跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
国际癌症杂志。2014年11月;45(5): 1813–1819.
2014年8月20日在线发布。 数字对象标识:10.3892/ijo.2014.2614
预防性维修识别码:项目经理4203326
PMID:25174607

促进癌细胞存活的辐射诱导信号通路(综述)

摘要

放射治疗是一种主要的癌症治疗方法,显著改善了局部疾病控制和癌症患者的总体生存率。然而,由于放射抗性的发展以及治疗后残留的疾病导致癌症复发,其疗效仍然受到限制。辐射通过诱导细胞毒性(主要由DNA损伤引起)阻碍癌细胞生长。然而,辐射还可以同时诱导多种促生存信号通路,如AKT、ERK和ATM/ATR介导的通路,从而抑制细胞凋亡、诱导细胞周期阻滞和/或启动DNA修复。这些信号通路共同作用,降低辐射诱导的细胞毒性,促进癌细胞抗辐射性的发展。因此,以这些促生存途径为靶点对癌细胞的放射增敏具有很大的潜力。在本综述中,我们总结了这些辐射激活信号通路如何促进癌细胞生存的最新文献。

关键词:放射治疗、信号通路、细胞周期检查点、DNA修复、细胞存活

1.简介

放射治疗作为癌症治疗的主要手段,在局部疾病控制中发挥着关键作用。当与化疗(即化学放疗)结合时,放疗提供了额外的益处,从而更好地控制疾病并显著提高癌症患者的生存率(1——). 然而,放射抗性和放射治疗后残留疾病的存在仍然是导致治疗效果丧失的主要问题(4——7). 目前,无论是预测放射治疗对单个癌症患者的益处还是对癌细胞的放射增敏作用,都没有可用的临床方法。因此,对辐射后促进癌细胞存活的机制的进一步了解可以帮助制定药理学策略来提高辐射治疗的疗效。

辐射暴露可诱导多种细胞信号通路,从而导致细胞反应,包括凋亡、细胞衰老和细胞周期检查点激活/DNA修复(8). 在辐射诱导的促生存信号通路中,一些参与诱导细胞周期阻滞和促进DNA修复,而其他参与抑制凋亡诱导(9,10). 这些途径协同作用,保护癌细胞免受辐射的细胞毒性影响,最终导致放射抗性的发展。本文综述了电离辐射对癌细胞存活有积极影响的信号通路。

2.HER(也称为ERBB或EGFR)信号

受体酪氨酸激酶(RTKs)的HER家族由定位于细胞膜上的HER1、HER2、HER3和HER4组成(11). HER RTK具有类似的蛋白质结构,包含细胞外区域(配体结合和二聚体结构域)、跨膜区域和细胞内区域(蛋白酪氨酸激酶结构域和磷酸化调节尾)(12). 在HER受体中,HER2没有已知配体,HER3的激酶活性很低(12). 配体与HER1、HER3和HER4的配体结合域的结合导致受体的同源或异源二聚化,随后在受体的c末端调节尾中的几个酪氨酸发生反磷酸化(12). 磷酸化酪氨酸形成下游适配器和信号传感器的对接位点,激活下游信号通路,包括PI3K/AKT、RAS/RAF/MEK/ERK、磷脂酶C-γ/蛋白激酶C和JAK/STAT通路(13,14). 在这些途径中,PI3K/AKT和RAS/RAF/MEK/ERK级联被证明在辐射后的细胞存活中起重要作用(图1) (15).

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为IJO-45-05-1813-g00.jpg

辐射诱导HER受体活化,进而激活PI3K/AKT和RAS/RAF/MEK/ERK信号通路,促进细胞存活。

此前曾报道过电离辐射后HER1磷酸化增加,表明HER激活(16——18). 我们最近对人类乳腺癌细胞的研究表明,电离辐射不仅会导致HER1的磷酸化增加,还会导致HER2、HER3和HER4的磷酸化增加(19). 虽然负责HER受体磷酸化的机制尚未确定,但先前的研究表明,抑制HER RTK磷酸化的受体蛋白酪氨酸磷酸酶(PTP)可以通过氧化被活性氧/氮物种(ROS/RNS)有效抑制(20). 先前的研究也表明辐射通过线粒体依赖机制诱导ROS/RNS的产生(21). 因此,响应辐射产生的ROS/RNS可能导致PTPs的抑制,从而导致HER-RTK的激活。需要进一步研究,以检查辐射后HER RTK激活的可能性。

