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《维罗尔杂志》。2004年9月;78(17): 9366–9375.
预防性维修识别码:PMC506935型
PMID:15308731

两种重组负链RNA病毒载体诱导猴免疫缺陷病毒Gag的细胞免疫应答

摘要

产生表达猴免疫缺陷病毒(SIV)Gag蛋白(rNDV/SIVgag)的重组新城疫病毒(rNDV)。rNDV/SIVgag病毒在小鼠中诱导Gag特异性细胞免疫反应,导致特异性抗Gag抗病毒免疫。在rNDV/SIVgag-免疫小鼠中,表达相同Gag抗原的重组痘苗病毒(rVac/SIVgag)的生长受到抑制,但野生型痘苗病毒的生长没有受到抑制。在静脉、腹腔或鼻内免疫途径中,鼻腔给药对rVac/SIVgag的激发产生了最强的保护性反应。我们进一步证明,用表达SIV-Gag免疫原性部分的重组流感病毒进行强化免疫后,这些免疫反应大大增强。保护性免疫反应的程度与细胞对Gag的免疫反应水平相关,免疫9周后仍很明显。这些结果表明,rNDV和流感病毒载体是防治艾滋病和其他传染病的合适候选疫苗。

细胞介导免疫已被证明在对抗许多病毒感染方面发挥着重要作用。累积证据表明,感染人类免疫缺陷病毒1型(HIV-1)的个人也可能出现这种情况(29,34,52). HIV-1特异性细胞毒性T淋巴细胞(CTL)在感染过程中的早期即已被检测到,在出现体液反应之前,它们似乎在控制最初的病毒血症中起着重要作用(8,23,45). 此外,据报道,病毒载量与感染后期HIV-1特异性CTL水平呈负相关(35). 此外,一些报告显示,长期非进展患者的HIV-特异性CTL水平高于进展患者(15,16,22,42). 因此,诱导强烈的HIV-特异性CTL反应可能是HIV疫苗有效性的一个重要因素。

目前正在研究许多不同的方法来诱导有效的HIV CTL反应。在这些方法中,基于一般减毒活病毒疫苗所引发的强大和持久的免疫反应,使用表达选定HIV抗原的减毒病毒载体似乎是一种有希望的策略(参考文献综述4750). 一个重要的考虑因素是病毒载体的选择,理想情况下,病毒载体应该是安全的,并且能够诱导有效的T细胞对表达的抗原产生反应。前面已经描述了五种表达SIV-Gag不同部分的重组流感病毒(rFlu/SIVgag 1号到rFlu_SIVgag 5号)的产生,并且已经证明rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒在免疫小鼠的系统组织和粘膜组织中诱导了强烈的细胞免疫反应(31). 也有研究表明,用表达SIV-Gag(rVac/SIVgag)的重组痘苗病毒增强rFlu/SIVgag-免疫小鼠,可以增强对SIV Gag的细胞免疫(31).

在本研究中,我们描述了第二负链RNA病毒载体新城疫病毒(NDV)在小鼠体内的免疫原性腮腺炎病毒属中的属副粘病毒亚科家庭。NDV感染通常仅限于禽类,根据其在禽类中引起的疾病的严重程度,该病毒可分为三种病理类型:致畸型、中胚层型和发育迟缓型(48). NDV在哺乳动物物种中的复制似乎减弱,部分原因是其无法抵抗宿主的先天免疫反应(37). 大多数人缺乏NDV原有免疫力,人类NDV感染只与轻度自限性结膜炎有关(1)促使我们研究其作为疫苗载体的潜力。我们报道了一种基于致透镜无毒疫苗株Hitchner B1表达流感病毒血凝素(HA)蛋白(rNDV/B1-HA)的重组NDV(rNDV)诱导了体液免疫反应,能够保护小鼠免受致命流感病毒的攻击。这些结果强调了NDV作为哺乳动物有效疫苗载体的潜力(30). 我们现在描述了表达全长SIV Gag蛋白的rNDV的产生(rNDV/SIVgag)。rNDV/SIVgag病毒在小鼠中诱导Gag特异性细胞免疫。此外,我们发现,用rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag对小鼠进行联合免疫,可显著提高针对替代挑战病毒rVac/SIVgap诱导的抗病毒保护性免疫反应水平。此外,免疫小鼠对SIV-Gag的细胞免疫反应至少维持9周。这些特性保证了对rNDV载体的进一步探索,以用于HIV疫苗策略。

