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生物标记研究。2016; 4: 21.
2016年11月22日在线发布。 数字对象标识:10.1186/s40364-016-0075-2
预防性维修识别码:项目经理5120492
PMID:27895916

机械生产血吸虫作为药物敏感性试验中表型预筛选的高通量工具:当前研究和未来趋势

摘要

开发新的抗血吸虫病药物至关重要,因为没有疫苗,全世界只依赖单一药物治疗血吸虫病。药物开发的障碍之一是缺乏高通量客观筛选方法来评估药物化合物的疗效。因此,为了鉴定新的候选药物,快速准确的体外检测是不可避免的,在药物发现领域的更多研究工作可以针对血吸虫。本文综述了迄今为止利用新转化血吸虫(NTS)测定药物化合物、天然产物和衍生物抗血吸虫活性的体外药物敏感性试验的现状。它强调了使用NTS进行体外化合物筛选所面临的一些挑战以及未来的发展方向。

关键词:血吸虫病,新转化血吸虫,机械转化,体外药物敏感性,药物发现

背景

数亿人面临着感染血吸虫病的风险[1]。全世界有2.07亿多人受到感染,其中85%生活在非洲。这使得血吸虫病成为世界上最具破坏性的热带疾病之一,并且仍然是发展中国家,尤其是萨哈兰非洲国家发病率和死亡率的主要来源[1]。血吸虫病也称为“蜗牛热”,是一种由淡水蜗牛携带的水传播性吸虫病,感染了五种寄生虫中的一种血吸虫但三个主要品种主要是人类血吸虫病的病原体:曼氏血吸虫,血吸虫日本血吸虫与血吸虫病相关的病理生理学,主要是由于对滞留在组织和器官中的血吸虫卵的免疫反应。肝脏、肠道和膀胱通常会在卵子离开宿主时将其困住。脾脏作为一个淋巴器官,会变大(脾肿大),伴随着肝脏的增大,会导致肝脾肿大。血吸虫病有急性期和慢性期。急性血吸虫病通常是短期的、轻度的,在血吸虫寄生虫首次侵入宿主皮肤后几周就会发生。但如果不进行治疗,上述三种血吸虫病中的任何一种引起的血吸虫病都可能成为慢性炎症,缓慢发展为肠器官、肝脏和膀胱等受感染组织的肿胀、纤维化和坏死,以及一系列其他症状,这些症状会逐渐损害宿主的生理甚至认知功能[2,].

流行地区使用吡喹酮(PZQ)的大规模药物管理(MDA)仍然是血吸虫病控制计划的主要基石[4]。吡喹酮于20世纪70年代被发现,并于1988年以Biltricide的名义上市[5,6]。它是迄今为止世界卫生组织(WHO)唯一可用和推荐的治疗血吸虫病的药物。这种单一药物PZQ每年用于治疗数百万人,如最近的出版物所述,预计到2018年其覆盖范围将达到2.35亿人,这引起了人们对药物压力增加的担忧[7,8]。此外,尽管这种药物有几个优点,特别是它对所有医学上重要的成虫的高疗效血吸虫病PZQ有一些缺点,主要是对较年轻阶段的血吸虫无效[9]。这意味着治疗并不排除感染者体内的所有蠕虫,因此需要重复治疗。同样,依赖单一药物作为唯一的治疗方法,同时积极降低发病率,导致人们对潜在耐药性的发展产生了很大的担忧[10]。这些事实强调了寻找下一代抗血吸虫病药物的必要性。因此,许多研究一再建议需要新型药物,因为药物的发现和开发管道实际上是干涸的[11]。只有少数候选化合物在临床前阶段进行了研究[12]而且没有一个达到临床试验阶段。例如,一种新型抗血吸虫药物的目标产品简介[12]甲氟喹和青蒿素不能满足[13,14].

以前,TDR指定的化合物筛选中心建立的程序依赖于成虫与候选药物孵育72小时[15]。潜伏期过后,用显微镜评估寄生虫的生存能力[15]。这种基于整个成虫有机体表型的体外药物筛选方法通常需要大量使用实验动物(仓鼠、大鼠、小鼠),因为不存在体外生命周期血吸虫这种方法也很耗时且吞吐量低,并且依赖于少数能够处理复杂生命周期的研究小组专家血吸虫并致力于从哺乳动物宿主中高回收成体寄生虫和长屏幕时间表。后者是长期以来血吸虫感染需要变得明显,因为在小鼠模型中,可能需要不少于30天的时间曼索尼感染成为专利[16]其他物种甚至超过30天,例如埃及血吸虫.

不久前,使用新转化血吸虫(NTS)的筛查方法作为一种高吞吐量的方法得到了推广[1720]。在这里,我们概述了表型筛查年轻寄生虫的替代方法,这些年轻寄生虫可以很容易地从中间宿主蜗牛中获得,数量比成虫多。本综述介绍了迄今为止使用NTS测定药物化合物、天然产物和衍生物抗血吸虫活性的体外药物敏感性分析的现状,并强调了使用NTS进行体外化合物筛选所面临的一些挑战。

在哪个阶段血吸虫生命周期是否发现血吸虫?

血吸虫有一个复杂的生命周期(图1). 血吸虫病的传播发生在携带寄生虫的人用尿液(用于泌尿生殖道血吸虫病)或粪便(用于肠道血吸虫病)污染蜗牛居住的淡水源(湖泊、池塘、河流和大坝)时。在最佳条件下,受精卵在水中孵化并释放毛蚴。一旦从卵中释放出来,奇迹虫就会在淡水中游泳,并穿透特定的中间蜗牛宿主。在蜗牛宿主中,毛蚴通过2代孢子囊(初级和次级孢子囊)的无性分裂繁殖,并在4至6周内产生尾蚴[21,22]。从蜗牛身上释放后,受感染的尾蚴可以在淡水中保持感染1到3天[22]。它们在水中游泳寻找最终的宿主。尾蚴一旦与宿主接触,就会穿透宿主皮肤,失去分叉的尾巴,变成血吸虫[22]。片理从皮肤进入静脉循环,然后进入肺部需要几天时间[22]。此路径通常在穿透后5至7天内完成。血吸虫需要至少15天的时间通过循环系统到达肝门静脉循环,在那里它们生长、成熟为成虫并结对。在人类中,成虫居住在不同位置的囊周或肠系膜微静脉中。这似乎是每个物种特有的。明确地,日本血吸虫经常发生在肠系膜上静脉引流小肠,而曼索尼常见于肠系膜上静脉,引流大肠。然而,日本血吸虫曼索尼它们可以占据任何一个位置,并且能够在两个位置之间移动,因此不可能明确地声明在一个位置发现了一个物种。一般来说,埃及血吸虫位于膀胱的静脉丛中,但有时也可以在直肠小静脉中发现。雌性在感染后4至6周开始在其最终感染部位(膀胱或肠道)产卵。这通常持续3-5年,相当于蠕虫的寿命[22]。卵产于门静脉和膀胱周围系统的小静脉。对于曼索尼日本血吸虫,卵子逐渐向肠腔、膀胱和输尿管移动埃及血吸虫和分别通过粪便或尿液从体内排出[22]。中间宿主蜗牛是传播的主要媒介,因此,人类接触淡水是血吸虫感染的必要条件,淡水中含有感染性幼虫形式的尾蚴[22].

