国际分子科学杂志。 2015年9月; 16(9): 22830–22855.
靶向谷氨酰胺诱导细胞凋亡:一种癌症治疗方法 安东尼·莱马里埃, 学术编辑
2015年8月23日收到; 2015年9月15日接受。
版权 ©2015作者版权所有; 持牌人MDPI,瑞士巴塞尔。
摘要 谷氨酰胺代谢在许多癌细胞中被证明是失调的,对大多数癌细胞的增殖至关重要,这使得谷氨酰胺成为癌症治疗的一个诱人靶点。 为了被细胞充分利用,谷氨酰胺必须通过特定的转运体运输到细胞,并通过谷氨酰胺酶转化为谷氨酸。 目前有几种靶向谷氨酰胺酶的药物正在开发或临床试验中。 此外,谷氨酰胺代谢限制已被证明可有效抑制肿瘤生长 体内 和 体外 通过诱导细胞凋亡、生长停滞和/或自噬。 本文综述了谷氨酰胺在癌症中的代谢、靶向谷氨酰胺诱导的细胞死亡及其在癌症治疗中的潜在作用等方面的最新研究进展。
关键词: 谷氨酰胺代谢、凋亡、谷氨酰胺酶、癌症
1.简介 谷氨酰胺是人体中最丰富的氨基酸[ 1 ]. 谷氨酰胺被转运到细胞后,充当合成许多氨基酸、蛋白质、核苷酸和其他生物重要分子的前体,并提供NADPH(烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸)和GSH(谷胱甘肽)以维持氧化还原平衡[ 2 ]. 因此,谷氨酰胺在细胞生长和增殖中起着关键作用。 近年来,由于谷氨酰胺与正常组织相比在大多数癌症中的摄入量增加且消耗速度快,因此谷氨酰胺引起了研究人员的关注。 限制谷氨酰胺代谢已被证明可有效抑制癌细胞生长,而补充谷氨酰胺可根据细胞类型诱导或抑制细胞死亡[ 三 ]. 无论如何,细胞外谷氨酰胺水平会影响癌细胞对不同凋亡触发因素的敏感性。 据报道,谷氨酰胺剥夺可使Hela细胞对Fas(CD95)配体、TNF-α(肿瘤坏死因子-α)和热休克介导的细胞凋亡敏感[ 4 ].
谷氨酰胺酶(GLS)是谷氨酰胺代谢的第一个关键酶,据报道与癌症的恶性程度和正常细胞的生长速度呈正相关[ 5 ]. GLS的特异性抑制剂已被证明可诱导癌细胞死亡。 此外,其中一些目前正在进行临床试验,更多的正在试验阶段。 有趣的是,GLS活性受致癌基因的影响,例如。, MYC公司 和 第53页 这一特征将谷氨酰胺代谢与恶性肿瘤的发展联系起来,并强调了在癌症治疗中以谷氨酰胺代谢为靶点的可能性。 然而,尽管最近的大量研究大大扩展了我们对谷氨酰胺在癌症中的代谢及其在癌症治疗中的潜在价值的了解,但在实验室和临床研究中仍存在耐药性和不良反应。 在这篇综述中,我们讨论了谷氨酰胺代谢的当前知识以及癌基因如何调节癌症中的谷氨酰胺代谢。 我们还讨论了GLS抑制剂及其在癌症治疗中的应用。
2.谷氨酰胺代谢 2.1. 正常组织中的谷氨酰胺代谢 谷氨酰胺在血液中循环,主要储存在骨骼肌中,也存在于其他器官,如肺和脑中[ 2 ]. 肝细胞根据身体的代谢需要充当谷氨酰胺的生产和消费者[ 2 ]. 此外,小肠和肾脏也使用谷氨酰胺来维持酸碱平衡[ 6 ]. 谷氨酰胺是一种非必需氨基酸,部分由谷氨酸的酰胺化产生,氨源于嘌呤代谢和/或从循环中吸收,部分由葡萄糖衍生的α-酮戊二酸的转氨作用和随后的酰胺化生成[ 7 ].
谷氨酰胺首先被GLS催化形成谷氨酸和铵离子。 谷氨酸随后通过谷氨酸脱氢酶转化为α-KG(α-酮戊二酸),然后α-KG进入TCA(三羧酸循环)循环,提供能量和大分子物质来源( )。 特别是,谷氨酰胺代谢为OAA(草酰乙酸)、乙酰-CoA和柠檬酸的生成、脂肪生成提供碳,为嘌呤、嘧啶和DNA合成提供氮[ 8 ]和还原能力NADPH支持细胞增殖[ 9 ]. 除GLS外,谷氨酰胺酰胺氮捐赠给谷氨酰胺介导的核苷酸或己糖胺:果糖-6-磷酸酰胺转移酶也可以贡献一部分谷氨酸库。 在以核苷酸生物合成或其他活性短暂增加为特征的细胞周期阶段,这一点可能会更加突出[ 10 ]. 值得注意的是,免疫细胞需要高水平的细胞外谷氨酰胺才能正常激活。 据报道,白细胞代谢谷氨酰胺的速率与葡萄糖利用率相当,在某些情况下甚至更高[ 7 ].
