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国际实验病理学杂志。2018年6月;99(3): 121–130.
2018年6月11日在线发布。 数字对象标识:10.1111/iep.12271
预防性维修识别码:PMC6104422型
PMID:29893028

突尼斯志愿者瘦素和瘦素受体多态性、血浆瘦素水平与肥胖

总结

脂肪组织是一个重要的内分泌器官,分泌许多脂肪因子,如瘦素(LEP)。本研究旨在研究LEP基因(LEP3′UTR A/C,−2548 G/A)和LEPR(K109R和Q223R)单核苷酸多态性的流行率及其与瘦素水平和肥胖的关系。我们招募了169名非肥胖者(体重指数[BMI]=24.51‐3.69 kg/m2)和160名肥胖者(BMI=36‐4.78 kg/m2)患者。使用聚合酶链反应-限制性片段长度多态性进行基因分型,计算BMI,并通过ELISA测定瘦素水平。统计分析由spss软件19.0. 根据LEP 3′UTR A/C多态性,AC和CC基因型携带者的瘦素水平分别高于AA基因型携带者,31[0.05‐148.8](P(P)=0.008)对41[0.05-111.6](P(P) = .003). K109R多态性与肥胖相关(P(P)=0.025),并似乎显著降低LEP水平(P(P) < .001). 关于LEP G2548A多态性,我们的结果表明,与2548 AA/GG相关的肥胖OR为1.87[1.106‐2.78]P(P)=0.028对1.41[1.035‐1.85]P(P)223A/GG多态性=.045。在我们的单倍型分析中,一种单倍型似乎更具保护性,另一种似乎是肥胖的最高风险。LEP 3′UTR A/C和LEPR K109R多态性与瘦素水平和肥胖相关。

关键词:瘦素水平,麻风,LEPR公司、肥胖、突尼斯志愿者

1.简介

肥胖是复杂心血管疾病发生的主要影响因素。许多对人类的研究表明,肥胖与基因和环境因素之间的相互作用有关。1肥胖被定义为热量消耗和能量消耗之间的不平衡。一些蛋白质与这种能量失衡有关,例如脂肪因子,脂肪组织产生的蛋白质。瘦素(LEP)是最重要的脂肪因子之一。2

瘦素是一种内分泌激素,是长链螺旋细胞因子家族的成员。它有多种作用,如调节食物摄入、能量消耗、体重和免疫反应。LEP效应由其受体(LEPR)介导,该受体位于中枢神经系统和其他组织,包括脂肪细胞和内皮细胞。4

许多研究表明,LEP和LEPR基因的一些多态性可能与肥胖、代谢综合征和糖尿病的病理生理学有关。5,6,7,8

据报道,成人和儿童的循环LEP水平与身体肥胖相关9肥胖者LEP水平的高值被认为表明LEP抵抗。10

基于LEP和LEPR多态性与不同人群肥胖和LEP水平相关的相互矛盾的结果,我们旨在研究LEP中的两个SNPs(单核苷酸多态性)(−2548 G/A(rs7799039)和3′UTR A/C(rs11761556))与LEPR rs1137101(Gln223Arg)和rs1137100(Arg109Lys)中的两个SNPs之间的关系突尼斯志愿者的瘦素水平和肥胖。

2.材料和方法

2.1. 研究对象

如Imen Boumaiza等人之前所述5和Zayani等人11本研究包括两组(肥胖/非肥胖)。根据体重指数(BMI[kg/m),肥胖组由160名突尼斯无关受试者组成2])≥30 kg/m2,他们是Sahloul大学医院(突尼斯苏塞省)会诊的志愿者。平均年龄为47.86±11.17岁,平均BMI为36±4.78 kg/m2非肥胖组由169名无关受试者组成,他们是医院工作人员的志愿者(BMI<30 kg/m2)(平均年龄=42.16±14.26岁;平均BMI=24.51±3.69 kg/m2). 在这两个组中,我们排除了服用降脂药物的受试者以及所有患有肾功能衰竭、甲状腺疾病和肝脏病理的受试对象。