材料和方法

细胞、病毒和动物。

P815细胞用于酶联免疫斑点(ELISPOT)测定。鸡胚成纤维细胞(CEFs)是从10天龄的特定无色素胚胎鸡蛋(Charles River SPAFAS,North Franklin,Con.)中制备的。CEF保存在含有10%胎牛血清(FBS)的最低必需培养基中。HeLa、CV-1、HEp-2和Vero细胞保存在含有10%FBS的Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM)中(30). 纽约市卫生局野生型痘苗病毒(Vac/wt)和表达SIVmac239 Gag VabT252-51(rVac/SIVgag)的重组痘苗病毒由Therion Biologicals的Gómez Yafal善意提供,并在HeLa细胞中生长。如前所述,使用Madin-Darby牛肾细胞生成和生长表达SIVmac239 Gag片段的嵌合流感A/WSN/33(WSN)病毒(rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒)(31)(图。(图1A)。1安培). 从Charles River Laboratories购买的6周龄雌性BALB/c小鼠用于动物实验。所有动物程序均符合美国国立卫生研究院(NIH)关于实验室动物护理和使用的指南。

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用于免疫接种的重组病毒。(A) rFlu/SIVgag病毒中Flu/SIVgag/2A/NA基因的示意图。rFlu/SIVgag病毒如前所述构建(31). 简单地说,通过使用NheI和HpaI限制性位点,在神经氨酸酶(NA)基因的3′非编码区和口蹄疫病毒的蛋白酶识别序列2A(NFDLLKLAGDVESNPG)之间以负义插入SIV-Gag特异性序列(41)并将相应的基因拯救到感染性流感病毒中。由于2A蛋白酶的自催化活性,表达的Gag-2A-NA多聚蛋白被切割成Gag-2A和NA多肽(44). 然而,值得注意的是,最近的证据支持2A的作用机制,这是由于“核糖体跳跃”,而不是蛋白水解的自我分裂(12). ELISPOT分析中使用的Gag抗原中的肽3和肽4也显示出来。这两种肽先前被发现含有CD8识别的表位+BALB/c小鼠的T细胞(31). (B) 用于救援rNDV/SIVgag的pNDV/B1-SIVgag的示意图。通过将SIV-Gag基因插入位于原始pNDV/B1克隆的P和M基因之间的唯一XbaI克隆位点(核苷酸3163),构建了pNDV/B1-SIVgag结构(30). 插入的基因包含NDV RNA依赖性RNA聚合酶将SIV Gag作为新转录单位表达所需的基因末端、基因间和基因起始序列(5′-TTAGAAAAAATACGTGTAGAA-3′)。此外,在SIV-Gag起始位点上游插入7个核苷酸(5′-CGCACC-3′),以引入一个最优的Kozak序列(24). 编码的NDV基因组的最终长度可被6整除。所示质粒区域不符合比例。

rNDV/SIVgag的建设和增长。

利用从rVac/SIVgag病毒感染细胞中分离的DNA,通过PCR获得全长SIV-Gag cDNA。Gag cDNA被克隆到插入先前描述的rNDV/B1 cDNA的P和M基因之间的新转录单位(30)(图。(图1B)。1B年). NDV聚合酶(5′)的潜在基因工程序列-46塔加AAAAA55-3′)存在于原始Gag cDNA中。通过使用以下寡核苷酸进行定点突变来消除该基因编码信号:SDM(+),5′-33GAAAGCAGATGAA公司C类T型G公司通用航空公司G公司AAAATTAGGCT公司62-3′; SDM(−),5′-62AGCCTAATTTT公司C类总费用C类A类G公司TTCATCTGCTTTC公司33-3′. 引物中沉默的核苷酸变化用斜体表示。通过测序证实了所获得的质粒(pNDV/B1-SIVgag)。重组病毒rNDV/SIVgag随后通过上述方法从pNDV/B1-SIVgag中解救出来(30,38). 使用抗SIVmac p27单克隆抗体55-2F12,通过rNDV/SIVgag病毒感染细胞的间接免疫荧光测定SIV Gag蛋白的表达(17)来自Niels Pedersen,通过艾滋病研究和参考试剂项目、艾滋病项目、国家变态反应和传染病研究所、NIH(浓度为35μg/ml的未稀释杂交瘤培养上清液),然后是异硫氰酸荧光素结合抗鼠免疫球蛋白g(IgG)(1:40稀释;DAKO)。

胚胎卵中rNDV/SIVgag的毒力指数。

为了确定rNDV/SIVgag病毒的毒力指数,测定了受感染胚胎的平均死亡时间(MDT)。连续10倍稀释感染性尿囊液(10−6到10−8)在五个胚胎卵子中的每一个中接种,并记录由于最小致死剂量导致胚胎死亡的平均时间。

rNDV/SIVgag在鸡胚中的生长动力学。

将鸡胚接种野生型rNDV/B1或rNDV/SIVgag病毒,每个鸡蛋接种100个PFU。病毒滴度(50%组织培养感染剂量[TCID50])用先前描述的免疫荧光分析法测定感染后不同时间点尿囊液中的存在(30).

