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临床投资杂志。2004年11月15日;114(10): 1398–1403.
数字对象标识:10.1172/JCI23238号
预防性维修识别码:项目编号525747
PMID:15545987

Tregs与移植耐受

摘要

诱导和维持移植组织的免疫耐受是一个积极的过程,涉及多种机制,协同工作以防止移植排斥反应。这些机制类似于对自身抗原的固有耐受性,并且需要主要由T细胞介导的主动免疫调节,以促进对供体同种抗原的特异性无反应。这篇综述概述了我们目前对促进同种异体耐受的Treg亚群的理解,以及这些细胞发挥作用的机制及其治疗潜力。

介绍

外周对自身抗原的耐受性是由一个动态过程维持的,该过程涉及多种不同机制,这些机制限制了潜在破坏性自身攻击性T细胞反应的发展。这些机制包括通过激活诱导细胞死亡导致T细胞耗竭,“忽视”自身抗原(即明显缺乏抗原识别),以及诱导T细胞无能(1)。虽然这些机制在维持自我耐受方面显然很重要,但它们本身是不够的,因为还需要Tregs主动抑制自身反应性T细胞(2)。虽然这些Treg亚群的初始特征确定了它们在维持自我耐受中的作用,但现在很清楚,这些调节细胞在抑制针对移植器官和组织上表达的同种异体抗原的免疫反应中发挥着重要作用().

移植物排斥和耐受概述

移植排斥是组织相容性基因多态性的结果,主要是位于MHC内的基因多态性(4)。T细胞对外来(异基因)MHC分子的反应与对任何外来蛋白的反应一样:它们分泌细胞因子、分裂和分化(5)。这会产生大量激活的效应细胞,主要是T细胞和巨噬细胞,它们是移植物破坏的主要介质。

同种异体反应性T细胞可以通过2种不同途径中的1种识别移植组织中的抗原。在直接途径中,反应性T细胞识别供体衍生APC表面上完整的同种异体MHC分子,而在间接途径中,受体APC将供体衍生的同种-MHC分子加工成肽,然后将这些肽在自身MHC分子上呈现给T细胞。一般认为,当移植物受体APC(乘客白细胞)迁移到周围淋巴组织,刺激同种异体反应性T细胞时,直接途径在移植后立即起主导作用。由于供体来源的APC寿命相对较短,通常认为随着同种异体反应的进展,同种异体识别的间接途径占主导地位(6).

诱导移植耐受的实验方法通常分为两类。“中央”耐受是指(在大多数情况下)利用骨髓移植诱导造血嵌合体(7)。这导致供体和受体衍生的淋巴和髓细胞共存。因此,发育中的供体反应性T细胞在离开胸腺之前被删除,其方式与自我反应性T淋巴细胞相同(8)。“外周”耐受是指使用抗体(有时是药物)来阻断或调节成熟T细胞中的T细胞激活或生长因子受体途径。在大多数情况下,这会导致对同种异体抗原产生反应的T细胞发生凋亡(9).

同种免疫反应的一个重要特征是T细胞的高频率,能够识别同种抗原并对其作出反应(主要是MHC内编码的基因产物)(10)。因此,根据啮齿类动物模型的研究数据,许多研究人员认为有必要大规模删除同种异体反应性T细胞,以创造移植耐受性(9)。在治疗的早期“诱导”阶段(即移植后的前1-2周),中枢和外周耐受策略都能实现这一点。在中枢耐受的情况下,这一点似乎就足够了,因为新发育的具有潜在抗供体反应性的T细胞在与供体来源细胞接触后将在胸腺内被消除(78)。然而,在外周耐受策略的情况下,来自实验动物的大量数据表明,在耗竭后,耐受的“维持”阶段需要Tregs,它可以作用于任何剩余的同种异体反应性T细胞和新的胸腺移植物(图(图11).