谷氨酰胺代谢和癌症治疗的有效靶点。 LAT1转运到胞浆后( 我 -型氨基酸转运蛋白1)、ASCT2(系统ASC氨基酸转运蛋白2)和其他转运蛋白,谷氨酰胺被谷氨酰胺酶催化并转化为谷氨酸和氨。 然后它为合成氨酸和脂质提供了大分子材料。 谷氨酰胺还用于交换EAA,EAA可以激活mTOR并促进细胞生长。 谷氨酸还用于交换细胞外半胱氨酸以生产谷胱甘肽。 GLS是谷氨酰胺代谢的关键酶,可被968、BPTES和CB-839等多种抑制剂抑制,与其他谷氨酰胺代谢抑制剂一起出现在红色圆圈中。 谷氨酰胺酶; 谷氨酸脱氢酶; TA、转氨酶; 草酰乙酸; BCH,2-氨基双环-(2,2,1)-庚烷-2-羧酸; GPNA,γ- 我 -谷氨酰硝基苯胺; 表没食子儿茶素没食子酸酯; EAAs,必需氨基酸; mTOR,雷帕霉素的哺乳动物靶点; BPTES,双-2-(5-苯基乙酰氨基-1,2,4-噻二唑-2-基)乙基硫醚3; 968,5-(3-溴-4-(二甲氨基)苯基)-2,2-二甲基-2,3,5,6-四氢苯并[a]菲咯啶-4(1H)-酮; CB-839, N个 -(5-(4-(6-((2-(3-(三氟甲氧基)苯基)乙酰基)氨基)-3-哒嗪基)丁基)-1,3,4-噻二唑-2-基)-2-吡啶乙酰胺。 ┴, 抑制作用; 黑体箭头,谷氨酰胺的主要代谢途径和转运; 黑箭头,谷氨酰胺和葡萄糖的代谢途径。
2.2. 癌症中的谷氨酰胺代谢 众所周知,癌细胞以耗散的方式利用葡萄糖,并利用葡萄糖通过有氧糖酵解产生ATP(三磷酸腺苷),而不考虑氧的可用性(Warburg效应)[ 11 ]. 为了满足快速增殖的需要,癌细胞必须使用另一种能量来源谷氨酰胺,谷氨酰胺通过谷氨酰胺驱动的氧化磷酸化产生ATP[ 12 ]. 由于在增殖细胞(尤其是癌细胞)的TCA循环中持续丢失柠檬酸盐,因此有必要补充TCA中间体(回补),谷氨酰胺消耗增加( )。 癌症中较高的谷氨酰胺消耗量用于合成代谢需求,这会产生代谢组成部分,如核酸、脂质和蛋白质( ) [ 13 ]增加谷胱甘肽的产生以抵抗细胞死亡。 此外,癌症中较高的谷氨酰胺消耗量用于细胞生长和mTOR(哺乳动物雷帕霉素靶点)激活所需的EAAs(必需氨基酸)交换,从而启动蛋白质翻译和细胞生长( ) [ 14 ]. 伴随着大多数癌细胞中谷氨酰胺的消耗增加,例如三阴性乳腺癌细胞MX-1[ 15 ],神经母细胞瘤细胞[ 16 ]而人髓细胞KU812F、GLS活性也远高于正常细胞。 谷氨酰胺代谢增强不仅为癌细胞的生长和增殖提供能量和底物,而且使谷氨酰胺成为癌症治疗的有力候选药物( ).
大多数肿瘤中谷氨酰胺消耗增加。 在肿瘤发生过程中,葡萄糖衍生乳酸增加,同时葡萄糖对TCA的贡献降低。 伴随着葡萄糖代谢的变化,谷氨酰胺代谢上调,以补偿能量和大分子对细胞增殖和生长的影响。 第53页 变异,而 MYC公司 过表达,在肿瘤发生过程中通过上调GLS1活性促进谷氨酰胺代谢。 GLS1在许多肿瘤中高度表达,并促进肿瘤增殖。 相反,GLS2在一些肿瘤中的表达降低。 谷氨酰胺酶; TCA,三羧酸循环。 粗体箭头、谷氨酰胺代谢增加、葡萄糖代谢降低和突变 MYC公司 ; 虚线,肿瘤发生过程。
为了被细胞充分利用,谷氨酰胺必须穿过质膜和线粒体内膜,并在线粒体中代谢[ 17 ]由特定的转运体介导。 氨基酸穿过质膜有几种不同的运输系统,例如Na + -依赖系统A,Na + -依赖系统N,Na + -依赖系统ASC(丙氨酸丝氨酸半胱氨酸)和Na + -独立系统L[ 18 ]. 纳 + -依赖系统A维持非必需氨基酸(如谷氨酰胺和丙氨酸)在细胞内的高浓度,这些非必需氨基酸可以通过钠交换为必需氨基酸 + -依赖系统ASC和Na + -独立系统L.Na + -依赖系统N可以确定谷氨酰胺积累的程度,因为它能够调节谷氨酰胺净流出[ 19 ]. 谷氨酰胺转运体在正常细胞和癌细胞之间存在差异。 大鼠星形细胞瘤C6细胞和SK-N-SE细胞中谷氨酰胺转运主要由ASCT2介导[ 20 , 21 ]. 然而,在正常大鼠星形胶质细胞中 就地 ,谷氨酰胺转运由Na介导 + -从属系统N,SN1[ 20 ]. 在转化过程中,ASCT2和LAT1是谷氨酰胺摄取的两个主要转运蛋白[ 22 , 23 , 24 ]. 据推测,LAT1通过mTOR刺激的翻译提供必需氨基酸以促进癌细胞生长,ASCT2维持细胞质氨基酸库以驱动LAT1功能[ 18 ]. ASCT2和LAT1的这种合作抑制了细胞凋亡,并通过谷氨酰胺的净输送促进了能源经济[ 18 ].
然而,并非所有癌症都对谷氨酰胺上瘾。 有些癌细胞依靠葡萄糖而不依赖谷氨酰胺就能存活和增殖。 程 等。 揭示了GLS1和PC(丙酮酸羧化酶)之间的代偿关系。 葡萄糖衍生的丙酮酸作为回补前体,因此,细胞在GLS1沉默状态下更多地依赖葡萄糖。 PC活性是在低谷氨酰胺条件下诱导的,是细胞逃避谷氨酰胺成瘾所必需的[ 25 ]. 在开发针对谷氨酰胺或葡萄糖代谢的新癌症治疗方法时,也需要考虑这种代偿关系。
2.3. 癌症患者谷氨酰胺代谢的调节 在癌症中,谷氨酰胺代谢受多种因素高度调节,例如 MYC公司 , 第53页 、Ras和HIF(低氧诱导因子)。 这种调节维持着癌症的生长,也是致癌的原因之一。
2.3.1. MYC公司 癌症中的谷氨酰胺代谢 原癌基因 MYC公司 调节从苍蝇到人类基因组中约15%的基因[ 26 ]. 它包括 N-马来西亚 , C-MYC公司 和 L-MYC公司 这些基因在大多数人类肿瘤中被解除调控、突变或扩增[ 27 , 28 , 29 ]. 它们可以被有丝分裂信号激活并驱动细胞增殖。 C-MYC公司 在许多人类癌症中被广泛解除管制, N-马来西亚 表达更局限于神经癌和 L-MYC公司 主要见于小细胞肺癌[ 16 ].
