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公共科学图书馆计算生物学。2016年2月;12(2):e1004412。
2016年2月11日在线发布。 数字对象标识:10.1371/日记.pcbi.1004412
预防性维修识别码:项目经理4750943
PMID:26866479

从时空图像数据推断非小细胞肺癌细胞多细胞球体生长控制机制

海伦·伯恩,编辑器

关联数据

补充资料
数据可用性声明

摘要

我们为非小细胞肺癌(NSCLC)细胞系SK-MES-1细胞的多细胞肿瘤球体(MCTS)建立了基于单细胞的定量数学模型,在各种营养条件下生长:我们利用有关细胞增殖、细胞外基质(ECM)、细胞分布和细胞死亡的生长动力学和空间标记模式的数据,对抗用该模型进行的模拟。我们从一个简单的模型开始,捕捉部分实验观测结果。然后,我们通过在模型的每个开发阶段进行敏感性分析,表明其复杂性需要逐步增加,以考虑到进一步的实验增长条件。因此,我们最终得出了一个模型,该模型在很大程度上模拟了多种条件下的MCTS增长。有趣的是,最终模型是一个能够同时解释所有数据的最小模型,它包含的机制数量足以解释数据,而忽略了任何机制,因此不允许在生理参数范围内的所有数据和模型之间进行拟合。然而,与早期模型相比,它相当复杂,即它包括生物学文献中讨论的广泛机制。在这个模型中,缺氧细胞从需氧菌转化为厌氧菌糖酵解并产生乳酸。乳酸浓度过高或ATP浓度过低会促进细胞死亡。只有当细胞外基质密度超过一定阈值时,细胞才能进入细胞周期。死亡细胞产生扩散性生长抑制剂。缺少空间信息将不允许推断工作机制。我们的研究结果表明,在每个模型开发阶段,这种迭代数据集成和中间模型敏感性分析为推断肿瘤生长的预测性但最小(在上述意义上)的定量模型提供了一种有希望的策略,与其他组织组织过程一样。重要的是,用两种营养丰富的生长条件校准模型,可以预测两种营养不良生长条件的结果。然而,由于最终模型相当复杂,包含了许多机制、空间、时间和随机过程,因此参数识别是一个挑战。这需要更有效的成像和图像分析策略,以及基于随机代理的仿真中的参数识别策略。

作者摘要

我们在这里介绍了如何几乎完全从实验数据中参数化生长MCTS的基于代理的数学模型。MCTS显示出类似于无血管肿瘤结节中发现的病理生理梯度和异质细胞群同心排列。我们构建了成像、图像处理和分析以及数学建模的过程链。在这个模型中,每个单独的细胞都由一个填充三维非结构化晶格中一个位置的代理表示。时空多细胞行为,包括每个细胞的迁移、生长、分裂和死亡,由一个随机过程来考虑,并用Gillespie算法进行数值模拟。分子尺度上的过程由分子浓度的确定性偏微分方程描述,并与细胞内和细胞决策过程相耦合。多尺度模型的参数是通过与生长动力学的比较以及对染色用于细胞死亡、增殖和胶原IV的球形冰冻切片的图像分析得出的。我们的最终模型假设ATP是细胞在广泛的氧气和葡萄糖介质浓度范围内保持恒定的关键资源,通过在有氧代谢和无氧代谢之间切换。除ATP外,乳酸也可能是坏死核心大小控制的一种解释。模型模拟结果与图像数据在细胞增殖、细胞外基质分布和细胞死亡的空间分布上的直接对峙表明,此外,必须添加细胞外基质和废物因素的影响来解释数据。因此,该模型是一种工具,用于识别可能的工作机制,随后可以对其进行实验研究,从而提出一种模型指导的实验策略。

介绍

在早期发育阶段,肿瘤直径可达1–2mm,由现有脉管系统提供的营养和氧气提供营养。2D或3D细胞培养系统被用作生物模型来研究该阶段,或通常发生在肿瘤生长和发展后期的方面。目前的2D细胞培养方法在研究这些阶段的肿瘤进展方面用途有限,因为它们忽略了这些无血管微转移酶或体内实体肿瘤的毛细血管间微区域的重要组织形态和功能特征。在过去的几十年中,人们做出了巨大的努力来生成生物3D模型,以更准确地描述组织中肿瘤发展的早期阶段。因此,它们可以作为传统2D细胞培养和复杂体内模型之间的中间系统([,4]). 在这些方法中,多细胞肿瘤球体(MCTS([5,6]). MCTS作为一个模型系统可以很好地描述,并且已经证明可以重现体内微肿瘤的空间组织和微环境因素,例如营养素和其他分子因子的相关梯度以及细胞外基质(ECM)的沉积(参见图1) ([7,8]). 此外,基因表达研究显示,2D和MCTS培养物之间的基线轮廓和刺激后的轮廓存在显著差异。后者更接近患者的基因表达([911]). 因此,MCTS现已被确立为基础研究和临床相关药物高通量筛选的实验系统(审查人:[12,13]). 如中所述[14]MCTS中不同细胞表型(生长、静止和死亡)的组织应该是放射状的,并由不同的因素控制:生长促进剂(GP)、活力促进者(VP)、生长抑制剂(GI)和活力抑制剂(VI)。在球体的情况下,启动子主要来自肿瘤周围的生长介质(ECM除外),而抑制剂通常被认为是由肿瘤本身产生的。因此,这些因素的局部组成和相互作用有利于在距离肿瘤边界不同距离的细胞表型之间的不同转变。

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球体的径向组织。

将模拟肿瘤横截面的图像与本文中提出的模型相结合,描述了细胞表型(增殖、死亡)的空间组织,以及被提议模型视为主要来源(氧气、葡萄糖)、生长/活性促进剂(GP/VP)的分子因子或生长/活性抑制剂(GI/VI)。箭头指向从高浓度到低浓度的方向。图像应与参考文献中的相应方案进行比较[8]图中显示了采用不同技术研究的球体中段图像的组合:放射自显影术、TUNEL分析、生物发光成像和氧微电极探测。

为了理解无血管肿瘤生长的动力学,提出了几个数学模型,将多细胞水平上的生长动力学(半径/体积时间)与细胞或亚细胞尺度上的机制(细胞生长、接触抑制、营养限制等)联系起来。它们可以分为两种主要方法:(1)不同组分密度的连续模型,这些组分密度在PDE后随时间和空间演变(参见[1518])基于agent的模型,分别描述每个细胞及其生长、分裂、移动和消亡的方式(参见示例[1921]). 当细胞被建模为试剂时,氧气、营养素和/或生长因子或抑制剂通常被建模为连续模型[1,2,2231]或使用简化的假定轮廓[32,33]. 另一方面,混合模型根据肿瘤区域(例如[26]).

尽管模型种类繁多,但识别一个合理的机制模型及其定量参数化仍然是一项艰巨的任务,该模型能够定量解释大量数据并预测未用于校准模型的实验结果。问题是大量参数和缺乏对基本机制的验证。不同的模型已成功地适用于细胞群体的生长动力学(例如[2,22]只考虑种群规模,而不考虑直径[1,34]考虑两者)依赖不同的机制,但导致相同的增长曲线。例如,从指数生长阶段过渡到线性生长阶段可能是由于接触抑制或营养限制。仅根据增长曲线无法进行模型选择,这表明仅依靠增长曲线开发数学模型是不够的。本文研究了一种基于亮场显微照片的定量图像处理方法。这与基于磁共振成像(MRI)大规模模拟脑肿瘤的近期趋势一致[35,36]斯旺森及其同事的鼓舞人心的工作[37]. Friebees等人最近使用了组织学信息[38]他在非霍奇金淋巴瘤生长的偏微分方程组织模型中进行了组织学染色测量,并由Macklin等人[3941]世卫组织开发了一个多尺度模型,将细胞模拟为受力的个体,以预测单个患者的导管癌生长,包括组织学信息。

本文通过与非小细胞肺癌(NSCLC)细胞株SK-MES-1培养基中不同氧和葡萄糖浓度的实验数据比较,研究了数学模型的建立和模型参数化。这些数据包括细胞核、不同细胞状态和细胞环境的生长动力学和相应的空间染色模式,即细胞核的HOECHST、增殖的KI67、死亡细胞的TUNEL、ECM的IV型胶原。我们研究了在多个实验观测值上,通过同时匹配仿真结果和实验结果,可以推断出多少尚未直接评估的机制。我们的策略是循序渐进的:我们首先只针对一种增长条件开发一个模型,然后在验证之前(更简单的)模型阶段无法解释增加的增长数据后,扩展模型以捕获其他增长条件。为此,我们使用“先前”模型在其生理范围内改变每个模型参数,进行了许多计算机模拟。最后,我们得出了一个模型,该模型几乎可以完全投影到球体生长的实验推导方案中(比较图1参考[8]). 通过这种包括实验、成像、图像分析和建模的逐步策略,可以确定肝再生过程中的有序机制[42],表明这样的策略在揭示多蜂窝组织中的相互作用机制方面可能是强大的。

结果

实验和图像处理

为了研究环境条件对肿瘤球体生长动力学的影响(图2)在不同的营养条件下,采用悬滴法将SK-MES-1细胞作为多细胞肿瘤球体进行体外培养。然后,在不同的时间点,用亮场显微镜测定球体的大小,并用荧光显微镜对一些球体进行冷冻、冰冻切片、染色和成像(图3). 有关详细说明,请参阅材料和方法第节。

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不同营养条件下培养的MCTS生长曲线。

箭头和方框指示拍摄组织学图像的时间点。

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增殖细胞核(顶部)和死亡细胞核(底部)以及细胞外基质密度(中心)的量化。

图片(顶部)描述了在不同营养条件下生长的球体在不同时间点(T3=17d,T4=24d)的横截面([G],[O2]). 这些颜色表示细胞核(蓝色)、细胞外基质(EMC)(绿色)和增殖(红色,左侧)或细胞死亡(红色,右侧)。曲线(底部)表示增殖和死亡细胞比例的径向剖面,以及ECM密度(ColIagen IV染色强度),这是根据在相同条件下生长的几个球体的平均图像推断出来的。条形图表示标准偏差。利用ECM密度,我们表示胶原蛋白IV的荧光值,该值在区间[0,1]内变化。

增长曲线

图2显示了四种不同培养条件下球体半径的时间生长曲线(见表1). 该图表明存在不同的增长阶段。头两天的增长阶段无法明确描述,只能从早期工作中得出结论([1,43])它可能会从指数增长阶段过渡到亚指数增长阶段。在第2天到第21天之间,生长总体上近似线性,随后球体饱和甚至收缩。生长阶段之间的交叉点取决于氧和葡萄糖介质的浓度。因此,在初始凸相位和最终凹(饱和)相位之间必须有一个拐点,其中半径对时间的二阶导数从正值变为负值。对于[G]=5mM、25mM、[O]=0.28mM,生长行为非常相似。将葡萄糖降低到[G]=1mM或将氧气降低到[O]=0.07mM会导致生长明显减慢。在大约24天时,半径正在饱和甚至收缩。