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改变异基因攻击和Treg亚群之间的平衡。在移植时或移植前后采用的删除策略可减少潜在的移植破坏性T细胞的数量,并促进Treg亚群的作用。在耐受性维持阶段,这些Treg无论是自然产生还是诱导产生,都可以更有效地作用于数量大大减少的效应T细胞。单元格编号,如axis代表了在建立移植耐受性期间效应器与Treg亚群的相对比率是如何变化的,并不用于组间比较。

多种类型的Tregs

对移植中Tregs的研究已经确定了具有不同细胞表面表型的多个细胞群体,并且在一定程度上具有不同的作用机制(11)。一个群体是CD4的天然亚群+胸腺中T细胞发育过程中产生的T细胞,最好通过IL-2受体CD25α链的组成性表达来定义(2)。第二个群体由诱导的Treg亚群组成,这些亚群可能在正常免疫反应过程中出现(大概是为了在病原体被消除时帮助终止反应并防止二次自身免疫)。这些“诱导”Tregs,虽然主要包含在CD4中+与天然存在的CD4不同+CD25型+相对应的人。此外,CD8+特雷格斯,TCR+CD4细胞——CD8(CD8)——T细胞和NK-Tregs也被报道在不同的移植耐受模型中发挥作用(12——15).

自然发生的树

特征描述。

由于缺乏鉴定这些细胞所必需的可靠的细胞或分子标记,Tregs的研究在历史上受到了阻碍。缺少这样的工具导致了Tregs是否存在的问题。然而,随着分子标记CD25(以前认为只在最近激活的T细胞上表达)也在静止的CD4亚群上表达的发现,这种情况发生了改变+具有调节功能的T细胞(1)。天然CD4+CD25型+Tregs在胸腺中发育。这些Tregs约占成熟CD4的5-10%+CD8(CD8)——胸腺细胞和大约10%的外周CD4+T细胞(1617)。其他细胞表面标志物,如CD45RB、CTLA-4、糖皮质激素诱导的TNF受体家族相关受体(GITR或TNFRSF18)、CD122、CD103(αE类β7整合素)、CD134(OX40)和CD62L(L(左)-选择素),其相对表达水平可用于定义和分离CD4+CD25型+Tregs也已被确认()。然而,与CD25一样,这些分子中没有一个单独代表自然发生Tregs的明确标记,因为它们也在其他CD4上表达+T细胞亚群,尤其是活化T细胞。最近,叉头/翼螺旋转录因子Foxp3被证明是由天然CD4唯一表达的+CD25型+Tregs,它被认为是控制Treg分化的主开关(1819)。然而,Foxp3的细胞内位置明显限制了其在鉴定和研究Tregs中的应用。因此,继续努力寻找Tregs的明确细胞表面标记。

作用机制。

虽然这些细胞发挥免疫抑制作用的确切机制尚不清楚,但CD4+CD25型+已知Tregs通过细胞接触依赖机制抑制效应T细胞体外增殖,这种机制在很大程度上与细胞因子无关(20——22)。特别是,这些研究暗示了在Tregs表面表达的CTLA-4和GITR等辅助分子的作用(2324)。这与体内模型相反,据报道,阻断IL-10和TGF-β可消除Treg介导的对同种抗原的无反应性(2526)。这些明显的差异可以用细胞与第三细胞(如APC)接触的要求以及随后产生的细胞因子来解释,这些细胞因子可能直接抑制其他细胞或招募他们成为调节因子(另见下文)。

移植中的作用。

天然CD4的作用+CD25型+Tregs在异基因骨髓移植小鼠模型中抑制移植物与宿主疾病的能力首次表明了其在移植耐受性发展中的作用。异体CD4转移时+CD25型——原始或效应性T细胞通常会导致移植物抗宿主病,即纯化CD4的共转移+CD25型+Tregs和CD4+CD25型——T细胞显著延缓疾病发作(27)。其他研究小组证实了这些发现,尽管尚不清楚共转染Tregs的活性是否由其他细胞类型(如APCs或体内其他T细胞)放大或依赖,或者Tregs本身是否足以抑制同种异体反应性T细胞(28)。在实体器官和组织移植中,CD4的共转移+CD25型+T细胞与幼稚CD4一起进入T细胞缺陷小鼠+CD25型——细胞可以阻断后一种细胞亚群排斥微小或MHC不匹配的同种异体皮肤移植的能力(2529)。总的来说,这些研究表明,自然发生的Tregs在实现移植耐受方面发挥了作用。

可诱导CD4+

特征描述。

上述Tregs的自然种群具有固有的抑制能力。然而,免疫抑制活性在外周被诱导/获得的T细胞群体也已被确定。这些可诱导的Treg主要有两个群体对移植耐受性很重要:Th3细胞和Tr1细胞。Th3细胞首次被鉴定是因为它们通过分泌TGF-β,在摄入抗原后形成免疫耐受(称为口服耐受)中发挥作用(30)。Tr1细胞与Th3细胞相似,但它们分泌大量IL-10,最初的特征是其在预防自身免疫性结肠炎中的作用(31).