在某些癌症中, MYC公司 谷氨酰胺成瘾与扩增有关( ) [ 30 ]. 谷氨酰胺成瘾与 MYC公司 -LDHA(乳酸脱氢酶)激活导致葡萄糖碳从线粒体中重新定向[ 14 ]. 更具体地说, MYC公司 -诱导导致葡萄糖衍生丙酮酸从线粒体转移并转化为乳酸[ 30 ]. 因此, MYC公司 -转化细胞依赖谷氨酰胺胸膜炎来维持线粒体完整性和TCA循环功能。 也, MYC公司 可能会增加GLS1的活动[ 31 ](如下一部分所示)和谷氨酰胺合成酶[ 32 ]. 此外, MYC公司 可能与谷氨酰胺转运体的启动子元件结合,这与谷氨酰胺转运蛋白水平的提高有关,例如SLC7A5(溶质载体家族7成员5,LAT1)和ASCT2( ) [ 30 , 31 ]. N-MYC基因 过度表达刺激GCL催化亚单位(谷氨酸-半胱氨酸连接酶)的mRNA和蛋白表达,并导致GSH生物合成中的速率限制步骤,从而增加GSH水平并提供抗氧化损伤的抵抗力[ 33 ]. 因此,瞄准 MYC公司 可以为患有癌症的患者提供治疗窗口 MYC公司 放大。 下调 N-马来西亚 在神经母细胞瘤细胞中的表达已被证明可以诱导凋亡,并减少增殖和/或神经元分化 在体外 [ 34 ]. 淋巴瘤、白血病、骨肉瘤、肝细胞癌、鳞癌和胰腺癌也观察到类似结果[ 35 ].
然而,与许多其他战略一样 MYC公司 也是一把双刃剑,在某些情况下并不总是促进癌症治疗。 正在关闭 N-马来西亚 抑制经顺铂治疗的TET21N细胞中caspase-3过程和PARP(聚ADP-核糖聚合酶)裂解[ 36 ]. 此外,转染 N-马来西亚 在里面 N-马来西亚 单拷贝SK-N-SH和NIH3T3细胞可以促进DMAP1(Dnmt1相关蛋白)的表达,DMAP1通过以下途径诱导细胞凋亡 第53页 激活[ 37 ].
2.3.2. 第53页 癌症中的谷氨酰胺代谢 作为细胞命运决定因素之一, 第53页 在大多数人类癌症中发现基因突变或被破坏( ) [ 38 ]. 人们普遍认为 第53页 是一种肿瘤抑制基因,能够在DNA损伤、缺氧或癌基因激活条件下诱导细胞周期阻滞和凋亡[ 39 ]. 通常情况下, 第53页 基因位于细胞核[ 40 ]. 翻译后,它易位到胞浆并与胞浆MDM2结合,这种结合抑制 第53页 激活。 压力信号发出后, 第53页 在丝氨酸15处被磷酸化,并从MDM2(小鼠双分钟2同源物)释放[ 41 ],然后激活其下游因子,如 第21页 、BAX(Bcl-2相关X蛋白)、PUMA( 第53页 细胞凋亡上调调节剂)、NOXA(佛波醇-12-苦味酸-13-醋酸盐诱导蛋白1)或PTEN(磷酸酶和张力蛋白同源物)发挥其功能。
GLS2已被证明是 第53页 [ 42 , 43 ]. 通过上调GLS2表达( ), 第53页 增加GSH水平并降低ROS水平,从而抑制肿瘤发生。 不幸的是, 第53页 在许多癌症中发生突变,表明功能丧失。 除了在GLS2上工作之外, 第53页 最近有报道抑制SLC7A11的表达( )是半胱氨酸/谷氨酸反转运蛋白的关键成分[ 44 ]. SLC7A11介导细胞外半胱氨酸与细胞内谷氨酸的交换[ 45 ],并且在几种人类癌症中过表达[ 44 ]. 也, 第53页 可以抑制GLUT1(葡萄糖转运蛋白)和GLUT4,并抑制PI3K(磷脂酰肌醇-3激酶)–AKT(蛋白激酶B)和mTOR通路。 这些影响 第53页 导致细胞生长抑制,然后逆转癌症表型[ 46 ]. 基于其在癌症中的重要抑制作用,尝试恢复或增加 第53页 中的活动 第53页 癌症突变或功能丧失。
2.3.3. 癌症患者谷氨酰胺代谢中的Ras 25%的人类癌症中发现了致癌Ras蛋白,并与代谢改变相关。 Ras增加谷氨酰胺的碳骨架和氨基氮部分的利用,并促进葡萄糖消耗[ 47 ]. Ras-driven癌症能够通过激活液相内吞营养素摄取来满足其营养需求,并促进血管生成以增加肿瘤血供[ 48 ]. 研究表明,当Ras被激活时,谷氨酰胺是TCA循环的主要碳源[ 49 ]. 人胰腺导管腺癌中致癌K-Ras介导谷氨酰胺代谢重编程[ 50 ]. K-Ras可抑制谷氨酸脱氢酶的表达并增加天冬氨酸转氨酶的表达[ 50 ]. 同时,谷氨酰胺缺乏可导致 K-Ras公司- 转化细胞[ 51 ].
2.3.4. 癌症患者谷氨酰胺代谢中的低氧诱导因子(HIF) HIF-1是一种异二聚体,由HIF-1α和HIF-1β亚单位组成。 HIF-1α亚单位的表达和活性受到细胞氧浓度的严格调节。 缺氧时α亚单位的表达水平增加,而β亚单位是组成性表达[ 52 ]. HIF-1通过激活编码葡萄糖转运蛋白和糖酵解酶的许多基因的转录,在癌症代谢的重新编程中发挥关键作用,并且还促进血管生成[ 52 , 53 ]. HIF-1对通过诱导PDK1(丙酮酸脱氢酶激酶1)减少缺氧时线粒体耗氧量既必要又充分[ 54 ]. 这样,癌症可以在缺氧条件下存活。 然而,如果PDK1活性被抑制,持续的线粒体呼吸和由此产生的氧化应激将导致细胞死亡。
实体瘤通常血管化不良,并含有局部缺氧[ 55 ]. 这种特殊的肿瘤微环境增强了HIF-1α在大多数人类癌症及其转移中的过度表达[ 52 ]其中HIF-1α诱导基因表达以促进生存[ 56 ]. 在缺氧条件下,F1Fo-ATP酶活性降低可增加线粒体中的磷酸盐浓度[ 57 ]. 增加磷酸盐可促进基于GAC(长形肾脏谷氨酰胺酶变体)的谷氨酰胺酶活性,从而增强谷氨酰胺分解,增加代谢和生物合成需求,从而赋予恶性细胞选择性优势[ 57 ]. 上述代谢调节使恶性细胞更容易受到GLS抑制剂的影响,因此可以作为癌症治疗的靶点[ 55 ]. 在缺氧期间,由于丙酮酸脱氢酶活性降低,葡萄糖衍生柠檬酸盐减少,而由于α-KGDH(酮戊二酸脱氢酶)活性降低,α-KG水平增加[ 58 ]. 这些变化推动了异柠檬酸脱氢酶(IDH)的反向反应[ 58 ]然后增加柠檬酸的产生,最后使细胞在脂质合成中依赖还原性谷氨酰胺代谢[ 59 ]. LKB1(肝激酶B1)是一种丝氨酸/苏氨酸激酶,在人类癌症中经常失活。 研究表明,LKB1的缺失使癌细胞在ATP供应中依赖HIF-1α,从而诱导糖酵解和谷氨酰胺消耗的增加[ 60 ]. 合理地说,在没有LKB1的细胞中敲低HIF-1α促进了这些细胞谷氨酰胺消耗的减少[ 60 ].