研究的所有成员都完成了一份结构化问卷。收集了社会人口学特征、家庭和个人历史、吸烟习惯和药物摄入(如有)。

参与者接受了体检和实验室测试。主考人接受了问卷收集和测量方面的培训。该研究得到了医院医学伦理委员会《CHU SAH CE30/2011》的批准,并获得了所有研究对象的知情同意。

2.2. 人体测量参数和血压测量

测量赤脚和轻装受试者的体重和身高。由训练有素的检查人员从胸腔下缘和髂嵴之间的最窄点测量腰围(WC)。BMI按体重(kg)/身高计算2(米2),肥胖定义为BMI≥30 kg/m2.12休息20分钟后,用血压监测仪从坐姿受试者的左臂上测量三次血压。

2.3. 生物化学测量

隔夜禁食12小时后,采集血液进行实验室检测。所有生化参数研究均使用贝克曼试剂(加州富勒顿贝克曼)在Synckrom CX7临床系统上进行。用酶法测定血清总胆固醇(TC)和甘油三酯(TG)。采用直接酶法测定高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)。通过直接测定法测定低密度脂蛋白胆固醇(LDL‐C),并使用Friedewald公式计算。13采用稳态模型评估(HOMA)评估胰岛素抵抗,公式如下:HOMA‐IR=(空腹胰岛素[μU/mL]×空腹血糖[mmol/L])/22.5。14用葡萄糖氧化酶法测定空腹血糖。胰岛素浓度通过微粒子免疫分析(MEIA)在AxSym Abbott(Abbott Laboratories,Abbott Parck,IL)上测量。根据制造商的说明(DBC;Diagnostic Biochem Canada,目录号:CAN‐L‐4260;批号:152030),使用酶联免疫吸附试验(ELISA)测定瘦素的血清水平,结果以ng/mL表示。

2.4. 风险因素的定义

脂代谢异常定义为LDL-C浓度≥4.1 mmol/L和/或HDL-C浓度≤1 mmol/Ls和/或TG浓度1.71 mmol/L。15,16高血压被定义为超过140/90毫米汞柱或实际接受降压药物治疗。17糖尿病定义为空腹血糖高于7 mmol/L或目前正在接受降糖治疗。

2.5. DNA分析

采用盐析法从外周血白细胞中分离基因组DNA。18根据先前研究的条件,采用聚合酶链反应-限制性片段长度多态性(PCR‐RFLP)测定LEP−2548 G/A(rs7799039)和3′UTR A/C(rs11761556)的基因分型以及LEPR Gln223Arg(223Q/R)和Arg109Lys(109 K/R)中的两个SNP,19,20消化产物经2%和3%琼脂糖凝胶电泳分离。产物在琼脂糖凝胶上电泳(LEP变体为2%,LEPR SNP为3%),并通过溴化乙锭染色进行可视化。表中给出了引物序列和使用的限制性内切酶1.

表1

底漆和酶限制

职位限制站点正向引物反向底漆英国石油公司助教
LEP公司‐2548克/年 哈哈 5′TCCCGTGAGAACTATTCTTTTTG 3′5′CCTGCAACATCTCAGCATTAGG 3′26259°
3′UTRA/C 哈哈 5′CAGAGAAAGAGAGACAGGAGC 3′5′TGTGAGCAAAGGCTTAAGACA 3′15860°
LEPR公司223季度/季度 MspI公司 5′GTTTGAAAATCACATCTGGTGGAGTA 3′5′CATATTTATGGGCTGAACTGACATTAG 3′41654°
109K卢比 HpyCH4III型 5′CTTTTGCCTGCTGGACTCTC 3′5′CTAAAGAATTTACTTGGAAACAAGTC3′30260°

Ta,退火温度。

2.6. 统计分析

统计分析通过spss软件19.0. 使用Student检验对定量参数进行比较,并将其报告为平均值±标准偏差,如果是瓜西分布,则使用Mann-Whitney对其进行比较U型测试并报告为中位数[最小值-最大值]。使用卡方检验对分类变量进行分析。我们使用单核苷酸多态性Analyzer 2程序用于检查基因型和单倍型频率的Hardy‐Weinberg平衡。21 单核苷酸多态性Analyzer 2.0是一个基于web的集成工作台,用于链接不平衡分析和关联分析。采用Spearmen试验研究LEP与其他生物和人体参数的相关性。优势比(OR),双尾P(P)计算值和95%置信区间(CI),作为SNPs和单倍型与肥胖相关性的度量,并根据潜在的混杂参数进行调整(P(P)<.25)。A类P(P)<.05的值被认为在所有测试中具有统计学意义。