自然发生的Treg与在外围诱发的Tregs之间存在许多差异。第一,CD4+CD25型+Tregs在胸腺中发育,而没有证据表明Th3或Tr1细胞在胸腺发育。相反,诱导的Tregs取决于外周因素,如刺激APC的成熟度或类型以及细胞因子(如TGF-β)的可用性(32)。其次,与CD4相反+CD25型+Tregs通过细胞接触依赖性和细胞因子非依赖性机制发挥抑制作用,Th3和Tr1细胞似乎独立于细胞间接触发挥作用,并通过分泌IL-10和TGF-β等免疫抑制细胞因子抑制免疫反应(33)。最后,Tr1细胞归宿解剖部位的能力与CD4细胞不同+CD25型+T细胞。Tr1细胞倾向于向炎症部位迁移,而CD4则自然产生+CD25型+T细胞主要存在于淋巴器官中(34)。然而,正如Graca等人最近证明CD4的存在一样,在这一点上达成的共识并不普遍+CD25型+耐受同种异体移植中的Tregs(35).

目前,诱导的Treg亚群主要根据其分泌的免疫抑制细胞因子进行鉴定。与CD4相同+CD25型+Tregs,没有特定的细胞表面标记来区分它们与其他T细胞亚群。Foxp3由CD4表达+CD25型+Tregs,尚不清楚它是否调节Th3或Tr1抑制性T细胞亚群的发展(36)。然而,TGF-β,一种Th3细胞作用的细胞因子介体,最近被证明可以转化非调节性CD4+CD25型——T细胞转化为调节性CD4+CD25型+T细胞,与诱导Foxp3系列表达式(37).

移植中的作用。

在同种异体移植的背景下,在其他同种异体反应性T细胞中诱导调节性T细胞表型被认为是通过选择策略维持耐受性的主要因素(38)。事实上,有报道称,用不成熟的异基因DC重复刺激原始T细胞会通过反应T细胞而导致抑制表型的发展(39)。移植组织中刺激DC的成熟状态和类型无疑是决定同种免疫反应结果的关键因素。由于T细胞共刺激因子和促炎细胞因子的低表达,未成熟DC通常不会刺激最佳效应T细胞反应。事实上,这些细胞通常能够在反应性T细胞中诱导Treg表型(5)。然而,除了其成熟状态外,考虑现有DC亚型的多样性也很重要,因为许多最近的报告表明,特定DC亚型可以诱导Treg表型(例如Th3或Tr1细胞),而不管其成熟状态如何(4041).

而诱导的Tregs代表一个不同于其自然发生的CD4的亚群+CD25型+有大量证据表明CD4+CD25型+T细胞在这些细胞的“发育”中发挥着重要作用,促进其他潜在的移植物破坏性效应T细胞采用Tr1抑制表型(4243)。然而,目前这种活性的机制尚不清楚,可能涉及直接的细胞间相互作用、第三细胞(如APC)的参与、可溶性介质或三者的某种组合。如上所述,最近已经证明非调节性T细胞也可以转化为CD4+CD25型+TGF-β影响下的抑制表型(37).

有趣的是,在耐受性移植物中发现了TGF-β,这表明诱导的Tregs可能会直接在移植物部位发展并发挥其影响(26)。Karim等人也表明CD4+CD25型+Tregs可以从CD25发展而来——胸腺切除小鼠的前体(44)这些Tregs可以抑制皮肤移植排斥反应。这些数据表明,诱导型Treg亚群可以延长移植物存活时间,而不会使新形成的先天性Treg进入外周。尽管采取了适当的策略来耗尽先天性CD4+CD25型+Tregs博士说,不能完全排除残留的未完成细胞导致耐受的可能性。CD4的作用+CD25型+T细胞在其他非抑制性T细胞中诱导调节表型提供了一个有吸引力的假设,将许多组关于先天和诱导的Treg亚群在促进移植耐受中各自作用的观察结果结合在一起(3445)。这表明了一种模型,在该模型中,两个亚群以合作的方式发挥作用,以抑制针对移植组织的潜在炎症免疫反应。这些细胞在其他人群中诱导调节功能的能力也可以解释一个关于CD4效力的悖论+CD25型+特雷格斯。体外,CD4对活化T细胞的有意义抑制+CD25型+Tregs通常要求Tregs与效应器的比例至少为1:3;比率越低,抑制作用越小(46)。然而,CD4的频率+CD25型+体内Tregs仅约为CD4的10%+T细胞,约占所有T细胞的3%(16)。因此,体内必须发生选择性归巢和/或诱导其他细胞抑制功能的某些组合。

