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表观遗传学。2015年3月;10(3): 179–190.
2015年2月3日在线发布。 数字对象标识:10.1080/15592294.2015.1013792
预防性维修识别码:项目经理4623467
PMID:25647085

硒的表观遗传效应及其对健康的影响

摘要

表观遗传标记的改变与正常发育和细胞分化以及常见慢性疾病的进展有关。这些标记的可塑性为疾病治疗和预防策略提供了潜力。大量和微量营养素已被证明部分通过对表观基因组的影响来调节疾病风险。必需微量营养素硒通过硒蛋白和一系列具有生物活性的膳食硒化合物及其代谢产物影响人类健康结果,例如癌症、心血管病和自身免疫病。这篇综述对目前有关膳食和合成硒化合物的表观遗传效应的文献进行了评估,其中包括表观遗传信息标记和编辑的调节以及对单碳代谢的干扰,后者为DNA甲基化提供甲基供体。本文讨论了硒与表观基因组相互作用对人类健康的相关性,并指出未来的研究将有助于加深对硒引起的表观遗传效应的理解。

关键词:CBS(胱硫蛋白β裂解酶)、组蛋白修饰、同型半胱氨酸、microRNA、亚硒酸盐、硒代半胱氨酸和硒代蛋氨酸

介绍

表观遗传学描述了基于染色质的有丝分裂稳定机制,该机制在不改变基因组DNA序列的情况下调节基因表达。这些机制包括DNA修饰[胞嘧啶甲基化为5-甲基胞嘧啶(5 mC)和5mC氧化产物]以及组蛋白修饰(乙酰化、甲基化和许多其他),1干扰染色体包装和反作用因子的结合。DNA/RNA测序技术的最新进展使得在全基因组水平上研究表观遗传标记成为可能,从而深入了解所谓的表观基因组。多中心联盟,即DEEP(德国表观基因组计划,德国表观基因计划,www.deutsches-epigenom-programm.de)和IHEC(国际人类表观基因组联合会,www.ihec-epigenomes.org网站)目前正在破译健康和疾病组织/细胞类型的高分辨率表观基因组图,以获得标准和疾病特异的表观基因组图谱。根据目前的知识,表观基因组在生物体的一生中都表现出可塑性,2,3在细胞分化和对多种外部刺激的反应中。表观基因组的改变也与癌症的发生和进展有关4,5以及其他复杂疾病,如自身免疫性疾病,6炎症性肠病,72型糖尿病,8和心血管疾病。9大多数这些关联的因果关系尚不清楚,但考虑到表观遗传标记的主要可变性(与细胞基本稳定的DNA结构相比),以表观基因组为靶点可能会为疾病治疗和预防提供一种有希望的策略。上述常见疾病风险和进展的主要决定因素是遗传易感性和环境因素,如生活方式和饮食。研究发现,饮食模式、特定(微量)营养素和次生植物化合物会改变表观遗传标记,10,11越来越多的证据表明,食物成分对健康结果的调节是(至少部分是)由其表观遗传效应介导的。虽然大量营养素(例如用作实验性高脂肪、高蛋白或限制热量饮食)也被证明可以改变表观遗传标记,11由于大量营养素引起的多重混杂效应以及成分的变异性,很难对这些观察结果进行机械解释。因此,大多数研究评估了对特定微量营养素和次生植物化合物干预的表观遗传效应。在这方面,硒(Se)是一种重要的微量元素,存在于一系列生物活性化合物中,是一种特别有趣的微量营养素。在使用细胞系统和动物的研究中,以及在有限数量的人类研究中,已经发现它可以修改表观遗传标记。硒对维持最佳健康的重要性基于两大类硒物种发挥的生物功能:硒蛋白家族成员,硒蛋白家族由人类25个基因编码,含有共翻译插入的硒半胱氨酸,12其次,饮食中所含或硒代谢产生的低分子量硒化合物的非蛋白质库。具有良好特征的硒蛋白,如谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)、硫氧还蛋白还原酶(TrxR)和碘甲状腺原氨酸脱碘酶(DIO)是氧化还原酶,充当抗氧化酶、氧化还原敏感信号通路和甲状腺激素代谢的调节器。其他硒蛋白促进硒转运(硒蛋白P)、硒蛋白生物合成(硒酸合成酶2),并参与维持内质网内环境稳定(例如,硒蛋白S、K和15-kDa硒蛋白)。13硒蛋白对小鼠发育和健康的重要性已在单基因转基因小鼠中得到证实14,15或总计16硒蛋白耗竭。此外,硒蛋白生物合成基因受损的人患有严重的多系统疾病。17小鼠和人类补硒研究的生物学结果(例如,疾病发生率、对转录组、表观基因组和硒状态的影响,18,19(以及其中的参考文献)已知不仅受硒剂量的影响,还受其化学形式和补充前硒状态的影响。因此,我们将简要介绍硒需求和膳食硒化合物代谢的概述。随后,我们总结了天然和合成硒化合物对表观遗传标记和编辑的影响的现有知识,并讨论了它们与健康和疾病的可能相关性。目的是探讨硒与表观基因组相互作用的生化基础,为此,我们重点研究了硒化合物对表观遗传机制(例如DNA甲基转移酶、组蛋白修饰酶、单碳代谢)的直接和间接影响。目前的知识无法完全回答这些问题,因此我们指出哪些研究可能有助于我们在未来扩大对Se-epigenome相互作用的理解。