3.结果

3.1. 患者特征

我们研究的临床和生物学特征如表所示2(根据表修改2Boumaiza等人。5)肥胖组高血压、糖尿病、代谢综合征和心血管疾病的患病率较高(P(P) < .001). 与非肥胖者相比,肥胖者的体重、腰围、TG、TC、HOMA‐IR、胰岛素和瘦素水平较高,但HDL‐C浓度较低。脂代谢异常频率(P(P)=.923),每日能量摄入(P(P)=.636)和LDL‐C浓度(P(P)=262)在两组之间没有显示出显著差异。

表2

研究人群的临床和生化特征

变量人口 P(P)
非肥胖(n=169)肥胖(n=160)
年龄(年)43.25 ± 13.1248.41 ± 10.92<.001
性别比例(男性/女性)0.5940.221.001
吸烟n个(%)29 (17.2)11 (6.9).004
重量(kg)66.94 ± 11.2993.60 ± 12.97<.001
体重指数(kg/m2)24.73 ± 3.5036.6 ± 4.8<.001
WC(厘米)89.09 ± 13.67117.85 ± 12.61<.001
高血压n个(%)23 (13.6)72 (45.3)<.001
糖尿病n个(%)32 (18.9)54 (34).002
心血管疾病n个(%)0 (0)22 (14)<.001
血脂障碍n个(%)82 (48.5)78 (49.1).923
已见人数n个(%)20 (12)77 (48.1)<.001
空腹胰岛素(μU/mL)6.27 [0.7‐27.3]8.2 [0.4‐81.7]<.001
HOMA‐红外1 [0.14‐5.08]2.32 [0.11‐40.6]<.001
TC(毫摩尔/升)4.75 ± 1.15.17 ± 1.25<.001
TG(毫摩尔/升)0.86 [0.24‐4.69]1.2 [0.23‐3.95]<.001
高密度脂蛋白-C(mmol/L)1.31 ± 0.491.13 ± 0.34.009
低密度脂蛋白胆固醇(mmol/L)3.27 ± 0.943.24 ± 0.99.262
咖啡消耗量,n(%)125 (74.2)98 (61.5).009
每日能量摄入(kcal)3092 ± 15413204 ± 1333.636
瘦素水平(ng/mL)2.45 [0‐23]41.6 [0.05‐148.8]<.001

平均值±SD或n(%)。BMI,体重指数;HOMA‐IR,稳态评估模型胰岛素抵抗;TC,总胆固醇;TG、甘油三酯;HDL‐C,高密度脂蛋白胆固醇;低密度脂蛋白胆固醇;代谢综合征;WC,腰围。

3.2. 瘦素、瘦素受体多态性与瘦素水平的相关性

表中给出的结果结果显示,血清瘦素浓度随LEP 3′UTR A/C多态性的变化而显著。事实上,AC和CC基因型携带者的瘦素水平分别高于AA基因型携携者,31[0.05-148.8](P(P)=0.008)对41[0.05-111.6](P(P) = .003). 此外,LEPR多态性109 K/R似乎显著降低了瘦素浓度(P(P)<.001),而223Q/R和−2548 G/A没有观察到统计差异。

表3

瘦素、瘦素受体多态性与瘦素水平的相关性

多态现象基因型 P(P) [瘦素]ng/mL P(P) 全球的P(P)
LEPR 223Q/R标准
QQ(QQ)136.17629.5 [0.05‐111.6]1.410
二维码13224.2 [0‐148.8].694b
右后6141.7 [0.08‐93].306b
LEP‐2548通用
GG公司130<.00130.85 [0‐148.8]1.378
通用航空公司13129.2 [0.05‐111.6].248b
AA公司6825.4 [0.05‐96.5].789b
LEP 3′UTR空调
AA公司65.36110.85 [0‐96.5]1.009
自动控制16331 [0.05‐148.8].008b
科科斯群岛8341 [0.05‐111.6].003b
LEPR 109 K/R公司
KK公司236.05235.7 [0.05‐148.8]1<.001
韩国663.8 [0‐67.8]<.001b
右后103.7 [0.05‐17].020b
肥胖和非肥胖受试者总体基因型的比较。
b与正常基因型的比较。