其他Treg类型

如上所述,Treg亚群也被描述为CD4以外的亚群+隔间。CD8(CD8)+在耐受的同种异体移植物中观察到口服同种异体抗原产生的Tregs。该亚群调控的确切机制尚不清楚,但可能与IL-4生成增加有关(13)。同样,Seino等人证明在共刺激阻断后获得长期心脏移植接受时需要NK T细胞(15)。此外,有证据表明存在TCR+CD4细胞——CD8(CD8)——Treg亚群可能通过诱导同种异体反应CD8的缺失来介导皮肤移植的接受+T细胞(14)。CD4以外的这些Treg亚群的全部意义+然而,鉴于对这些细胞类型的研究尚处于早期阶段,关于移植耐受性的分类尚不清楚。

间接异体识别、连锁抑制和感染耐受

关于Tregs在移植耐受中的作用的大量工作已经解决了它们的异体识别模式。如上所述,人们认为,随着植入持续时间的增加,间接异体识别占主导地位。这一发现,再加上一些小组的观察结果表明,为了维持移植耐受性,需要持续存在抗原(4748),表明是间接途径是Tregs的主要同种异体识别模式(49)。Yamada等人通过使用缺乏MHC II类分子(仅间接识别)的供体小鼠或外围缺乏MHCⅡ类分子但拥有CD4的受体小鼠,探索了抗原呈递的直接和间接途径对移植耐受的相对贡献+胸腺上皮上MHC II转基因表达的T细胞(仅在胸腺上皮中直接识别)。通过使用阻断T细胞共刺激途径的药物,作者发现在缺乏直接识别的情况下很容易实现耐受,但缺乏间接异体识别途径的受体明显难以耐受(50).

如果Tregs通过间接同种识别来识别同种抗原,人们可能会问,只识别一小部分移植物衍生抗原的细胞如何阻断对所有移植物表达抗原的反应。事实上,甚至在CD4明确识别之前+CD25型+特雷格斯,这些问题已经被调查过了。例如,十多年前,通过口服多种MHC衍生肽同种抗原,在大鼠模型中实现了移植耐受(51)。后来的研究表明免疫调节性T细胞在该模型的耐受性中起作用(52)。Niimi及其同事进一步扩展了这些观察结果,发现通过口服移植物中存在的单一同种异体抗原可以实现移植物耐受(53)。单个同种异体抗原的耐受潜力,随后主要对移植物内存在的所有其他抗原无反应,被称为“连锁抑制”,并取决于Tregs的作用(38)。当潜在的同种异体反应性T细胞受到Treg(如CD4)的耐受性影响时,就会发生连锁抑制+CD25型+Treg,因为这两种细胞都识别由同一APC呈现的各自同种抗原(335455)。实际上,这会导致潜在破坏性同种异体反应性T细胞的“再教育”,并诱导Treg表型(图(图22).

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CD4诱导的感染耐受和连锁抑制+CD25型+特雷格斯。CD4细胞+CD25型+Treg细胞可以抑制同种异体反应性CD4+T细胞要么直接通过细胞接触或分泌IL-10和TGF-β,要么通过影响刺激的APC。当对特定抗原(Ag-Y)产生的耐受导致对无关或第三方抗原(Ag-X和Ag-Z)产生耐受时,如果这些无关抗原在同一APC的表面上表达,则会出现连锁抑制。Tregs分泌IL-10和TGF-β参与了这一过程,这被认为加强了移植耐受的感染性。

