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起源。作者手稿;2017年3月1日PMC提供。
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2016年2月29日在线发布。 数字对象标识:10.1002/dvg.22927
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NIHMSID公司:尼姆斯759765
PMID:26865080

ptf1a型斑马鱼肠道神经系统发育中的:GFP

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摘要

肠神经系统是外周神经系统的最大分支,由迷走神经嵴细胞衍生而来,迷走神经脊细胞侵入并填充整个肠道,形成不同的神经元亚型。在这里,我们在斑马鱼幼虫的肠道神经系统中鉴定了一个新的神经元群体,该群体表达转基因标记ptf1a型:中肠内的GFP。遗传谱系分析显示肠道ptf1a型:GFP+细胞来源于神经嵴ptf1a型:GFP+神经元表达神经递质5HT,表明它们具有5-羟色胺能。这个转基因系,Tg(ptf1a型:GFP),为肠神经系统内的神经元亚群提供了一种新的神经元标记物,并强调了Ptf1a可能作为肠神经元发育的重要转录因子的可能性。

关键词:5-羟色胺能神经元,ptf1a,肠神经系统,斑马鱼

引言

肠神经系统(ENS)由沿肠壁分布的肌间神经丛和粘膜下神经丛内相互连接的神经节组成(Bornstein等人,1984年). ENS调节胃肠运动,作为外周神经系统的最大部分,常被称为“第二大脑”(Furness,2006年). ENS主要来源于“迷走神经”嵴,该嵴起源于耳后区的背神经管(LeDouarin和Teillet,1973年;Anderson等人,2006年). 迷走神经嵴细胞离开神经管,向腹侧前肠移动。进入前肠后,它们改变方向,开始向尾部迁移,最终填充整个肠道,这一迁移过程耗时数天,是所有胚胎细胞迁移中最长的。一旦到达最终目的地,肠神经嵴(ENC)就会沿肠道全长分化为各种各样的肠神经元和神经胶质细胞(Furness,2006年;Sasselli等人,2012年). 由于神经嵴发育不当会导致先天性巨结肠症(结肠无神经节细胞增生症)等发育缺陷(Bergeron等人,2012),因此人们对了解肠神经嵴的迁移、规范和分化非常感兴趣。

尽管最近的研究已经确定了ENS内终末分化肠神经元亚型的各种神经递质标记物(Uyttebroek等人,2010年; rev.英寸Sasselli等人,2012年)然而,对于介导向特定神经元谱系的终末分化的转录因子知之甚少。尽管如此,一些实验已经阐明了这个问题。例如Ascl1公司是一种基本的helix-loop-helix(bHLH)转录因子,导致ENS中所有5-羟色胺能神经元的完全丢失,表明其在肠神经元亚型分化中的需要(Blaugrund等人,1996年). 类似地,bHLH转录因子失活手牌2在神经嵴细胞中导致神经节模式的破坏和VIP的选择性丢失+神经元,表明其在小鼠肠道肽能肠神经元分化中的重要性(Hendershot等人,2007年). 然而,对负责肠神经元亚型鉴定和末端分化的转录因子编码的理解仍然有限。因此,鉴定发育中ENS中表达的新因子将突出可能参与这些过程的候选基因。

胰腺特异性转录因子1a,ptf1a型在发育中的斑马鱼胰腺中表达(Lin等人,2004年;Zecchin等人,2004年),视网膜(Jusuf和Harris,2009年)和小脑(Kani等人,2010年)在胚胎发育期间。Ptf1a在斑马鱼腹侧胰腺规格和外分泌胰腺发育中起着关键作用(Lin等人,2004年;Zecchin等人,2004年;Dong等人,2008年)以及在视网膜抑制性神经元亚型分化过程中的功能(Dullin等人,2007年;Fujitani等人,2006年),小脑(Hoshino等人,2005年). 鉴于Ptf1a在神经系统内各种神经元类型的亚型规范中的重要作用,我们试图检测它是否也存在于发育中的ENS中(ptf1a型:GFP)表明ptf1a型在斑马鱼幼虫发育中的ENS中的神经元亚群中表达。因此,这些数据将Ptf1a确定为发育中ENS的新神经元标记物。