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的生命周期血吸虫(来源:[22])

利用新转化血吸虫(NTS)进行体外药物筛选的重要性

在成功建立寄生虫的生命周期后,开发了寄生虫体外培养技术曼索尼在实验室里[15]。该过程依赖于与候选药物一起孵育72小时的成虫,之后用显微镜评估寄生虫的生存能力[15]。这种使用全蠕虫生物进行表型筛选的方法需要大量使用仓鼠、大鼠和小鼠等实验动物,因为目前还没有体外生成成虫的程序。此外,这种方法耗时且吞吐量低。难怪近年来,研究人员将新转化血吸虫(NTS)用作抗血吸虫药物发现领域药物敏感性分析的高通量筛选工具[12,1720,2327].

研究血吸虫的时代始于从受感染的实验动物肺部回收成熟的片状菌体。这与仅恢复有限蠕虫带来的不便有关[19]。利用离心、针头反复抽吸或化学刺激等简单技术将尾蚴转化为血吸虫是血吸虫养殖领域的一项重要发现。如今,研究人员使用尾蚴作为血吸虫体外研究的起始材料,因为从经济角度来看,很容易获得大量血吸虫[18,19]。此外,最重要的是,根据动物保护的3Rs(减少、替换、改良)原则,使用机械转化血吸虫限制并取代了使用活动物。使用人工生产的血吸虫体外药敏试验可能作为预筛查工具。

尾蚴/血吸虫转化相关的变化

血吸虫当人们接触淡水蜗牛释放的自由游动的寄生虫幼虫(尾蚴)时,就会发生感染。尾蚴在尾鳍的帮助下在水中游动,直到它们在接触受污染的水时穿透最终宿主的皮肤。尾蚴从中间宿主到最终宿主(人类)经历了一系列适应性变化。所有这些变化都被称为转换。在转化过程中,尾蚴的尾部消失,分泌腺释放两种物质:促进皮肤附着的粘液和降解皮肤的酶[28]。此外,在血吸虫表面出现短暂的微绒毛,在被膜上形成双单位膜[29]。同时,一些糖萼丢失[29]。McLaren和Hockley报告称,在体内,通过穿透宿主皮肤获得的血吸虫表面发育有微绒毛。这种情况也发生在穿透体外制备的小鼠皮肤的血吸虫和通过机械分离尾蚴头部的尾巴制备的人工血吸虫上[30]。根据他们的调查,他们报告说,三种血吸虫的微绒毛几乎同时出现,寿命大致相同,并且表现出相同的形态特征[30].

为了适应宿主的内部环境,血吸虫在最终宿主体内迅速发生显著的生理和超微结构变化[31]。其中一些变化是糖萼的丢失,三胺酸盐转化为七胺酸盐皮层膜[29]、血吸虫对水的敏感性(失去耐水性)[28]以及分泌腺的排出。所有这些变化都导致了血吸虫病阶段。大约2-3小时内完成转换[30,32]。Brink等人于1977年发表了一项研究,对人工生产的血吸虫和尾蚴侵入隔离皮肤后恢复的血吸虫病进行了比较[33]。他们得出结论,通过机械分离尾蚴头部的尾蚴制备的血吸虫符合尾蚴向血吸虫转化的主要标准。事实证明,所有类型的血吸虫(机械获取的和尾蚴穿透隔离皮肤后恢复的)表面膜已从三胺结构变为七胺结构,并在转化后2小时内失去尾蚴糖萼[33]。他们还报告说,在体外,机械转化血吸虫的发育与尾蚴穿透隔离皮肤后获得的血吸虫相似,尽管到第12天,只有25-50%的机械转化血块达到“肠道闭合”阶段,而50-70%的皮肤转化血吸虫达到了这个阶段[33]。因此,作者提出了两个主要标准,以帮助确定尾蚴转化为血吸虫是否有效。这两个标准是,NTS必须已经形成了七胺表面膜,并且必须能够在体外生长和发育,至少达到“肠道闭合”阶段[33].

使用NTS进行体外药物筛选的要求

药物和化学品

吡喹酮、甲氟喹、金诺芬、青蒿琥酯、甲氟膦酸、奥沙米喹、青蒿素、关节炎计都是用作抗血吸虫化合物的药物。这些药物通常溶解在二甲基亚砜(DMSO)中以获得10mg/ml或10mM的药物储备溶液,然后稀释到培养基中作为阳性对照[12,20,23,25,26,34]。用作药物溶剂的二甲基亚砜的最高浓度不得超过1%[15,18,24,34].

使用抗真菌药物(两性霉素B)和抗生素(青霉素100至300 U/ml和链霉素100至300μg/ml)补充培养基,以避免血吸虫培养过程中真菌和细菌的污染[12,17,23,2527,34].

媒体

不同类型的介质,如Basch Medium 169[1820,26,27,35,36]Earles的最低基本培养基[32,33],Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM)[17,19,26,31,35,37],最低基本介质(MEM)[19,27,35]罗斯韦尔公园纪念研究所(RPMI 1640)[18,31,32,38]和中等199[12,19,2326,34,35]已用于不同的研究。还开展了其他研究,以比较和获得NTS的最佳培养条件。几项研究表明,对于血吸虫的最佳培养条件,补充培养基是合适的。不同浓度的热灭活胎牛血清(iFCS)1%[24], 5% [12,20,23,2527,34,38], 10% [17,37]或热灭活胎牛血清(FBS)5%[38], 10% [36]已被使用。

补充培养基199被证明是最适合培养血吸虫的培养基,因此被广泛用于体外筛选其他具有已知抗血吸虫活性的化合物血吸虫新转化血吸虫[12,2325,34]。因此,5-10%热灭活小牛血清是一些研究人员常用的补充剂。