3.3. 瘦素多态性与所有研究人群肥胖的关系

根据显性模型,调整混杂参数(年龄、性别、吸烟状况、HTA、糖尿病、血脂异常和心血管疾病)后,与正常基因型相比,LEP3′UTR A/C和LEPR109 K/R突变基因型与肥胖相关的OR为:OR=2.63;95%置信区间:[1.13‐6.11];P(P)=0.025),或=0.399;95%置信区间:[0.179‐0.892];P(P)=.025(表)分别是。

我们的结果表明,关于LEP−2548 G/A多态性,与−2558 AA/GG相关的肥胖OR为1.87[1.106‐2.78]P(P)=0.028,关于LEPR 223Q/R多态性,与223Q/R相关的肥胖OR为1.41[1.035‐1.85]P(P)=.045(表4).

表4

所有研究人群中多态性与肥胖的关系

多态现象调整后的CI公司 P(P)
LEPR 223Q/R标准
RR/QQ(右后/右后)1.411.035‐1.85 .045
LEP‐2548通用
AA/GG公司1.871.106‐2.78 .028
LEP 3′UTR空调
AC+CC/AA2.631.13‐6.11 .025
LEPR 109 K/R公司
韩国+韩国/韩国0.3990.179‐0.892 .025

CI,置信区间;HTA、高血压;OR,比值比。

粗体值很重要(P(P) < .05).

OR根据年龄、性别、吸烟状况、HTA、糖尿病、血脂异常和心血管疾病进行调整。

3.4. 血清瘦素水平与生物学和人体测量参数的相关性

表中给出的结果5表明血清瘦素浓度与腰围(WC)显著相关R(右) = 0.471 (P(P)<.001),高密度脂蛋白胆固醇R(右) = −0.212 (P(P)=0.004)和HOMA‐IRR(右) = 0.367 (P(P)<.001),但对BMI和TG无显著影响。

表5

血清瘦素水平与生化和人体测量参数的相关性

HOMA‐红外厕所体重指数TG公司高密度脂蛋白胆固醇
瘦素水平(ng/mL)
相关系数(R(右))0.3670.4710.0130.1100.212
P(P) <.001<.001.866.141.004

BMI,体重指数;HOMA‐IR,稳态评估模型胰岛素抵抗;甘油三酯;HDL‐C,高密度脂蛋白胆固醇;TT,tour de taille。

3.5. 肥胖患者瘦素水平的ROC曲线、PPV、NPV、敏感性和特异性

1显示了ROC曲线,该曲线是根据研究样本中测量的每个瘦素水平的敏感性和特异性值绘制的,结果是肥胖。最佳截止值为瘦素值9.1 ng/mL(敏感性87.1%;特异性85%),对应曲线肩部,阳性预测值(PPV)=95.3%,阴性预测值(NPV)=65.3%。曲线下的面积表示测试的总体精度(0.897)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为IEP-99-121-g001.jpg

根据研究样本中测定的瘦素水平的敏感性和特异性值绘制ROC曲线。瘦素截止值=9.1 ng/mL;灵敏度=87.1%;特异性=85%;PPV(阳性预测值)=95.3%;NPV(负预测值)=65.3%;曲线下空气=0.897[P(P)<.001][彩色图形可在以下位置查看http://wileyonlinelibrary.com]

3.6. 单倍型频率分布与瘦素水平关联

SNP分析仪显示17种单倍型(H),其中两种似乎与肥胖显著相关。单倍型遵循以下顺序:LEP−2548 G/A,LEPR 223Q/R,3′UTR A/C;LEPR 109 K/R(表6).