重要的是,接受再教育的同种异体侵袭性细胞变成了“次级”调节细胞,进而可以诱导其他原始CD4+T细胞采用调节表型,从而繁殖出耐受状态。这种机制被认为可以解释近30年前关于抑制性T细胞和移植耐受性的一些重要观察结果(56)。然而,直到最近,Waldmann及其同事才创造了术语“感染耐受性”,以描述同种异体移植耐受性从一个受体到另一个受体的转移性质(参考文献。38)。在移植轻微组织相容性不匹配的皮肤移植物之前,经过短时间的非完全性CD4和CD8抗体治疗后获得的耐受性与调节性CD4的形成有关+受体内的T细胞表型(57)。CD4的转移+来自这些耐受小鼠的T细胞可以防止幼稚受体的移植物排斥反应。最引人注目的是,来自耐受性小鼠的调节细胞在幼年转基因受体中诱导了新的Treg,如果将这些次级Treg转移到“第三代”受体中,也会产生同样的作用,这说明了该过程的传染性。一些小组后来的研究使用更严格的移植耐受模型证实了这些观察结果,例如跨越主要组织相容性屏障的心脏移植,从而使人们普遍接受这种现象的存在(4758)。这些Treg亚群的产生也与通过多种策略实现的耐受有关,包括协同刺激阻断和环孢素治疗(59——61)。CD4介导感染耐受的确切机制+抑制性T细胞仍然难以捉摸,不可能将功能分配给特定的Treg亚群,尽管有证据表明免疫抑制细胞因子如IL-10和TGF-β发挥重要作用(62).

Tregs在移植中的应用潜力

关于CD4,我们可以考虑两个不同的问题+CD25型+移植中的Tregs:它们在耐受模型中的作用是什么?以及它们作为治疗工具的潜力是什么?目前,几乎没有关于人类的数据,尽管这个问题已经在动物模型中进行了广泛的研究。许多研究证实Tregs有能力防止移植物排斥反应,并促进在操作条件下的耐受,例如使用免疫重建免疫缺陷宿主(参考文献。6)。由于T细胞缺乏动物体内稳态增殖的混杂效应(63),这并不能提供它们在正常宿主中的耐受作用的确切证据。然而,其他研究强烈建议这种作用,例如那些显示Tregs在耐受移植物中的作用(35)。此外,这两组研究都清楚地显示了使用Tregs作为蓄意治疗工具的潜力。这可以通过体外扩增和激活Tregs,然后进行输注,或者通过以促进Treg发育的方式操纵体内免疫反应来实现(64)。关于TGF-β、IL-10和Foxp3在Tregs亚群发育中的作用的最新进展可能为实现这些目标提供了一种手段。

结束语

即使在原始宿主中也存在大量的同种异体反应细胞,这被认为是通过靶向成熟外周血T细胞的共刺激阻断等策略在MHC错配屏障诱导耐受时需要删除这些细胞的基础(6566)。从这些研究中,我们和其他人推测,如此大量潜在移植物破坏性T细胞的减少将促进Treg亚群的免疫调节,从而促进和维持耐受状态(9)。随后,其他研究小组证实了自然发生和诱导的Treg亚群在通过共刺激阻断实现的同种异体耐受发展中的作用,从而加强了这一假设(2754)。因此,越来越多的人建议,以同种异体反应T淋巴细胞为靶点进行缺失的临床移植耐受方案需要特别避免Tregs(1)。根据这些思路,Strom及其同事最近证明了非调节性CD25的选择性裂解+通过给药激动性IL-2–Fc受体融合蛋白,可以实现同种反应性T细胞和Treg细胞的持久性。事实上,在一个非常严格的移植模型中,给予这种融合蛋白并选择性阻断IL-15信号传导,这对效应T细胞增殖和记忆生成非常重要,导致了移植物的接受(67)。综上所述,这些报告强烈支持缺失和调控在移植耐受性发展中发挥互补作用的观点。这提高了调节细胞体外扩增/促进的潜力,然后可用于移植中的过继免疫治疗。确定这些方法是否可行无疑将是未来多年研究的重点。现在预测他们是否会成功还为时过早,但要说Tregs在移植领域终于“到来”还为时不早