蜗牛和尾蚴

这些蜗牛可能是该属的布林斯它是埃及血吸虫以及的间插裂体吸虫或属生物鞭毛虫属钉螺对于曼索尼日本血吸虫分别是。每只蜗牛平均感染10个毛蚴[26]。在我们的实验室里,平均5个可以成功感染蜗牛。通常,蜗牛与脱氯水一起存放在水族馆的潮湿房间中,模拟12小时的昼夜循环。中间宿主蜗牛感染毛蚴后4至6周开始脱落尾蚴。根据昼夜节律,然后收集每种蜗牛,并将其单独放入24或48孔板中或试管中(每孔或每管1毫升蒸馏或脱氯自来水)。每个试管或孔板可暴露在人造光下30分钟[39],1小时[17],或2小时[4043]。然后将尾蚴悬浮液收集、清洁并浓缩,使其在冰上静置30至60分钟。在这段时间里,尾蚴形成一团,沉淀并粘附在管的底部。倒出上清液,用冰镇蒸馏水代替。这种悬浮液用于制备血吸虫。有几种技术可以将尾蚴转化为血吸虫并对其进行维护[18,33,4446]。其中一些技术在体内进行,其他技术在体外进行。宿主皮肤穿透后发生体内转化[33]当寄生虫侵入切除的皮肤时,可以获得体外转化[33,47]或者当尾蚴尾部被机械去除时[12,1820,2325,27,33,34,45]或化学性质[26]尾蚴体在生理介质中孵化(图2).

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新改造血吸虫(NTS)程序流程图

新转化血吸虫(NTS)

血吸虫尾蚴体外转化血吸虫及其维持

随着血吸虫病阶段对寻找新的抗血吸虫病药物越来越有吸引力,这就需要开发高效、可重复和快速的方法来产生大量合适的生物材料。尾蚴人工转化为血吸虫可由各种效应物诱导,例如37°C下的细胞生长介质[48,49]或低渗透压磷酸盐缓冲盐水[50]这似乎能够启动尾蚴向血吸虫的转化。在体外,血吸虫可以通过切除皮肤制备或通过机械分离尾蚴的尾部获得[30]

非机械变换

血吸虫切皮制剂

血吸虫尾蚴可以通过穿透切除的大鼠而制备出血吸虫[51]或鼠标[52]将皮肤放入Hanks的平衡盐溶液(HBSS)中。Brink等人报告的宿主物质污染的可能性和产生的血吸虫产量低[33]使切除的皮肤渗透技术不合适。

使用葡萄糖进行化学转化

尾蚴转化可以用葡萄糖进行。这称为化学转化,根据之前描述的方案进行[45]。简单地说,尾蚴悬浮液在冰上冷却30分钟,以降低寄生虫的运动能力。然后,将尾蚴悬浮液以2000 rpm离心2 min,然后再悬浮在5%葡萄糖中,并在30°C下培养10 min[26]。使用如下所述的冰净化方法将尾部从尸体上移除。

血吸虫的机械制备

机械转化法是获得人工转化血吸虫最常用的方法。这种方法适用于刚脱落的尾蚴,包括离心、通过乳化针或摇动。尾蚴体和尾蚴的分离通常是通过密度梯度离心,然后尾蚴头部在37°C的培养基中孵化完成的。为了将尾巴从身体上分离出来,这些方法通常包括一个初始步骤,即充分搅拌生物体。体外制备并在37°C下孵育的血吸虫逐渐发生形态学和生理学变化[31]。2001年塔克[31]据报道,培养24h后机械转化的片状菌体在大多数方面与穿透皮肤并在皮肤中停留约1h的尾蚴相似。因此,根据该方案获得的寄生虫在形态或生化上与自然感染恢复的寄生虫足够接近[33,48]。这使得机械转化成为大规模生产血吸虫的最佳替代方法,用于高通量研究,如基因表达、药物靶点的鉴定和有效药物的鉴定[37].

在本文中,我们将描述用于采集血吸虫的三种机械方法中的两种。这些方法包括离心、涡流或压力剪切,例如使用18、20、21、22号规针法[31,37,4345]。据推测,最近从正常的针头过程发展起来的双端针头方法似乎是最广泛用于尾蚴体外转化的方法[31,35,37,38,43,44].

旋涡法体外转化尾蚴为血吸虫

根据Ramalho-Pinto协议,通过涡流将尾蚴转化为血吸虫[45]。许多实验室使用了稍作修改的Ramalho-Pinto方法[19,26]。简单地说,尾蚴悬浮液在冰上冷却10分钟[33],30–40分钟[26,31]为了减少寄生虫的运动。然后以1000 rpm离心15 s,进一步浓缩尾蚴[33],100×g下2分钟[31],3000 rpm转速下3分钟[26],4摄氏度。丢弃上清液,将尾蚴颗粒重新悬浮在含有或不含青霉素-链霉素和两性霉素B的冷汉克斯平衡盐溶液(HBSS)中[18,26],或在4°C DMEM或RPMI 1640中[31]。悬浮液剧烈旋转2分钟[27],4分钟[26],或45秒两次,通过冰冷却3分钟[31]为了开始尾部损失。在37°C下,将混合的尾-片尾藻悬浮液孵育20分钟后,重复此步骤[26]。塔克[31]如果转化后的培养时间超过8到12小时,建议添加抗生素。

用针头和注射器体外将尾蚴转化为血吸虫

用针头和注射器将尾蚴尾部与头部分离,是制备血吸虫初期同样有效的方法。在这种情况下,将尾蚴悬浮液置于塑料离心管中,并用带有18、20、21或22号针头的注射器填充。尾蚴悬液反复通过针头(来回10–20次)[31,38,4345].