3.靶向谷氨酰胺在癌症治疗中诱导细胞凋亡 支持癌细胞生存和增殖的重新编程代谢现在被认为是癌症的标志[ 61 ]. 这种特性使癌症容易受到针对新陈代谢的治疗策略的影响。 谷氨酰胺代谢作为许多癌症的关键能量来源之一,近年来已成为癌症治疗的一个热点。
抵抗细胞死亡是癌细胞的另一个特征[ 61 ]. 癌细胞有几种避免凋亡的策略,例如消除 第53页 功能、抗凋亡因子表达增加、促凋亡调节因子下调或/和短路死亡途径[ 61 ]. 促进细胞凋亡一直是癌症治疗中一个特别有趣的话题。 因此,许多研究都是为了重新激活或上调癌症中的细胞凋亡。 凋亡途径主要有两种:内源性和外源性。 内在途径感知并整合多种细胞内来源,而外在途径接收并处理涉及Fas、DR3(死亡受体3)和TNF的细胞外死亡诱导信号[ 61 ]. 这两条受刺激的途径随后都会激活促凋亡Bcl-2家族成员和/或半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶来执行凋亡。
影响谷氨酰胺代谢的策略有多种,包括谷氨酰胺剥夺、限制谷氨酰胺摄取、降低谷氨酰胺代谢酶活性、使用谷氨酰胺类似物以及干扰谷氨酰胺代谢调节器。
3.1. 谷氨酰胺剥夺 谷氨酰胺剥夺通过外源性或内源性途径诱导细胞凋亡,这取决于细胞类型和细胞状况。 然而,补充谷氨酰胺可诱导或抑制细胞死亡,这取决于通过可变途径的细胞类型[ 三 ].
谷氨酰胺缺乏已被证明可诱导肝癌、杂交瘤、白血病、骨髓瘤和成纤维细胞凋亡[ 三 , 62 , 63 ]. 它能刺激caspase-2,-3的活化和裂解-PARP的表达,并诱导细胞色素 c(c) 释放( )。 尤其是细胞外谷氨酰胺水平影响细胞对不同凋亡触发因素的敏感性,缺乏谷氨酰胺的细胞对Fas(CD95)配体、TNF-α和热休克介导的凋亡更敏感( ) [ 三 ]. 据推测,谷氨酰胺缺乏可降低HSP70(热休克蛋白70)[ 64 ]通过抑制caspase激活的胞浆磷脂酶A2的功能和线粒体膜电位∆Ψm崩溃,防止caspase-3样蛋白酶下游[ 65 ]. 在Sp2/0小鼠杂交瘤细胞中,谷氨酰胺剥夺也被证明通过释放细胞色素c和SMAC(第二个线粒体衍生的半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶激活物)、转移BAX、激活半胱氨酸蛋白酶-9和半胱氨酸酶-3以及裂解PARP来诱导明显的凋亡[ 66 ]. 重要的是 C-MYC公司 导致这种凋亡[ 66 ]. 然而,在肝癌细胞系中,谷氨酰胺缺乏不会诱导caspase-9或-8活化,而是刺激caspase-2活性[ 67 ]. 因此,谷氨酰胺缺乏诱导的凋亡途径显示了细胞类型的特异性。
谷氨酰胺缺乏会导致细胞死亡或生长停滞。 谷氨酰胺缺乏使细胞对Fas(CD95)配体、TNF-α和热休克介导的凋亡敏感。 谷氨酰胺剥夺通过外源性或内源性途径诱导细胞凋亡,这取决于细胞类型和细胞状况。 细胞色素c; C-PARP,切割-PARP; t-标书,截短标书; ΔΨ,线粒体膜电位; GADD、生长停滞和DNA损伤诱导基因; 活性氧; JNK,c-Jun N-末端激酶; HSP70、热休克蛋白70。 ┴, 抑制作用; 粗体箭头,谷氨酰胺剥夺后p62和ΔΨ降低。
谷氨酰胺剥夺也可以通过降低谷胱甘肽诱导细胞凋亡。 谷胱甘肽是细胞内的主要抗氧化剂,由谷氨酸、半胱氨酸和甘氨酸组成。 谷氨酸作为谷胱甘肽的组成部分,主要来源于细胞摄取谷氨酰胺[ 8 ]. 谷氨酸也是细胞获得半胱氨酸所必需的,这是由于X c(c) -反转运蛋白,出口谷氨酸,进口半胱氨酸[ 10 ]. 谷胱甘肽在癌细胞耐药性的发展中起着重要作用[ 68 ]. 它能中和细胞内自由基,防止细胞毒性作用,并刺激外源性物质的流出[ 45 , 68 ]. 谷胱甘肽还可以识别细胞外排泄的异物并与之结合,从而诱导耐药性[ 68 ]. 实验表明,线粒体谷胱甘肽(GSH)耗竭而非胞质谷胱甘氨酸耗竭是导致细胞死亡激活的关键因素[ 69 ]. 我们之前的研究结果表明,谷氨酰胺剥夺增加了TET21N细胞系线粒体ROS并降低了GSH水平,抑制ROS生成可逆转谷氨酰胺剥夺诱导的细胞凋亡,这表明了细胞凋亡过程中ROS生成的重要性。 这与里德的报告一致 等。 [ 70 ]那个NAC( N个 -乙酰半胱氨酸)逆转谷氨酰胺缺乏诱导的细胞死亡。 γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶抑制剂被用于耗尽谷胱甘肽,作为提高肿瘤对某些治疗干预措施敏感性的策略,因为它是谷胱甘苷合成中的限速酶[ 71 ].