启动和加强免疫。

rFlu/SIVgag 3号或rFlu/SIVgag 4号(31)用rNDV/SIVgag病毒免疫小鼠。在初始免疫和强化免疫中,5×102将rFlu/SIVgag 3号或rFlu/SIVgag 4号PFU滴鼻给小鼠,5×107鼻腔、静脉或腹腔注射rNDV/SIVgag的PFU。第一次免疫后3周给予增强剂。

CD8的制备+淋巴细胞。

在最后一次免疫后第5天或第30天收集免疫BALB/c小鼠呼吸道的脾脏、颈部和纵隔引流淋巴结,并用于分离淋巴细胞群。通过研磨将三只小鼠的脾池分离成单细胞悬浮液。通过在37°C的DMEM中使用胶原酶和dispase(1 mg/ml;Boehringer Mannheim)的混合物,将三只小鼠的混合淋巴结分离成单个细胞,并摇晃1h。CD8(CD8)+这些制剂中的T细胞与大鼠抗鼠CD8a单克隆抗体(5H10-1;Pharmingen,SanDiego,Calif.)孵育。然后用与抗鼠IgG抗体结合的磁性微球对细胞进行阳性筛选(Polyscience,Warrington,Pa.)。

肽。

ELISPOT分析中使用的肽来自艾滋病研究和参考试剂项目(NIH,马里兰州贝塞斯达)。肽3(DINQMLNCVGDHQAA)和肽4(TNILDVKQGPKEPFQ)分别对应于SIV-Gag的185至199和281至295个氨基酸残基。以前发现这些肽含有SIV Gag-特异性CD8识别的CTL表位+BALB/c小鼠的T细胞(31).

ELISPOT检测IFN-γ产生细胞。

根据先前描述的方案进行ELISPOT检测抗原特异性CTL(31,51). 简言之,将96孔硝化纤维板(Millipore Corp.,Bedford,MA)涂有100μl磷酸盐缓冲盐水(PBS),每毫升含有5μg抗小鼠γ-干扰素(IFN-γ)单克隆抗体R4(编号R4-6A2;Pharmingen)。在4°C下孵育过夜后,用含有10%FBS的DMEM-高糖培养基(马里兰州罗克维尔市生命科技公司)对微孔进行八次清洗(犹他州洛根市HyClone),并在37°C下培养1小时以上。CD8的两倍稀释系列+脾或淋巴结细胞,从5×10开始5将每个孔的细胞放入包被孔中,并与10μg肽脉冲的P815细胞共培养。非脉冲P815细胞作为阴性对照。将平板在5%CO中孵育2培养箱培养30 h。随后,用PBS-Tween 20(0.05%)对平板进行广泛清洗,然后向每个孔中添加0.1 ml 2.5 mg生物素化抗小鼠IFN-γ单克隆抗体XMG1.2(XGX1.2;Pharmingen)/ml。在4°C下培养过夜后,在室温下用过氧化物酶标记的链霉亲和素(1:1000;马里兰州盖瑟斯堡Kirkegaard&Perry Laboratories)培养平板1小时。用PBS-Tween 20和PBS清洗微孔,并添加浓度为1 mg/ml且在50 mM Tris-HCl(pH 7.5)中含有0.015%过氧化氢酶(Sigma)的底物(3,3′-二氨基联苯胺四氢氯化物;Sigma,Saint-Louis,Mo.)。借助显微镜对斑点进行计数。

用rVac/SIVgag挑战感染。

最后一次免疫后3、6和9周,用5×10攻击小鼠6鼻内或静脉注射rVac/SIVgag的PFU。控制实验中使用Vac/wt。激发感染五天后,处死小鼠,提取其肺部并用CV-1细胞匀浆以进行病毒滴定。感染后2天,用0.1%结晶紫溶液对CV-1细胞进行染色,以计数痘苗病毒斑块的数量。

结果

rNDV/SIVgag的建造。

SIV-Gag开放阅读框被克隆在前面描述的rNDV/B1 cDNA的P和M基因之间(图。(图1B)1B年) (30,38). rNDV/SIVgag通过上述方法从cDNA中解救出来(30). 通过逆转录-PCR和测序(数据未显示)证实病毒基因组中存在插入的SIV Gag基因。表达Gag的病毒在CEF细胞中的生长与未插入SIV Gag的野生型病毒(rNDV/B1)的生长相当(数据未显示)。用抗SIV p27单克隆抗体的免疫荧光证实了rNDV/SIVgag感染细胞中SIV-Gag的表达(图。(图2)。2). 此外,我们还确定了SIV Gag蛋白是否并入rNDV/SIVgag病毒。用10%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳纯化rNDV/SIVgag和野生型rNDV/B1病毒,并用抗SIV-Gag单克隆抗体进行免疫印迹。我们没有在纯化病毒中检测到Gag,这表明SIV Gag蛋白没有并入NDV病毒中(数据未显示)。然而,我们不能排除SIV Gag被包装成低水平病毒的可能性,在我们的分析中无法检测到。