对于双端针头方法,在无菌的10 ml注射器上安装一个带稳定杆的18、20、21或22号双轮毂乳化针[43]。使用第二个10 ml注射器提取尾蚴,该注射器安装在乳化针的开口端。尾蚴尾部通过针头来回经过约10-20次剪切[31,37,38]。这一过程涉及处理数千只尾蚴,这是一种明显的生物危害。因此,必须使用防护服和手套,包括保护面部和眼睛。然后,用Percoll梯度离心法从剪尾中分离出血吸虫体[53]或另一种净化方法,如下所述。1比较不同血吸虫制备方法的优缺点。

表1

血吸虫不同制备方法的优缺点

优势缺点
机械方法(离心法、注射针法、涡流法)相对容易且价格低廉增加寄生虫损害
数以千计尾蚴的操作研究人员感染风险增加(对研究人员的潜在生物危害)
替代使用活动物
帮助获取大量血吸虫
与自然获得的片状菌相同的形态特征到第12天,只有25-50%的转化血吸虫达到“肠道闭合”阶段
非机械方法(化学转化和兴奋皮肤渗透)获得大量活血吸虫的理想选择用化学方法将尾蚴头部与尾部分离的尾蚴数量明显减少
更简单
对寄生虫的危害较小
血吸虫产量低和宿主物质污染的可能性
50-70%的皮肤转化血吸虫在第12天达到“肠道闭合”阶段需要使用活的动物(大鼠、小鼠、仓鼠……)和熟练的技术人员
血吸虫是自然获得的不太适合高吞吐量的技术

新转化血吸虫(NTS)的纯化

用Percoll法、冰法和旋涡法三种纯化方法可以从剪尾中分离出血吸虫体。

Percoll方法基于Lazdins等人的方法[53]。通过在500×g,4°C下离心15分钟,在70%Percoll梯度(聚乙烯吡咯烷酮涂层的胶体二氧化硅颗粒)上分离尸体和尾巴[31]。离心后,从试管底部收集样品,然后将收集的部分稀释至培养基(RPMI 1640、DMEM、medium 199、169、MEM等)并离心[31,37,38]。将五味子颗粒重新悬浮在新鲜、温暖的补充培养基中。

另一种纯化血吸虫的方法是旋涡技术,它简单易行。此方法已在前面描述[31,38]。在这种情况下,将血吸虫悬浮液倒入带有足够温热介质(如199)的培养皿中[26],37°C RPMI 1640全介质[38]或不完全介质169[18]。轻轻地旋转盘子,所有的尸体都被安置在中心,较轻的尾巴可以被吸入,尸体被留在中心。尸体(血吸虫)将进一步转移到15或50毫升离心管中。重复这一步骤(旋转和收集),直到血吸虫不再出现在培养皿的中心。这个目标大约需要4到5次才能实现[26]或10次[38].

对于冰法,将7 ml冷HBSS添加到血吸虫悬浮液中,并在冰上冷却7分钟。倒出上清液,并将颗粒再次悬浮在7 ml冷HBSS中。此步骤重复三次。然后将含有回收血吸虫的颗粒重新悬浮在预先加热(37°C)的补充培养基199中[26]或Basch介质[27].

将获得的纯化血吸虫保存在片状菌培养基中,并在37°C和5%CO的气氛中培养2用于进一步的实验。

净化后,可以估计转化率和净化因子。通过计算转化前HBSS悬浮液中尾蚴的总数,并将其与纯化后获得的血吸虫总数进行比较,来估计转化率[26]。Marxer等人[26]报道了五种通过涡流进行的相同机械转变的平均转化率为69%,化学转变的平均转变率为34%。

为了估计净化因子,在实验结束后,在50μl的样品中计算小体和尾巴的总数。比率表示为净化因子。Marxer等人[26]在执行了三种纯化方法后,他们计算了每种方法的平均纯化因子。根据他们的分析,最好的纯化方法是Percoll,纯化因子为24.4±11.4[26]。该方法之后是旋流法,净化系数为11.7±3.2[26]。ice方法的平均净化因子非常微弱,为3±1.7[26].

血吸虫培养及培养基

体外培养寄生虫所需的技术是当今研究人员关注的主要领域。除了动态研究和了解寄生虫的生理、行为和新陈代谢外,在成功建立寄生虫体外培养物后,还需要大力研究和分析其排泄和分泌产物中发现的抗原分子的性质。然而,这是一项艰巨的任务,因为寄生虫有复杂的生命周期,包括不同的阶段和宿主物种需求。值得一提的是寄生蠕虫。寄生虫培养技术需要了解所有类型的微生物培养物,因为不同的寄生虫需要特定的培养条件,例如营养物、温度甚至培养条件。

寄生虫培养在生产疫苗、测试疫苗效力和生产抗原以获得血清学试剂、检测耐药性、筛选潜在治疗药物和进行流行病学研究方面有着巨大的用途。寄生虫培养一直是一项挑战。在以下情况下血吸虫转化的血吸虫可以在复杂的培养基中体外生长和维持[35]。体外培养的血吸虫的生长速度与在允许宿主中的生长速度不同,它们也不会成为成虫。使用良好和适当的方法,大约50%的培养寄生虫将在肠道完全形成的情况下成熟,10%将发育成有性别的雄性和雌性蠕虫[31]。从大量的寄生虫开始,大量的蠕虫可以很容易地被维护,并为检测提供大量的寄生虫材料。也有可能增加血吸虫形成肠道和正常生长的百分比(50%对20%)。这可以通过在培养的第一周用条件培养基补充生长培养基来实现[31]。使用Tucker等人描述的方法.[31]补充DMEM或RPMI1640介质,血吸虫属。血吸虫可以在培养基中生长至少两个月。Abdulla等人.[18]注意到选择Basch培养基169而不是RPMI进行血吸虫培养,因为蠕虫在Bash培养基中存活更多,死亡率为10%,持续长达4周,而在RPMI培养基中,平均40%至60%的寄生虫在3天内死亡,持续死亡率高达两周。Keiser在2010年报告称,片状菌在不同培养基(如MEM、DMEM、Basch或TC 199)中可以存活至少96小时[19]。Marxer等人.[26]表明补充的培养基199最适合于通过在补充的HBSS中转化获得的血吸虫的孵育。在对三种培养基(DMEM、Medium 199、Basch培养基)进行比较研究后,他们报告说,在补充的培养基199中,寄生虫在120小时后仍然存活,平均存活值为2.5,而血吸虫在Basch介质中72小时死亡,在DMEM中144小时死亡,如图所示[26]。血吸虫在37°C和5%CO中培养2培养箱[12,17,20,23,2527,31,34,37,43,45,54]。研究还表明,在一周的培养过程中,Basch Medium 169中的寄生虫看起来健壮且形状和外观均匀。表中总结了培养基对血吸虫生长的影响2.