膳食硒化合物的硒需求和代谢

在西方国家,显性硒缺乏症相对罕见。与硒缺乏相关的一种临床状况是克山病,该病发生在中国的一个省份,受影响的人每天摄入的硒总量≤15μg。13世界卫生组织将硒的可容忍摄入量上限定义为每天400微克,20大多数健康机构建议硒摄入量为每天55至70μg。19这些建议通常基于优化血浆中GPx3和SeP活性/表达所需的总硒摄入量,这两种是硒状态的常用生物标记物。血浆GPx3活性在40–47μg Se/天时得到优化,21而SeP需要~105μg Se/天。22符合SeP优化(124μg Se/l)的血浆硒浓度范围与降低死亡率风险和预防多种癌症相关。19超过这些硒水平的补充似乎不会带来额外的益处,但可能会增加2型糖尿病的风险。23主要的膳食硒化合物是氨基酸硒代蛋氨酸(SelMet)、硒代半胱氨酸、硒代甲基硒代半月氨酸以及阴离子亚硒酸盐和硒酸盐(有关硒化合物的列表和食物中硒的含量,请参阅19). 硒化合物通过不同的途径代谢(显示在图1)硒化氢。硒化氢甲基化为排泄物形式(二甲基硒化物、三甲基硒、Se-甲基-N-乙酰硒代己糖胺)或磷酸化为硒酸盐,用作氨基酸硒代半胱氨酸(Sec)的前体,该前体是从Sec特异性tRNA(Sec-tRNA)共翻译插入的[Ser]秒)变成硒蛋白。亚硒酸盐通过谷胱甘肽酰化还原为亚硒酸(/二)谷胱甘苷,或通过谷氨酰氧还蛋白直接还原为硒化物。SelMet的代谢通过转硫途径进行,转硫途径由相同的酶催化,这些酶将蛋氨酸转化为半胱氨酸,再转化为Sec,后者由硒代半胱氨酸β裂解酶(SBL)转化为硒化物和丙氨酸。在类似的反应中,SBL从Se-甲基硒代半胱氨酸生成甲基硒醇。甲基硒-氨基酸Se-甲基硒代半胱氨酸和SelMet可通过谷氨酰胺转氨酶K和L-氨基酸氧化酶分别转氨化为β-甲基硒基丙酮酸和α-酮-γ-甲基硒化丁酸(参见24参考硒代谢)。

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膳食硒化合物的代谢。主要的有机和无机硒化合物通过硫氧还蛋白还原酶、谷胱甘肽还原酶和谷氧还蛋白的转硫、转氨基和还原进行代谢。绿色背景标记的参与酶。有关详细信息,请参阅文本。GTK=谷氨酰胺转氨酶K;AAO=L-氨基酸氧化酶;GR=谷胱甘肽还原酶;CGL=胱硫醚γ-裂解酶;CBS=胱硫醚β合成酶;SBL=硒代半胱氨酸β裂解酶。