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SIV-Gag蛋白在感染rNDV/SIVgag病毒的Vero细胞中的表达。感染后第2天固定rNDV/SIVgag病毒感染细胞,并用渗透细胞进行免疫荧光分析。如材料和方法所述,使用抗SIV-Gag单克隆抗体证明SIV-Gag蛋白表达。感染野生型rNDV/B1病毒的Vero细胞作为阴性对照。

rNDV/SIVgag病毒在胚胎蛋中的致死性和复制。

为了确定rNDV/SIVgag病毒的毒力指数,对鸡蛋中的MDT进行了测定。rNDV/SIVgag的MDT为146.8小时。相比之下,rNDV/B1的MDT是113小时(1). 我们的结果表明,rNDV/SIVgag在鸡体内具有透镜原性,并且比亲本疫苗株Hitchner B1更弱。然而,尽管复制稍有延迟,但rNDV/SIVgag病毒的滴度与野生型rNDV/B1病毒相当(约108TCID公司50/ml)(图。(图3).

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rNDV/SIVgag在鸡胚中的生长动力学。用100个rNDV/B1或rNDV/SIVgag病毒PFU接种胚胎卵,并在不同时间点(接种后24、48和72小时)采集尿囊液。这些时间点的病毒滴度被确定为TCID50通过免疫荧光分析。简单地说,含有70%至80%融合Vero细胞的96个平板被连续10倍尿囊液稀释液感染(每次稀释4孔)。将细胞孵育2天,然后用含有0.1%Triton X-100的2.5%甲醛固定。使用抗NDV兔血清和异硫氰酸荧光素结合的抗兔IgG观察病毒蛋白。

在用rNDV/SIVgag免疫的小鼠中,对rVac/SIVgag-激发感染的保护。

为了评估rNDV/SIVgag是否诱导SIV-Gag特异性抗病毒细胞免疫反应,我们用该重组病毒免疫BALB/c小鼠。由于SIV不会在小鼠体内复制,我们使用表达SIV-Gag的痘苗病毒作为替代挑战病毒。在这些试验中,先前已经表明,表达外来抗原的痘苗病毒的复制抑制是由CTL介导的(7). 用5×10免疫三组小鼠7鼻内、腹膜内或静脉注射rNDV/SIVgag的PFU。免疫接种一次或两次。与rNDV/B1病例一样,免疫小鼠没有显示体重减轻或任何其他疾病迹象,表明Gag基因的插入并没有增加NDV在小鼠中的致病性(数据未显示)。在单次或双次免疫三周后,用rVac/SIVgag或Vac/wt病毒进行挑战性感染。在一项初步试验中,幼鼠通过鼻内或静脉感染痘苗病毒,5天后在肺部、心脏、肝脏、脾脏、肾脏、胰腺和卵巢中测定痘苗病毒滴度。痘苗病毒生长到滴度高于104肺、卵巢和脾脏中的PFU。特别是,病毒通过两种给药途径在肺部复制到高滴度(数据未显示)。然后,我们在攻击后5天测定了rNDV/SIV gag-免疫小鼠肺部的痘苗病毒滴度(图。(图44).

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用rNDV/SIVgag病毒免疫小鼠的挑战实验。rNDV/SIVgag病毒(5×107PFU)接种一次(一次)或两次(两次)给三组小鼠,每组三只,分别经鼻内、腹腔内或静脉注射。对照组小鼠接种PBS。最后一次接种三周后,小鼠经鼻或静脉感染5×106Vac/wt或rVac/SIVgag病毒的PFU。接种痘苗病毒五天后,处死小鼠,测定肺部痘苗病毒滴度。用1 ml PBS中的均质肺测定CV-1细胞中的痘苗病毒滴度。

通过鼻腔注射rNDV/SIVgag而不是通过静脉注射或腹腔注射单独免疫小鼠,显示出对rVac/SIVgap的抗病毒反应(图。(图4A),4A级)经鼻(粘膜)和静脉(全身)激发后第5天,肺部rVac/SIVgag病毒滴度降低约1 log即可证明。用rNDV/SIVgag进行第二次鼻内免疫增加了Gag特异性抗病毒免疫水平,导致rVac/SIVgap病毒滴度减少约3 log(图。(图4B)。4B类). rNDV/SIVgag腹膜内免疫在调节痘苗病毒滴度降低方面效率较低,尤其是在粘膜激发后。最后,静脉免疫只导致双重免疫小鼠全身激发后rVac/SIVgag病毒滴度降低1 log。rVac/SIVgag复制的抑制依赖于Gag的表达,因为当动物受到Vac/wt攻击时,未观察到病毒滴度降低。此外,野生型rNDV/B1病毒对rVac/SIVgag攻击或Vac/wt攻击均未诱导任何保护,如表所示表11.