结果

转基因品系Tg(ptf1a:GFP)在斑马鱼幼体发育阶段标记了ENS神经元的一个子集

转基因品系Tg(ptf1a型:GFP)之前已经证明可以标记表达体内ptf1a(Godinho等人,2007年;Jusuf和Harris,2009年;Kani等人,2010年). 检查表达ptf1a型存在于发展中的ENS中,ptf1a型:GFP+对受精后3至6天(即发育中的斑马鱼ENS的末端分化开始的时间)的幼虫进行了检测。整体共聚焦显微镜显示ptf1a型:GFP+细胞最初出现在中肠的4dpf处(图1A),并保持为5 dpf和6 dpf(图1B、C),有一些ptf1a型:GFP+6 dpf时在肠球(前肠)中也可见细胞(图1F). 平均13分ptf1a型:GFP+4dpf中肠细胞,4dpf 19细胞,6dpf 21细胞(图1D). GFP公司+胚胎的其他区域也有细胞,如胰腺(图1F). 为了检测内源性ptf1a型在发展中的ENS中,我们完成了全部就地杂交。与转基因系中观察到的细胞分布一致,该分析揭示了ptf1a型发育中的大脑、胰腺和中肠中的转录物,而不是后肠中的,6 dpf(图1G、H).

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转基因品系Tg(ptf1a型:GFP)标记幼体ENS内的神经元子集

(A–A〃)4 dpf、(B–B〃)5 dpf和(C–C〃)6 dpf条件下的最大投影共焦叠加描绘ptf1a型:GFP+和胡+中肠内的细胞(虚线),比例尺:70微米,用于A–C。(D) 显示总数量的条形图ptf1a型:GFP+肠道中的细胞从4dpf到6dpf,误差条代表s.e.m.,n=6。(E) 沿z轴的最大强度共焦投影显示ptf1a型:GFP+/胡+细胞以6 dpf(比例尺:100微米)的同心模式沿肠管共同定位。(F) 6 dpf的侧视图ptf1a型:GFP+幼鱼。(G,H)整体安装后的腹侧视图就地杂交ptf1a型揭示了这一点ptf1a型定位于6只dpf幼虫的大脑、胰腺和中肠。(一) 显示胡总百分比的条形图+神经元ptf1a型:GFP+在中肠中,5dpf和6dpf的误差条代表s.e.m.,n=6。内球-肠球。

评估ptf1a型:GFP+肠道中观察到的细胞是神经元,我们对GFP和泛神经标记物Hu或乙酰化微管蛋白进行了双重全量免疫化学。在4dpf时,共聚焦图像显示ptf1a型:GFP+与Hu共同定位的细胞(图1A′,A〃)或乙酰化微管蛋白,如静态共焦图像和3D渲染电影中所示(图2A′,A〃;支持信息电影1). 然而,在5和6 dpf时,大多数ptf1a型:GFP+与Hu共同定位的细胞(图1B′,B〃-C′,C〃;辅助信息电影2)和乙酰化微管蛋白(图2B′,B〃-C′,C〃)揭示了他们的神经元身份。在6 dpf时,沿z轴的共焦叠加投影分析表明ptf1a型:GFP+细胞沿肠管外层呈同心模式分布,与Hu共同定位(图1E). 这些数据表明ptf1a型:绿色荧光粉+细胞在4dpf时最终分化为神经元之前存在于肠道内,在5dpf和6dpf时,其在分化神经元中的表达保持不变。在5 dpf时,量化显示平均28%的Hu+神经元ptf1a型:GFP+在中肠,而在6 dpf时,36%是ptf1a型:GFP+(图1I),证明了这一点ptf1a型并非在所有肠神经元中表达,而是在神经元的子集中表达。

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ptf1a型:GFP+细胞与神经元标志物乙酰化微管蛋白共同定位于肠道

(A–A〃)4 dpf、(B–B〃)5 dpf和(C–C〃)6 dpf条件下的最大投影共焦叠加描绘ptf1a型:GFP+和乙酰化微管蛋白+中肠内的细胞(虚线),比例尺:70微米。