硒对DNA和组蛋白表观遗传修饰的影响

硒对DNA甲基化的影响

基因组DNA中胞嘧啶的甲基化是高等生物中最常见、可能也是研究最多的表观遗传修饰。甲基在DNA甲基转移酶(DNMT1、DNMT2、DNMT3A、DNMT3B和DNMT3L)催化下从供体底物S-腺苷蛋氨酸(SAM)转移到胞嘧啶的5-碳位置,当其与3′-鸟苷结合时,生成5-甲基胞嘧啶(5 mC)。另一方面,DNA去甲基化不是直接催化的,而是由DNA复制耦合稀释导致的,其中5 mC或5 mC氧化产物[5-羟甲基胞嘧啶(5 hmC)、5-甲酰胞嘧啶(5fC)和5-羧基胞嘧啶(5-caC)]没有复制到新的DNA链上,或者在替换5 mC(或衍生物)之后通过碱基切除修复(BER)或核苷酸切除修复(NER)与周围核苷酸的短片段结合。25因此,营养素对DNA甲基化的干扰主要通过调节(i)DNMT活性/与辅助因子的相互作用,(ii)SAM可用性,以及(iii)去甲基化过程发生。许多研究报告了硒状态或补充硒对全局和基因特异性DNA甲基化以及DNMT的表达或活性的影响(见表1). Arai等人。用母体血清中发现的生理无毒硒剂量孵育小鼠胚胎干细胞。硒导致细胞异染色质状态的可逆改变,也改变了单个基因的DNA甲基化状态,在胎儿发育中起作用,包括Hnf4型α(肝细胞核因子4α),Aebp2公司(AE结合蛋白2),刺2(刺同源物2),和第2轮(Rho家族GTPase 2),不影响细胞形成胚胎体的潜能。26这些结果表明,硒通过对基因特异性甲基化的影响,与组织特异性分化之间存在着有趣的联系,因为众所周知,硒是肝细胞分化所必需的在体外转录因子HNF4α是该过程的关键调节因子。Arai等人观察到的染色质结构变化。可能是由补充硒细胞与缺乏硒细胞中的整体DNA甲基化差异引起的。啮齿动物研究27-30和细胞系31事实证明,饮食中硒的摄入水平会影响全球DNA甲基化。尽管使用了可比的硒饮食,但啮齿动物研究在补充硒后全球DNA甲基化的增加或减少方面给出了不一致的结果(表1):硒缺乏导致大鼠肝脏DNA甲基化减少28,29和冒号,29与Zeng等人的研究相反。,其中,与充足和不足硒饮食相比,营养过剩的大鼠肝脏和结肠中的DNA甲基化水平更高。Zeng等人。指出所用动物品系的差异和基础日粮的含量可能是硒效应的调节剂。27此外,不同的技术被应用于全球DNA甲基化的评估:在体外甲基接受度测定[H-甲基]-SAM/SssI甲基化酶和分离的DNA,28,295 mC ELISA,27以及通过HPLC检测酶消化DNA中的5 mC单磷酸。30来自的相应数据在体外研究仅限于一篇论文,表明用1.5μM亚硒酸盐处理7天的LNCaP前列腺癌细胞的5 mC免疫反应性降低了约50%。31可以得出的结论是,亚硒酸盐和SelMet对全球DNA甲基化的影响可能被菌株特异性效应所掩盖,并且它们也受到营养环境(例如高脂肪饮食)的影响。这一主题已在一项人类研究(N=287)中阐明,该研究发现血浆硒与白细胞整体DNA甲基化显著负相关。32除了对整体甲基化的影响外,硒还被证明在单个基因的区域和特定CpG位点诱导差异甲基化。Xiang等人的研究。发现编码第二阶段解毒酶GSTP1(π-类谷胱甘肽S-transferase)和肿瘤抑制因子APC(大肠腺瘤性息肉病)和CSR1(细胞应激反应1)的基因,这些基因由于其启动子的高甲基化而在前列腺肿瘤中经常沉默,在亚硒酸盐处理后在LNCaP细胞中脱甲基并重新表达。类似地,不同来源的Se(100μM SelMet)引起启动子去甲基化和GSTP1标准.31硒化合物通常用于在里面浓度从10 nM到100μM的体外研究。硒的生长抑制和毒性作用取决于其化学形式和细胞类型。虽然硒与蛋白质(如血浆中的)或氨基酸(如SelMet)结合时毒性较低,但许多细胞系在剂量≥1μM时不能耐受亚硒酸或甲基亚硒酸。33考虑到人体血浆中硒的生理浓度范围(~0.4–2.5μM),硒剂量>5μM是超生理的,不适用于补充试验。根据前列腺癌风险与硒状态的负相关观察,硒用于癌症预防对前列腺癌尤其有希望,34以及支持硒蛋白缺乏小鼠前列腺癌加速发生的研究结果。35在这种情况下,一个概念认为硒是一种通过靶向肿瘤抑制基因来对抗癌症进展的表观遗传药物,正如Xiang等人所暗示的那样。,可能会出现,但肯定会出现体内需要进行研究,以加强和扩大对其他相关基因的研究,这些基因也可能在不同形式和不同致癌阶段被硒靶向。甲基化冯·希佩尔·林道在Caco-2细胞中发现(VHL)基因启动子对硒(250 nM Se-甲基硒代半胱氨酸(SeMSC))有反应;VHL(甚高频)SeMSC降低启动子甲基化在体外这与Caco-2和喂食2μg Se作为SeMSC的大鼠的VHL表达水平增加有关。36 VHL(甚高频)在肾细胞癌中经常下调和突变,也发现在结直肠癌发生过程中被解除调控,37其中,根据流行病学和动物研究,硒具有保护作用。18,38一项针对人类的研究评估了健康直肠粘膜标本(84名男性,101名女性)中结直肠癌相关基因的甲基化状态与硒状态的关系。39找到的关联WIF1系列(wnt抑制因子1)甲基化和血浆硒浓度。有趣的是,硒状态也与其他基因和反转录转座子的甲基化有关,包括第1行(长散布核苷酸元素1),PCA1公司(阳离子转运P型ATP酶),SFRP1/2型(分泌的卷曲相关蛋白1/2),以及空气污染指数这是以一种特定性别的方式发生的。没有分析这些基因的差异甲基化是否与它们表达水平的差异有关。EPIC(欧洲癌症和营养队列前瞻性调查)研究显示,硒状态与结直肠癌风险呈负相关,女性的相关性强于男性。38从男性和女性对硒补充的硒蛋白表达水平和硒状态生物标志物的不同反应来看,硒的性别特异性效应也很明显(总结于38); Tapp等人的研究。这表明Se效应的这种性别特异性延伸到癌症相关基因的表观遗传标记,但这些发现与疾病病因的相关性值得进一步研究。最近的一项研究确定了炎症相关基因TLR2级(toll样受体2)和ICAM1公司(细胞间黏附分子1)作为Se依赖的表观遗传调控的新靶点,并提出了一种机制,即Se改变GADD45(生长停滞和DNA-损伤诱导,α)和DNMT1的表达,导致表观遗传沉默TLR2级ICAM1公司并将其与长期严重缺乏硒引起的一种众所周知的疾病联系起来:克山病(KD类).40K(K)D类是一种心肌坏死性病毒性心肌炎,1935年首次在中国东北克山县发现,在中国缺硒地区流行。研究发现,硒缺乏是钾素营养不良的一个原因D类补充硒后发病率显著降低。41硒在钾病因学中的作用方式D类尚不完全清楚,但它被认为是由于缺乏Se-deficiency导致对病毒(柯萨奇B型病毒)感染的免疫反应受损。Yang等人。比较了KD类患者和健康对照组使用甲基化DNA-IP,随后通过Roche-Nimblegen HG18-CpG启动子阵列分析富集的DNA。甲基体图谱显示数千个差异甲基化区域(DMR)存在差异,这些差异已被证实适用于TLR2级ICAM1公司甲基化特异性PCR启动子。此外,这两个基因的表达水平与启动子甲基化程度和血清硒浓度呈负相关。喂食含0、0.1和2.0 mg/kg亚硒酸钠的饮食的大鼠也获得了类似的结果,而与人类受试者甲基化/表达Tlr2号机组伊卡1在心肌组织和分离的新生儿心肌细胞中检测基因。虽然与硒缺乏细胞相比,在用1.5μM亚硒酸盐处理的心肌细胞中观察到Dnmt1蛋白表达水平显著降低,但这是不太可能的,与预期相反,这是导致Dnmt1蛋白表达增加的原因Tlr2号机组伊卡1启动子甲基化。相反,作者认为这是由于硒处理的心肌细胞中Gadd45a mRNA和蛋白质表达水平降低所致。GADD45A与特定基因组位点的去甲基化有关,例如在风险调整比率β2(维甲酸受体β),通过与BER-和NER-执行蛋白的相互作用。25但正如Yang等人所暗示的那样,GADD45A作为Se依赖性调节DNA甲基化(位点特异性)的介体的作用。,40在通过其他研究证实之前,仍然是推测,例如,GADD45A公司基因沉默和染色质免疫沉淀。此外,许多研究报告称,硒可增强DNA损伤修复能力(总结如下42)通过增强p53结合活性29与大鼠心肌细胞的结果相比,40通过GPx-1增加MCF7细胞中GADD45的表达43-或其与DNA修复酶的相互作用,例如AP内切酶1。44然而,硒对DNA修复酶的这些影响是否确实促进DNA去甲基化尚不确定。