据报道,谷氨酰胺缺乏除了诱导细胞凋亡外,还会导致自噬[ 72 ]以及癌细胞的细胞周期阻滞。 在HeLa、HCT-116、A549、PC3和DU145细胞中,谷氨酰胺剥夺可通过提高自噬体相关形式LC3(LC3-II)的水平和降低自噬降解蛋白p62来增加自噬活性[ 72 , 73 ]. 此外,在人类乳腺细胞系HBL100和TSE的亚融合培养中,谷氨酰胺缺乏也会在1.5小时内提高GADD45(生长停滞和DNA损伤诱导基因)和GADD153 mRNA的表达水平( )。 研究表明,GADD基因的表达有助于生长停滞和/或保护机体免受谷氨酰胺缺乏条件下的代谢损伤[ 74 ]. 有趣的是,谷氨酰胺缺乏导致单羧酸转运体1上调,从而导致癌细胞对3-溴丙酮酸(一种临床开发中的抗肿瘤药物)更高的敏感性 体内 和 在体外 [ 72 , 75 ] . 这表明靶向谷氨酰胺代谢与其他化疗药物协同作用的潜在能力。
3.2、。 谷氨酰胺摄入的限制 如前所述,谷氨酰胺转运体增加也是大多数癌细胞谷氨酰胺成瘾的原因。 因此,谷氨酰胺转运抑制是限制谷氨酰胺代谢的另一种方式。
ASCT2和LAT1在多种癌组织中上调[ 18 , 76 ]. 一些ASCT2抑制剂,包括三苯氧胺、雷洛昔芬和GPNA(γ- 我 -谷氨酰-硝基苯胺)已被证明在实验室研究中有效( ) [ 2 , 77 ]. 化学物质或shRNA抑制ASCT2功能 在体外 在LNCaP(前列腺淋巴结癌)和PC-3前列腺癌细胞系以及PC-3细胞异种移植物中,通过下调E2F转录因子和mTORC1途径减少谷氨酰胺摄取和细胞周期进展[ 78 ]. 此外,ASCT2直接参与细胞生存信号传导,并在驱动大鼠星形细胞瘤衍生C6细胞系的谷氨酰胺依赖性生长中发挥主要作用[ 20 ]和人神经母细胞瘤细胞系SK-N-SH[ 21 ]. BCH(2-氨基双环-(2,2,1)-庚烷-2-羧酸)对H1395肺癌细胞株和KKU-M213(来源于泰国肝内胆管癌患者的胆管癌细胞)细胞中LAT1的抑制可减少细胞数量 我 -亮氨酸摄取,从而抑制mTOR通路活性,最终降低细胞增殖和生存能力[ 79 , 80 ]. 除了通过阻断转运体抑制谷氨酰胺的获取外,天冬酰胺酶治疗还可以阻止谷氨酰胺的补充[ 81 ].
表1 化合物 目标 工具书类 BPTES公司 GLS1级 [ 84 , 85 , 86 , 87 , 88 , 89 ] 968 通用汽车公司 [ 85 , 90 , 91 , 92 , 93 ] CB-839型 GLS1级 [ 15 , 94 ] 埃布森 GLS1、GLS2 [ 95 ] 白屈菜红碱 GLS1、GLS2 [ 95 ] 阿扑吗啡 GLS1、GLS2 [ 95 ] 大学教师 谷氨酰胺拮抗剂 [ 96 , 97 , 98 , 99 ] 阿维星 γ-谷氨酰转肽酶谷氨酰胺酰胺转移酶; 谷氨酰胺拮抗剂 [ 99 , 100 , 101 , 102 ] 十亿立方米 谷氨酰胺转运体(SLC7A5) [ 79 , 80 ] α-甲基- 数字图书馆 -色氨酸 谷氨酰胺转运体(SLC6A14) [ 103 , 104 ] 三苯氧胺 谷氨酰胺转运体(ASCT2) [ 77 ] 雷洛昔芬 谷氨酰胺转运体(ASCT2) [ 77 ] 全球行动计划 谷氨酰胺转运体(ASCT2) [ 2 , 77 ] EGCG公司 GDH公司 [ 105 , 106 , 107 ] 我 -天冬氨酸酶 谷氨酰胺 [ 81 , 108 , 109 ] 乙酸苯酯 谷氨酰胺 [ 110 , 111 ]
虽然限制补充谷氨酰胺被视为治疗某些癌症的有效策略,但它并非适用于所有癌症。 在小鼠纤维肉瘤细胞系L929中,谷氨酰胺缺失使细胞对TNF-α诱导的细胞毒性不敏感[ 82 ]. 在人肝癌细胞(SMMC-7721)中,当向细胞培养物中添加谷氨酰胺时,细胞增殖受到抑制,细胞凋亡[ 83 ]. 因此,肿瘤治疗中谷氨酰胺代谢抑制的细胞类型具有特异性。
3.3、。 谷氨酰胺酶的抑制 由于大多数癌症中谷氨酰胺代谢增强,GLS被视为治疗干预的重要药物。 它也被认为是谷氨酰胺依赖性的生物标志物和治疗靶点[ 81 ]. BPTES(双-2-(5-苯基乙酰氨基-1,2,4-噻二唑-2-基)乙基硫化物3)和968(5-(3-溴-4-(二甲基氨基)苯基)-2,2-二甲基-2,3,5,6-四氢苯并[a]菲啶-4(1H)-酮)已被证明是最近研究中最常见的GLS抑制剂。 BPTES的几种衍生物或类似物[ 112 ]新发现的谷氨酰胺酶1抑制剂CB-839也正在研究中。 先前发现的谷氨酰胺拮抗剂如DON(6-重氮-5-氧代-l-去甲亮氨酸)是非特异性的,具有毒性或副作用,并抑制几种谷氨酰胺利用酶[ 96 ]. 在最近的一项研究中,ebselen、白屈菜红碱和阿朴吗啡等药物也被视为GLS抑制剂( ) [ 95 ].