HER-RTK的抑制已被证明可增加癌细胞的放射敏感性。HER泛抑制剂CI-1033对HER RTK的抑制可显著提高人结肠癌细胞的放射敏感性在体外体内(22)而吉非替尼对HER1的抑制和赫赛汀对HER2的抑制分别使EGFR扩增的胶质瘤细胞和乳腺癌细胞放射增敏(23,24). 一般来说,HER受体的促生存功能至少涉及两种可能的机制。第一种机制是基于HER受体激活AKT和ERK1/2信号的能力,它们在抑制细胞凋亡中起关键作用(15). HER受体促生存功能的另一种可能机制是通过调节细胞周期检查点反应和DNA修复。在我们最近的研究中,我们发现辐射后HER2的激活对于G2/M细胞周期检查点反应的激活是必要的(19). 此外,据报道,HER1可促进DNA-依赖性蛋白激酶(DNA-PK)的激活,DNA-PKs在NHEJ介导的DNA双链断裂(DSB)修复中起着重要作用(25,26).

3.细胞外信号调节激酶(ERK1/2)途径

在多种细胞类型中,电离辐射诱导MAPK家族成员的快速激活,包括ERK1/2、JNK和p38(27,28). 其中,辐射诱导的ERK1/2信号激活已被证明在促进细胞对辐射的反应中发挥重要作用(29——31).

辐射后,ERK1/2通过MEK1/2的双重酪氨酸和苏氨酸磷酸化被激活,而激活反过来又导致160多个底物的磷酸化/活化(32). 其中一些底物是转录因子,调节编码抗凋亡蛋白的基因的表达(27,32). ERK1/2信号传导靶向的最具特征性的抗凋亡转录因子是环AMP反应元件结合蛋白(CREB)和CAAT/增强子结合蛋白β(C/EBP-β)。作为对辐射的反应,ERK1/2磷酸化/激活p90rsk公司激酶,它反过来激活CREB和C/EBP-β,从而诱导许多抗凋亡蛋白的表达,包括Bcl-xL、Mcl-1和C-FLIPs(33——35). 此外,ERK1/2可以直接磷酸化和抑制一些促凋亡蛋白,包括Bad、Bim和caspase 9(36——39). 因此,通过增加抗凋亡蛋白的表达/活性和抑制促凋亡蛋白的活性,辐射诱导的ERK1/2信号激活的净效应是抑制受照细胞的凋亡。

我们小组和其他小组的研究表明,辐射后ERK1/2信号的激活对于G2/M细胞周期检查点的激活是至关重要的(29,31,40——42). 辐射诱导ERK1/2信号是激活G2检查点关键调节器所必需的,尤其是ATR和BRCA1(31,42). ERK1/2信号通路在促进DNA修复中也起着重要作用。辐射诱导的ERK1/2信号传导与DNA修复相关基因的转录上调有关,如ERCC1、XRCC1XPC公司(43,44). 此外,ERK1/2信号可以激活DNA-PK(在NHEJ介导的DSB修复中起关键作用)和PARP-1(识别受损DNA上的单链DNA断裂(SSB))(44——47). 此外,ERK1/2信号通路作为共济失调毛细血管扩张症突变(ATM)依赖性同源重组(HR)DSB修复的阳性调节器发挥作用(48). 因此,ERK1/2信号通过促进G2/M细胞周期检查点激活和增加DNA修复,积极调节辐射后的癌细胞存活。与这些观察结果一致,越来越多的研究表明,Ras的组成性激活导致癌细胞的放射抗性增加,而MEK或ERK的抑制导致癌细胞放射增敏(29,40,41,49).