表1

营养状况。
条件【G】【O】2]注释
1毫米0.28米营养不良
5毫米0.28米生理学的
2500万0.28米营养过剩
四、2500万0.07毫米缺氧

组织学定量的径向轮廓

为了获得细胞、增殖细胞、死亡细胞和细胞外基质(ECM)分布的空间信息,对几个多细胞球体进行了染色和成像。图3显示了用HOECHEST、Ki67、TUNEL和胶原IV染色的细胞核、增殖细胞、死亡细胞和细胞外基质(ECM)的典型图像,分别为[G]=5mM和[G]=25mM。对图像进行分割,将细胞分为增殖细胞(如果细胞核Ki67阳性)、死亡细胞(如果TUNEL阳性)或静止细胞(如果Ki67和TUNEL均未阳性)(图4,详细信息请参见材料和方法). 从分割的图像中,研究了从边缘到内部的增殖细胞、静止细胞和死亡细胞的空间分布(有关详细信息,请参阅“定量图像分析”一节)。从边界(与质心相反)开始对空间轮廓进行调查,可以确保正确捕获边界轮廓,即使MCTS是椭球形而不是球形,通常情况下也是如此(参见示例,图4A和4E). 这种选择的缺点是事件数量(Ki67阳性细胞核、ECM密度等)肿瘤内部通常非常罕见,因此必须谨慎考虑距离边界200微米以上的数据点S1文件). 增殖细胞在球体内的距离越远,增殖细胞的比例越低(图3). 生长培养基中[G]=5mM和[G]=25mM时,增殖曲线(几乎)不会随时间变化,并且非常相似。从球体边界到内部,细胞死亡增加。两种营养条件下的细胞死亡情况存在显著差异,即5mM的坏死核心出现得更早(已经在第17天,而25mM的坏死核心直到第24天才出现)。有趣的是,24天后,[G]=25mM的细胞死亡似乎发生在穿透深度小于[G]=5mM的情况下。TUNEL分析无法区分坏死细胞和凋亡细胞([44]). 为此,我们还进行了一些中试实验,用Caspase 3选择性地染色样品。在这些样本中,我们可以看到Caspase 3在我们将确定为“坏死核心”的外围部分激活,尽管这可能也无法明确区分凋亡和坏死,因为Caspase 2的激活已被证明参与了两者([45,46]). 因此,在本文的实验中,我们无法区分不同形式的细胞死亡。事实上,由于这种细胞培养系统不包括巨噬细胞,所以凋亡细胞体的去除非常缓慢,因此区分坏死细胞和凋亡细胞似乎是不必要的。这一假设得到了自我一致的证实,因为在模型中必须假设非常小的细胞凋亡和溶解率,以解释实验结果,因此不必明确考虑细胞凋亡。

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图像平滑和分割。

(A) 显微照片显示了一个球体的冷冻切片,该球体被HOECHST(红色)、Ki67(蓝色)和胶原蛋白IV(绿色)染色。用中值滤波器对原始图像进行平滑处理。对于图像(B)的放大部分,图像的原始(C)和平滑版本(D)可视为反转蓝色通道强度的景观,1−蓝色(E)细胞核从蓝色通道中分离出来,并通过红色通道区分Ki67阳性(红色)和阴性(蓝色)细胞核。球状腔(绿色)近似于膨胀的细胞核。

细胞外基质(ECM)的数量随着渗透深度的增加而增加,直到100–200微米。对于较大的穿透深度,它似乎再次减小,但数据太过嘈杂,无法推断出清晰的路线。与直觉相反,球体表面的细胞的增殖活性明显低于内部的几层细胞。

数学建模:需要的主要组件

我们的目的是在一个数学模型中解释不同葡萄糖和氧气介质浓度下实验观察到的生长模式。为此,我们首先搜索了一个最小模型(在摘要中指定的意义上)来解释[G]=25mM和[O]=0.28mM介质浓度下的实验肿瘤生长观察结果,然后逐步扩展该模型以捕捉其他增长条件(有关逐步模型开发策略的说明,请参见中的图S3S1文件). 我们根据公布的信息和自己的实验指导的先验知识来选择可能的控制机制。我们选择了最大葡萄糖和氧气培养基浓度的条件,因为[G]=25mM和[O]=28mM与[G]=5mM和[O]=28mM的生长动力学的相似性表明,对于前一种条件,葡萄糖和氧气都可能不受限制(另见讨论(见下文)。Freyer和Sutherland在几乎相同的氧气和葡萄糖培养基条件下(与[1]). 我们在每个模型开发步骤再次拟合所有参数。因此,本文中显示的拟合是我们可以为各个模型获得的最佳拟合。然而,由于搜索空间大,模拟时间至少为一天(参考计算机:Intel(R)Xeon(R)处理器X5680 3.33GHz 12M缓存6核和144 GB DDR3-RAM 1333 MHz),不能完全排除进一步的参数搜索可能会带来额外的轻微改进。为了提高可读性,我们列举了每个开发级别的模型。

通常,我们只对每个参数集进行单一模拟,即随机增长过程的单一实现。这可以通过观察生长过程(如实验中的大约10000个细胞)是自平衡的,因此相同参数下生长过程不同实现的变化可以忽略不计(图S11S1文件).

我们的基本模型在基于代理的模型中分别考虑每个单元,即每个单独的单元由代理表示。分子,最后是葡萄糖、氧气和乳酸,以及细胞外基质和濒死细胞释放的“废物”物质,以其局部浓度表示。我们在下文中使用“分子”一词来概括描述这些影响细胞的环境因素。模型是三维的。在以下部分中,我们将简要介绍主要模型组件。模型以及模拟的生物过程的详细描述可以在材料和方法部分以及支持信息中找到(S1文件).

细胞

细胞被建模为填充非结构化晶格位置的单个对象(见补充[25,47])格点上不超过一个细胞。细胞可能处于三种状态之一:增殖、静止或死亡。根据他们的状态和当地环境,他们能够进入或重新进入(G0)细胞周期、生长、迁移、死亡或进行裂解(图5). 每个过程都需要一组必要的条件,并以一定的速度执行。过程和速率都取决于细胞邻域和局部分子浓度(见下文)。细胞的时间动力学由一个“主方程”描述,该方程模拟了某一多细胞构型概率的时间演化。该方程用Gillespie算法进行了数值模拟(参见S1文件).

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细胞状态和细胞可能经历的生物过程的模式:细胞周期(包括细胞生长和分裂)、迁移、细胞死亡(凋亡和坏死)和溶解。

左面板:在细胞周期的一小部分转变后,一个循环细胞通过占据两个相邻的晶格点而生长。生长细胞可以将一定数量的细胞推到一边。细胞可以通过从一个晶格点跳到相邻晶格点来迁移。细胞死亡的速度k个脖子并因此以速率进行裂解k个赖氨酸(为清晰起见,左侧面板中的方案为2D;但模拟均为3D)。右:所有过程都建模为泊松过程。细胞周期中的细胞经历d日直到分裂成两个子细胞。d日子进程-单元周期时间最终遵循Erlang分布。增加的d日将导致更尖锐的细胞周期分布。细胞以速率从一个细胞周期状态(CCS)过渡到下一个k个div公司,。如果单元格处于状态m它会成长。如果它处于状态d日在下一个过渡期,它将分裂成2个子细胞。此外,2个子单元将按概率比例进入第一个CCS第页div公司或与概率1−成比例的静止(G0)第页div公司.处于静止状态的细胞可以以速率重新进入细胞周期k个重新和概率第页重新.表2指示如何计算模型1-4的所有转换率和概率。

分子

对于每种分子类型,选择其浓度的连续表示法。其时空动力学由偏微分方程(PDE)建模。对于每个分子,该方程可以转化为反应扩散方程的形式

t吨u个=·(D类u个(σ)u个)+第页u个(σ,u个),
(1)

哪里t吨是时间,u个∈ {G公司,O(运行),L(左),发动机控制模块,W公司}是葡萄糖、氧气、乳酸、细胞外基质或废物的浓度,D类u个是各自的扩散系数,以及第页u个表示涉及以下反应的速率函数u个(=u个(第页,t吨)).第页表示空间中的位置。扩散系数和反应函数取决于局部细胞密度σ(第页,t吨) = ∑k个 δ(第页第页k个),第页k个(t吨)是细胞的位置k个时间t吨反应对每种成分(分子或ECM)都是特定的:细胞消耗葡萄糖和氧气,并带有−第页G公司和−第页O(运行),乳酸由缺氧细胞产生第页L(左)ECM由细胞产生并以一定的速率分解,而废物则由染色细胞释放出来。

数学建模:尺度耦合与数据比较

从文献中获取或估计了一些与细胞或分子唯一相关的参数(例如分子扩散系数、消耗率、细胞周期时间分布)。其他可从本文中提供的数据直接推断(例如初始条件、细胞大小)或通过敏感性分析推断(例如细胞分裂、细胞死亡和裂解率)(参见S1文件). 识别耦合细胞和分子动力学的主要机制及其参数化(参见图5)将模型与下面解释的数据进行比较。

图中的标记模式图3和44确认引言中讨论的边界距离相关的“分带”(也可进行比较[8]和图1). 在下文中,我们将研究细胞-细胞成分、细胞外基质和代谢化合物(营养物质/代谢物)的影响,以推断相应的模型机制。对于后者(代谢),我们将比较四种不同的假设(模型1-4)。用于计算过渡率和概率的方程摘要,如图5对于以下章节中研究的所有模型,可以在表2.

表2

模型1-4的转换率和概率。

所有型号都有第页重新 k个重新= 0,k个恰当的=常数.和k个赖氨酸=常数共同点。过渡率k个div公司,单个细胞周期步骤之间的关系由下式给出k个div公司,=d日 k个div公司。所有参数值均可在中的表S1中找到S1文件.

