们感谢Yvonne Lai博士(华盛顿州波特尔市ICOS)提供的AKAP79和AKAP150抗体,以及Ed Tall和Mario Rebecchi博士(纽约州立大学,纽约州Stonybrook)提供的PLCδ-PH-GFP。我们还感谢Marcie Colledge博士和John D.Scott博士(霍华德·休斯医学研究所、沃尔姆研究所)在这项工作中提供的建议。我们感谢Michael Browning博士、Paula Hoffman博士(科罗拉多大学健康科学中心)和Reed C.Carroll博士(阿尔伯特·爱因斯坦医学院)的努力在提交之前批判性地阅读这份手稿。

通信地址:科罗拉多大学健康科学中心C-236药理学系Mark L.Dell'Acqua,地址:4200 East Nith Avenue,Denver,CO 80262。电子邮件:ude.cshcu@auqcAlleD.kraM公司.

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文章来自神经科学杂志由以下人员提供神经科学学会