表1。

硒对DNA甲基化和DNMT表达或活性影响的研究

物种;组织/细胞类型硒的剂量和形式主要成果裁判
人结肠组织裂解物各种剂量(0-12μM);亚硒酸盐,BSC,p-XSC亚硒酸盐(IC50=3.8μM)、BSC(IC50=8.4μM)和p-XSC(IC50=5.2μM)对DNMT活性的抑制作用45
人直肠粘膜无干预血浆硒浓度与两性WIF1甲基化相关。LINE1、PCA1、N33、SFRP1/2和APC甲基化的性别特异性关联39
人类白细胞无干预血浆硒与白细胞DNA甲基化的反向关联32
人外周血无干预克山病患者与健康对照组TLR2和ICAM1的差异甲基化及表达40
大鼠肝脏和结肠0、0.15、4毫克/千克;SelMet公司高硒组整体甲基化较少,而p53组甲基化较多27
大鼠肝脏和结肠0.003,0.2毫克/千克;亚硒酸盐肝脏硒缺乏症中的整体甲基化较少,但结肠中没有。硒缺乏时DNMT活性(肝脏+结肠)无显著降低28
大鼠肝脏和结肠0、0.1、2毫克/千克;亚硒酸盐和SelMet缺硒条件下肝脏和结肠的整体甲基化程度较低29
大鼠心肌和心肌细胞体内:0.1,2毫克/千克;亚硒酸盐在体外:0.5,1.5μM;亚硒酸盐硒触发TLR2和ICAM1的甲基化和沉默,抑制DNMT1的表达。硒缺乏时Gadd45α表达增加40
大鼠肝脏提取物各种剂量;亚硒酸盐亚硒酸盐(Ki=6.7μM)抑制DNMT活性46
人LNCaP细胞0.5,1.5μM;亚硒酸盐GSTP1和APC的去甲基化和再表达。抑制DNMT1表达,减少总5-mC含量31
人MCF-7细胞2μM;MSA。8微米;亚硒酸盐DNMT1表达减少47
人类Caco-2细胞250毫微米;硒半胱氨酸SeMSC对VHL抑癌基因的去甲基化和再表达36
大鼠粘膜0,2毫克/千克;硒半胱氨酸SeMSC诱导VHL36
小鼠ES细胞100 ppm;亚硒酸盐异染色质的形成受到可逆影响。Aebp2、Prickle2、HNF4和RND2基因座甲基化降低。26

另一个诱导差异DNA甲基化的可能靶点是DNMT酶类;在上述研究中,DNMT表达或活性的调节被认为有助于硒对甲基化标记的调节。亚硒酸盐和2种合成硒化合物,苄基硒氰酸盐(BSC)和1,4-亚苯基双(亚甲基)硒氰酸酯(p-XSC),已被证明在人类结肠癌细胞核提取物中抑制DNMT活性。45这3种化合物的IC50值计算为3.8μM(亚硒酸盐)、8.4μM(BSC)和5.2μM(p-XSC),实验设置表明这些化合物以非代谢形式发挥作用。从大鼠肝脏制备的DNMT也被亚硒酸盐抑制在体外在K下进行分析与对照动物相比,从补充硒的动物中分离出的酶活性较低。46 体内在喂食低硒与低硒饮食(0.2和0 mg Se/kg饮食作为亚硒酸钠)的大鼠的肝脏和结肠中,DNMT活性无显著降低。28同样,1.5μM亚硒酸钠可降低大鼠心肌细胞中DNMT1蛋白的表达40在LNCaP细胞中31M亚硒酸钠和2μ。47这个在体外人类和动物的研究共同表明,硒与整体DNA甲基化和DNMT活性呈负相关。