模型第页div公司=k个div公司=k个nec公司=
1e(电子)L(左)L(左) k个d日v(v)x个 k个n个e(电子)cx个
H(H)([发动机控制模块] − [发动机控制模块]最小值)H(H)([G公司][O(运行)] −第页氧合glc)H(H)(第页氧化葡萄糖−[G公司][O(运行)])
2e(电子)L(左)L(左) k个d日v(v)x个 k个n个e(电子)cx个
H(H)([发动机控制模块] − [发动机控制模块]最小值) ·H(H)(第页A类T型P(P)-第页A类T型P(P)n个) ·H(H)(第页A类T型P(P)n个-第页A类T型P(P))
e(电子)L(左)L(左) k个d日v(v)x个 k个n个e(电子)cx个
H(H)([发动机控制模块] − [发动机控制模块]最小值) ·H(H)(第页A类T型P(P)-第页A类T型P(P)n个) ·H(H)(第页A类T型P(P)n个-第页A类T型P(P))
·[L(左)]n个([L(左)]x个)n个-[L(左)]n个
4e(电子)L(左)L(左) k个d日v(v)x个 k个n个e(电子)cx个
H(H)([发动机控制模块] − [发动机控制模块]最小值) ·H(H)(第页A类T型P(P)-第页A类T型P(P)n个) ·H(H)(第页A类T型P(P)n个-第页A类T型P(P))
·H(H)(n个e(电子)x个第页x个-n个e(电子)x个第页) H(H)(1 − 0.5([W公司] − [W公司]最大值)) ·[L(左)]n个([L(左)]x个)n个-[L(左)]n个
H(H)(1 − 0.5([O(运行)]最小值− [O(运行)]))

机械生长抑制:概率细胞决策

[G]=25mM和[G]=5mM的生长曲线和增殖曲线看起来非常相似,而[G]=25mM和[G]=5mM的坏死核在17天的大小看起来非常不同(图(图22和3)。). 对EMT6/Ro电池的数据进行了等效观察[14]模型模拟表明,增殖不受非葡萄糖相关因子的控制,而是受接触抑制的机械形式控制[1]. 否则,增生边缘和坏死区的大小都应该受到影响。用我们的晶格模型进行的模型模拟证实了这一发现。

在以前的文章中,接触抑制的生物力学形式被认为是一种决定性的决定,取决于不断增长的细胞群中的局部压力或变形([1,2,4850]). 然而,从年非晶格模型中生长多细胞球体的模型研究可以看出[24]和[34]基于变形阈值的确定性准则能够在局部随机事件(如细胞微观运动或细胞周期持续时间的随机性)的影响下,产生分裂细胞分数的逐渐变化,这两者都会导致变形和机械应力的随机波动。如参考文献所示。([25,43])通过引入最大距离Δ,可以在晶格模型(如本文所选)中定性地捕获扩展的扩散边缘L(左),一个细胞能够在其上推开其他细胞以便生长。细胞进入细胞周期的概率可以定义如下

第页d日v(v):=H(H)(L(左)-ΔL(左)),
(2)

哪里H(H)是Heaviside函数,H(H)(x个)=如果x个< 0,H(H)(x个)=1,如果x个≥0,并且L(左)是到最近的自由晶格点的距离。

然而,如中所示图6(左图)引入这样一个锐利的截止线会导致外增殖边缘和内静止边缘之间相对尖锐的过渡,而实验剖面显示出一个宽的过渡区,细胞周期中的细胞频率逐渐发生变化。通过选择概率方法,可以在格子模型中获得平滑的实验观察到的跃迁,细胞进入细胞周期的概率随Δ呈指数递减L(左)(图6,左侧面板):

第页d日v(v):=e(电子)-L(左)/ΔL(左).
(3)

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第17天(红色)和第24天(绿色)[G]=25mM,[O]=0.28mM的Ki67阳性细胞的实验和模型预期分数(左侧)和IV型胶原(ECM)密度(右侧)vs.与球体表面的距离。

细胞周期的确定性进展取决于细胞与表面的距离,它会产生实验上未观察到的急剧跃迁(左虚线),而概率跃迁则会在模拟中生成Ki67阳性细胞的平滑单调递减函数(左虚线)。此外,只有当ECM的局部浓度超过阈值时,细胞才能在细胞周期中进行[发动机控制模块]最小值,实验发现的Ki67剖面恢复(左,全线)。右实线:计算机模拟中的ECM浓度。

因此,细胞进入细胞周期的决定是随机的,这意味着距离边界相同的相邻细胞可能会表现出不同的行为。这会产生局部不均匀的细胞行为。细胞周期进展概率(3)在最外边界生成Ki67阳性细胞分数最高的轮廓。这种趋势是一种稳健的现象,在生长细胞种群的非格子模型中也可以发现,其中细胞周期的进展由变形或压力阈值控制([48,51]). 因此,我们得出结论,单靠变形或压力阈值对细胞周期进程的生物力学控制并不能解释多细胞球体边缘增殖下降的原因。

细胞外基质

实验数据表明边缘细胞的增殖活性低于内部细胞(图6,左面板),同时IV型胶原染色显示靠近球体边界的ECM浓度较低(图6; 右侧面板)。这表明ECM在细胞周期进程中的已知控制功能[50]可能是球体边缘增殖细胞比例较低的原因。观察到ECM结合和连接的整合素信号是增殖信号的重要组成部分,支持了这一假设([52,53]).

因此,我们假设细胞通过置换进入细胞周期需要最小密度的细胞外基质等式3通过

第页d日v(v):=e(电子)-L(左)/ΔL(左)·H(H)([E类C类M(M)]-[E类C类M(M)]n个),
(4)

其中[发动机控制模块]反映ECM的本地集中度,以及[发动机控制模块]最小值是阈值(这些值没有维数,因为我们直接使用区间[0,1]中定义的荧光强度)。细胞外基质由每个细胞分泌,并以一定速度减少。选择[发动机控制模块]最小值=0.003,细胞外基质浓度表现为实验观察到的结果(图6)模拟的增殖曲线与实验曲线吻合良好。

等式4决定每个子细胞分裂后直接进入细胞周期的概率。在大多数论文中,我们假设这个决定是不可逆的(第页重新=0英寸图5)但我们也考虑了退出G0的后果(第页重新>0英寸图5). 对于后者,我们测试了不同的替代规则(参见S1文件)可以由退出率的等式包含,第页(L(左)) =k个重新 第页重新(L(左)). 该方程假设细胞以速率探测k个重新概率发生的G0退出第页重新(L(左)). 时间间隔内发生入口的概率[t吨,t吨+ Δt吨)在深度L(左)(t吨)就是那个时候第页(重新-入口[t吨,t吨+Δt吨))=k个第页e(电子)第页第页e(电子)e(电子)-t吨t吨+Δt吨第页第页e(电子)k个第页e(电子)d日t吨Δt吨.以防第页重新功能形式为第页div公司在里面等式4,费率k个重新必须非常小,以便在数据和模型之间达成一致(中的图S4S1文件). 我们发现k个重新= 0.001/2.4小时(图S4英寸S1文件; 由提供等式4). 即,仅在100/第页重新特定单元格退出G0的平均天数。

我们进一步测试了细胞静止的概率为1−第页div公司(如中所示等式4)只有当其相邻站点空闲时才能退出静止(中的图S5S1文件)如果细胞能够感知自由空间,则可能会发生这种情况。在这种情况下,如果重新进入的临界ECM浓度升高,我们也可以获得与生长数据的良好拟合。我们注意到,在模拟过程中很少观察到细胞周期从G0重新进入,并且模拟结果对重新进入率的变化一点也不敏感(参见S1文件). 我们的结论是,通过退出静止状态而重新进入细胞周期并不是SK-MES-1细胞MCS生长的关键参数。然而,在药物治疗的情况下,药物可能会杀死最外层的细胞,细胞周期的重新进入预计会改变治疗细胞群的生长和存活,并将成为一个关键参数。

总之,为了解释数据,细胞周期重新进入必须是一个非常罕见(可忽略的罕见)的事件,这就是为什么我们在以下整个过程中都忽略了细胞周期重新进入(有关更多详细信息,请参阅S1文件).

模型1:葡萄糖和氧气限制的生长和存活

我们认为缺乏葡萄糖和氧气是导致细胞死亡的原因。Schaller和Meyer-Hermann[2]提出只有当葡萄糖和氧气的产物超过阈值时,细胞才能存活第页草酸低于此阈值时,细胞会发生细胞死亡:

k个d日v(v)=k个d日v(v)x个H(H)([G公司][O(运行)]-第页o(o)x个u个c),
(5)

k个n个e(电子)c=k个n个e(电子)cx个H(H)(第页o(o)x个u个c-[G公司][O(运行)]),
(6)

哪里H(H)是Heaviside函数,k个d日v(v)x个k个n个e(电子)cx个最大值和k个div公司k个div公司分别是实际的分裂率和细胞死亡率。由于无法获得SK-MES-1细胞葡萄糖和耗氧率的实验测量值,我们假设这些速率与EMT6/Ro细胞测得的氧和葡萄糖消耗率遵循相同的函数关系(参见材料和方法),仅允许SK-MES-1电池的参数与EMT6/Ro电池的参数不同。

图7结果表明,对于该假设(虚线)和营养培养基条件III([G]=25mM,[O]=0.28mM),模拟结果与实验生长曲线和ECM、增殖和细胞死亡的径向剖面吻合良好,但对于条件II([G]=5mM,[0]=0.28m M)则完全不符合。坏死核心的大小和生长曲线被高估了。

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[G]=5mM,[O]=0.28mM(条件II,右上图和中图)和[G]=25mM,[Co]=0.28mM(条件III,左上图和下图)的生长动力学(上图)和TUNEL,Ki67,胶原蛋白IV的空间分布。

虚线显示了细胞周期进展需要局部葡萄糖和氧气浓度的乘积超过临界阈值的模拟,而低于该阈值的细胞会静止并死亡。如果产品被ATP的局部浓度所取代,协议将显著改善(实线)。对于虚线曲线,假设介质中的扩散系数为D类医学= 30D类肿瘤实验生长曲线显示为箱线图(方框:平均值、下四分位数和上四分位数,水平虚线:最小值和最大值),径向剖面显示为平均值(粗线)和标准偏差(细线)的组成。

模式2:ATP限制生长和存活

下一步,我们认为细胞周期的进展和死亡取决于细胞的主要能量货币三磷酸腺苷(ATP)的产量[54]细胞可以从消耗的葡萄糖和氧气中生成,而不是从氧气和葡萄糖浓度的局部产物中生成:

k个d日v(v)=k个d日v(v)x个H(H)(第页A类T型P(P)-第页A类T型P(P)n个),
(7)

k个n个e(电子)c=k个n个e(电子)cx个H(H)(第页A类T型P(P)n个-第页A类T型P(P)),
(8)

哪里第页列车自动防护系统是ATP的生产率(参见等式28),第页A类T型P(P)n个=900M(M)/小时划分增殖状态和死亡状态边界的阈值。我们注意到,充分供应氧气和葡萄糖的细胞以大约1100的速率产生ATP百万分之一/小时(请参见图8这似乎最能满足电池的能量需求。有趣的是,适度缺乏葡萄糖或氧气的细胞将使其ATP生成增加至1700百万分之一/小时.