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的生存时间埃及血吸虫不同文化媒体中的NTS(来源:[26])

表2

不同培养基对血吸虫生长的影响

文化传媒NTS的形状和外观NTS的运动NTS的持续时间/可行性
Basch中型169寄生虫(NTS)看起来强壮而均匀高动力性使寄生虫存活至一周的潜伏期。
蠕虫存活时间更长,死亡率高达10%,最多可存活4周
DMEM公司寄生虫(NTS)出现变形,包括变圆和变暗运动速度慢且动力不足使寄生虫存活长达144小时
当培养基得到适当补充时,血吸虫可以生长至少两个月
中等199产生不同程度的畸变寄生虫(NTS),包括圆角和变暗运动速度慢且动力不足补充培养基199可使寄生虫存活120小时,平均存活值约为2.5小时
RPMI 1640型寄生虫(NTS)取整运动速度慢且动力不足寄生虫退化,3天内平均死亡40%至60%,持续死亡长达两周
当培养基得到适当补充时,血吸虫可以生长至少两个月

NTS公司新转化的血吸虫,DMEM公司杜尔贝科改良的老鹰培养基,RPMI公司罗斯韦尔公园纪念学院

虽然更合适的培养基因研究而异,但我们可以观察到,开始筛选化合物FDA文库的研究[25]、疟疾药物风险投资(MMV)盒子化合物[12],甲氟喹相关芳醇[34]使用补充介质199。因此,补充培养基199似乎是培养血吸虫最合适的培养基,并可能证明为什么它被广泛用于体外筛选其他具有已知抗血吸虫活性的化合物血吸虫新转化血吸虫[12,2325,34].

血吸虫培养成功的最大障碍是受到真菌和细菌的污染,这主要是因为寄生虫来源于非无菌蜗牛。因此,使用抗生素(青霉素和链霉素)有助于防止细菌生长和两性霉素B,一种防止真菌生长的真菌酮。使用上述不同浓度。

新转化血吸虫体外药敏试验

血吸虫筛查

血吸虫NTS体外检测是使用本综述中描述的一种转化方法获得的。NTS悬浮液的浓度调整为每50μL 100 NTS[12,25,26,34]然后在37°C、5%CO的培养基中培养2在环境空气中至少放置12至24小时,以便成熟或在进一步加工前完全转化为血吸虫[12,17,20,2325,34]。其他作者在随后的实验中使用NTS悬浮液之前,只培养1到3小时[18,27]。然后将血吸虫培养基中转化的血吸虫与试验药物在96 W平底板中孵育,一式两份或三份,至少2至3次,每次100 NTS[12,20,25,26,34]。由于药物储备溶液是在二甲基亚砜中制备的,因此使用在血吸虫培养基中稀释的最高浓度的二甲基亚磺酸作为对照。此后,在倒置显微镜下用显微镜评估药物效果。

检测受试化合物对血吸虫存活率的影响

根据显微镜读数,在3个不同时间点(药物暴露后24小时、48小时、72小时)记录NTS的表型变化。这些变化与蠕虫的死亡、运动能力、生存能力和形态变化有关[12,25,34]。这使用了从0到3的生存力等级(3=能动,形态无变化;2=运动减少和/或注意到皮损;1=观察到运动能力严重下降和/或皮损;0=死亡)[12,13,2527,34]。测定活性化合物的50%(IC50)和/或99%(IC99)抑制浓度[12,2326,34].

显微读数不便和自动化技术的发展

目前用于评估血吸虫生存能力的方法包括显微镜技术。在这种情况下,实验者在体外操纵寄生虫,并通过形态学的亮场检查来评估这种操纵的效果。该程序已用于多个药物筛选方案[18,2527]以及寄生虫发育的一般操作[55]。在各种研究工作中,使用不同的标准评估了血吸虫的生存能力。其中一些标准是细胞内粒度、血吸虫运动、血吸虫病形状改变。然而,通过显微镜读数来评估寄生虫的生存能力本身就是对高通量发展的潜在阻碍,因为这些方法缓慢且主观,因此是高通量筛查的瓶颈。更常见的情况是,高通量方法依赖于分析的小型化、客观性,并且在定量方面要求很高。最初开发的用于单细胞真核生物存活率测量的几种补充技术已应用于多细胞血吸虫寄生虫。在现有的用于单细胞真核生物的活性检测方法中,令人惊讶的是,只有有限范围的技术成功地应用于血吸虫研究。这可以解释为血吸虫的多细胞性,其大小超过1厘米,组织复杂,其外部被七胺膜所束缚[56]。七胺酸盐被认为对大分子、简单化合物和水具有选择性渗透性[57]。尽管如此,由于寄生虫生物学存在挑战,也有证据表明,一些针对单细胞生存能力开发的技术可以成功适应血吸虫。

血吸虫的大小和复杂性可以部分地视为确定生存能力的有用属性。在体外评估血吸虫(包括血吸虫和成虫血吸虫)生存能力的一个重要特征是它们有规律的运动,尽管缺乏运动被认为不是死亡的可靠指标。运动性以及其他微观特征,如形态变化、粒度和皮层损伤[12,25,34]是目前评估血吸虫病生存能力最常用的指标,代表了血吸虫病研究界评估药物筛选方案的“金标准”[12,18,20,25,34].

尽管广泛应用了亮场、光镜评估血吸虫生存能力,但这项技术仍存在一些问题。首先,工作人员应接受良好培训,以获得关于血吸虫不同表型的足够知识。其次,由于缺乏免疫学和分子证据证明血吸虫在静止状态下确实发生了死亡,因此对血吸虫生存能力的明亮光镜检测始终是主观的。即使工作人员已经熟练识别血吸虫表型,这项技术仍然是缓慢而乏味的。例如,最近的一项研究每月只筛选640种潜在的抗血吸虫化合物[18]。最后,由于实验室之间缺乏一致性,不可能总是复制通过亮场显微镜方法获得的结果。随着自动化技术的最新进展,人们尝试了许多替代性读出分析,并取得了不同程度的成功,以避免仅从微观表型观察来量化血吸虫生存能力的主观性质[58]。例如,亚甲基蓝已显示出对不同死亡血吸虫进行染色,因此被认为是一种可靠的死亡血吸虫病染色剂[55]并用于评估机械转化血吸虫的生存能力[59]。无论如何,人们认为活性染料可以成功地从单细胞活性标记转化为多细胞血吸虫。

一些荧光化合物,如DNA插层染料、溴化乙锭(EB)和碘化丙锭(PI)[60,61],羧基荧光素[61]此外,在低通量、显微读出方法中,还使用瑞舒林来量化血吸虫的存活率。更详细地说,阿拉玛蓝(AB)是一种无毒、可渗透细胞的化合物,其活性成分瑞沙唑啉呈蓝色,几乎无荧光。但当瑞苏林进入细胞后,它会转化为红色的高荧光瑞苏芬。再生素被活细胞持续还原为再生素。该染色技术用于区分活血吸虫和死血吸虫,在与已知抗血吸虫活性的标准选择药物化合物孵育48和72小时后[26]。不幸的是,该技术不能用于早期时间点和测量剂量反应药物效应[23].