硒对组蛋白乙酰化的影响

组蛋白在规定的氨基酸位置携带由组蛋白甲基转移酶、组蛋白乙酰转移酶(HAT)等添加的多种翻译后修饰(例如甲基化和乙酰化)。IHEC联盟研究的常见组蛋白标记是组蛋白3的赖氨酸残基4、9、27和36的甲基化和乙酰化。组蛋白标记的高度多样性代码控制组蛋白与DNA的结合、DNA与反作用因子的相互作用,并最终控制基因表达。异常组蛋白编码在疾病的发生和发展中被发现,因此已成为治疗靶点。硒和其他微量营养素已被证明会引起组蛋白标记的改变或与之相关,从而可能影响健康结果。营养素对组蛋白标记的干扰主要通过组蛋白修饰酶活性/表达的调节和对底物可用性的干扰发生。鉴于标记和参与酶的种类繁多,情况甚至比DNA甲基化更为复杂;此外,DNA甲基化和组蛋白标记之间存在交叉对话,它们共同形成了复杂的表观遗传调控网络。48从临床角度来看,组蛋白去乙酰化酶(HDAC)受到了特别关注,因为它们的异常功能和/或表达与癌症以及一些神经和免疫疾病有关。许多合成HDAC抑制剂已经开发出来,目前正在进行临床试验。49一些天然的饮食因素或代谢物,如丁酸盐、多酚和硒,也被证明是HDAC抑制剂。关于饮食和合成硒化合物对组蛋白标记和编辑酶(HDAC和HAT)的调节的研究,见表2并在下文中进行了讨论。

表2。

饮食和合成硒化合物对组蛋白修饰的调节

单元格类型硒的剂量和形式主要成果裁判
人Hela细胞核提取物SAHA的硒基衍生物:SelSA-1和SelSA-2SelSA-2抑制HDAC(IC50=8.9 nM)51
人LNCaP细胞1.5微米;亚硒酸盐HDAC活性降低,乙酰化H3-Lys9增加31
各种正常和癌症细胞系SelSA-1和-2SelSA-1和-2对HDAC的抑制作用。黑色素瘤细胞中的抗增殖和促凋亡。体外抑制黑素细胞损伤的发展。52
小鼠RAW264.7和初级巨噬细胞0-500毫微米;亚硒酸盐和SelMet乙酰化H4K5、H4K8、H4K12和H4K16减少。COX-2启动子处H4K12ac减少54
弥漫性大B细胞淋巴瘤5-30μM;MSA公司HDAC活性降低,乙酰化H3和α-微管蛋白增加53
人前列腺癌细胞50200微米;MSC和SelMetHDAC活性降低,乙酰化H3增加。谷氨酰胺转氨酶K和L-氨基酸氧化酶衍生的硒-α-酮酸抑制HDAC50

用1.5μM亚硒酸盐处理LNCaP细胞7 d后,HDAC活性显著降低,同时HDAC3略有降低,HDAC4和HDAC5蛋白水平不变。31与HDAC活性降低相一致,作者发现硒处理后H3K9ac(抑制标记)的全局和GSTP1启动子结合水平增加,H3K9 me3(激活标记)的水平降低。其他研究证实,饮食和合成硒化合物抑制HDAC活性。50–53Kassam等人。应用甲基亚硒酸(MSA;5-30μM)扩散大B细胞淋巴瘤(DLBCL)细胞系,观察到HDAC活性降低,HDAC靶点乙酰化组蛋白H3和乙酰化α-微管蛋白总水平升高。53这些影响需要MSA的细胞代谢,但负责HDAC失活的代谢物尚未确定。Lee等人。发现来自膳食硒化合物的硒-α-酮酸代谢物可作为HDAC的抑制剂。50在他们的研究中,SeMSC和SelMet在谷氨酰胺转氨酶K(GTK)和L-氨基酸氧化酶催化的转氨酶中反应生成β-甲基硒代丙酮酸和α-酮-γ-甲基硒化丁酸,其结构类似于众所周知的HDAC抑制剂丁酸(图2). 与SeMSC和SelMet相比,两种硒代-α-酮酸在无细胞检测中均抑制HDAC活性,并导致前列腺癌细胞中乙酰化组蛋白H3水平快速升高。实验致癌研究中观察到的高剂量硒补充剂的抗癌作用部分归因于抑制HDAC,并刺激合成更有效的含硒HDAC抑制剂(HDACi)。基于亚甲酰苯胺羟肟酸(SAHA,商品名为Vorinostat)的结构,一种用于治疗晚期T细胞淋巴瘤的HDACi,2种Se基衍生物,命名为SelSA-1和SelSA-2(图2)合成了。51SelSA-2对HeLa核细胞提取物(主要是HDAC1和HDAC2亚型)中HDAC的抑制活性高于SAHA和曲古抑菌素A。51这两种硒化合物在皮肤再造中抑制黑色素瘤细胞生长和黑色素细胞损伤发展方面也更有效,52但它们作为治疗黑色素瘤或其他癌症的药物尚未得到测试。最近的一篇论文表明,经亚硒酸盐(100–500 nM)处理的巨噬细胞中,组蛋白H4在其赖氨酸残基5、8、12和16处的乙酰化减少。54这与促炎基因肿瘤坏死因子-α的启动子处H4K12ac和H4K16ac的丰度降低相伴随(肿瘤坏死因子-α) 和环氧合酶-2(环氧化酶-2)其在Se处理的RAW264.7巨噬细胞中的表达已被证明减少。55这些细胞中的HDAC活性不受亚硒酸盐的影响,作者提出亚硒酸触发的H4乙酰化水平的降低是由于抑制p300 HAT活性所致54通过Se-依赖性和造血性前列腺素D合成酶(H-PGDS)和COX介导的抗炎Δ的产生12-PGJ公司2和15d-PGJ2,56它可以与p300共价结合,从而抑制其活性。57重要的是,亚硒酸盐不会改变缺乏Sec-tRNA的巨噬细胞的H4乙酰化水平[Ser]秒表明硒蛋白的生物合成是硒诱导H4乙酰化调控的前提条件。54亚硒酸盐触发的拟议级联事件(涉及H-PGDS、COX-2、p300 HAT以及p65和H4乙酰化)可能触发巨噬细胞从M1表型向M2表型的转变。因此,这也将有助于理解硒和硒蛋白在炎症性肠病中的抗炎作用58以及其他慢性炎症疾病。