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营养依赖性代谢。

ATP(左上)和乳酸(右上)的生成速率。最低ATP要求的阈值用黑线表示。厌氧代谢葡萄糖(左下)和糖酵解ATP(右下)的百分比。

图7显示ATP-限制生长(实线)在II和III两种条件下均与肿瘤生长动力学符合良好。

ATP具有重要的生长调节功能,这一观点得到了以下观察结果的支持:ATP已被证明可以控制鸡和小鼠视网膜发育中的细胞周期[55],并且最成功的靶向细胞周期的药物抑制ATP与细胞周期进展所必需的细胞周期蛋白依赖性激酶(CDKs)的结合([56,57]). 此外,已经发现ATP可以上调人心脏成纤维细胞的增殖([58]).

然而,在5mM葡萄糖(条件II)的情况下,模型预测的坏死核心要比25mM葡萄糖(情况III)大得多,而实验曲线表明其大小相当。此外,条件II下死亡细胞的比例比实验发现的要小得多。坏死核心的大小随葡萄糖和氧气扩散系数的变化而变化,如中所示的另一个模拟示例所示图7(虚线)。这里我们假设介质中的分子扩散是球体中的30倍。在这种情况下,模型显示出与5mM葡萄糖(条件II)更好的一致性,但却低估了25mM葡萄糖的坏死核心的大小(条件III)。虽然模型2预测的坏死核心的大小随着葡萄糖的中等浓度和明显的扩散系数的变化而变化,但实验曲线表明,5mM和25mM葡萄糖的坏死核心大小大致相同(同样,在培养24天时,与对照组相比,5mM葡萄糖和25mM糖的坏死核心尺寸也大致相同图3).

模型3:乳酸诱导的细胞死亡

此外,染色细胞部分的实验曲线(参见图3)揭示了条件II和条件III之间的一些差异。首先,对于5mM葡萄糖,坏死核心在17天和24天的深度约为150微米,而对于[G]=25mM,坏死核心出现较慢:在第17天几乎不存在,在第24天变大。其次,[G]=5mM时坏死部分和存活部分之间的过渡比[G]=25mM时明显得多。第三,24天后,与直觉相反,在外部发现更多的死亡细胞(<150微米)25毫米的葡萄糖,而不是5毫米的,尽管后者被认为营养更有限。

这表明两种情况下细胞死亡的原因可能不同。因此,在第三步中,我们研究了额外假设的后果,即如果局部乳酸浓度超过临界阈值,也可能触发细胞死亡(图9). 细胞被葡萄糖充分供应,但缺乏氧气,从而产生乳酸。我们通过将死亡率设为

k个n个e(电子)c=k个n个e(电子)cx个·H(H)(第页A类T型P(P)n个-第页A类T型P(P))·[L(左)]n个([L(左)]x个)n个-[L(左)]n个,
(9)

其中[L(左)]最大值= 20百万分之一是细胞死亡率为其值一半时的乳酸浓度,以及n个是希尔系数,它决定了从无细胞死亡响应切换到全细胞死亡响应的锐度。即。n个=1导致平稳过渡n个→ ∞ 到Heaviside函数。我们选择了希尔系数,以获得最佳拟合(图S8S1文件). 线性相关性或Heaviside函数导致数据的一致性比Hill函数差得多n个= 2. 乳酸是厌氧菌代谢的副产物等式9主要影响高血糖但低氧供应的情况(参见图8).

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添加乳酸诱导的细胞死亡。

如果葡萄糖生成过程中产生的乳酸浓度高于一定浓度,则会发生细胞死亡,条件III([G]=25mM,[O]=0.28mM)和条件II([G]=5mM,[0]=0.28mM)的种群动力学和时空分布,以及条件I([G]=1mM,[O]=0.28mM)的生长阶段和条件IV([G=25mM,[0]=0.07mM)已正确捕获。假设介质中的扩散系数为D医学=30 D肿瘤实验增长曲线显示为箱线图(方框:平均值、下四分位和上四分位,水平虚线:最小值和最大值),径向剖面显示为平均值(直线)和标准偏差(误差线)的组成。

图9显示了ATP-限制和乳酸诱导细胞死亡的组合如何影响所有四种条件下的生长曲线以及条件II([G]=5mM,[O]=0.28mM)和条件III([G=25mM,[0]=0.28m M)的径向剖面。现在,增殖和死亡细胞部分的径向轮廓的形状和时间演变与数据的一致性比以前好得多。

此外,有趣的是,尽管该模型仅以[G]=5mM、[G]=25mM和[0]=0.28mM进行了校准,但在没有任何额外参数调整的情况下,定量预测了极低葡萄糖介质浓度([G]=1mM、[O]=0.28m M)和极低氧气介质浓度([G]=25m M、[O]=0.07m M)的生长阶段!这表明捕获了决定SK-MES-1球体生长阶段的关键因素的功能依赖性。

有趣的是,在小鼠杂交瘤中观察到乳酸对生长的不利影响([59]). 研究发现,高浓度的乳酸(55mM)抑制细胞生长,并伴随着死亡率的增加(尽管作者将后者归因于较高的渗透压)。然而,死亡率对乳酸浓度的总体依赖性与我们的模型预测的结果非常相似(S1文件). 在CHO(中国仓鼠细胞[60]),永生化细胞。

模式4:废物和欠氧调节静止

最后,虽然所有四种条件下观察到的初始生长阶段都可以用ATP和乳酸依赖性细胞动力学很好地解释,但它们无法解释约20天后所有条件下出现的饱和度。对于[O]=0.28mM的生长速度快于线性生长速度的所有生长条件,在20–30天左右达到饱和(即进入生长速度慢于线性生长的阶段)的小时间,必须存在一个拐点,超过该拐点,膨胀速度开始下降。然而,只要培养基中的营养物质浓度保持不变,外部细胞就由营养物质供给,膨胀速度的降低与营养物质无关。因此,膨胀速度的降低必须源于肿瘤内部过程产生的生长抑制。乳酸可以被排除为这种生长抑制剂的候选物,因为它只出现在缺氧的情况下(III和IV)。此外,可以排除机械应力导致饱和的原因,因为多细胞球体的环境是液体,而不是在压缩时具有较高阻力的介质([48,61,62]).

我们通过假设细胞暴露在废物中超过一定时间后会静止下来,从而验证了赖氨酸染色细胞释放的细胞质废物物质可能作为生长抑制剂的假设:

n个e(电子)x个第页=-t吨1-H(H)([W公司]x个-[W公司](第页,τ))·H(H)([O(运行)](第页,τ)-[O(运行)]n个)·k个d日v(v)d日τn个e(电子)x个第页x个,
(10)

哪里H(H)是Heaviside函数,n个经验是一个细胞暴露于废料或缺氧或两者兼而有之的细胞周期数,n个e(电子)x个第页x个是细胞在这种条件下不受生长抑制的最大细胞周期数[W公司](第页,τ)和[O(运行)](第页,τ)废物和氧分子的局部浓度[W公司]最大值和[O(运行)]最小值相应的阈值浓度。也就是说,积累了太多废物的细胞会变得静止,不再(重新)进入细胞周期。请注意,这种动力学也可以用随机动力学来表示,因此可以通过为每个细胞引入一个内部状态变量(计数器),当外部局部废物浓度超过阈值浓度时,该变量以一定的恒定速率增加,并假设细胞周期(re-)当该状态变量超过临界值时,禁止进入。如果状态数和计数器增加一个单位的速度都很大,则达到阈值之前的新兴等待时间是Erlang分布的,标准偏差非常小(即非常接近由等式10). 与计算细胞周期数不同,细胞暴露于临界浓度的废物或氧气不足(或两者兼而有之),如等式10,我们测试了另一个条件,即暴露是在绝对时间内积分的(而不是细胞周期时间的倍数)。在这种情况下,只有条件IV的拟合发生了变化,实验和模拟之间的偏差增加了约5%。

总之,模型4的增殖和静止之间的转换由等式确定410.

此外,可以观察到,大约200…300小时后,在所有四种条件下,半径膨胀都会减慢。因此,我们进一步假设,在废物暴露或缺氧条件下,细胞生长速度减慢

k个d日v(v)=k个d日v(v)x个·H(H)(第页A类T型P(P)-第页A类T型P(P)n个)·(1-0.5H(H)([W公司]-[W公司]x个))·(1-0.5H(H)([O(运行)]n个-[O(运行)])),
(11)

其中[O(运行)]最小值和[W公司]最大值分别是氧气和废物的临界浓度。Stopper等人先前报道了低氧供应导致的生长速率下降[63]而格林斯潘已经提出了来自坏死碎片的废物的抑制生长作用[64].

图10显示了扩展模型的模拟结果,包括乳酸和废物对两个不同阈值的废物暴露时间的依赖性。条件II和III显示出相似的初始生长阶段,随后是两个线性状态,第一个以ATP限制为主,第二个以废物中毒为主,最后以饱和结束。

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废物和欠氧调节静止。

如果一个细胞暴露在废物中(来自死亡细胞的细胞裂解液的细胞碎片)或在一定数量的细胞周期内缺氧,n个e(电子)x个第页x个,它将在下一次分裂后变得静止。正确捕获了所有生长阶段所有条件I-IV的种群动力学,包括饱和度以及条件III([G]=25mM,[O]=0.28mM)和条件II([G]=5mM,[0]=0.28m M)的时空分布。图表显示了实验观察和模型模拟之间的比较。实验增长曲线要么显示为箱线图(方框:平均值、下四分位数和上四分位数,水平虚线:最小值和最大值),要么显示为径向轮廓的平均值(直线)和标准偏差(误差条)的组成。模拟曲线显示为黑线。

另一方面,条件I和条件IV在由废物暴露(条件I)或缺氧(条件IV)驱动的非常短的初始生长阶段后几乎立即饱和。注意,只有当细胞静止延迟足够数量的细胞周期暴露时,饱和度才是间歇性的。而对于8个细胞周期的较大延迟(图10)球体永久停止生长,在4个细胞周期延迟(未显示)的情况下,球体的膨胀只会暂时减缓,然后恢复其初始速度。这与大量废物有关,这些废物可能在较长的延迟时间内堆积和扩散,从而影响所有细胞,而不仅仅是最靠近坏死核心的细胞(有关所有条件的模拟快照,请参见图S14S1文件).