虽然辐射激活ERK1/2信号的确切机制尚未明确阐明,但有人提出了几种信号机制参与这种激活。正如我们和其他人所证明的那样,电离辐射后HER家族受体的快速激活有助于乳腺癌和肺癌细胞ERK1/2信号的激活(17). 此外,HER受体的这种作用涉及Ras GTPase。已证实Ras对HER受体激活(主要是HER1和HER2)的反应激活,Ras-N17显性阴性突变体的异位表达通过辐射消除了ERK1/2的激活(50,51). 通过将Grb-2募集到激活的HER受体,Grb-2被激活并与SOS蛋白形成复合物,从而触发Ras/Raf/MEK/ERK信号的激活(图1) (50,51). 此外,激活的Ras可以诱导HER1配体的产生,通过自分泌反馈回路进一步激活HER1,然后Ras/Raf/MEK/ERK信号(52,53). 辐射诱导ERK1/2激活的另一机制涉及肿瘤抑制因子BRCA1。我们实验室的研究表明,使用shRNA降低乳腺癌细胞中BRCA1的表达显著降低了辐射后ERK1/2信号的激活(42). 相反,使用药物抑制剂或siRNA抑制ERK1/2信号也会导致辐射乳腺癌细胞中BRCA1蛋白的不稳定(42). 这些结果表明,ERK1/2和BRCA1对电离辐射的反应存在正反馈回路。最后,DNA损伤传感器ATM也与辐射诱导的ERK1/2激活有关(48). 辐射后激活ERK1/2需要ATM,因为ATM抑制部分阻断辐射诱导的ERK1/2激活(48). 相反,抑制ERK1/2信号也可以减弱辐射诱导的ATM磷酸化,以及ATM向DNA损伤灶的募集(48). 这些研究表明,辐射响应中存在另一个正反馈回路,这一次涉及ATM和ERK1/2。总的来说,这些研究表明,ERK1/2信号通路在辐射反应中的激活受多种相互调节的信号通路的调节。

4.AKT信号通路

AKT信号通路在细胞生存中起着至关重要的作用。在各种类型的恶性肿瘤中检测到这种信号级联的异常激活,并与肿瘤发生有关(54). AKT通过抑制凋亡信号级联和激活促生存信号通路发挥促生存因子的作用(图2). 激活后,AKT磷酸化并抑制一些促凋亡Bcl-2家族成员,包括Bad、Bax和Bim(55——57). 此外,通过直接抑制和排除促凋亡转录因子FOXO3a(Forkhead box O3),AKT还抑制促凋亡因子Bim和Noxa的表达(58——61).

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为IJO-45-05-1813-g01.jpg

PI3K/AKT介导的信号传导促进细胞存活。i) 辐射激活PI3K导致AKT磷酸化/活化;ii)AKT磷酸化并抑制促凋亡蛋白Bad、Bax、Bim和Noxa;iii)AKT磷酸化并激活促生存转录因子NF-κB,导致促生存基因上调BCL-2型BCL-XL型; iv)AKT磷酸化促生存蛋白XIAP,结合并抑制诱导凋亡所需的caspase 3/7/9;v) AKT磷酸化/激活mTOR激酶,后者磷酸化/活化抗凋亡蛋白Mcl-1;vi)FOXO3a上调促凋亡蛋白Bim和Noxa的基因表达。AKT对FOXO3a的磷酸化导致蛋白质的抑制和细胞核排斥。

AKT也积极调节抗凋亡途径(图2). AKT诱导NF-κB转录因子活化,从而促进广泛的抗凋亡基因的转录,尤其是BCL-2型BCL-XL型(62). 此外,AKT磷酸化/激活促生存蛋白XIAP(凋亡蛋白X连锁抑制剂),导致XIAP与caspases 3、7和9的结合增加,并抑制这些caspases,这些caspase的活性对诱导凋亡至关重要(63). AKT靶向的另一个关键促生存途径是mTOR信号通路。AKT磷酸化并激活mTOR激酶,导致抗凋亡蛋白Mcl-1磷酸化/激活(64,65). 此外,AKT对低氧诱导的细胞凋亡具有负调节作用。放射治疗后,辐射往往会在组织中诱导缺氧,并可能导致受损组织中的细胞凋亡(66,67). 低氧诱导的细胞凋亡需要糖原合成酶激酶(GSK)激活线粒体依赖性死亡信号通路(67,68). 然而,辐射后激活AKT可以通过磷酸化抑制GSK的活性,从而激活糖酵解和葡萄糖转运,抑制凋亡诱导(69). 最后,AKT直接参与辐射后DNA-PK催化亚单位的激活,促进NHEJ介导的DSB修复,从而提高细胞存活率(70). 这些研究确立了AKT介导的信号通路在癌细胞对辐射反应中的促生存作用。