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HDAC活性的含硒抑制剂。具有HDAC抑制活性的硒代谢物(β-甲基硒丙酮酸和α-酮-γ-甲基硒代丁酸)和合成硒化合物(B(PCP)-2Se[双(5-苯基氨甲酰基戊基)二硒化物]、SelSA-1和PCP-SeCN(5-苯基氨基甲酰基戊烯基亚硒酸盐),SelSA-2)的结构式。

硒与一碳代谢的相互关系

单碳代谢途径(如图3)提供甲基供体S-腺苷蛋氨酸(SAM),它被DNMT和其他甲基化酶用作底物,用于将甲基转移到胞嘧啶和靶蛋白。因此,单碳代谢与DNA甲基化以及影响单碳代谢的条件密切相关,特别是参与酶的辅因子叶酸、胆碱/甜菜碱和维生素B的可用性2,B6,和B12,已被证明导致差异DNA甲基化。59我们简要描述了单碳代谢的反应和相关途径,然后评估了目前关于硒依赖性调节的文献。如所示图3,蛋氨酸与SAM反应,SAM在胞嘧啶或蛋白质的DNMT催化甲基化后转化为S-腺苷同型半胱氨酸(SAH)。去除腺苷基团产生同型半胱氨酸(HCys)。HCys在血液或血浆中的浓度具有临床重要性,因为它与许多复杂疾病如心血管和神经退行性疾病有关60(以及其中的引用)。HCys的清除是通过其重甲基化生成蛋氨酸,进而作为形成SAM的底物,或通过转运途径中的代谢进行的。该途径的第一步是HCys与丝氨酸的缩合反应,在胱硫醚β合成酶(CBS)与磷酸吡哆醛(PLP)的催化下,生成胱硫苷6)作为辅因子。发现CBS基因的一个变体(c.844ins68)在蛋氨酸负荷后影响HCys清除率和SAM/SAH比率。61c.844ins68也与冠状动脉疾病风险显著降低相关,但健康个体的基线HCys水平似乎不受CBS基因型的影响。61,62胱硫醚被PLP-依赖性酶胱硫氨酸γ-裂解酶(CGL)转化为半胱氨酸,半胱氨酸又与谷氨酸缩合,在谷氨酸-半胱氨酸连接酶(GCL)的催化下转化为γ-谷氨酰半胱氨酸。最后,通过谷胱甘肽合成酶(GS)与甘氨酸融合,形成谷胱甘苷。甲硫氨酸合成酶(MS)在涉及维生素B的酶促反应中促进HCys的再甲基化12和5-甲基-THF。THF通过使用维生素B的两个酶步骤循环回到5-甲基THF6和黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)作为辅因子;甲基最终来源于必需氨基酸丝氨酸。获得蛋氨酸的第二条途径是通过甜菜碱同型半胱氨酸甲基转移酶(BHMT)使HCys甲基化,BHMT使用甜菜碱作为甲基供体。

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硒干扰单碳代谢。酶标记为绿色背景;被证明受硒影响的酶被标记为红色背景。SAM=S-腺苷甲硫氨酸;MAT=蛋氨酸腺苷转移酶;SAH=S-腺苷同型半胱氨酸;DNMT=DNA甲基转移酶;ACHY=S-腺苷-L-高半胱氨酸水解酶;BHMT=甜菜碱同型半胱氨酸甲基转移酶;GCL=谷氨酸-半胱氨酸连接酶;MS=蛋氨酸合酶;SHM=丝氨酸羟甲基转移酶;MTHFR=亚甲基四氢叶酸还原酶;5,10-MeTHF=5,10-亚甲基四氢叶酸盐;GTK=谷氨酰胺转氨酶K;AAO=L-氨基酸氧化酶;GR=谷胱甘肽还原酶;CGL=胱硫醚γ-裂解酶;CBS=胱硫醚β合成酶;SBL=硒代半胱氨酸β裂解酶。

硒状态与血浆同型半胱氨酸水平的相关性

几项人体研究表明,血浆或血清硒与HCys水平呈负相关(表3). 在平均硒水平很高(635.5μg Se/l血液)的因纽特人中,硒对血浆HCys有负预测作用。63Klapcinska等人。同样,在平均硒水平较低(62.5μg Se/l血液)的人群中,检测到全血硒和血浆HCys之间存在负相关。64虽然这两项研究报告了类似的发现,但需要考虑到已知影响HCys水平的可能混杂因素,尤其是叶酸和B族维生素。在一项研究中,报告了年龄≥65岁的英国国家饮食和营养调查参与者的硒和HCys之间的反向关系,65调整叶酸、PLP和维生素B后,这种相关性变得不明显12.60在Bekaert等人的研究中。,然而,在调整了相同的混杂因素后,硒和HCys的相关性仍然显著,但仅在男性中。60通过线性回归分析计算血浆硒占HCys方差的1.8%。与此一致的是,血清硒预测了西班牙人群中HCys的5.8%变异,与叶酸和维生素B无关12硒含量最高的三分位数与最低的三分之一之间的个体,处于HCys最高三分位数的风险降低了63%。66在中风发病后不久(第三天)对55岁以下的缺血性中风患者进行评估,发现其硒水平低于健康对照组,这与HCys呈负相关,占HCys方差的15.4%,与维生素B无关6水平。67根据这些基线相关性,已经进行了试验,以确定补硒是否影响血浆HCys。每天以100或300μg硒作为高硒酵母的形式补充硒6个月,可增加血浆硒,但对HCys水平无影响。60这种缺乏效果支持了早期的干预研究,即连续20周每天服用200μg硒(以SelMet计)未能改变血浆HCys水平;然而,该研究并未评估基线时硒和HCys的可能相关性。68