3.3.1. 谷氨酰胺酶(GLS) 哺乳动物表达三种GLS亚型,包括GLS1(肾脏GA亚型)和GLS2(肝脏GA亚型或LGA(肝脏谷氨酰胺酶)[ 57 , 113 ]). KGA和GAC是2号染色体上同一基因kidney型GLS的两种亚型,它们具有相同的N端但不同的C端[ 84 ]. KGA亚型在肾脏、大脑、肠道和免疫系统细胞中高度表达,但在肝脏中不表达,而GAC在心脏、胰腺、胎盘、肺和许多转化细胞中表达,但不在大脑和肝脏中表达[ 84 , 114 ]. GLS2主要存在于成人肝脏[ 115 ]. 新证据表明,GLS2表达也发生在肝外组织,如大脑[ 43 ]. 在细胞水平上,GLS2是一种内线粒体膜酶[ 43 ]KGA和GAC最有可能定位于线粒体[ 85 ].
GLS1在肾脏代谢性酸中毒期间维持酸碱平衡,并生成谷氨酸,谷氨酸反过来在中枢神经系统中充当兴奋性神经递质[ 86 ]. 在肠上皮中,KGA启动谷氨酰胺的分解代谢,谷氨酰胺是主要的呼吸燃料来源[ 114 ]. 然而,GLS2很可能作为酶来催化谷氨酰胺代谢,然后增加细胞内GSH和NADH的水平,并降低细胞内ROS的水平。 因此,GLS2被认为是一种肿瘤抑制剂[ 116 ].
在三种GLS中,例如GAC、LGA、KGA、KGA或/和GAC在许多癌症中表达最多,并促进癌症增殖。 KGA在来自不同器官和细胞的肿瘤中上调,包括乳腺、肺、肝、脑和B细胞[ 55 , 85 , 90 , 117 , 118 , 119 ]而GAC主要在谷氨酰胺利用率和GLS活性较高的人乳腺癌细胞系中表达[ 114 ]. 相反,与正常组织相比,人类肝肿瘤中GLS2的表达降低[ 120 ]这可能是肿瘤发生的原因之一。 同时,GLS2过度表达可减少癌细胞集落的形成[ 52 ].
3.3.2. GLS监管机构 GLS的表达和激活受多种因素调节。 GLS1被高磷酸盐水平激活(变构激活),并被最终产物谷氨酸强烈抑制,而GLS2被低磷酸盐水平激活,而不被谷氨酸抑制[ 121 ]. 氨是谷氨酰胺水解的最终产物之一,是KGA的抑制剂和LGA的活化剂。 然而,氨是高浓度KGA的激活剂[ 122 ].
表皮生长因子(EGF)和癌基因也参与GLS调节。 EGF通过Raf-Mek-Erk信号模块激活KGA活性[ 87 ]. C-MYC公司 诱导GLS1表达并促进致癌转化和癌细胞增殖( ) [ 8 ]. C-MYC公司 转录抑制microRNAs 23a和23b,进而抑制GLS1基因的转录,从而导致线粒体GLS在人类P-493 B淋巴瘤细胞和PC3前列腺癌细胞中的更高表达[ 31 ]. 另一种GLS1抑制剂是NF-κb(活化b细胞的核因子-κ轻链增强子),它能够抑制miR-23a和miR-23b[ 90 ]. GLS2被确认为 第53页 正常细胞和肿瘤细胞中的靶基因( ) [ 43 ]因为人类GLS2基因启动子含有 第53页 共识DNA结合元件[ 52 ]. 除此之外 第53页 ,TAp73(成员 第53页 家族)也驱动神经母细胞瘤细胞中GLS2的表达[ 123 ]. 在最近的一项研究中,ErbB2还可以通过激活NF-κB和MAPK(丝裂原活化蛋白激酶)通路,在乳腺癌细胞的蛋白和mRNA水平激活GLS1,因为抑制NF-κ的B和MAPK会降低GLS1的表达[ 124 ]. 此外,视网膜母细胞瘤蛋白也参与GLS1 mRNA和蛋白的表达,小鼠胚胎成纤维细胞中视网膜母细胞癌蛋白的缺失增加了GLS1的活性[ 125 ]. 有趣的是,磷酸化状态下的STAT1(信号转导子和转录激活子1)被发现直接与单核细胞衍生巨噬细胞中的GLS1启动子结合,该启动子参与IFN-α。 IFN-α治疗可增加STAT1磷酸化和GLS mRNA和蛋白表达水平[ 126 ].
3.3.3. GLS1抑制剂在癌症治疗中的应用 BPTES(双-2-(5-苯基乙酰胺-1,2,4-噻二唑-2-基)乙基硫醚3) BPTES是一种特异性GLS1抑制剂[ 84 , 86 ],并通过促进非活性四聚体的形成以非竞争性方式抑制GLS1( ) [ 84 , 88 ]. BPTES在活性位点附近的二聚体界面上与KGA结合,并触发催化位点附近关键环(Glu312-Pro329)的剧烈构象变化[ 87 , 89 ]. 无论是在无机磷酸盐对GLS进行变构活化之前还是之后将BPTES添加到GLS中,它对GLS活性都是完全有效的[ 85 ]. 此外,BPTES治疗还抑制谷氨酰胺的摄取[ 127 ],提高ROS水平并降低GSH水平[ 55 ]. 然而,BPTES分子量高(534),溶解性差,生物利用度低,这使得它不适合作为GLS抑制的候选药物,尽管在谷氨酰胺代谢研究中持续使用BPTES被发现是可以接受的,因为它的副作用低,效率高。
BPTES治疗可延长肝癌动物的生存期,且无明显副作用,导致G1-S细胞周期转换延迟,随后DNA复制停滞、细胞死亡和碎片化[ 120 ]. 与表达野生型IDH的急性髓系白血病细胞相比,BPTES还抑制表达突变型IDH细胞的生长[ 128 ]. 代替催化异柠檬酸和NADP + 转化为α-KG和NADPH,突变的IDH1将α-KG转化为 d日 -2-羟基戊二酸。 BPTES在肿瘤中的选择性抑制能力暗示了潜在的治疗策略[ 119 ]. 有趣的是,BPTES减少[1-13C]-丙酮酸转化为丙氨酸,但不减少转化为乳酸[ 129 ]与糖酵解中间产物升高有关,这可能反映了糖酵化的代偿性增加,以产生α-KG并维持体内平衡[ 12 , 32 , 56 , 119 ]. 如前所述, MYC公司 在许多癌细胞中参与谷氨酰胺成瘾,而BPTES的抑制能力受 MYC公司 某些情况下的状态。 BPTES通过诱导IMR90-ERMYC和HA1E-MYCER细胞凋亡 MYC公司 -依赖方式,因为没有 MYC公司 显示较少的凋亡程度[ 32 ]. BPTES还抑制 MYC公司 -依赖性人类B细胞淋巴瘤细胞系(P493)通过阻断DNA复制导致细胞死亡和碎裂[ 120 ]. 此外,BPTES增加热休克蛋白90(Hsp90)抑制剂,例如17AAG诱导的Tsc2 −/− MEF细胞死亡[ 130 ]显示出协同效应。
968(5-(3-溴-4-(二甲氨基)苯基)-2,2-二甲基-2,3,5,6-四氢苯并[a]菲咯啶-4(1H)-酮) 968是GAC的特异性抑制剂,通过阻断翻译后修饰,作为变构方式阻止细胞中GAC的激活( ) [ 91 ]. 与BPTES不同,968只能抑制未激活的GAC。 如果在激活前几秒钟将968添加到GAC中,968可以表现出完全的抑制作用[ 85 ]. 此外,BPTES诱导四聚体形成,而968与GAC的单体形式结合,诱导构象变化,使酶失去活性[ 92 , 93 ]. 968首次被发现是一种致癌的弥漫性B细胞淋巴瘤抑制剂,能够抑制Rho GTPase的转化活性,后者通过激活NF-κB来促进GLS1的活性[ 90 ]. 在接下来的研究中,968的目标被确定为GAC[ 90 ]. 968对转化细胞/癌细胞的生长、迁移和侵袭活性有特异性影响,对非转化细胞的生长或形态没有影响[ 91 , 93 ]. 据报道,968年乳腺癌、脑癌和胰腺癌细胞的生长受到抑制[ 131 ].