表6

单倍型频率的比较

频率(总人口)肥胖
单倍型(H)频率(非肥胖)频率(肥胖)
上半年GGAA公司0.218620.150050.23656
氢气GGCA公司0.203600.254930.22174
H3级 AGCA公司 0.18955 0.00371 0.05445
H4型AGAA公司0.132740.140860.12590
H5型GACA公司0.0760500.08067
H6型美国汽车协会0.039030.049970.03206
H7型GGCG公司0.036920.041510.01920
H8型GGAN公司0.019500.087520
H9型 GAAG公司 0.01594 0.11679 0.02497
H10型GGAG公司0.015580.016080.01197
H11型AGAG公司0.0105100.01881
H12型美国汽车协会0.002880.026130
H13型GGCN公司0.0083600.01090
H14型阿干0.008360.037510
H15型AACG公司0.0075200.01165
H16型AGCG公司0.006140.041510
第17页GACN公司0.0027900.00363

单倍型遵循以下顺序:LEP−2548 G/A,LEPR 223 G/A(223 Q/R),LEP 3′UTR A/C;LEPR rs1137100 A/G(109K/R),N(可以是A或G[相同的结果])。粗体值为频率。

更具保护性的单倍型似乎是H9«GAAG»;OR=0.108[0.021‐0.567](P(P)=0.005),最高风险似乎与H3«AGCA»有关;OR=1.818[0.928‐3.558](P(P)=.002)(表7).

表7

单体型与肥胖和瘦素水平相关

单元型CI公司 P(P) LEP级别 P(P)
H3级1.8180.928‐3.558.00241.2 [0.09‐72.7]<.001
H9型0.1080.021‐0.567.0059.1 [0.08‐48‐3]

这两个单倍型之间的瘦素水平比较表明,潜在保护性单倍型携带者(H9)的瘦素含量9.1[0.08‐48.3]低于潜在携带者H3 41.2[0.09‐72.7]P(P)<0.001(表7).

4.讨论

肥胖是一种多因素疾病,许多因素可能与遗传、代谢和环境有关。很明显,肥胖的特点是瘦素水平高。22瘦素是一种脂肪细胞衍生的激素,通过下调刺激摄入食物的食欲肽和上调厌食肽来充当饱足信号。许多机制可能有助于瘦素水平的改变。23

人体LEP循环水平与肥胖相关9高瘦素水平与较高的脂肪量增长密切相关24以及减肥困难。25其作用通过瘦素受体发生,瘦素受体由LEPR公司基因。复杂的瘦素受体是控制肥胖发展的调节途径之一。26

肥胖者血浆瘦素水平显著升高,27同样,我们检测了肥胖和非肥胖受试者的瘦素水平及其与突尼斯志愿者LEP和LEPR多态性的关系。

肥胖组的瘦素浓度(41.6[0.05‐148.8]ng/mL)与Oksanen等人报告的类似28芬兰肥胖女性(45.5±1.5 ng/mL)和Okudan等人22(32.03±22.69 ng/mL),但高于Jürimäe et al29对照组为19.0±13.3 ng/mL,肥胖受试者为21.5±21.5 ng/mL。在韩国,对照组女性的瘦素水平为7.79±3.83 ng/mL,肥胖组为12.59±8.59 ng/mL。22,28,30

瘦素被认为是通过刺激黑素皮质素的出现而减少食物摄入的关键因素,导致下丘脑激素α黑素细胞刺激激素(α-MSH)的增加。α‐MSH虽然与其下丘脑受体MC4结合,但会减少食物摄入。随后,瘦素抑制食欲神经元型下丘脑神经肽Y/促尿相关蛋白的活性。低水平的瘦素会对这一机制造成一些破坏,导致食物摄入增加,从而导致肥胖。31

此外,我们报告血清瘦素水平与WC显著相关(P(P)<.001),但不适用于BMI(P(P) = .866). 因此,在我们的人群中(而非普通肥胖),LEP似乎是内脏脂肪质量值的更好标记。

事实上,Montazerifar等人32表明腹部肥胖患者的瘦素水平显著高于非腹部肥胖患者或对照组。这一结果与之前的报告部分一致。22,33,34

其他研究表明,内脏肥胖与肥胖的关系更大35,36并解释了来自内脏脂肪组织的其他因素,如炎症介质,可能有助于体脂分布对肥胖和其他心血管疾病的影响。

在我们的研究中,我们发现瘦素血清水平与HOMA‐IR之间存在显著相关性R(右) = 0.367 (P(P) < .001). 沿着同样的路线,Wauters等人37和Motawi等人38据报道,与非糖尿病对照组相比,肥胖和糖尿病受试者的瘦素浓度显著升高。Karacabey K认为肥胖会导致胰岛素抵抗,39胰岛素刺激瘦素的表达;事实上,肥胖和2型糖尿病患者的血清瘦素水平也有增加的报道。40瘦素分泌可能会干扰糖代谢和胰岛素敏感性,导致血糖失衡。