讨论

本文从生长肿瘤球体的图像数据推导出非小细胞肺癌细胞系SK-MES-1肿瘤球体生长的数学模型。在不同的时间点和不同的氧气和葡萄糖介质浓度下标记细胞核、增殖细胞、细胞外基质和死亡细胞(坏死或凋亡)。该模型是通过迭代过程建立的,我们建议将其作为组织组织过程建模的通用模板。我们首先只针对一种生长条件开发了一个最小模型,然后通过进一步的机制逐步扩展该模型,只要之前的简单模型不足以重现额外生长条件的实验观察结果。在将新机制添加到现有模型版本之前,我们通过广泛的计算机模拟(通常是数百次运行)验证,在现有模型的每个参数的参数范围内,模型和数据之间无法达成令人满意的一致。在这里,Minimal被理解为足以解释数据,并且包含尽可能少的机制,因此模型的构建块是从已经在某处为任何细胞群描述的机制中选择的。在药物引起的损伤预测之前未被认识和随后验证的顺序机制后,对肝脏再生采用了类似的迭代策略[65].

我们研究了培养基中葡萄糖和氧气的四种不同组合。为了解释高糖和高氧介质浓度([G]=25mM,[O]=0.28mM)条件下的生长动力学、增殖、ECM和细胞死亡,第二个条件是中等葡萄糖和高氧浓度([G]=5mM,[CO]=0.28 mM),我们需要假设细胞周期的进展只有在ATP的临界本地生成率以上才有可能(=百万分之一/小时). 第二个必要条件是,细胞外基质的局部密度必须高于临界值(0.003)。这与文献一致,其中显示皮肤癌的癌症进展依赖ECM[66],乳腺癌[67]和非小细胞肺癌[68]胶原蛋白IV可以调节关键的细胞信号。如果这两个条件(足够的ATP和ECM)都得到满足,细胞可以在细胞分裂后重新进入细胞周期。在这里,细胞更接近球形表面,因此需要更少的能量才能膨胀,因此继续增殖的机会越来越大,而不会静止。有趣的是,细胞在特定条件下是否静止的决定必须是随机的。这在相同条件下的细胞亚群中引入了一些异质性。确定性的设想无法解释从增殖区到静止区的平稳过渡。

ATP的生成速率取决于局部氧和葡萄糖浓度。因此,两者之间的比例决定了细胞在多大程度上处于有氧克雷布斯循环或厌氧乳酸发酵中。Warburg于年声明[69]所有的癌细胞都会受到呼吸损伤,因此都会进行无氧代谢。在反对派中,祖和古皮[70]由于缺乏证据,推翻了这一假设,并声称癌细胞的代谢是有功能的,但主要是由于缺氧导致的糖酵解。这里我们得出了部分不同的结论:如果细胞充分供应葡萄糖(独立于氧气供应),代谢将保持糖酵解(90%),只有当葡萄糖供应不足时,代谢才有利于有氧克雷布斯循环(参见图8). 除了乳酸(>20百万分之一),消耗碳源以维持关键的ATP生产(=900百万分之一/小时)非缺氧是死亡的主要原因。后者最近也由Kasinskas等人提出[71]然而,与我们的假设相反,他们排除了乳酸作为酸度来源,而是假设它是一种重要的次级代谢来源。然而,对高乳酸浓度的生长不利或死亡促进作用进行了描述[59]. 因此,有必要进一步阐明乳酸的主导作用。根据Freyer、Sutherland及其同事对EMT6/Ro细胞的实验结果推断出氧和葡萄糖消耗率的功能形式。然后,通过单一假设,即细胞以与ATP输出相关的最佳方式转换消耗的葡萄糖,直接从这些速率中导出乳酸和ATP生成速率。在较宽的葡萄糖和氧气浓度范围内,ATP生成速率在80…130×10之间保持稳定−17 摩尔/细胞/或1000…1700百万分之一/小时分别假设参考电池体积为2700微米。文献中的值介于4.6…15.3×10之间−17 摩尔/细胞/([7275]). 差异可能是由于不同细胞类型之间的能量需求差异,也可能是由于模型简化,即我们模型中的葡萄糖仅用于代谢。

有趣且重要的是,尽管该模型仅使用四种生长条件中的两种进行了校准,但随后能够正确定量地预测其他两种生长条件的生长阶段(分别为[G]=1mM、[O]=0.28mM和[G]=25mM、[0]=0.07mM)。这表明该模型确实捕获了解释不同葡萄糖和氧气条件下数据所需的功能。为了进一步独立验证我们的模型,我们对其他葡萄糖和氧气介质浓度进行了额外的模拟(图S12S1文件).

然而,一段时间后,所有生长曲线都出现饱和和部分均匀收缩。通过增加细胞裂解过程中在细胞外空间释放的废物的潜在影响,可以在很大程度上捕获饱和阶段。如果边缘处的死亡细胞脱落并进入生长介质,则会增加收缩;然而,我们没有考虑这个过程,因为在实验中没有观察到这个过程(例如,对于另一个NSLC细胞系A549细胞,在实验中可以观察到细胞从球体上大量分离)。有趣的是,裂解率为0.35/h(体内典型值)的模型模拟结果与体外数据不一致。体内观察到的几个小时的溶解速度将导致死亡细胞的快速清除,从而使肿瘤中心几乎没有死亡细胞,这与体外实验形成了鲜明的对比。通过比较模型模拟结果和空间细胞死亡和增殖曲线,我们获得了一个小得多的值,约为0.01/h,即只有如此小的裂解率才允许出现体外实验中观察到的“坏死核心”。对于如此低的溶解率,我们发现凋亡(如果存在)需要非常缓慢,因为它也会影响活环中的细胞,以便与活环中只有很少死亡细胞的实验观察结果相一致。因此,在解释本文的实验结果时可以忽略细胞凋亡。尽管从第一个角度来看令人惊讶,但裂解率的小值可以通过观察到体外不存在基质细胞(例如巨噬细胞)消化死细胞来解释。因此,体外溶解可能比体内溶解慢。

接触抑制似乎是一个关键因素。在每种情况下,通过其他机制的不同组合来抑制接触抑制会导致数据和模型模拟之间的完全匹配失败(参见中的图S6S1文件,其中使用了模型4的参数)。这一观察结果支持了之前在论文中表达的观点,即机械生长抑制在多细胞球体中起着重要作用。

此外,我们还测试了细胞通过坏死性向坏死区主动迁移的可能性(图S9、S10S1文件). 如实验观察到的那样,为了保持足够大的坏死核心,溶解速度必须很小,不能观察到明显的迁移。另一方面,如果选择较大的溶解速率,则可以观察到细胞的显著迁移,但坏死的核心太小,因为中心的细胞通过溶解被快速清除。在后一种情况下,随着迁移率的增加,坏死的核心变得更小(图S9、S10S1文件). 我们得出结论,SK-MES-1细胞中由形态原驱动的向中央坏死的迁移很小。

有趣的是,从这种逐步的、图像引导的推理策略中产生的最终模型与生长促进剂(GP)、生长抑制剂(GI)、活性促进剂和抑制剂(VI)对MCTS生长控制的假设非常相似(图11).

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球体显示细胞表型的放射状组织:增殖细胞(绿色)、静止细胞(蓝色)和死亡细胞(黑色)。

这些层的厚度由不同的因素控制,如生长促进剂(GP)、生长抑制剂(GI)、活力促进剂和抑制剂(VI)。不同的控制分子成分在很大程度上可以映射到我们最终模型中出现的控制分子上。

为了验证我们的模型,我们模拟了一些预测(图S13S1文件). 我们预测了[G]=1mM,[G]=3mM,O的时空增长动力学2=[0.28mM],且[G]=25mM,[O]=0.07mM。在这种情况下,我们想提醒一下,我们的模型能够预测[G]=1mM,[O的生长动力学(L(t))2]=0.28mM,且[G]=25mM,[O2]正确=0.08mM。

为了量化图图7,7,,99和1010我们计算了曲线子集的log-likelihood(参见表3A)以及所有曲线的集合(请参见表3B). 我们假设测量误差是相加的、正态分布的以及独立的、同分布的(i.i.d.)。因此,测量数据的可能性意味着μ给定参数θ以及相应的模型预测x个(θ)由提供L(左)(θ)=12πσ2e(电子)x个第页((x个(θ)-μ)22σ2),其中索引在数据点上运行。数据点的不确定度由标准偏差决定,σ因此,具有较大不确定性的点σ重量较轻。尽管在单个剖面上存在一些偏差,但考虑ATP、乳酸和废物的最终模型最有可能解释实验数据。另一方面,可能性的增加与模型参数数量的增加和过度拟合的风险相关。特别是模型2和模型3在对数似然上有较小的相对差异。我们使用Akaike信息标准(AIC)作为计算参数数量的模型质量度量(参见表3D)这也证实了最终模型是最佳选择。我们注意到,参数的数量对模型的排序没有影响,因为它们的对数似然对数Δln的绝对差异L(左)比参数Δ的数量差大许多数量级k个(请参见表3B和3C).

表3

模型比较。

该表显示了将三个模型与实验数据进行比较的对数似然(A、B)和Akaike信息准则(D)。分别(a)和整体(B,D)比较了所有营养条件下的生长曲线以及特定时间的增殖、死亡和ECM的径向分布。我们还根据贝叶斯信息准则(BIC)计算了这些值,这导致了相同的排序(未显示)。注意AIC(2)中的罚款条款k个)和BIC(k个日志(n个),n个:数据点数量)在评估中不起作用,因为惩罚条款的差异远小于ln(4-5个数量级)L(左)(ΔAIC=AIC(模型行-index)-AIC(模型柱-index。)

原木类木材(模型2)(模型3)(模型4)#数据点
自然对数L(左)列车自动防护系统ATP和乳酸ATP、乳酸和废物n个
A类增长曲线(所有条件)-8.61e+02-7.42e+02-1.72e+0260
增殖(条件II和III,第17天)-1.83e+05-1.60e+05-1.83e+05460
死亡(条件II和III,第17天)-2.69电子+03-5.15电子+03-6.16电子+03532
ECM(条件II和III,第17天)-1.23e+06-1.23e+06-8.66e+05524
增殖(条件II和III,第24天)-1.97e+02-1.40e+021.18e+02532
死亡(条件II和III,第24天)-7.47e+022.16e+01-3.11e+02616
ECM(条件II和III,第24天)-1.82e+013.08e+013.26e+02609
B类全部的-1.42e+06-1.39e+06-1.06e+063333
C类#模型参数k个参考+2+9
D类(模型2)0.00东经+00-东经5.00度+04度-东经7.30分+05分
ΔAIC=2Δk个−2ΔlnL(左)(模型3)东经5.00度+04度0.00东经+00-6.80东经+05
(模型4)东经7.30分+05分6.80东经+050.00东经+00

总之,我们想强调本文所展示的关键信息:定量比较在不同实验条件和时间点下从细胞状态观察到的空间轮廓,生成的信息非常丰富,甚至可以推断时空生长和死亡模式的分子控制机制和参数。因此,仔细的成像、图像处理和图像分析可以作为推断组织生长和组织过程的机制知识的重要信息来源。这种方法将得到更充分的探讨。