表1。

用rNDV/SIVgag、野生型rNDV/B1或PBS两次鼻内免疫小鼠的疫苗病毒滴度

免疫接种挑战b条痘苗病毒滴度(log 10 PFU/ml)c(c)
鼠标1鼠标2鼠标3平均标准偏差
rNDV/SIV间隙真空/重量8.28.68.78.50.264575
rNDV/SIV间隙rVac/SIVGag公司5.45.856.15.780.360555
rNDV/B1型真空/重量8.88.358.68.580.225462
rNDV/B1型rVac/SIVGag公司8.78.578.958.740.193132
PBS公司真空/重量8.38.58.88.530.251661
PBS公司rVac/SIV间隙8.28.68.558.450.217945
接种5×10病毒的小鼠7第0周和第3周鼻内病毒PFU。
b条在第6周用5×10的剂量对小鼠进行鼻内激发6Vac/wt或rVac/SIVgag病毒的PFU。
c(c)接种痘苗病毒五天后,处死小鼠,测定肺部痘苗病毒滴度。显示了三只小鼠的结果。

因此,我们得出结论,在本研究中使用的所有免疫方案中,rNDV/SIVgag鼻内双重免疫在诱导抗病毒Gag特异性免疫反应方面最为有效,该免疫反应可在小鼠粘膜或全身挑战后抑制rVac/SIVgap病毒的复制。值得注意的是,当在免疫远端部位(例如卵巢)静脉注射疫苗后测量痘苗病毒滴度时,用rNDV/SIVgag进行鼻内双重免疫也会导致rVac/SIVgap病毒滴度的特定降低(约1 log)(数据未显示)。这些结果表明,鼻内rNDV/SIVgag诱导Gag特异性T细胞反应,阻止病毒在肺部和远处器官复制,尽管效率较低。

与rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag 3号联合免疫可增强小鼠的保护性Gag特异性抗病毒反应。

以前有报道称,rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒在小鼠中诱导了强烈的细胞抗Gag免疫反应,并且这种免疫反应通过表达相同抗原的异源病毒rVac/SIVgac的增强剂进一步增强(31). 因此,我们现在确定当两种异源载体用于联合免疫时,rFlu/SIVgag是否能够增强rNDV/SIVgag诱导的免疫反应。为此,使用rNDV/SIVgag或rFlu/SIVgag(3号或4号)病毒对小鼠进行鼻内免疫。启动三周后,用相应的异源病毒增强免疫小鼠。然后在增强后3周用rVac/SIVgag或Vac/wt病毒攻击小鼠。免疫小鼠显示rVac/SIVgag减少,但肺中Vac/wt病毒复制没有减少(图。(图5)。5). 有趣的是,用rNDV/SIVgag启动并用rFlu/SIVgag 3号增强的小鼠与接受同源启动并增强免疫的小鼠相比,甚至与接受反向免疫的小鼠(即用rFlu/SIVgag3号免疫)相比,对rVac/SIVgac生长的抑制最强,然后接种rNDV/SIVgag。因此,先用rNDV/SIVgag启动免疫,然后用rFlu/SIVgag 3号病毒加强免疫,结果约为106-与PBS对照小鼠相比,激发后第5天rVac/SIVgag滴度降低了两倍(肺部平均滴度为102.6与10相比8.6PFU/ml)(图。(图5)。5). 相比之下,rFlu/SIVgag 3号启动后,rNDV/SIVgag增加,rVac/SIVgac增长减少了约100倍(平均滴度为107.1PFU/ml)(图。(图5)。5). 当rFlu/SIVgag 4号作为增强剂用于rNDV/SIVgag阳性小鼠时,也获得了类似的结果,尽管其保护水平低于rFlu/SIVgag 3号免疫小鼠(平均滴度为104.7PFU/ml)。rFlu/SIVgag病毒之间的效力差异可能代表在相应的Gag序列中存在或不存在最佳CTL表位。如图所示。图4,4rNDV/SIVgag双重免疫可使rVac/SIVgap复制减少1000倍以上(平均滴度为105.3PFU/ml),而rFlu/SIVgag双重免疫只会略微降低rVac/SIVgag的生长(图。(图5)。5). 这些结果表明,在所测试的主要疫苗接种方案中,先用rNDV/SIVgag启动,然后用rFlu/SIVgag 3号增强,是最有效的疫苗组合,导致高水平诱导针对rVac/SIVgap挑战的保护性抗病毒免疫。rFlu/SIVgag的增效作用取决于Gag抗原的表达,因为野生型流感病毒免疫小鼠后,rVac/SIVgag滴度没有非特异性降低(31).