脚注

利益冲突:提交人声明,不存在利益冲突。

工具书类

1Lechler RI,Garden OA,Turka LA。缺失和调控在移植耐受中的互补作用。《自然免疫学评论》。 2003;:147–158.[公共医学][谷歌学者]
2Sakaughi S、Sakaguchi N、Asano M、Itoh M、Toda M。通过表达IL-2受体α-chains(CD25)的活化T细胞维持免疫耐受性。一种单一的自我耐受机制的破坏会导致各种自身免疫性疾病。免疫学杂志。 1995;155:1151–1164.[公共医学][谷歌学者]
三。Wood KJ,Sakaguchi S.移植耐受中的调节性T细胞。《自然免疫学评论》。 2003;:199–210.[公共医学][谷歌学者]
4新泽西州罗杰斯(Rogers NJ)、莱克勒(Lechler RI)。配体识别。美国《移植杂志》。 2001;1:97–102.[公共医学][谷歌学者]
5Walsh PT、Strom TB、Turka LA。移植耐受与排斥的途径;细胞因子的作用。免疫。 2004;20:121–131. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
6Chiffoleau E,Walsh PT,Turka L.细胞凋亡和移植耐受。免疫学。版次。 2003;193:124–145.[公共医学][谷歌学者]
7Nikolic B,Sykes M.混合血型嵌合体和移植耐受。免疫学。物件。 1997;16:217–228.[公共医学][谷歌学者]
8Sykes M.混合嵌合和移植耐受。免疫。 2001;14:417–424.[公共医学][谷歌学者]
9Li XC、Strom TB、Turka LA、Wells AD.T细胞死亡和移植耐受。免疫。 2001;14:407–416.[公共医学][谷歌学者]
10Suchin EJ等人,量化体内同种反应性T细胞的频率:一个老问题的新答案。免疫学杂志。 2001;166:973–981.[公共医学][谷歌学者]
11Jonuleit H,Schmitt E.调节性T细胞家族:不同亚群及其相互关系。免疫学杂志。 2003;171:6323–6327.[公共医学][谷歌学者]
12Gilliet M、Liu YJ。CD40配体激活的浆细胞样树突状细胞生成人CD8 T调节细胞。实验医学学报 2002;195:695–704. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
13Zhou J,Carr RI,Liwski RS,Stadnyk AW,Lee TD。口服同种抗原可产生移植物内CD8+调节细胞。免疫学杂志。 2001;167:107–113.[公共医学][谷歌学者]
14Zhang ZX,Yang L,Young KJ,DuTemple B,Zhang L.一种未知抗原特异性调节性T细胞的鉴定及其抑制机制。自然医学。 2000;6:782–789.[公共医学][谷歌学者]
15Seino KI等。诱导同种异体移植耐受时对自然杀伤T(NKT)细胞的要求。程序。国家。阿卡德。科学。美国。 2001;98:2577–2581. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Itoh M等。胸腺和自身免疫:产生CD25+CD4+自然无能和抑制性T细胞,作为胸腺维持免疫自我耐受的关键功能。免疫学杂志。 1999;162:5317–5326.[公共医学][谷歌学者]
17Jordan MS等。激动剂自身肽诱导的CD4+CD25+调节性T细胞胸腺选择。自然免疫学。 2001;2:301–306.[公共医学][谷歌学者]
18Hori S、Nomura T、Sakaguchi S。转录因子Foxp3对调节性T细胞发育的控制。科学。 2003;299:1057–1061.[公共医学][谷歌学者]
19Fontenot JD、Gavin MA、Rudensky AY。Foxp3对CD4+CD25+调节性T细胞的发育和功能进行编程。自然免疫学。 2003;4:330–336.[公共医学][谷歌学者]
20Takahashi T等。CD25+CD4+天然无能和抑制性T细胞维持的免疫耐受性:通过打破其无能/抑制状态诱导自身免疫性疾病。国际免疫学。 1998;10:1969–1980.[公共医学][谷歌学者]
21Suri-Payer E,Cantor H。CD4(+)CD25(+)T细胞调节自身免疫性胃炎和结肠炎的不同细胞因子需求。J.自动免疫。 2001;16:115–123.[公共医学][谷歌学者]
22Piccirillo CA等。CD4(+)CD25(+)调节性T细胞可以在缺乏转化生长因子β1的产生和反应性的情况下介导抑制功能。实验医学学报 2002;196:237–246. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
23Takahashi T等。组成性表达细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4的CD25(+)CD4(+)调节性T细胞维持的免疫耐受性。实验医学学报 2000;192:303–310. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