我们的模型是混合的。它将细胞和分子作为单独的成分进行整合,将接触抑制的机械形式作为功能成分进行整合。接触抑制是一种代谢成分,由氧、葡萄糖、ATP、乳酸和废物组成,其中一些分子充当形态原。有趣的是,看看同一模型能在多大程度上捕捉到其他细胞系和其他细胞类型的生长行为。

我们认为,可能的成像技术和图像分析软件结合建模可以筛选多细胞球体的生长动力学和随后的定量分类。例如,EMT6/Ro电池([14])显示出与SK-MES-1细胞非常相似但不相等的生长表型:(1)细胞脱落罕见(与A549细胞相反,A549细胞在体外(和体内)表现出显著的脱落),(2)在充足的氧气供应下,外球体直径的生长不受葡萄糖的影响(或几乎不受影响),而(3)即使葡萄糖培养基保持高水平,氧气从0.28mM减少到0.07mM也会显著降低SK-MES-1细胞的生长,而在EMT6/Ro细胞中,只要营养培养基浓度保持高水平就没有观察到减少:这就明确了EMT6/Ro细胞和SK-MES-2细胞之间的差异。另一方面,葡萄糖影响坏死核心的大小。EMT6/Ro细胞中葡萄糖浓度从16.5mM降至0.8mM(氧气浓度为0.28mM)会增加坏死核心(通过比较细胞计数和直径可以推断,参见[34])如果葡萄糖从25mM降至5mM(0.28mM O),也可以在SK-MES-1细胞中观察到2). 然而,在SK-MES-1细胞中,更高葡萄糖的坏死核心([G]=25mM vs.5mM)发生较晚,但在大约24天时大小大致相同。

模型可以提供一个定量框架来测试这种差异在多大程度上可以归因于同一模型的参数,或者是否需要通过添加或删除机制来使用“另一个”模型。例如,在第一种情况下,同一模型是否可以通过只调整其参数而仅引起定量变化来捕获与MCS生长行为有关的广泛细胞系,或者在第二种情况下,一个人是否需要为一种细胞类型实施在另一种细胞的生理参数范围内未观察到的机制?考虑到有多少多细胞球体仍被用作生物模型系统,我们认为作为一项社区工作进行这样的分析是非常有意义的,尽管这可能被视为第一种观点,因为多细胞球体的生长动力学可以在20-30年前测量出来,是一种“逐步回归”。如果管道是为此目的建造的,那么现代技术在很大程度上可以实现自动化分析,从而避免了本文中应用的大量手动和繁琐的分析。添加越来越多的细胞系将允许完善一开始的模型,并放大到迄今为止仍然高度简化的机制表示,而不会有大量无法控制的拟合参数的威胁。这样,就可以识别必要的模型组件并调整连接组件的参数。

材料和方法

细胞培养

本研究中使用的NSCLC细胞系SK-MES-1来自ATCC(美国弗吉尼亚州马纳萨斯),并在37℃和5%CO的湿度控制培养箱中培养2150厘米2DMEM组织培养皿(TPP)(Dulbecco改良的Eagle's培养基,伦敦,Verviers,比利时),补充10%的FCS(胎牛血清,南美洲,GIBCO,德国)和1%的青霉素/链霉素(Biochrom AG,德国柏林)。在第10代和第30代之间使用细胞,并以1:4到1:6的比例传代。如Stacey和Doyle 1997所述,培养物定期检测支原体污染,结果总是阴性。用于测试培养物的其他培养基为DMEM w/o葡萄糖(德国GIBCO),补充10%FCS和1mM葡萄糖(德国Carl Roth GmbH),以及DMEM,补充1.0 g/L葡萄糖w/o L-谷氨酰胺(比利时LONZA,Verviers),补充10%FCS和25mM L-谷氨酰胺。此外,细胞保存在37℃和5%CO的湿度控制培养箱中2和正常大气20%O2(相当于0.28mM)或5%O2(对应0.07mM)。这种选择允许与文学中的经典作品进行比较(例如[12])并考虑到肺部富含氧气。NSLC细胞来源于肺上皮,至少部分直接接触吸入空气,因此至少最初不限于血氧水平。

解决

将6g甲基纤维素(德国SIGMA)置于250ml培养基中,60℃搅拌20min,制备2%Methocel溶液。然后再添加250ml培养基,并在4℃下搅拌过夜。将溶液等分于50ml Falcon试管中,以4000 rpm离心两次99分钟,以在试管底部浓缩长甲基纤维素纤维。然后将管子竖直存放在4°C下。

2%琼脂溶液是通过在250ml H20中溶解5g细菌级琼脂(德国GIBCO)制备的。将该溶液进行高压灭菌,然后保持在60℃,直到24孔板被涂覆。

球体的生成和培养

对于具有确定大小和细胞数的球体的生成,采用了悬滴试验。在这里,首先对细胞进行胰蛋白酶消化、计数,然后离心并在含有20%Methocel-Solution的培养基中重新悬浮。20滴微升用吸管将这种细胞悬浮液移到一个150的盖子上厘米2-培养皿,随后小心地倒置到培养皿上。在这种方法中,产生的悬滴中的所有悬浮细胞都有助于形成单个球体。挂滴48小时后,用切好的200ml移液管尖端小心地移液,将球体转移到24孔板上,每个孔的相应培养基中各放一个球体。这些井预先涂有250层微升各2%琼脂,以防止球体附着。每周更换一次介质。采用了四种不同的葡萄糖/氧气条件(参见表1). 球状体培养时间超过48天。

数据采集

球形增长曲线

通过一台配备AxioCam Erc5s相机(德国蔡司)的奥林巴斯IX-70显微镜每周两次采集亮场图像来监测球体的生长。使用ImageJ软件版本1.43u确定球体的投影面积。使用Microsoft Excel计算平均面积和标准偏差。每个时间点和条件至少评估4个球体。

冷冻切片和免疫荧光染色

在指定的时间点取出球体(参见表4),包埋在TissueTek(SAKURA Finetek,荷兰)低温介质中,在液氮上冷冻并加工用于冷冻切片。6–8的冷冻微米将厚度安装在载玻片上,风干,然后在室温下用4%PFA固定20分钟,在室温下在PBS中洗涤30分钟,用冰凉的0.1%TritonX-100/0.1%柠檬酸钠在冰上渗透2分钟。根据制造商的协议,我们使用了原位细胞死亡检测试剂盒(编号:12 156 792 910 Roche Applied Science)对死亡细胞进行染色。分别用抗人Ki67、小鼠单克隆抗体(No.M7240 DakoCytomation,Glostrup,Denmark)和抗胶原IV兔多克隆抗体(No 10760,Progen,Heidelberg,Germany)在12%BSA中对增殖细胞和ECM组分胶原IV进行染色。使用的次要抗体是12%牛血清白蛋白中的抗鼠、驴、Cy3(编号715-166-151,德国汉堡迪亚诺娃)和抗兔、山羊、Alexa 488(编号A-11034,美国/荷兰分子探针)。在这两种情况下,12%牛血清中的细胞核都用HOECHST(Bisbenzimide H 33258 SERVA,德国海德堡)染色。使用装有外荧光光学元件的徕卡DM RBE(德国徕卡)显微镜对切片进行检查和拍照。

表4

冷冻切片的时间点。
姓名时间
T3航站楼17天
T4类24天
T5类34天
第6页46天

定量图像分析

采集的图像(见上文)是原始数据。它们由一组具有位置的像素组成(x个,)N个2红色、绿色和蓝色三个颜色通道的颜色强度由

c小时n个n个e(电子)[x个,][0,1),c小时n个n个e(电子):N个2R(右),
(12)

哪里通道∈ {红色,绿色,蓝色}. 下面将介绍用于预处理原始图像(例如减少噪声)和识别或分割对象(例如细胞核、球体边界)的工具。然后,如下文所述,对预处理图像进行了定量分析。

细胞核分割

细胞核用HOECHST染色(蓝色通道,见图2). 为了分割单个核,作为预处理步骤,使用核大小为3×3(见下文)的四个中值滤波器对图像进行平滑处理。较大的内核会使图像过于平滑。在下文中,分水岭算法(见下文)应用于蓝色反转通道1−[x个,] ([x个,]∈[0,1))对于高于某个阈值的像素[x个,]蓝色>HOECHST公司(请参见表4). 引入阈值可以避免对整个图像进行分割,只关注被HOECHST清晰染色的区域,因此与细胞核相关。

分段(分水岭)

分水岭算法是一种使用分水岭概念将图像分割为不同区域的分割算法。参考文献中首次提出[76],后来通过参考文献中提出的快速算法进行了增强[77]. 该算法的思想是将图像视为风景,其中颜色强度[x个,]对应于振幅。示例图像的横向表示如所示图4。景观的局部最小值由集水区确定,集水区中的水会聚集。为了检测属于不同盆地的像素,地形被连续“淹没”,当前高度的像素与其相邻像素的盆地相关联(已经与盆地相关联)。当两个盆地相互接触时,就会在它们之间形成分水岭,并停止扩张。该算法要么在选定的最大高度(颜色强度)停止,要么在所有盆地都无法再扩展时停止。

降噪(中值滤波器)

由于每个局部最小值产生一个盆地,因此在执行分割之前,必须平滑图像,从而减少图像中的噪声,以避免过度分割为多个碎片。为此,应用了许多不同的线性(例如,均值滤波器、高斯模糊)和非线性滤波器(中值)。我们使用了一系列中值滤波器,这些中值滤波器可以实现边缘保持平滑,即在去除噪声的同时,与高斯模糊相比,它保留了图像的原始特征(例如核形状)。脉冲响应′[x个,]对于每个输入像素(x个,)是某个“窗口”大小内相邻条目的中位数n个×n个:

[x个,]=e(电子)d日n个|x个-x个|,|-|[x个,],
(13)

哪里= (n个− 1)/2.

球形腔和边界

估算球体边界的基础是细胞核(见上文)。通过应用一系列膨胀过滤器,实现了细胞核周围细胞形状的粗略近似。膨胀可以描述如下:

[x个,]=x个|x个-x个|,|-|[x个,].