溴化乙锭在显微镜检查中用于区分死血吸虫和活血吸虫[61]PI已成功用于显微镜检查和流式细胞术,原因相同(作为死血吸虫的鉴别染色)[60]。与溴化乙锭和碘化丙锭相比,羧荧光素被检测为血吸虫的活染色。然而,由于活血吸虫和死血吸虫产生了一些荧光,因此很难将其明确区分[61].

通过推广使用单一染料染色,已开发出血吸虫双荧光活性测定法[17]。在这种情况下,作者将PI与荧光素二乙酸酯(FDA)的使用相结合,以容易地评估样本中存在的活血吸虫的百分比。通过使用微量滴定仪平板读取器,该荧光生物测定法是针对96或384孔微滴定仪黑面平底板光学透明而开发的。九十六(96)孔板设计用于中等吞吐量,384孔板设计用于高通量应用[17]。荧光生物检测的使用还有一个额外的优点,即与现有的显微镜方法相比,它可以将每月筛选的化合物数量增加10倍,而且不需要对人员进行寄生虫形态学方面的广泛培训[58]。因此,荧光生物测定已被证明是完全客观的[58]并且已经用血吸虫进行了验证。目前,有迹象表明,荧光生物测定法可以适用于成虫血吸虫以及其他生命阶段。虽然PI和FDA的联合使用可以以高通量的形式客观、快速地量化血吸虫的存活率,但PI和FDA提供重要表型数据的能力稍有局限[58]。因此,仍然需要荧光生物测定的补充技术和方法,以实现表型的自动评估,这可能被视为新型抗血吸虫病药物发现领域的一项重大发现。

Smout等人[62]开发了一种运动试验,被认为是技术进步之一,可以解决这一寄生虫表型量化挑战,直到高含量筛查成为一种负担得起的现实。该分析使用xCELLigence系统,是一种实时监测细胞的新应用程序或设备。众所周知,这是通过以全自动高通量方式实时测量寄生虫运动来简单客观地评估驱虫效果。原则上,这项技术是基于检测通过组织培养板底部微型金电极的变化电流。当处于未成熟和成熟阶段的血吸虫密度相当大时,它们通常在体外培养过程中沉积,并与金电极接触。众所周知,可能影响蠕虫生理学的培养条件的改变可能会改变其行为或表型。这导致电极上的电流出现可测量的波动[58]。由于许多抗血吸虫药物复合物通过影响目标寄生虫的运动来发挥作用,因此这些可测量的电流波动的重要性可以被视为潜在治疗活性的指标。Smout等人证明了以高通量方式实时评估化合物驱虫活性的生物物理特性[62]。将该技术应用于成年血吸虫,以说明通过增加PZQ的剂量,成年蠕虫血吸虫的信号减弱,从而产生剂量依赖性曲线。这项技术能应用于血吸虫幼虫的生命阶段吗?虽然这个问题的答案目前还不清楚,但似乎是可行的。据信,该试验可能为显微镜提供一种先进的方法,有助于消除蠕虫表型表征的主观性,并提供一种直接比较不同实验室结果的技术[58]。但xCELLigence设备的原始成本可能会限制其广泛使用。

Howe等人[24]研究了荧光法测定L-乳酸在血吸虫药物筛选分析。乳酸是糖酵解的副产品。通过NTS和成虫血吸虫的水甘油孔蛋白分泌[23]。作者全面调查了乳酸测量参数,并通过应用血吸虫和成虫进行药物敏感性分析,以建立概念验证。他们表明,乳酸水平清楚地反映了血吸虫的生存能力,这也与血吸虫数量相关。他们测试了具有所述效力的化合物,并将荧光法测定L-乳酸的活性与显微镜进行了比较。Howe等人[24]结论:乳酸可以作为简单的替代标记物,因为它的测定可以成为药物敏感性试验中评估血吸虫生存能力的一种有希望的新方法。然而,这种技术需要两件事。首先,必须在不抽吸血吸虫的情况下从药物分析中去除上清液,其次,应根据需要将药物分析稀释至可接受的荧光范围。这两个方面使得荧光法测定L-乳酸低于高通量[23].

最近,Lalli等人验证了被称为CellTiterGlo®的商业发光细胞活性试剂盒.[63]用于使用曼索尼NTS和血吸虫成虫。不幸的是,在这个过程中,需要一个精确的多点分配器,以确保每个井中NTS的准确数量。虽然基于标记染料的分析研究一直是一项热门活动,但我们可以简单地注意到,到目前为止,还没有完全实现简单、廉价和准确的染料的目标,即不需要太多额外的设备或分析[23]。总结了迄今为止开发的用于测定药物化合物抗血吸虫活性的不同体外药敏试验。本综述中引用的出版物摘要见表4.

表3

体外药物敏感性试验用于测定药物化合物的抗血吸虫活性

方法原则优势缺点
显微镜读数无污染体外操纵寄生虫,并通过形态学的亮场检查评估效果。
血吸虫存活率采用不同标准进行评估:
-细胞内粒度
-血吸虫运动
-血吸虫形态改变
这使用了从0到3的生存能力量表
-用于区分孵化后活血吸虫和死血吸虫-工作人员应接受良好的培训,以区分不同的血吸虫表型
-由于缺乏免疫学和分子证据证明血吸虫在静止状态下确实发生了死亡,因此对血吸虫存活能力的明亮光镜检测是主观的
-该技术速度慢(耗时)且乏味
-由于实验室之间缺乏一致性,结果的复制并不总是可能的
使用单一荧光染料染色的显微镜读数体外操纵寄生虫,并通过活细胞或死细胞的亮场检查评估效果-用于区分孵化后活血吸虫和死血吸虫
-不需要对人员进行寄生虫形态学方面的广泛培训
-荧光生物测定是客观的
-荧光生物检测可用于成年血吸虫和其他生命阶段
-不能用于较早的时间点
-不能用于测量剂量反应药物效应
-有时很难清楚区分活血吸虫和死血吸虫
双荧光活性分析染色显微镜读数将DNA插入染料(溴化乙锭(EB)、碘化丙啶(PI))与羧基荧光素(二乙酸荧光素)、瑞蓝素结合使用,可轻松评估样本中活血吸虫的百分比-此生物测定是为96或384孔微光板开发的
-设计用于中等吞吐量(96口井)和高吞吐量(384口井)应用
-与现有显微镜方法相比,每月筛选的化合物数量增加10倍
-不需要对人员进行寄生虫形态学方面的广泛培训
-荧光生物检测以高通量的形式客观快速地量化血吸虫的生存能力
-荧光生物检测可用于成年血吸虫和其他生命阶段
-双荧光染料提供重要表型数据的能力略有限制
运动性测定该分析使用xCELLigence系统实时监测细胞。这项技术是基于检测流经组织培养板底部的微型金电极的电流变化-通过以全自动高通量方式实时测量寄生虫运动,简单客观地评估驱虫效果
-帮助消除蠕虫表型表征的主观性
-可以直接比较不同实验室的结果
-该技术中使用的xCELLigence设备成本高昂,可能会限制其适用性
荧光法测定L-乳酸由乳酸水平的测量组成,它清楚地反映了血吸虫的生存能力,这也与血吸虫数量相关-可以用作简单的代理标记
-药物敏感性试验中评估血吸虫生存能力的新方法
-这项技术要求必须在不抽吸血吸虫的情况下从药物分析中去除上清液,并根据需要将药物分析稀释至可接受的荧光范围。这使得荧光法测定L-乳酸低于高通量
CellTiterGlo®(商用发光细胞活性试剂盒)ATP定量检测血吸虫存活率-适用于药物筛选的半自动化中通量分析
-快速、高可靠性、灵敏和自动化友好
-需要一个精确的多点分配器,以确保每个井中NTS的准确数量