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用rNDV/SIVgag病毒和/或rFlu/SIVgag病毒免疫小鼠的挑战性实验。rNDV/SIVgag病毒(5×107PFU),每个rFlu/SIVgag病毒(5×102PFU),或rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒(5×10)的混合物2PFU)经鼻给药给三组小鼠。对照小鼠接种PBS。接种三周后,用rNDV/SIVgag病毒(5×107PFU),每个rFlu/SIVgag病毒(5×102PFU)或rFlu/SIVgag病毒的混合物(5×102PFU)。免疫后3周,小鼠经鼻感染5×106Vac/wt或rVac/SIVgag病毒的PFU。接种痘苗病毒五天后,处死小鼠,测定肺部痘苗病毒滴度。

用rNDV/SIVgag免疫后诱导对SIV Gag的细胞免疫反应。

为了量化用rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag病毒免疫的小鼠对SIV-Gag诱导的细胞免疫反应,我们进行了ELISPOT分析。在增强后第5天和第30天获取脾脏、颈部和纵隔淋巴结,以及Gag特异性CD8的数量+对每个组织中产生IFN-γ的细胞进行计数,以分析全身和局部细胞免疫。颈部和纵隔淋巴结属于粘膜相关淋巴组织,可排出呼吸道粘膜组织中的CTL(33). CD8(CD8)+SIV Gag肽特异性IFN-γ产生细胞(31)在免疫小鼠的脾脏和淋巴结中均检测到,表明rNDV/SIVgag和/或rFlu/SIVgag免疫诱导了针对Gag蛋白的全身和局部细胞免疫反应(图。(图6)。6). 通过rNDV/SIVgag启动和rFlu/SIVgag增强进行的免疫诱导的IFN-γ产生细胞数量高于疫苗接种的相反顺序(图。(图6)。6). 这些结果与在rNDV/SIVgag阳性和rFlu/SIVgag阳性小鼠中观察到的rVac/SIVgap复制抑制增加相关(图。(图5)。5). 尽管Gag-specific CD8的数量有所减少+从增强后第5天到第30天,仍能检测到大量产生IFN-γ的细胞,这表明rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag诱导的系统和局部细胞免疫反应至少维持了1个月。

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SIV Gag肽特异性IFN-γ产生CD8的定量+接受初始和增强免疫的小鼠中的T细胞。每组3只小鼠经鼻接种rFlu/SIVgag 3号(5×10)2PFU),rFlu/SIVgag编号4(5×102PFU)和rNDV/SIVgag(5×107PFU)。在增强后5天或30天采集脾细胞(A)和来自颈部和纵隔淋巴结(B)的淋巴细胞(B)。CD8(CD8)+在ELISPOT分析中,选择T细胞并与特定Gag肽脉冲P815细胞孵育。Gag肽3和4用于刺激CD8+分别来自rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒免疫动物的T细胞。作为对照,CD8+使用来自接种PBS小鼠脾脏和淋巴结的细胞。代表了每百万个细胞中IFN-γ分泌细胞相对于Gag肽的数量。

用rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag病毒免疫的小鼠的长期抗病毒免疫。

接下来,我们评估了rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag病毒诱导的免疫应答是否能够在接种后的1个多月内减少替代rVac/SIVgap挑战病毒的复制。根据为早期实验制定的方案,用rNDV/SIVgag免疫三组小鼠,然后用rFlu/SIVgag免疫。在增强后3、6和9周,用rVac/SIVgag或Vac/wt攻击免疫小鼠,并在攻击后第5天测定肺部的痘苗病毒滴度。与图所示结果一致。图5,5,免疫小鼠在免疫后3周受到攻击时显示出对rVac/SIVgag复制的显著抑制。尽管抑制rVac/SIVgag复制的能力随着免疫后时间的延长而降低,但在免疫后6周和9周,免疫小鼠仍能检测到Gag特异性抗病毒反应(图。(图7)。7). 这些结果表明,接种rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag诱导的SIV-Gag细胞免疫在小鼠中长期存在。