最后,通过填孔算法(例如通过洪水填充)去除球体中心的空白区域(坏死区域)。图4在示例图片中,以绿色显示了细胞核周围估计的球形管腔。假设球体边界是绿色(流明)和黑色(背景)区域之间的界面。

径向剖面、装仓和平均

由于细胞表型(增殖型、静止型和死亡型)和ECM密度的空间排列可以假定为近似同心,因此以下各节重点讨论如何提取染色数量的空间统计分布。作为图4结果表明,球体并非完全球形,但通常略微拉长,表面不规则。为了说明这一点,所有统计数据都是作为到球体边界的距离的函数进行的,定义为ΔL(左)与到质心的距离相反,如果MCTS是完美的球形,则选择该方法。为了估算径向剖面,采用了面元法。即ΔL(左)被划分为小间隔ΔL(左)= [小时(),小时(+1),所谓的箱子小时= 1微米长度(图像分辨率:像素=0.98微米2). 然后每个包含至少一个像素的核,其到最近边界像素的距离为ΔL(左)∈ ΔL(左),进入bin的统计。通过计算具有相同索引的相应箱子的平均值,从单个图像的径向轮廓生成平均曲线。

细胞核密度和细胞直径

局部细胞密度可以根据每个区域的细胞核数来估计。它的反比是每个原子核的面积。原子核是Voronoi图的构造点。在Voronoi图中,所有靠近一个构造点的点比任何其他构造点都属于一个Voronoi-单元。Voronoi细胞呈多边形。因此,属于一个细胞核的Voronoi细胞被鉴定为具有该细胞核的细胞的2D投影区域。我们估计细胞直径为16.8(±0.6)微米(图12).

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为pcbi.1004412.g012.jpg
细胞密度和细胞大小估计。

左:所有分段细胞核的Delaunay三角剖分通过其对偶Voronoi图来估计细胞大小。右:平均细胞直径作为到球体边界距离的函数。黑色曲线是6张图像(条件III,T3)的平均轮廓,箱子大小为1微米红色曲线是窗口大小为10的滑动平均值微米.

自动染色检测:阈值

除了对所有细胞核进行HOECHST染色外,切片的MCTS还使用Ki67进行了特异性染色,并使用TUNEL进行了细胞死亡染色。

为了量化细胞增殖,必须区分Ki67阳性核(红色)和Ki67阴性核(仅蓝色)。此外,必须消除背景噪声(由于不同层的染色、图像伪影等),以尽量减少“假阳性”和“假阴性”细胞核的数量。

通过强度阈值,67,我们接受了一个像素(x个,)仅当其红色强度为Ki67阳性红色(x个,)高于某个值:

K(K)67(x个,)=1,如果第页e(电子)d日(x个,)K(K)67,0,其他的.
(14)

通过分数阈值,φ67,我们决定是否X(X)通常由许多像素组成的Ki67是否为阳性:

K(K)67(X(X))={1,如果1(x个,)X(X)1(x个,)X(X)K(K)67(x个,)φK(K)67,0,其他的.
(15)

参数67φ67控制分类,并且必须选择这样的结果,以使假阴性和假阳性细胞核的数量最小化。

检测阈值的选择

阈值的选择使得分类的灵敏度和特异性同时且稳健地最大化。灵敏度(TPR=真正比)由下式给出

T型P(P)R(右)=T型P(P)T型P(P)+F类N个,
(16)

其中TP表示真阳性,FN表示假阴性核。特异性(TNR=真阴性比率)定义为

T型N个R(右)=T型N个T型N个+F类P(P),
(17)

TN为真阴性,FP为假阳性核。一种“完美”的方法将产生特异性和敏感性,即不会检测到假阴性和假阳性。为了区分TP、FN、TN和FP,需要参考(“金标准”)。为此,对部分图像进行了Ki67阳性(真阳性)和Ki67阴性(真阴性)细胞核的人工评估(图13). 随后,对自动图像分析方法的阈值进行校准,以使TPR和TNR最大化。这在两个阈值的特定范围内都是正确的(图14). TPR和TNR的同时优化使以下公式给出的分类错误最小化

ϵ=F类P(P)+F类N个T型P(P)+F类P(P)+T型N个+F类N个.
(18)

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自动与手动检测Ki67阳性核。
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阈值参数的敏感性分析67φ67.

图中显示了手动检测与自动检测相比较的灵敏度、特异性和分类误差{67,φ67}.

图14显示了TPR、TNR和ϵ自动检测在基准图像中的应用图13(左)对于宽参数范围67φ67.

对于0.35≤,自动和手动Ki67检测之间达成了良好的一致性(小分类错误)67≤0.5和φ67≤ 0.2. 以下使用的参数值表示为表5手动和自动检测的Ki67阳性细胞核的相应比较如所示图13.

表5

图像处理参数。
参数价值
HOECHST公司0.15
隧道0.45
φ隧道0.20
670.35
φ670.05

元胞自动机

细胞自动机模型,它扩展了以前的工作([43,47]),由一组规则定义:

单元格

一个生物细胞可以占据Voronoi图上的一个或两个位置(图5,中的图S1S1文件). 从现在起,Voronoi晶格位点一词被用来区分Voronoi细胞和生物细胞。在细胞周期开始时,即分裂后,它总是只占据一个Voronoi晶格点。在细胞周期的后期(如下所述),它也会通过占据相邻的晶格位置而生长。

细胞周期进展/复制

细胞周期被细分为d日间隔(图5). 在细胞周期开始时,细胞内部计数器M(M)设置为M(M)= 0. 根据正文和支持信息中详述的条件,营养条件是否允许增殖(S1文件)然后细胞进入细胞周期。过渡模仿了这一点M(M)= 0 →M(M)= 1. 增殖细胞从M(M)=0,带速率d日 k个div公司直到M(M)=d日.在这里k个div公司=τ−1,其中τ是细胞周期时间的期望值,取决于环境条件(参见等式11). 注意,转换是泊松过程;新兴的细胞周期时间总分布是一个Erlang分布[43].

A) 细胞生长

M(M)=d日细胞通过占据邻近的Voronoi晶格点来生长,而不是占据它已经占据的晶格点。因此,对于选择<d日质量加倍发生在细胞周期的某个地方,但不像经典伊甸园模型那样发生在细胞分裂的那一刻[78]或最近的工作[43]. 如果所有相邻晶格点都已被占据,则该单元首先通过将相邻单元推向最近的自由晶格点来释放其中一个晶格点,然后占领原始晶格点和释放的相邻晶格点(有关详细信息,请参阅补充材料)。

B) 细胞分裂

什么时候?M(M)=d日细胞分裂为两个子细胞,每个子细胞占据一个Voronoi晶格点。分裂后,每个细胞决定是重新进入细胞周期还是(永久)静止。重新进入细胞周期的概率,第页重新,取决于环境条件(参见等式4).

细胞死亡

在正文中指定的特定条件下,单元格会以以下速率死亡k个nec公司(请参见公式9).

细胞溶解

死亡细胞的溶解速度k个赖氨酸因此,相应的Voronoi晶格点被释放。

细胞迁移

细胞可以通过在另一个细胞生长时被推动或主动迁移来移动。主动迁移是通过跳转到邻近的Voronoi站点来模拟的。跳跃速率的选择取决于所考虑的生物过程:

A) 随机行走/自由扩散

在无偏差小区移动的情况下,已选择跳频率λ=λ/n个为所有人n个相邻站点= 1…n个这对应于扩散过程λ= 6D类/2,带有D类扩散系数和l是两个相邻晶格点之间的平均距离。

B) 有偏随机游走

多细胞构型的动力学由找到某种多细胞构型所需的多元概率的主方程决定,X(X)哪里X(X)= {x个1,x个2,…}表示多细胞配置的状态向量。一种方法是枚举所有晶格位置,并用x个k个格点处胞的状态矢量k个。如果此晶格点为空,则状态为零。然后通过以下公式对动态进行形式化

第页(X(X),t吨)t吨=X(X)e(电子)-ΔE类X(X)X(X)F类T型·(τX(X)X(X))-1·第页(X(X),t吨)-e(电子)-ΔE类X(X)X(X)F类T型·(τX(X)X(X))-1·第页(X(X),t吨).

在细胞间粘附Δ的情况下E类X(X)X(X)表示从电流(配置)移动时,电池间触点的变化引起的能量差X(X))到新的晶格位置(配置X(X)′).第页(X(X),t吨)是系统处于配置状态的概率X(X)时间t吨. τy→z表示从y到z的两个连续跳之间的时间。FT型是特征波动能量[1]. 补充信息中解释的另一种方法是枚举所有单元格,以及每个单元格可以执行的进程。然后,按照与其相对权重相对应的概率选择进程,计算为该进程的速率除以所有其他进程的速率之和(有关算法详细信息,请参阅补充信息)。

新陈代谢

葡萄糖和氧气是大多数生物细胞的主要代谢物。在正常组织中,它们主要由血管提供。肿瘤球体作为无血管肿瘤(体内)主要由边界扩散到内部的营养物质供给。在一定大小以上,它们显示出缺乏葡萄糖(营养不足)和/或氧气(缺氧)的区域。如果通过肿瘤边界进入肿瘤的营养物质在到达肿瘤中心之前被完全消耗掉,就会发生这种情况。

我们通过反应扩散方程模拟葡萄糖和氧气的扩散和吸收:

t吨u个=·(D类u个(σ)u个)+第页u个(σ,u个),
(19)

哪里D类u个是分子扩散系数第页u个(σ,u个)表示反应项,u个∈ {G公司,O(运行)}. 营养介质中的扩散系数与肿瘤球体内部的扩散系数选择不同。反应项模拟了选择的细胞消耗

第页u个(σ,u个)=-q个u个(u个)σ=-q个u个(u个)k个δ(第页-第页k个).
(20)

葡萄糖和氧气消耗率

在EMT6/Ro细胞在不同培养基浓度下的实验中,观察到两种分子中每一种的细胞消耗率相互依赖([12,79]). Casciari等人[80]提出了一种扩展的迈克尔-孟坦葡萄糖消耗率,

q个G公司=V(V)G公司x个[G公司][G公司]+k个G公司G公司,
(21)

和氧气,

q个O(运行)2=V(V)O(运行)2x个[O(运行)2][O(运行)2]+k个O(运行)2O(运行)2.
(22)

通过与他们的数据直接比较,我们发现以下交联项很好地符合实验观察到的消耗率(图15):

V(V)G公司x个=q个G公司x个1-1-q个G公司n个q个G公司x个[O(运行)2][O(运行)2]+k个G公司O(运行)2,V(V)O(运行)2x个=q个O(运行)2x个1-1-q个O(运行)2n个q个O(运行)2x个[G公司][G公司]+k个O(运行)2G公司.
(23)

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为pcbi.1004412.g015.jpg
氧气(右)和葡萄糖(左)消耗。

图表显示了EMT6/Ro细胞葡萄糖和氧气消耗率的实验测量值之间的比较[80](点)和等式预测2122(网格)。这些速率是局部细胞外葡萄糖和氧气浓度的函数。(原始值从摩尔/细胞/百万分之一/小时(=摩尔//小时)平均电池容量为2700微米: 1摩尔/细胞/= 13.3 × 1017 百万分之一/小时.)