表3。

血液硒/同型半胱氨酸相关性的人体研究

研究类型硒的剂量和形式测量样品Se/HCys相关性裁判
双盲安慰剂对照干预(N=249)0、100、200、300μg硒/天,作为硒酵母,持续6个月等离子补充无影响。基线时男性硒和HCys之间的反向相关性。60
盲法安慰剂对照干预(N=167)0,200μg Se/天,作为SelMet,持续20周等离子供应对HCys无影响68
前瞻性(N=202)血清硒、血浆HCys硒和HCys之间的反向相关性66
远景(N=99)全血硒、血浆HCys硒和HCys之间的反向相关性63
远景(N=204)全血硒、血浆HCys硒和HCys之间的反向相关性64
远景(N=906)血浆硒和HCys硒和HCys之间呈负相关,叶酸、PLP和维生素B校正后无显著性1260,65
前瞻性(N=46名健康对照;N=39名缺血性中风患者)血清硒、血浆HCys硒和HCys之间的反向相关性,与维生素B无关667

动物实验使补充研究的设计具有更大的灵活性,更好地控制混杂因素,并提供更多的终点检测选项。表4列出了用不同硒形态和含量的食物喂养啮齿动物的研究,随后对单碳代谢的代谢物和酶进行了评估。从这些研究中可以得出一些与硒的形态和种类无关的一般趋势:(I)HCys与硒的摄入/状态之间似乎存在负相关关系。这源于一项对喂食SelMet的小鼠的研究69以及一项对喂食硒酸盐的大鼠的研究。70这两项研究都使用了含硒量相当的饮食,这些饮食与人类现有的饮食摄入量范围相似。令人惊讶的是,与两项研究中的适当摄入水平(0.15 ppm硒)相比,硒摄入量略低于最佳水平(0.05/0.06 ppm硒),大鼠肝脏HCys浓度显著增加30%70小鼠为314%。69后一项研究表明,肝脏高同型半胱氨酸血症是由于CBS的Se依赖性调节所致。其他研究也报道了属于转氨酶(GCL)的酶的差异表达71和再甲基化途径(BHMT和甘氨酸N-甲基转移酶),28,71,72但这些效应似乎是物种特异性的,只有在严重缺硒的情况下才会出现。(二) 喂食硒缺乏(≤0.025 ppm)饮食的动物(小鼠和大鼠)的血浆HCys浓度显著降低。27,28,70-73(三) 喂食营养过剩(>0.2 ppm)和充足(0.1–0.2 ppm)硒含量的动物,其血浆HCys水平呈下降趋势。27,29,70,71考虑到人类研究显示血浆HCys和Se呈负相关,这两种饮食组的比较尤其有趣。由于ACHY(S-腺苷-L-半胱氨酸水解酶;见图3). SAH反过来又是甲基转移酶的竞争性抑制剂,因此,HCys浓度的增加将与全球DNA低甲基化有关。一项研究表明,HCys血浆水平正常(平均7.2μM;范围5.8-8.7μM)的女性血浆SAM/SAH比率和淋巴细胞DNA甲基化水平显著高于HCys升高(平均12.3μM;范畴9.3-16.5μM)女性,这一概念得到了支持。74重要的是,血浆SAH与HCys和淋巴细胞DNA甲基化相关,但SAM没有,这意味着SAM的测量不足以预测甲基化潜力。组织SAH浓度也与小鼠睾丸、大脑和肝脏中的DNA低甲基化有关。75关于小鼠补硒研究中SAH和/或SAM水平的数据有限且不一致。三项研究测量了摄入足够硒(0.1或0.2 ppm)的组与摄入不足或营养过剩(2或4 ppm)硒的组相比,肝脏和结肠SAM/SAH比率更低,28,29,71然而,当使用SelMet代替亚硒酸盐时,这一现象并未出现。29另一项研究发现,与0.15和0.025 ppm硒相比,喂食0.5 ppm硒(作为亚硒酸盐)的小鼠SAM/SAH更低。73最近进行的两项全基因组关联研究发现,位于编码CBS和BHMT基因附近的SNP与血液和脚趾甲硒浓度相关。76Combs小组公布的令人兴奋的数据表明,干扰单碳代谢会影响硒代谢:抑制ACHY会导致SAM/SAH比率降低,并且由于精氨酸甲基化降低(=活性降低),HepG2细胞硒转运蛋白SeP的分泌减少对SeP转录诱导起关键作用的蛋白质。77,78消除硒还需要SAM依赖的甲基化(图1)因此,ACHY对大鼠的抑制导致硒在肝脏和肾脏中的滞留,同时这些器官和尿液中排泄的硒形态也随之减少。79这些数据以及动物补硒研究的结果进一步表明,全身硒和单碳代谢是相互关联的。