968种治疗方法已被证明在多个人类乳腺癌细胞系中诱导细胞毒性,伴随着下调抗凋亡和/或转移基因,包括AKT、Bcl-2(B细胞淋巴瘤-2)和 MYC公司 [ 132 ]. 这些基因表达的变化导致细胞凋亡的激活,并降低侵袭性[ 132 ]. 更重要的是,968增加了MDA-MB-231对化疗药物(如阿霉素)的敏感性[ 132 ],并通过下调α-KG,使EGFR激活突变表达GBM细胞系对mTOR靶向治疗敏感 在体外 和 体内 [ 133 , 134 ]. 968显著降低谷氨酰胺的摄取和谷氨酰胺分解代谢副产物(如氨)的分泌,并以剂量依赖性方式抑制GBM细胞增殖[ 134 ]. 有趣的是,通过激活mTORC1信号,968和Hsp90抑制剂(例如,17AAG)的结合增加了17AAG单独在Tsc2中诱导的细胞凋亡 −/− MEF公司[ 130 ]. 968对GLS1的同时抑制和抑制剂(如单丹磺酰-daverine)对组织谷氨酰胺转胺酶的同时抑制,在一组不同的癌细胞系中导致合成致死性[ 131 ]. 上述研究表明,968不仅能有效抑制癌细胞生长,还能提高癌细胞对其他化疗药物或其他代谢信号抑制剂的敏感性。
除了直接抑制谷氨酰胺代谢外,968还抑制其他代谢物的生成[ 134 ]和致癌。 2-HG(羟基戊二酸)是IDH1突变的代谢产物,可导致氧化应激[ 119 ]. 968治疗使乳腺癌细胞株细胞内2-HG水平降低80%-90%[ 135 ]. ESV是细胞外脱落的小泡,被认为是与谷氨酰胺代谢失调相关的癌症特异性标志物[ 136 ]. 968显著降低癌性上皮细胞系中的总ESVs并抑制肿瘤发生[ 136 ].
CB-839型( N个 -(5-(4-(6-((2-(3-(三氟甲氧基)苯基)乙酰基)氨基)-3-哒嗪基)丁基)-1,3,4-噻二唑-2-基)-2-吡啶乙酰胺) CB-839是另一种有效且选择性的GLS1抑制剂。 它对GLS1的抑制作用强于BPTES。 它是一种非竞争性抑制剂,其效力与谷氨酰胺浓度无关,并表现出时间依赖性和缓慢可逆的动力学( ) [ 15 ]. 它已被证明能抑制对化疗高度耐药的三阴性乳腺癌细胞系的增殖[ 15 ]减少白血病中的活细胞数并诱导凋亡[ 94 ]. 此外,它还抑制淋巴瘤、骨髓瘤、间皮瘤、急性白血病和非 - 小细胞肺癌[ 137 ].
在CB-839治疗期间,谷氨酸、a-KG、天冬氨酸、富马酸和苹果酸减少,伴随着呼吸能力下降[ 15 , 94 ]. 更有趣的是,在用多西环素诱导的突变体IDH1-R132H或IDH2-R140Q构建体稳定转导的THP1细胞系中,CB-839处理可以增加CD11b(分化标志物)水平和分化的形态学迹象,并降低细胞内2-HG水平[ 94 ]表明其具有更强的抗肿瘤能力。 CB-839治疗还显著降低了骨髓瘤细胞的生存能力,但对正常健康献血者的外周血单个核细胞(PBMC)没有明显影响,这表明CB-839具有特异的抗骨髓瘤活性,是一个良好的治疗指数[ 138 ]. 自噬和caspase介导的凋亡途径都有助于CB-839的抗骨髓瘤活性[ 138 ]. 最近,CB-839被证明能协同敏化白血病细胞,使其启动Bcl-2抑制剂,例如ABT-199[ 139 ].
3.3.4. GLS2在癌症治疗中的应用 与GLS1相反,GLS2被广泛接受为肿瘤抑制因子,并通过异位表达抑制肿瘤形成。 然而,最近的一项研究表明,GLS2在宫颈癌患者的放射抗性中起着重要作用[ 140 ]. 敲除GLS2可增加细胞内ROS水平,并显著提高宫颈癌的放射敏感性[ 140 ]. 李 等。 已经发现一系列烷基苯并醌优先抑制GLS2而不是GLS1[ 141 ]. 烷基苯醌治疗降低细胞内GLS活性、谷氨酸水平、癌细胞增殖和凤尾鱼非依赖性集落形成,并通过AMPK(AMP-activated protein kinase,AMP-actived protein kiase)介导的mTORC1抑制诱导自噬[ 141 ].