在本文中,我们假设SK-MES-1细胞的消耗率的函数形式和参数值相同,因为SK-MES-1细胞没有EMT6/Ro细胞的葡萄糖和氧气消耗率的等效测量值。方程式的参数21,2223根据推断[12](请参见图15表6).

表6

葡萄糖和氧气消耗的模型参数。
参数单位价值
k个G公司G公司 百万分之一0.068
k个G公司O(运行)2 百万分之一0.031
q个G公司n个 百万分之一/小时186.67
q个G公司x个 百万分之一/小时706.67
k个O(运行)2O(运行)2 百万分之一0.031
k个O(运行)2G公司 百万分之一0.100
q个O(运行)2n个 百万分之一/小时120
q个O(运行)2x个 百万分之一/小时306.66

ATP作为电池的能量货币

由于细胞周期进展或细胞死亡的葡萄糖或氧依赖阈值导致结果与实验观察结果不一致,在下一步中,我们研究了葡萄糖和氧对细胞分裂和死亡的潜在影响。葡萄糖除了用作细胞材料外,还主要用于获取细胞维持和繁殖所需的能量。这是通过葡萄糖氧化而发生的,在标准条件下,葡萄糖氧化的读数为[54]:

C类6H(H)12O(运行)6+6O(运行)26C类O(运行)2+6H(H)2O(运行).

自由能(ΔG公司= −2880千焦/摩尔)因此存储在ATP中。下面我们通过总结反应,以高度简化的形式表示葡萄糖和氧气对ATP生成的贡献。对于一摩尔葡萄糖,在糖酵解过程中,

G公司u个co(o)e(电子)+2N个A类D类+k个12P(P)第页u个v(v)t吨e(电子)+2A类T型P(P)+2N个A类D类H(H).
(24)

在厌氧条件下(缺氧),丙酮酸代谢为乳酸,以将NADH转化回NAD+(请参见等式29).

否则,如果有足够的氧气,两摩尔NADH通过氧化磷酸化转化为4-6个ATP分子,这取决于穿梭系统将NADH的电子通过线粒体膜从胞质溶胶输送到线粒体(线粒体内膜对NADH或NAD是不可渗透的+). 对于甘油-3-磷酸钠,它是4ATP。当糖酵解发生在胞浆中时,柠檬酸循环发生在线粒体基质中,氧化磷酸化发生在线粒体内膜中。在足够的氧气存在下,在需氧条件下,将1摩尔丙酮酸转化为1摩尔乙酰辅酶A,并引入柠檬酸循环,从而产生1摩尔NADH。在柠檬酸循环中,从1摩尔乙酰辅酶A、3摩尔NADH、1摩尔FADH2,并生成一个GTP。通过氧化磷酸化,1摩尔NADH产生3摩尔ATP,1摩尔FADH2产生2摩尔ATP。每摩尔NADH或FADH2进入氧化磷酸化,1/2 mol O2已消耗。综上所述,在有足够氧气的情况下,对于1摩尔丙酮酸,进入柠檬酸循环,4摩尔NADH产生12摩尔ATP,1摩尔FADH2产生2摩尔ATP,并产生1摩尔GTP,对应于1摩尔ATP。糖酵解产生的NADH(参见等式24)只有在有足够氧气的情况下才会转化为ATP,我们将每NADH产生的2–3 ATP添加到需氧途径反应的r.h.s.中,将NADH添加到l.h.s.:

P(P)第页u个v(v)t吨e(电子)+N个A类D类H(H)+O(运行)2k个217(18)A类T型P(P)+N个A类D类+.

如上所述,反应部分发生在细胞质中,部分发生在线粒体中,NADH的ATP产量取决于所使用的穿梭系统,这就是ATP产量的数量可能略有不同的原因。我们在这里继续计算,每摩尔丙酮酸盐有17摩尔ATP。

我们假设细胞内葡萄糖和氧气浓度的变化主要取决于代谢率,k个1k个2以及细胞外空间的吸收率,q个G公司q个O(运行)2,

d日[G公司]d日t吨=-k个1[G公司]+q个G公司,
(25)

d日[O(运行)2]d日t吨=-k个2[P(P)第页u个v(v)t吨e(电子)][N个A类D类H(H)][O(运行)2]+q个O(运行)2.
(26)

ATP浓度的变化可以写为:

d日[A类T型P(P)]d日t吨=2k个1[G公司]+17k个2[P(P)第页u个v(v)t吨e(电子)][N个A类D类H(H)][O(运行)2].
(27)

假设方程的平衡条件2526我们可以很快重新制定等式27,如果是[G公司] > [G公司]致命一击获得

d日[A类T型P(P)]d日t吨=2q个G公司+17q个O(运行)2=第页A类T型P(P).
(28)

万一[G公司] ≤ [G公司]致命一击丙酮酸的浓度为零,因此不产生ATP。为了避免完全缺乏葡萄糖的细胞仍然能够产生ATP,我们假设葡萄糖的临界量为[G公司]致命一击= 0.01百万分之一.

图8说明了细胞如何在营养不良(低血糖)和缺氧(低氧)的不同情况下调节葡萄糖和氧气的消耗,从而使ATP的产量保持在1000到1700×10之间−17 百万分之一/小时每个单元格。这一观察结果表明,连续分裂的EMT6/Ro细胞至少需要1000个百万分之一/小时另一方面等式28这意味着EMT6/Ro细胞在充足的葡萄糖和氧气供应下仅代谢克雷布斯循环中消耗的10%的葡萄糖(参见图8). 其他90%要么发酵成乳酸,要么用于构建对细胞繁殖仍然重要的其他细胞成分(如氨基酸、核苷酸)。Jiang等人[22]表明厌氧代谢葡萄糖的比例低得多(75%)。

乳酸——厌氧菌代谢的副产物

在厌氧条件下,细胞会积累糖酵解过程中生成的丙酮酸分子,因为在没有氧气的情况下,这些分子无法在柠檬酸循环(或克雷布斯循环)中进一步处理。另一方面,NADH公司不能被氧化回北美+这是糖酵解继续进行所必需的。克服以下缺点北美+,丙酮酸通过加入NADH公司.

P(P)第页u个v(v)t吨e(电子)+N个A类D类H(H)k个L(左)ct吨t吨e(电子)+N个A类D类+.
(29)

这个过程称为乳酸发酵。

在模型中,我们假设乳酸是厌氧代谢葡萄糖的直接副产物,即在缺氧条件下。对于进入厌氧乳酸发酵的每个葡萄糖分子,细胞将产生2个乳酸分子。假设乳酸产生率为第页L(左)≈ 2q个G公司(其中q个G公司对应于葡萄糖代谢的无氧速率)和乳酸从细胞中泄漏并扩散到组织中,导致乳酸动力学的以下公式

[L(左)]t吨=·(D类L(左)(σ)[L(左)])+2q个G公司-q个O(运行)26,
(30)

哪里D类L(左)是扩散系数(参见中的表S1S1文件),q个G公司葡萄糖消耗率(等式21)和q个O(运行)2耗氧量(等式22). σ是局部细胞密度。

细胞外基质

ECM的成分由常驻细胞产生,并通过胞吐分泌到ECM中[81]. 一旦分泌,它们就会与现有基质聚集。在模型中,ECM由细胞产生,在间隙内扩散并以恒定速率降解

[E类C类M(M)]t吨=D类E类C类M(M)Δ[E类C类M(M)]+k个e(电子)n个E类C类M(M)σ-k个d日e(电子)E类C类M(M)[E类C类M(M)],
(31)

其中是活细胞的密度[发动机控制模块]是无量纲的,与ECM浓度除以参考浓度成比例,在Col IV染色显微照片中,参考浓度对应最高的颜色强度。因此[发动机控制模块]范围从0到1,允许与图像数据直接比较。

废弃物

因凋亡或坏死而死亡的细胞最终被溶解,并将其细胞内物质释放到间质中。我们假设这些分子中的一些抑制了其他细胞的细胞周期进程。动力学由反应扩散方程建模:

[W公司]t吨=D类W公司Δ[W公司]+k个e(电子)n个W公司σD类-k个u个第页t吨W公司σ[W公司],
(32)

哪里σD类是死亡细胞(无论是坏死还是凋亡)但尚未溶解细胞的局部密度[W公司]是废物的密度,D类W公司是废物分子扩散常数,k个e(电子)n个W公司是废物分子泄漏到间隙空间中的速率,k个第页u个t吨W公司是活细胞吸收废物分子的速率。

时间演变与数值处理

细胞动力学由描述多细胞配置概率的时间演变的主方程建模。分子动力学由确定性偏微分方程组建模。

细胞动力学:Gillespie算法

主方程通过中提出的随机模拟算法进行数值求解[82]. 其想法是调查到下一个事件(细胞迁移、细胞周期进展、坏死、凋亡、分裂…)的预期时间间隔,然后随机选择一个事件,其中每个选择的概率反映了与所有可能的配置更改相比的相对权重。有关此部件的详细说明,请参阅[83].

分子动力学:稳态溶液

由于细胞动力学(>小时)和分子动力学(<分钟)的时间尺度相差几个数量级,我们可以假设分子浓度在细胞结构发生变化后很快达到其稳定状态。因此,我们通过求解PDE系统(等式19,28,30,3132)它们的稳态解。我们验证了选择较小的时间步长对模型动力学没有任何显著影响,并且通过求解所选参数组合的全时间相关方程,与细胞生长的时间尺度相比,浓度达到其稳态值的时间尺度较短,这里考虑的是分裂和死亡。为了计算稳态解,所有的偏微分方程都是通过有限差分格式求解的,扩散算子的中心差分离散化是在用于构建由细胞填充的非结构化晶格的规则晶格上进行的(参见S1文件). 葡萄糖和氧气的耦合方程采用半隐式迭代格式进行整体求解。其他偏微分方程采用相同的空间离散化求解。BiCGSTAB用于解决所有线性问题。

支持信息

S1文件

详细介绍肿瘤生长模型、模型开发、附加模拟结果和图像分析的附加信息。

(PDF格式)

资金筹措表

作者感谢DEASE(EU FP6,编号:MEST-CT-2005-021122)、LungSys(BMBF,编号:031602H)、INVADE(INSERM,癌症计划,Call 2012)和NOTOX(EU-FP7)的支持。资助者在研究设计、数据收集和分析、决定出版或编写手稿方面没有任何作用。

数据可用性

所有相关数据都在论文及其支持信息文件中,但由于缩微成像图像的数量和文件大小较大,某些数据只能通过以下方式下载:http://ms.izbi.uni-leipzig.de/downloads/TumorSpheroidData.zip.

工具书类

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