24Shimizu J、Yamazaki S、Takahashi T、Ishida Y、Sakaguchi S。通过GITR刺激CD25(+)CD4(+)调节性T细胞打破免疫耐受。自然免疫学。 2002;:135–142.[公共医学][谷歌学者]
25Hara M等。调节性T细胞需要IL-10来调节体内对同种抗原的耐受性。免疫学杂志。 2001;166:3789–3796.[公共医学][谷歌学者]
26Josien R等。转化生长因子-β在供体输血诱导的同种异体移植耐受中的关键作用。临床杂志。投资。 1998;102:1920–1926. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
27Taylor PA、Noelle RJ、Blazar BR。CD4(+)CD25(+)免疫调节细胞需要通过共刺激阻断诱导对同种异体抗原的耐受。实验医学学报 2001;193:1311–1318. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
28Hoffmann P、Ermann J、Edinger M、Fathman CG、Strober S。供体型CD4(+)CD25(+)调节性T细胞抑制异基因骨髓移植后致命的急性移植物抗宿主病。实验医学学报 2002;196:389–399. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
29Graca L等。CD4(+)CD25(+)和CD4(+)CD25(-)调节细胞均介导显性移植耐受。免疫学杂志。 2002;168:5558–5565.[公共医学][谷歌学者]
30Chen Y、Kuchro VK、Inobe J、Hafler DA、Weiner HL。口服耐受诱导的调节性T细胞克隆:抑制自身免疫性脑脊髓炎。科学。 1994;265:1237–1240。[公共医学][谷歌学者]
31Groux H等人。CD4+T细胞亚群抑制抗原特异性T细胞反应并预防结肠炎。自然。 1997;389:737–742.[公共医学][谷歌学者]
32Steinman RM、Hawiger D、Nussenzweig MC。耐受性树突状细胞。每年。免疫学评论。 2003;21:685–711.[公共医学][谷歌学者]
33Stassen M,Schmitt E,Jonuleit H。人类CD(4+)CD(25+)调节性T细胞与感染耐受。移植。 2004;77(补充1):S23–S25。[公共医学][谷歌学者]
34Cottrez F,Groux H。耐受性的专门化:先天性CD(4+)CD(25+)与获得性TR1和TH3调节性T细胞的比较。移植。 2004;77(补充1):S12–S15。[公共医学][谷歌学者]
35Graca L,Cobbold SP,Waldmann H。耐受性同种异体移植中调节性T细胞的鉴定。实验医学学报 2002;195:1641–1646. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
36坂口SFOXP3公司-表达CD4+调节性T细胞:胸腺或外周。临床杂志。投资。 2003;112:1310–1312. doi:10.1172/JCI200320274。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
37Chen W,等。通过TGF-β诱导转录因子Foxp3将外周血CD4+CD25-原始T细胞转化为CD4+CD25+调节性T细胞。实验医学学报 2003;198:1875–1886. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
38Waldmann H,Cobbold S.调节移植免疫反应:CD4+调节细胞的作用?免疫。 2001;14:399–406.[公共医学][谷歌学者]
39Jonuleit H、Schmitt E、Schuler G、Knop J、Enk AH。通过异基因未成熟人类树突状细胞的重复刺激诱导具有调节特性的产生白细胞介素10的非增殖CD4(+)T细胞。实验医学学报 2000;192:1213–1222. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
40Wakkach A等。体内诱导耐受和T调节1细胞分化的树突状细胞的特征。免疫。 2003;18:605–617.[公共医学][谷歌学者]
41Lavelle EC等人。霍乱毒素通过调节树突状细胞的激活,促进对旁观者抗原特异性调节性T细胞的诱导。免疫学杂志。 2003;171:2384–2392.[公共医学][谷歌学者]
42Jonuleit H等。感染耐受性:人类CD25(+)调节性T细胞向传统CD4(+)辅助性T细胞传递抑制活性。实验医学学报 2002;196:255–260. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
43Dieckmann D,Bruett CH,Ploettner H,Lutz MB,Schuler G.人类CD4(+)CD25(+)调节性接触依赖性T细胞诱导产生白介素10、接触依赖型1样调节性T细胞[已纠正]实验医学学报 2002;196:247–253. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