4.结论 由于能量产生和代谢物合成增加,癌症代谢失调可促进细胞增殖,减少药物诱导的凋亡,并产生治疗耐药性[ 56 ]. 因此,靶向癌细胞代谢成为解决这一挑战的一种新方法。
谷氨酰胺是一种多功能氨基酸,用于支持细胞生长和增殖。 已经证明谷氨酰胺是不可替代的,尤其是对大多数肿瘤细胞。 通过剥夺谷氨酰胺、阻断谷氨酰胺转运体或抑制GLS活性来限制谷氨酰胺代谢已被证明可通过诱导凋亡和/或自噬来有效抑制肿瘤细胞生长 在体外 和 体内 尤其是这些新发现的GLS抑制剂(968和CB-839)具有高效和低副作用。 此外,当它们协同工作时,还能有效提高癌细胞对其他常见化疗的敏感性。 然而,不建议抑制中枢神经系统中的谷氨酸生成,因为谷氨酸是一种重要的神经递质。 因此,不能跨越血脑屏障的抑制剂可能对非中枢神经系统癌症有用[ 142 ].
5.展望 随着肿瘤治疗领域的发展,问题变得更加明显。 如前所述,癌细胞具有高度异质性,即使是同一类型的癌症也具有不同的代谢机制、分子和临床特征。 因此,研究同源癌的共同特性具有重要价值。 谷氨酰胺代谢限制和化疗药物一起使用也是可行的,因为靶向癌细胞的代谢适应有可能使癌细胞对抗癌药物敏感[ 72 ]. 此外,还需要进一步研究谷氨酰胺与肿瘤细胞凋亡关系的分子机制。 在一些癌症中,葡萄糖和谷氨酰胺是互补的。 当另一种营养素可用时,抑制一种营养素可能对治疗某些癌细胞毫无用处。 一个可能的解决方案是将谷氨酰胺和葡萄糖的抑制剂结合起来,这需要进一步的考虑和研究。 临床前研究和临床研究脱节是另一个大问题。 二维细胞培养已显示出其局限性,肿瘤微环境对发展癌症治疗越来越重要; 因此需要三维细胞培养方法和更多的临床数据。 由于现有的谷氨酰胺模拟物具有全身毒性,并且在越来越多的癌症中存在难以解释的变异性,因此还必须确定更有效、毒性更低的谷氨酰胺类似物[ 81 ].
鸣谢 本研究得到了长江学者和大学创新研究团队项目(IRT 0848)和四川农业大学双枝项目(03570327;03571189)的支持。
缩写 17AGG(美国高尔夫球协会) 17-烯丙胺基ldanamycin 968 5-(3-溴-4-(二甲氨基)苯基)-2,2-二甲基-2,3,5,6-四氢苯并[a]菲咯啉-4(1H)-酮 α-千克 α-酮戊二酸 ABT-199型 Venetoclax公司 所有 急性白血病 阿克特 蛋白激酶B AMPK公司 AMP活化蛋白激酶 列车自动防护系统 三磷酸腺苷 ASCT公司 系统ASC氨基酸转运蛋白1和2 行李 Bcl-2相关X蛋白 十亿立方米 2-氨基双环-(2,2,1)-庚烷-2-羧酸 BPTES公司 双-2-(5-苯基乙酰氨基-1,2,4-噻二唑-2-基)乙基硫化物3 CB-839型 N个 -(5-(4-(6-((2-(3-(三氟甲氧基)苯基)乙酰基)氨基)-3-哒嗪基)丁基)-1,3,4-噻二唑-2-基)-2-吡啶乙酰胺 CD95型 分化簇95 双字节 弥漫性B细胞淋巴瘤 大学教师 6-重氮-5-氧-1-亮氨酸 博士 死亡受体 DMAP1(DMAP1) Dnmt1相关蛋白 欧洲账户管理局 必需氨基酸 表皮生长因子 表皮生长因子 错误B2 受体酪氨酸蛋白激酶erbB-2 通用汽车公司 延长的肾脏谷氨酰胺酶变体 GADD公司 生长停滞和DNA损伤诱导基因 GBM公司 多形性胶质母细胞瘤 GCL公司 谷氨酸半胱氨酸连接酶 地面军事系统 谷氨酰半胱氨酸合成酶 GLS公司 谷氨酰胺酶 GLUD公司 谷氨酸脱氢酶 GLUT公司 葡萄糖转运蛋白 得到了 天冬氨酸转氨酶 全球行动计划 γ- 我 -谷氨酰胺-硝基苯胺 谷胱甘肽 谷胱甘肽 HG公司 羟基戊二酸盐 高强度聚焦 低氧诱导因子 热休克蛋白 热休克蛋白 印尼盾 异柠檬酸脱氢酶 KGA公司 肾谷氨酰胺酶 科威特第纳尔 酮戊二酸脱氢酶 拉丁美洲 我 -型氨基酸转运蛋白 生命周期3 微管相关蛋白1A/1B-轻链3 LDHA公司 乳酸脱氢酶 LGA公司 肝脏谷氨酰胺酶 斯里兰卡银行 肝激酶B MAPK公司 有丝分裂原活化蛋白激酶 百万平方米 小鼠双分2同源 mTOR公司 雷帕霉素的哺乳动物靶点 NAC公司 N个 -乙酰半胱氨酸 NADPH公司 烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸 核因子-κB 活化B细胞的核因子-κ-轻链增强子 NOXA公司 福尔波-12-肉豆蔻酸-13-醋酸酯诱导蛋白1 办公自动化 草酰乙酸 PARP项目 聚ADP-核糖聚合酶 个人计算机 丙酮酸羧化酶 保时捷德国(PDK) 丙酮酸脱氢酶激酶 PDH公司 丙酮酸脱氢酶 pi3公里 磷脂酰肌醇-3激酶 第242页 2-(4-氨基-1-异丙基-1H-吡唑并[3,4-d]嘧啶-3-基)-1H-吲哚-5-醇 PTEN公司 磷酸酶和紧张素同源物 彪马 p53上调凋亡调节剂 ROS公司 活性氧物种 SLC7A5型 溶质载体系列7成员5 SMAC公司 第二个线粒体衍生半胱氨酸天冬氨酸酶激活物 序号1 N系统氨基酸转运蛋白1 斯达 信号转导子和转录激活子1 TCA公司 三羧酸循环 肿瘤坏死因子-α 肿瘤坏死因子-α
作者贡献 这份手稿是由两位作者共同构思的。 陈廉写了手稿的初稿,崔恒民设计了论文并修改了手稿,两位作者都批准了最终手稿。
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