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用rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag病毒免疫小鼠,维持对SIV-Gag的抗病毒细胞免疫。每组3只小鼠经鼻接种rNDV/SIVgag(5×10)7PFU),然后用rFlu/SIVgag(5×10)增压2PFU),如图所示。接种rFlu/SIVgag病毒后3周(第1组)、6周(第2组)和9周(第3组),免疫小鼠用5×106Vac/wt或rVac/SIVgag病毒的PFU。第4组包括未免疫的对照动物。在痘苗病毒攻击后5天处死小鼠,并测定肺部痘苗病毒滴度。

讨论

以前有报道称,rNDV/B1-HA在小鼠中诱导了HA特异性体液免疫反应,支持在哺乳动物中使用rNDV作为疫苗载体的可能性(30). 在本研究中,我们表明rNDV/SIVgag在小鼠中诱导Gag特异性细胞免疫反应。据我们所知,这是第一份显示NDV载体在哺乳动物中诱导细胞免疫反应的报告。我们还报道,用rNDV/SIVgag鼻内免疫的小鼠表现出rVac/SIVgag在肺中生长的显著减弱,并且这种作用与Gag特异性细胞免疫反应的诱导有关。最后,我们证明当rFlu/SIVgag用作增强免疫原时,rNDV/SIVgag诱导的保护性抗病毒免疫反应增强。

与腹腔或静脉免疫相比,rNDV/SIVgag小鼠鼻腔免疫诱导了更强的rVac/SIVgap抗病毒反应(图。(图4)。4). 在rNDV/B1-HA病例中,通过静脉注射该载体可诱导对流感病毒攻击的保护性体液免疫反应(30). 然而,表达的HA蛋白被有效地并入rNDV病毒,而Gag抗原则并非如此(数据未显示)。这些结果可能表明,当需要从头表达蛋白来诱导细胞免疫反应时,鼻腔注射rNDV载体可能比全身(静脉)给药更有效。然而,我们不能排除流感病毒HA和SIV Gag之间免疫原性的差异是相应rNDV载体不同最佳免疫途径的原因。

由于抗HIV的特异性CTL活性与感染者的疾病临床分期相关,如随着疾病进展CTL活性的丧失所证明的(18),HIV疫苗诱导有效的细胞免疫反应可能很重要。以前,我们已经证明,当使用rFlu/SIVgag和rVac/SIVgag病毒的联合预免疫方案时,细胞对SIV-Gag的免疫应答增强(31). 当来自HIV或疟疾寄生虫的不同CTL表位在基于流感和痘苗病毒的重组载体中表达时,也获得了类似的结果(13,25,27). 我们现在表明,与仅使用同源载体时相比,rNDV/SIVgag和表达SIV-Gag的第二个异源RNA病毒载体(即rFlu/SIVgag no.3)的联合免疫在小鼠中诱导对SIV Gag更强的免疫反应。目前尚不清楚为什么启动和增强的顺序(首先是rNDV/SIVgag,然后是rFlu/SIVgag)对于在该系统中诱导有效的Gag特异性免疫反应至关重要。一种可能性是rFlu/SIVgag病毒诱导更受限制的CTL反应,因为其中一种病毒仅具有Gag蛋白的一部分(约100个残基)。然而,当同时注射rFlu/SIVgag 3号和rFlu/SIVgag 4号病毒时,我们没有发现免疫反应有任何显著增强(图。(图5)。5). 当五种不同的rFlu/SIVgag病毒(rFlu/SIVgag 1号到rFlu/SIVgag 5号)几乎包含SIV-Gag的完整氨基酸序列时,也获得了相同的结果(31)一起使用(数据未显示)。另一种可能性是,rFlu/SIVgag免疫可能会显著降低小鼠中rNDV/SIVgag的病毒基因表达,从而阻止该病毒产生强大的增强反应。然而,目前我们不能排除这样一种可能性,即观察到的免疫顺序的影响是由于这两种病毒未经特征化的固有免疫原性影响其启动和增强能力。有趣的是,以前有报道称,通过与重组流感和痘苗病毒载体联合免疫,启动和增强免疫的顺序对于诱导有效的细胞免疫反应至关重要(27).