以前的研究表明,大约30%的中肠神经元含有5dpf的神经递质5-羟色胺(5HT)(Uyttebroek等人,2010年). 为了确定ptf1a型:GFP+中肠神经元也为5HT+,我们对ptf1a型:具有抗GFP和5HT抗体的GFP幼虫。在5 dpf时,平均97%ptf1a型:GFP+细胞为5HT+(图3A-A〃),表明ptf1a型:GFP+神经元群主要是幼虫中肠内的5-羟色胺能神经元。

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ptf1a型:GFP细胞主要是来源于神经嵴的5-羟色胺能肠神经元

中肠最大投影共焦叠加(A–A〃)表明ptf1a型:GFP+细胞和神经递质5HT在6dpf时共存。(B–B〃)活的三重转基因仔鱼图像,ptf1a型:GFP-4725sox10:Cre;elf1a型:loxp-GFP-loxp-dsRedpA,显示ptf1a型:GFP+细胞来源于神经嵴。比例尺:70微米。

ptf1a:ENS发育中的GFP+细胞来源于神经嵴

ptf1a型在发育中的胰腺中表达,在调节胰腺形成中起关键作用(Lin等人,2004年). 另一方面,在大脑和视网膜中,它在不同的神经元亚型中表达(Dullin等人,2007年;Kani等人,2010年)分别在神经发生和视网膜发生过程中。迄今为止,ptf1a型这种表达在神经嵴衍生结构中尚未描述。为了确定ptf1a型:绿色荧光粉+肠道中观察到的神经元是神经嵴衍生的,我们将Tg(ptf1a型:GFP)用Tg捕鱼(-4725sox10:Cre;elf1a型:loxp-GFP-loxp-dsRedpA)系,通过普遍表达dsRed荧光蛋白永久标记神经嵴细胞及其所有衍生物(罗德里格斯等人,2012年),允许进行谱系分析体内在5 dpf的活胚胎中,100%ptf1a型:绿色荧光粉+肠道中的细胞也呈dsRed阳性,表明它们确实来自神经嵴细胞(图3B–B〃).

讨论

在这项研究中,我们报告了一种新的ptf1a型:GFP+位于斑马鱼幼虫发育中的ENS中肠内的神经元,其中大多数具有5-羟色胺能。这是第一份描述ptf1a型在任何生物体中的ENS表达。此行可以用作体内分化和终末分化神经元的标志物,从而成为ENS发育研究的有用工具。

在斑马鱼ENS分化过程中,肠道祖细胞沿着肠道管向尾部迁移,在肠道间质内,以3 dpf的速度完全填充肠道。随后,这些肠道前体细胞进行广泛增殖,以便在成年斑马鱼肠道内以适当的比例和精确的位置生成数千个肠道神经元(Uyttebroek等人,2010年). 我们没有发现ptf1a型:GFP+4dpf之前的细胞表明,它在最初的神经嵴侵入肠道后被激活,提示在肠神经母细胞增殖和/或终末分化过程中可能稍后发挥作用。为了支持这个想法,我们发现ptf1a型:GFP+肠道中的细胞与神经元标记物Hu和乙酰化微管蛋白共定位,以及与神经递质5-羟色胺(5HT)共定位。斑马鱼ENS发育过程中,5 dpf时,5-羟色胺能神经元约占幼虫肠道总神经元的25-30%(Uyttebroek等人,2010年). 在成年鱼中,这些比例在近端肠道和中肠中保持不变,而在后肠中,这一比例急剧下降到总神经元的约10%(Uyttebroek等人,2010年). 有趣的是,在发育中的非洲爪蟾视网膜中,Ptf1a调节内核层神经元亚型的平衡,特别是控制视网膜发生过程中产生的GABA能中间神经元的数量(Dullin等人,2007年). 异位表达ptf1a型足以增加5HT的数量+神经元,而Ptf1a的缺失减少了5HT的数量+视网膜内的神经元(Dullin等人,2007年)这表明Ptf1a在血清素能神经元亚型的分配或分化中具有重要作用。结合这些先前的研究,我们发现ptf1a型:GFP+/5HT(高温)+肠道中的细胞表明,Ptf1a可能发挥类似的作用。未来的研究旨在进一步研究Ptf1a在肠道神经元亚型发育中的作用,以及其在ENS中的功能调节,这将为外周神经系统中神经发生的机制提供新的见解。