表4

已发表研究综述

目标使用的媒体NTS程序结果参考
Mansour等人(2016年)利用基于蠕虫、幼虫运动和测试板图像分析的测试筛选了近300000种化合物补充100 U/ml青霉素、300μg/ml链霉素、0.25μg/ml真菌酮(两性霉素B)和5%胎牛血清(FCS)的M169使用注射针方法进行机械改造许多化合物被确定为有希望的进一步化学优化先导[54]
Panic等人(2015a)研究了一组荧光/发光染料在药物敏感性分析中作为活性标记物的适用性曼氏血吸虫童虫培养基199添加5%热量iFCS和1%青霉素-链霉素混合物体外机械转化(涡流)在11个选择用于测试的标记物中,resazurin、Vybrant®和CellTiter-Glo®与NTS活性的相关性最好,产生的信号强度大于背景噪声的3倍,并显示出显著的信号与NTS浓度关系[23]
Panic等人(2015b)从一组非常多样的抗血吸虫病适应症扩展了对已经批准的1600种FDA化合物抗血吸虫特性的认识曼氏血吸虫 培养基199添加5%热量iFCS和1%青霉素/链霉素体外机械转化(涡流)在筛选出的1600种抗血吸虫化合物中,121种被鉴定为活性化合物,其中36种在筛选后对成虫有效。本研究中确定的两种体内中等活性药物,多拉菌素和氯法齐明,作为新的药物类别,作为进一步研究的起点[25]
Lalli等人(2015年)描述了一种基于发光的中通量分析方法的开发和验证,该方法用于通过ATP定量检测血吸虫的生存能力DMEM全组织培养基体外机械转化(涡流)基于血吸虫活力发光的检测是成功的,适用于鉴定未来血吸虫病治疗中潜在的新化合物
因此代表了荧光显微镜分析的有效替代方法
[63]
Howe等人(2015)评估了乳酸盐作为血吸虫通过测试具有报告效力的化合物进行药物筛选分析无酚红介质199
补充5.5 mM D-葡萄糖、200 U/ml青霉素、200μg/ml链霉素、1%热量iFCS
通过涡流进行机械转化乳酸水平清楚地反映了血吸虫的生存能力,并与血吸虫数量相关。乳酸是一种敏感且简单的替代标记物,需要通过测量来确定血吸虫复方筛选试验的可行性[24]
Ingram-Sieber等人(2014年)调查了含有200种不同类药物和200种类似探针化合物的疟疾药物风险投资盒,这些化合物具有已知的抗疟活性,可对抗疟疾幼虫期曼索尼然后进行体外成虫测试和体内候选先导研究添加5%热量iFCS、青霉素(100 U/ml)和链霉素(100μg/ml)的补充培养基199涡流机械变换强调具有抗疟背景的化合物对血吸虫的潜在作用。两种全新的化学支架,具有亚微米级体外抗血吸虫活性和中等体内活性[12]
Protasio等人(2013)分析了Mechanical和Skin Transformed之间基因表达模式的差异曼氏血吸虫
血吸虫并提供足够的数据来解决长期的争议
补充DMEM、10%FCS、1%Hepes缓冲液和100 U/L青霉素、0.1 mg/L链霉素和10 mM L-谷氨酰胺-使用21G注射针方法进行机械改造
-小鼠皮肤切除
这项工作有助于验证使用机械转化血吸虫的基因表达研究,并进一步证明MT是天然皮肤转化的良好替代品[37]
Coultas等人(2012)将当前广泛使用的双端针机械转化方法与基于非机械方法的培养基进行了比较富含L-谷氨酰胺的RPMI 1640培养基;150单位/ml青霉素、100μg/ml链霉素和5%热灭活胎牛血清(iFBS)使用22号双头luer-lok乳化针进行机械改造机械和非机械尾蚴转化方法都能产生大量相似数量的活血吸虫[49]
de Moraes等人(2012年)报告了哌拉汀的体外抗血吸虫活性曼索尼不同年龄的血吸虫Basch 169培养基含有抗生素,并添加10%胎牛血清(FBS)机械改造,使用涡流混合器该报告首次证明了哌拉汀能够杀死不同年龄段的血吸虫,并进一步证明哌拉亭是一种很有前途的化合物,可以用于开发新型血吸虫杀灭剂[36]
Marxer等人(2012年)开发了一种体外药物筛选试验,用于埃及血吸虫新转化血吸虫(NTS)。中华绒螯蟹中间宿主尾蚴的出现节律曼索尼S.mansoni血链球菌截形白鳍豚研究了两种人工转化血吸虫的方法,通过对三种不同方法和几种不同培养基的测试,确定了最佳的纯化方法和最佳的培养条件Basch Medium 169、DMEM和Medium 199。全部补充5%热量iFCS、200 U/ml青霉素和200μg/ml链霉素机械转化,使用涡流混合器和化学转化,使用葡萄糖这两种蜗牛都有昼夜节律。最高转化率埃及血吸虫尾蚴通过涡旋转化转化为NTS,Percoll的纯化因子最高。基于瑞沙林的荧光读数在检测死血吸虫时非常精确[26]
Ingram等人(2012年)测试了属于三大类芳基乙醇的甲氟喹相关化合物,以阐明其作为抗血吸虫病候选药物的潜力。对选定的芳基乙醇进行测试曼索尼体外血吸虫和成虫培养基199添加5%热量iFCS、青霉素(100 U/ml)和链霉素(100μg/ml)涡流机械变换该研究证实了甲氟喹支架化合物的高抗血吸虫活性。鉴定出四种候选药物,WR7930及其两种衍生物和恩匹罗林,其在体内具有高抗血吸虫特性[34]
Milligan等人(2011)提供了血吸虫尾蚴转化和体外培养的可视化描述RPMI 1640添加5%FBS,1X青霉素/链霉素使用22号双头luer-lok乳化针进行机械改造本研究制定了体外尾蚴转化和血吸虫培养技术的可视化方案[38]
Smout等人(2010年)描述了一种实时细胞监测设备(xCELLigence)的新应用,该设备能够以全自动高通量的方式实时测量寄生虫运动,从而简单、客观地评估驱虫效果RPMI 1640,1%抗生素/抗真菌和10 mM Hepes-该研究报告称,该技术可用于发现和开发新的驱虫药物,并可用于检测大多数蠕虫和其他病原体对现有药物的表型耐药性,其中蠕虫蠕动是衡量病原体生存能力的一个指标[62]
Mansour等人(2010年)报告了Alamar Blue分析的开发和验证,并与基于形态(微观)的化合物活性评估进行了比较M169补充100 U/ml青霉素、100 mg/ml链霉素和5%FCS使用注射器方法进行机械转换Alamar Blue分析很容易检测到导致幼虫死亡或严重损伤的化合物,但对于更细微的形态变化,其可靠性不如显微镜。结论是,综合使用阿拉玛蓝和基于图像的自动形态学分析,自动化高通量屏幕将受益[20]
Manneck等人(2010年)研究了这种甲氟喹在体内外的时间效应,并通过扫描电子显微镜(SEM)检查了血吸虫和曼氏血吸虫成虫被膜表面的变化Basch培养基169添加5%热量iFCS和100 U/ml青霉素和100 mg/ml链霉素涡流机械变换甲氟喹诱导两者的广泛形态和皮层改变曼索尼S.mansoni血吸虫与体内外成虫[27]
Peak等人(2010)提出了一种基于微量滴定板的方法,用于可重复地检测血吸虫的活力,该方法利用了生物体对荧光团(碘化丙啶和二乙酸荧光素)的不同吸收DMEM缺乏酚红,含有4500 mg/l葡萄糖,补充10%FCS、2 mM l-谷氨酰胺、200 U/ml青霉素、200 mg/ml链霉素涡流机械变换研究表明,所开发的方法是敏感的(可检测200个血吸虫/孔),与工业(384孔微量滴定板兼容性)和学术(96孔微量滴定板兼容性)设置相关,可转化为功能基因组学筛选和药物分析[17]
Abdulla等人(2009年)提出了一种部分自动化的三组分表型筛查工作流程,该流程利用了疟原虫的血吸虫阶段在其顶点适应96倍平板格式。
随后在体外对产生的打击进行筛选,以对抗成年寄生虫,并最终在小鼠疾病模型中进行疗效检测
Basch中型169使用22号双头luer-lok乳化针进行机械改造该研究确定了各种化合物和药物在体外的命中率,并在体内以规定的口服疗效领先[18]