我们发现瘦素水平与HDL‐C显著相关,R(右) = 0.212 (P(P)=0.004),Ogawa等人之前报告了相同的结果。41这种与HDL‐C的相关性可以用TG降低来解释;在肝脏中,LEP减少糖原分解并增加脂肪酸的β-氧化。42,43

在我们的人群中,我们的目的不仅是研究瘦素水平与肥胖的关系,而且是通过LEP和LEPR基因的一些多态性来验证这种关系。

我们发现−2548 G/a和223 Q/R多态性与肥胖显著相关,但与瘦素浓度无关。

文献中关于LEP−2548 G/A多态性与肥胖之间关系的数据存在争议。据报道,在不同人群中,这种多态性与肥胖之间存在显著关联。5,44,45,46但是,非洲和罗马尼亚人口也出现了负面结果。19,47

此外,LEP变异体−2548 G/A和瘦素水平一直存在争议;在健康的希腊个体中,发现LEP−2548 G等位基因通过脂肪量和性别之间的相互作用与血清瘦素水平增加相关。48相反,在土耳其人口中,Sahin等人45证明LEP−2548 AA或AG携带者的瘦素浓度显著高于−2548GG基因型,45这些结果也在法国人群中发现。44这些不同的结果可以用LEP−2548 G/A多态性与LEPR、脂联素或其他基因多态性的许多相互作用、样本大小或种族差异来解释。

−2548 G/A多态性位于LEP基因5′启动子区域,提示该区域可能含有脂肪细胞中的转录抑制因子。49事实上,龚等人49描述了位于LEP启动子(−2514至1545)上的两个重复序列(MER11和Alu),这两个序列容易调节基因表达。后来在重复序列水平上对转录因子SP1的鉴定表明,LEP的表达是在序列MER11水平上插入该元素的结果。50多态性−2548 G/A位于已知的SP1连接位点(2539)附近,这可能解释了LEP转录调控中的潜在含义,即与序列MER11中另一个功能多态性的连接不平衡。50

Gln223Arg(223Q/R)的LEPR变异体与肥胖之间的联系一直存在争议。然而,据报道,在不同的高加索人群中存在显著的相关性。51,52,53在希腊的一个人群中,LEPR Q223R多态性不仅与肥胖有关,还预测了身体成分的微小变化。54

在我们的研究中,我们没有发现223 Q/R多态性与瘦素浓度之间有任何显著关联;这与冈田等人55他们研究了136名肥胖儿童。

相反,Riestra等人56结果表明,Gln223Arg(223Q/R)多态性仅与女孩的高血清瘦素水平和BMI相关。墨西哥对55名肥胖者和48名非肥胖者进行的研究表明,Gln223Arg(223Q/R)多态性在胰岛素水平、体脂百分比和血清瘦素水平较高的个体中更为普遍。Guizar‐Mendoza等人57据报道,Gln(谷氨酰胺氨基酸)载体中的心脏交感神经活性和瘦素水平较高。LEPR Gln223Arg(223Q/R)多态性与绝经后高加索女性低瘦素水平相关。58最近,Marginan等人59结果显示,与LEPR 223QQ基因型相关的瘦素值在肥胖儿童中高于对照组。

在我们的研究中,LEPR Arg109Lys(109K/R)似乎与血清瘦素水平显著相关(P(P)<.001)和肥胖(P(P) = .025).