44Karim M、Kingsley CI、Bushell AR、Sawitzki BS、Wood KJ。同种异体抗原诱导的CD25+CD4+调节性T细胞可以在体内由CD25-CD4+前体在胸腺依赖过程中发育而成。免疫学杂志。 2004;172:923–928。[公共医学][谷歌学者]
45Waldmann H等人,调节性T细胞和器官移植。塞明。免疫学。 2004;16:119–126.[公共医学][谷歌学者]
46Kuniyasu Y等。作为功能和表型不同的免疫调节性T细胞亚群的天然无能和抑制性CD25(+)CD4(+)T细胞。国际免疫学。 2000;12:1145-1155。[公共医学][谷歌学者]
47Chen ZK,Cobbold SP,Waldmann H,Metcalfe S.移植耐受自然调节免疫机制的扩增。移植。 1996;62:1200–1206.[公共医学][谷歌学者]
48Onodera K、Volk HD、Ritter T、Kupiec-Weglinski JW。移植受者“感染性”耐受途径中的胸腺需求和抗原依赖性。免疫学杂志。 1998;160:5765–5772.[公共医学][谷歌学者]
49Scully R,Qin S,Cobbold S,Waldmann H。CD4抗体介导的移植耐受机制:诱导动力学、抗原依赖性和调节性T细胞的作用。欧洲免疫学杂志。 1994;24:2383–2392.[公共医学][谷歌学者]
50Yamada A等。受体MHC II类表达是在共刺激阻断后实现小鼠心脏同种异体移植物长期存活所必需的。免疫学杂志。 2001;167:5522–5526.[公共医学][谷歌学者]
51Sayegh MH、Khoury SJ、Hancock WW、Weiner HL、Carpenter CB。用多态性II类主要组织相容性复合物等肽诱导大鼠免疫和口服耐受。程序。国家。阿卡德。科学。美国。 1992;89:7762–7766. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
52Hancock WW、Sayegh MH、Kwok CA、Weiner HL、Carpenter CB。口服而非静脉注射同种异体抗原可通过选择性激活移植物内Th2细胞来防止加速移植物排斥反应。移植。 1993;55:1112–1118.[公共医学][谷歌学者]
53Niimi M、Shirasugi N、Ikeda Y、Wood KJ。口服抗原通过间接途径通过连锁抑制诱导同种异体移植物存活。移植程序。 2001;33:81.[公共医学][谷歌学者]
54Honey K、Cobbold SP、Waldmann H。CD40配体阻断诱导CD4+T细胞耐受和连锁抑制。免疫学杂志。 1999;163:4805–4810.[公共医学][谷歌学者]
55Davies JD,Leong LY,Mellor A,Cobbold SP,Waldmann H.T细胞通过连锁识别抑制移植耐受。免疫学杂志。 1996;156:3602–3607.[公共医学][谷歌学者]
56Kilshaw PJ、Brent L、Pinto M。小鼠体内抑制性T细胞对同种异体皮肤移植无反应。自然。 1975;255:489–491.[公共医学][谷歌学者]
57秦S,等。“传染性”移植耐受性。科学。 1993;259:974–977.[公共医学][谷歌学者]
58尹D,法特曼CG。CD4阳性抑制细胞阻断同种异体移植排斥反应。免疫学杂志。 1995;154:6339–6345.[公共医学][谷歌学者]
59Larsen CP等。阻断CD40和CD28通路后皮肤和心脏异体移植的长期接受。自然。 1996;381:434–438。[公共医学][谷歌学者]
60Graca L,Honey K,Adams E,Cobbold SP,Waldmann H。前沿:抗CD154治疗性抗体诱导感染性移植耐受。免疫学杂志。 2000;165:4783–4786.[公共医学][谷歌学者]
61Hall BM,Jelbart ME,Gurley KE,Dorsch SE。环孢素治疗后心脏移植存活延长大鼠的特异性无反应性。T辅助细胞/诱导细胞特异性抑制的中介作用。实验医学学报 1985;162:1683–1694. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
62Cobbold S,Waldmann H.感染耐受性。货币。操作。免疫学。 1998;10:518–524.[公共医学][谷歌学者]
63Goldrath AW、Bogatzki LY、Bevan MJ。在自我平衡驱动的增殖过程中,幼稚T细胞瞬间获得记忆样表型。实验医学学报 2000;192:557–564. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
64Waldmann H,Cobbold S.利用移植中的耐受过程。科学。 2004;305:209–212.[公共医学][谷歌学者]
65Wells AD等。外周移植耐受诱导中T细胞凋亡的要求。自然医学。 1999;5:1303–1307.[公共医学][谷歌学者]
66Li Y等。阻断T细胞激活的信号1和信号2可防止同种反应性T细胞的凋亡和诱导外周移植耐受。自然医学。 1999;5:1298–1302.[公共医学][谷歌学者]
67Zheng XX,et al.有利地打破了细胞病变和调节性T细胞之间的平衡,以创造移植耐受性。免疫。 2003;19:503–514.[公共医学][谷歌学者]

文章来自临床研究杂志由以下人员提供美国临床研究学会