材料和方法

斑马鱼维护和鱼线

斑马鱼(丹尼尔·雷里奥)在13小时光照/11小时黑暗循环中保持在28.5°C。按照加州理工学院IACUC的规定对动物进行治疗。Tg公司(ptf1a型:GFP)线路(Godinho等人,2007年)和/或Tg(-4725sox10:Cre;elf1a型:loxp-GFP-loxp-dsRedpA)线(罗德里格斯等人,2012年)用于所有实验。

就地杂交

如前所述进行杂交(乌里韦和格罗斯,2010年),在蛋白酶K消化之前添加20分钟1A型胶原酶(Sigma C9891)消化(1 mg/mL),以促进探针的穿透。要生成ptf1a型探针,使用以下引物对pCS2-ptf1a中含有T7聚合酶位点的模板进行PCR扩增(Zhang等人,2012年),正向5′CGACGATGACTTTACGGACC 3′,反向5′TAATACGACTCACTATAG公司GTTCCTCGGTGGCAATGATG 3′,T7站点下划线。用T7聚合酶产生反义探针。

整体免疫化学

将4 dpf、5 dpf和6 dpf的幼鱼在4°C的4%PFA中固定过夜,在1X PBS中漂洗三次,在−20°C的100%甲醇中培养1小时,然后在室温下逐步复水到1X PBS。然后将幼虫在−20°C的100%丙酮中孵育11分钟,在1X PBS中冲洗三次,然后在室温下在10μg/mL蛋白酶K中消化45分钟(4 dpf)、55分钟(5 dpf)或65分钟(6 dpf)。然后将幼虫在1X PBS中漂洗三次,在室温下在4%PFA中固定10分钟,在1X PBS中漂洗三次,然后在补充有1%DMSO(PBTD)的1X PBS-吐温-20中稀释的5%驴血清块中孵育3小时。然后将胚胎在兔抗GFP 1:500(Life Technologies,A-11122)、羊抗GFP 1:1500(Abcam,ab6673)、小鼠抗HuC/D(Hu)1:200(Invitrogen)、鼠抗乙酰化微管蛋白1:1000(Sigma,T6793)或兔抗5HT 1:1000(Immunostar)中孵育4°C过夜。然后将胚胎从1X PBS-吐温-20中的一级抗体中洗掉,然后在室温下将其在1:700的二级抗体Invitrogen Alexa Fluor Donkey anti-Rabbit 488、anti-Rabit 647、anti-Goat 488或Donkey anti-Mouse 594中孵育3小时。胚胎在1X PBST中冲洗,并在蔡司710双光子共焦显微镜(加州理工学院贝克曼成像中心)上在75%甘油/1X PBS中成像。

实时成像

两种Tg均阳性的胚胎(ptf1a型:GFP)和Tg(-4725sox10:Cre;elf1a型:lox-p-GFP-lox-p-dsRedpA)在成像室中横向安装在溶解于补充有1X PTU和Tricaine麻醉剂的鱼水中的1%低熔点琼脂糖中。使用蔡司LSM 710显微镜上的20倍物镜采集20–80微米Z堆叠。Z堆栈是使用Imaris Image Analysis软件编译和导出的。

补充材料

Supp视频S2

单击此处查看。(130万,移动)

Supp视频S1

单击此处查看。(554K,移动)

致谢

我们感谢Ryan Anderson(印第安纳大学医学院)分享Tg(ptf1a型:GFP)线路和Robert Kelsh(巴斯大学)共用Tg(-4725sox10:Cre;elf1a型:loxp-GFP-loxp-dsRedpA)线路。我们感谢Crystal Rogers和Stephen Green的有益讨论,感谢Yuk Fai Leung(普渡大学)的pCS2-ptf1a构建,感谢Martha Henderson和David Mayorga的鱼类护理。研究得到了NIH DE024157向M.E.B.、NIH F32 HD080343向R.A.U.和Burroughs Wellcome基金向R.A.U颁发的博士后充实计划奖的支持。

缩写

欧洲标准局肠神经系统
ENC公司肠神经嵴

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