与rFlu/SIVgag相比,rNDV/SIVgag的同源初始免疫和增强免疫更有效(图。(图44和5)。5). 这可能是因为与流感病毒(一种具有复制能力的病毒)相比,单一注射NDV(哺乳动物宿主中的一种复制受损病毒)诱导的对免疫载体的中和反应较低。如果是这样,第二次注射NDV时,NDV仍能感染宿主细胞,导致T细胞反应增强。

疫苗接种方案中需要考虑的一个重要方面是疫苗是否能够诱导长期免疫反应(9). 在这项研究中,我们发现在免疫后3周,用rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag病毒免疫的小鼠中,当受到攻击时,rVac/SIVgac复制显著减少(在104-和106-挑战后第5天减少折叠)(图。(图55和7)。7). 我们还发现,rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag联合免疫诱导的rVac/SIVgap抗病毒免疫在增强后9周可检测到,尽管程度较低。这些结果表明,与NDV和流感病毒载体联合免疫诱导的免疫在哺乳动物中可以持续很长时间。

大量疫苗策略已在SIV或猴-人类免疫缺陷病毒(SHIV)猕猴艾滋病模型中进行了测试。值得注意的是,一些方法已经显示出对激发后疾病发作的保护作用(19). 到目前为止,保护恒河猴免受SIV感染的唯一有效疫苗是使用减毒活SIV(21). 然而,这种活疫苗方法有诱发疾病的风险(,53). 在最近的研究中,用编码SIV病毒蛋白的DNA表达质粒接种,结合细胞因子给药或随后用重组病毒载体接种,已证明可以控制短尾猴模型系统中SHIV的复制(2,4,5). 然而,在DNA疫苗接种的情况下,需要多次给药诱导免疫。Shiver等人通过使用DNA分子、修饰的痘苗病毒和表达SIV-Gag的腺病毒(复制不全)系统地比较了疫苗接种策略,并证明最有效的免疫反应是由腺病毒疫苗引发的(49). 一种基于表达Env和Gag基因的减毒水疱性口炎病毒载体的艾滋病疫苗在恒河猴身上得到了令人信服的证明(43). 基于脊髓灰质炎病毒的SIV疫苗保护食蟹猴免受SIV攻击(10). 最近,使用一种表达SIV抗原的复制腺病毒载体,然后使用亚单位蛋白疫苗增强,从而保护恒河猴免受粘膜SIV攻击(39). 尽管取得了这些令人鼓舞的结果,但仍需要进一步研究,以改进这些艾滋病疫苗方法,并开发可用于联合免疫战略的新型载体。

其中一种方法可能基于NDV和流感病毒载体。据报道,在NDV的病例中,这种病毒可以感染人类而不会产生严重的不良影响(11,32,46). 将NDV用作抗肿瘤药物的临床试验表明,在多种癌症患者中取得了令人鼓舞的初步结果,欧洲正在开始进行III期试验(32,40). 这些结果支持重组新冠病毒作为一种安全有效的病毒载体在人类中的使用。就流感病毒而言,冷适应的减毒流感病毒已被开发成针对人类流感的活的、稳定的和非致病性疫苗(6,20,26). 有趣的是,冷适应流感病毒载体也能诱导对其表达抗原的强烈细胞免疫反应(14). 此外,通过反向遗传学技术开发出了几种流感病毒的弱毒株(36). 因此,有可能使用减毒流感病毒载体在人类中开发疫苗。除了可在人体中获得减毒毒株外,NDV以及基于流感病毒的疫苗载体的其他潜在优势如下。(i) 免疫可以在鼻内进行,这导致粘膜免疫的诱导(28). 粘膜免疫可能是抵御病原体感染的第一道防线,如艾滋病毒,这些病原体可以通过粘膜表面进入宿主。(ii)NDV和流感病毒载体很容易在胚胎卵中扩增。(iii)由于负链RNA病毒不经历DNA阶段,这些病毒无法通过将其遗传信息整合到宿主细胞基因组中来转化细胞。(iv)人类对NDV没有预先存在的免疫力,而人类对流感病毒的免疫力可以通过使用特定毒株的病毒糖蛋白基因来规避。虽然我们的研究表明rNDV/SIVgag和rFlu/SIVgag能够在小鼠体内诱导有效的Gag特异性抗病毒反应,但需要在猴子身上进行未来的研究,以证明rNDV/SIVgap和rFlu/SIVgag病毒免疫是否能诱导有效的免疫反应,从而预防SIV和/或SHIV病毒诱导的艾滋病。因此,我们的结果鼓励进一步研究开发重组NDV和流感病毒载体作为潜在的艾滋病疫苗。

致谢

我们非常感谢Therion Biologicals的Gómez-Yafal,感谢他慷慨提供Vac/wt和rVAC/SIVgag。我们还感谢Richard Cadagan和Neva Morales提供了出色的技术援助。SIV Gag抗体和肽是通过NIH艾滋病研究和参考试剂项目,NIAID,NIH艾滋病司获得的。

这项工作得到了NIH对A.G.-S.和P.P.的部分资助。Y.N.得到了上原纪念生物医学研究基金会(Uehara Memorial Bio-Medical Research Foundation)的资助。

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文章来自病毒学杂志由以下人员提供美国微生物学会(ASM)