Wauters等人60发现肥胖绝经后妇女的血清瘦素水平高于非肥胖组。

Sook‐Ha和Yee‐How61显示109 K/R与几个生化和人体测量参数(腰围、BMI、内脏脂肪水平、皮下脂肪、全身脂肪和瘦素水平)显著相关,瘦素水平的值较高,K等位基因为32.34±42.21 ng/mL,R等位基因的值为26.70±31.96 ng/mL。7争议,Marginan等人59在人体测量参数中,发现臀围和腹围与血清白细胞介素6和肿瘤坏死因子α(TNF-α)水平显著相关,但与血清瘦素水平无关。对于K109R多态性,一些研究如Mizuta等人62和Rosmond等人63显示出与肥胖有显著关联。62,63Saukko等人64据报道,与其他基因型相比,109 K/R的G/G基因型的BMI最低。然而,在其他研究中,这种多态性与BMI、肥胖风险和身体成分无关。7,54,65

Gln223Arg(223Q/R)多态性位于LEPR的细胞因子受体同源1(CRH1)结构域。该领域的功能尚未明确,需要更仔细地研究。66CRH结构域包含一个保守的WSXWS基序,被认为对结构域的正确折叠至关重要。67由于这两种多态性的位置,它可能也会影响LEPR的功能。在之前的研究中,CHR1的缺失导致LEP反应降低,CRH1似乎有助于LEPR的最佳激活。68

据我们所知,这是首次研究分析LEP(3′UTR A/C)3′侧翼区变异(rs11761556 A/C)与肥胖之间的关系(P(P)=0.025)和突尼斯志愿者的血清瘦素水平(P(P)=0.009),表明CC基因型41的瘦素水平[0.05-111.6]高于AA基因型10.85[0-96.5]。

Considine等人69和Maffei等人70他指出,LEP基因的缺陷不太可能是人类肥胖的主要原因,因为肥胖者的瘦素循环水平通常很高。尽管这些报告很有趣,但还没有明确的生物学假设来解释这些发现。3′UTR变体可以通过几种机制影响基因的功能。μRNA是进化上保守的小的非编码RNA,已知其通过与3′非翻译区的目标转录物结合来抑制蛋白质的翻译。据报道,几个基因的3′UTR的功能多态性通过影响基因表达与疾病相关。71

最近,报道了一类新的功能性变体,称为miRSNPs,并将其定义为位于或靠近μRNA结合位点的可影响基因表达的变体。72此外,真核mRNA的3′UTR通过调节核质mRNA转运、翻译效率、亚细胞定位和信息稳定性,在基因表达的转录后调控中发挥关键作用。73与SNP本身相比,研究人群的遗传背景或环境条件不同,可以解释结果的异质性。此外,在多基因疾病(如肥胖)中,由于环境的影响,基因型只是导致疾病的原因途径中的一个因素,基因-基因和基因-环境的相互作用可以影响基因型和疾病之间的最终联系。

在我们的研究人群中,肥胖组和非肥胖组之间的单倍型频率比较显示,两种单倍型H9«GAAG»存在显著差异,这似乎具有保护作用,并且在非肥胖组中发生的频率高于肥胖组(P(P)=0.005),但H3«AGCA»似乎是与肥胖风险相关的最单倍型,OR=1.818[0.928‐3.558](P(P) = .002).

关于瘦素水平,H3的值为41.2[0.08‐72.7],高于保护性单倍型H9=9.1[0.09‐48.3]。

5.结论

总之,本研究表明,LEP 11761556 A/C和LEPR rs1137100 A/G多态性似乎与我们人群中的瘦素浓度和肥胖有关。此外,当以单倍型组合时,瘦素水平和肥胖风险之间存在协同效应。

利益冲突

作者声明,他们没有相互竞争的利益。

作者的贡献

ZAYANI nesrine进行了分子遗传学研究和设计,并起草了手稿。HAYTHEM Hamdouni进行了免疫分析。BOUMAIZA Imen招募患者,收集临床和人口统计数据。NEFFATI Fadoua构思了这项研究。OMEZZINE Asma构思了这项研究并帮助起草了手稿。NAJJAR Mouhamed Fathel构思了这项研究,并参与了设计和协调。Ali Bouslama构思了这项研究,并参与了设计和协调。所有作者阅读并批准了最终手稿。

致谢

本研究得到了突尼斯高等教育、科学研究与技术部和突尼斯卫生部(LR12SP11)的资助;如果没有他们的大力支持,这项研究就不可能进行。作者特别感谢研究参与者。我们感谢Sahloul大学医院总院长以及Sahloull大学医院生物化学部成员的出色技术支持。

笔记

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文章来自国际实验病理学杂志由以下人员提供威利