NTS公司新转化的血吸虫,DMEM公司杜尔贝科改良的老鹰培养基,RPMI公司罗斯韦尔公园纪念研究所,智能未来作战系统热灭活胎牛血清,扫描电镜扫描电子显微镜

结论

大量抗血吸虫新药的发现之一依赖于体外全寄生虫筛选。获得足够数量的完整寄生虫生物和大量寄生虫生物来源一直令人担忧。因此,机械转化的血吸虫可能被用作抗血吸虫药物发现领域中高通量工具的替代品。这可能有助于迅速发现急需的新药,这些新药将有助于控制作为主要毁灭性寄生虫感染之一的片断病。尽管从最近的出版物中可以清楚地看出,NTS生存能力、运动能力和表型的主观测量仍然是金标准,但迄今为止尚未验证表型的自动评估。

确认

Emmanuel Mouafo Tekwu非常感谢Bill and Melinda Gates基金会通过Noguchi Memorial Institute for Medical Research的博士后奖学金项目在加纳提供了两年的奖学金。我要感谢Deladem Mabel Tettey小姐(NMIMR寄生虫学系研究助理)对这份手稿的批判性阅读。

基金

这项工作得到了Bill and Melinda Gates基金会的支持,该基金会将传染病研究博士后和研究生培训授予Noguchi Memorial Institute for Medical Research(全球卫生拨款编号OPP52155)。资助者在研究设计、数据收集和分析、决定出版或准备手稿方面没有任何作用。

数据和材料的可用性

不适用。

作者的贡献

EMT对主题进行了概念化,编写了评论并撰写了这份手稿。KMB、AKN、VPB、WA、DB、SK、KBAO对手稿的改进进行了审查并做出了智力贡献。所有作者阅读并批准了手稿的最终版本。

竞争性利益

作者声明他们没有相互竞争的利益

出版同意书

不适用。

道德批准和参与同意

不适用。

缩写

AB公司阿拉马蓝
DMEM公司杜尔贝科改良老鹰培养基
二甲基亚砜二甲基亚砜
电子束溴化乙锭
FBS公司胎牛血清
美国食品药物管理局荧光素二乙酸酯
哈佛商学院汉克斯平衡盐溶液
集成电路抑制浓度
智能未来作战系统灭活胎牛血清
MDA公司大规模药物管理
MEM公司最低基本介质
毫米v疟疾药物风险投资
NTS公司新转化血吸虫
圆周率碘化丙啶
PZQ公司吡喹酮
RPMI公司罗斯韦尔公园纪念学院
TDR公司热带病研究和培训

参与者信息

Emmanuel Mouafo Tekwu,电话:+233 20 665 7012,电话:+237 677 86 84 70,hg.ude.gu.ihcugon@uwkeTE,rf.oohay@uwkete.

威廉·科菲·安扬,hg.ude.gu.ihcugon@naynaw.

丹尼尔·博阿玛,ku.oc.oohay@hg_hamaob.

Kofi Owusu Baffour-Awuah,hg.ude.gu.ihcugon@usuwok.

斯蒂芬妮·基埃塔·泰奎,rf.oohay@remakyhpets公司.

维罗尼克·彭拉普·本格,rf.oohay@palnep.v.

亚历山大·夸德沃·尼亚尔科,hg.ude.gu.ihcugon@okrayNA.

Kwabena Mante Bosompem,hg.ude.gu.ihcugon@mepmosoBK.

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文章来自生物标记物研究由以下人员提供BMC公司