表4。

硒对小鼠单碳代谢影响的研究

物种硒的剂量、形式、持续时间器官/血液Se/HCys相关性酶的表达/活性SAM/SAH比率裁判
鼠标0.06与。0.15毫克/千克;SelMet;7周肝脏肝脏:硒与HCys的负相关0.06 ppm硒中CBS表达降低。对BHMT无影响69
老鼠0.015、0.05、0.15、0.45毫克/千克;硒酸盐;8周血浆、肝脏肝脏:硒与HCys呈负相关。血浆:硒缺乏组HCys较低,补充组相同 70
老鼠0、0.02、0.05、0.1毫克/千克;亚硒酸盐;2个月血浆、肝脏严重缺硒组的血浆HCys较低(硒含量为0.02 ppm)肝脏:严重缺硒(0.02ppm硒)时BHMT较低。MS、SAM-S、CS、CTH等72
老鼠和老鼠0、0.2、2.0毫克/千克;亚硒酸盐;72天(大鼠),60天(小鼠)血浆、肝脏硒缺乏会降低大鼠的GNMT活性,但不会降低小鼠的GNMT活力,硒会影响谷氨酸-半胱氨酸连接酶(GCL)的活性肝脏:严重缺硒大鼠的BHMT和GNMT较低,而小鼠则不低。大鼠和小鼠缺硒时GCL升高低于0.2 ppm硒(小鼠、肝脏)71
老鼠0、0.15和4毫克/千克;SelMet;104天等离子严重缺硒时HCys降低 27
老鼠0.003,0.2毫克/千克;亚硒酸盐±叶酸;10周血浆、肝脏、结肠严重缺硒时HCys降低严重缺硒时肝脏GNMT降低低于0.2 ppm硒(肝脏和结肠)28
老鼠0、0.1、2毫克/千克;亚硒酸盐或SelMet;6周血浆、肝脏严重缺硒时HCys降低 0.1 ppm亚硒酸盐含量较低,但SelMet含量较低29
鼠标<0.025、0.15、0.5毫克/千克;亚硒酸盐;12周等离子HCys在缺硒情况下较低 低于0.5 ppm硒73

硒对microRNA表达的调节

通过非编码RNA分子如microRNA(miRNA)靶向mRNA来调节基因表达有时被认为是一种额外的表观遗传机制。迄今为止,只有一项研究检测了硒是否对microRNA(miRNA)表达有影响。对在缺硒或补硒培养基中生长的Caco-2细胞的miRNA谱进行微阵列分析(共737个miRNAs),发现12个miRNA的表达受硒供应的影响。80在同一研究中,50个mRNAs的表达水平也具有Se反应性,其中许多mRNA被预测为Se反应miRNAs靶向。其中miRNA-185在缺硒条件下表达降低,被证实可以调节谷胱甘肽过氧化物酶2(GPx-2)和硒酸合成酶2(SPS-2)的表达。由于SPS-2的酶产物是硒蛋白生物合成机制的一部分,这些发现表明,硒的有效性部分通过涉及miRNA-185和可能的其他miRNAs的表观遗传机制影响硒蛋白组。miRNA-185是硒的一个特别有趣的靶点,因为它最近作为一种肿瘤抑制剂出现,在卵巢、乳腺、肾脏、,81前列腺,82和胃癌,83靶向致癌基因,例如Six1,81雄激素受体,82和带有caspase募集域(ARC)的凋亡抑制因子。83在实验环境和一些人体研究中,硒已被证明具有抗癌作用(18概述);因此,揭示miRNAs作为Se依赖性肿瘤抗恶性转化保护介质的假定作用将是未来工作的一个有趣领域。

结论和未来方向

硒物种引起的表观遗传效应的研究是一个相对较新的领域,尚未得到全面研究。目前的数据主要来自小鼠和细胞,但也有一些人类研究表明,硒的补充和状态会在全球和特定基因区域或位点上改变DNA甲基化。硒对DNMT的抑制及其与单碳代谢的相互作用是发生这种情况的可能途径。此外,组蛋白修饰被硒改变,这已经被证明发生了-至少在体外-通过硒代谢产物硒代-α-酮酸抑制HDAC活性。在小鼠和人类干预研究中,需要在全基因组水平上系统评估硒对表观遗传标记(DNA甲基化和组蛋白修饰)的影响。这些研究将理想地使用不同饮食形式的硒,即初始硒状态较低的受试者,以便观察剂量-反应关系,并包括转录组评估。组合读数将提供有关硒在表观遗传和转录调控中作用的重要信息,并利用硒对与疾病风险相关或预测疾病风险的表观遗传标记的干扰。这对于更好地理解硒在某些疾病(例如前列腺癌和2型糖尿病)的预防和进展中的作用尤其重要,在发表大规模硒干预试验的不同结果后,这一点变得不明确。18,84-86另一个研究重点是深入了解硒对DNMT和HDAC酶的抑制作用,以确定活性硒物种、其可能的DNMT/HDAC亚型特异性、抑制机制和所需的抑制剂量在体外体内影响与表观遗传机制相关的核蛋白的无反应信号通路,例如通过核小体重塑、转录或DNA修复,如GADD45A,也需要进一步研究。我们建议,需要对硒引起的表观遗传过程进行全基因组和机制的详细了解,以完成硒的系统生物学的图景,并阐明和预测其对健康结果的影响。

潜在利益冲突的披露

没有披露潜在的利益冲突。

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文章来自表观遗传学由以下人员提供泰勒和弗朗西斯