人们广泛观察到PI3K/AKT信号通路对电离辐射的反应(15). 这种激活的一种可能机制涉及HER RTK。HER RTK激活后,HER3羧基末端调节尾中的磷酸化酪氨酸可形成6个对接位点,用于磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)p85适配器亚基的招募(71). 随后,PI3K的p110催化亚基磷酸化磷脂酰肌醇-4,5-二磷酸(PIP2)生成磷脂酰肌糖醇(,4,5)-三磷酸(PIP3),然后导致膜募集和激活含有磷脂结合(PH)结构域的蛋白质,如磷酸肌醇依赖性激酶(PDK)1(72). 活化的PDK1磷酸化AKT-Thr308并导致初始AKT活化(72). AKT的完全激活需要PDK2进一步磷酸化其Ser473(72). 此外,突变K-Ras还通过激活EGFR配体的自分泌,对辐射反应中PI3K-AKT信号的激活起到积极作用(73,74).

PI3K/AKT信号转导的促生存功能有望积极促进肿瘤细胞的放射抗性。事实上,越来越多的研究表明,通过药物抑制剂或基因途径抑制PI3K/AKT信号传导,可增强癌细胞的放射敏感性在体外体内(75——77). 此外,PI3K/AKT抑制增加辐射敏感性涉及DNA修复的减少和凋亡诱导的增强(70,75,76,78,79). 另一方面,在一些基于细胞的模型中,抑制PI3K/AKT对辐射敏感性影响不大(29,80——83)表明PI3K/AKT非依赖机制参与辐射敏感性的调节。

5.细胞周期检查点信号

为了应对DNA损伤,细胞周期检查点经常被激活,以阻止细胞周期的进展,从而为细胞修复损伤留出时间(84). 根据检测到损伤的细胞周期阶段,细胞可以被阻滞在细胞周期的G1/S或G2/M边界(图3) (84). 如果损伤是不可逆转的或细胞周期检查点功能失调,可能会触发凋亡来消除受损细胞(84). 因此,功能正常的细胞周期检查点通过抵消DNA损伤的细胞毒性来促进细胞存活。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为IJO-45-05-1813-g02.jpg

辐射诱导G1和G2细胞周期检查点激活和DNA修复。大多数癌细胞在G1检查点有缺陷,通常是由于G1检查点关键调控因子的突变/改变(蓝色),但包含功能性G2检查点。

G1/S转换由Cdk4/6激酶和细胞周期蛋白D的活性控制,其活性主要由p53/p21途径调节(80). G2/M边界由Cdc2/Cyclin B复合物紧密控制,其活性是细胞周期G2/M过渡所必需的(85). 大多数癌细胞中的G1检查点都有缺陷,通常是由于G1检测点关键调控因子(p53、Cyclin D等)的突变/改变所致(80)而G2检查点的激活在癌细胞中很少受损,因为该检查点主要通过p53依赖性机制发挥作用(图3) (86). 事实上,在缺乏功能性G1检查点的癌细胞中,取消G2检查点通常会使细胞对辐射敏感(87).

先前的研究确定Cdc2-Y15是G2检查点控制辐射反应的重要位点(88). Cdc2-Y15被磷酸化以响应辐射暴露,并且在辐射诱导的G2/M阻滞期间保持这种磷酸化(88——90). Cdc2-Y15被Wee1和Myt1激酶磷酸化(91,92)并被Cdc25双特异性磷酸酶去磷酸化(93).

ATM和ATR介导的信号通路在辐射诱导的细胞周期检查点反应中发挥重要作用(84). 为了应对辐射诱导的DNA损伤,ATM和ATR激酶被迅速激活,进而激活其各自的下游靶点,包括p53以及Chk1和Chk2激酶(图3) (84). Chk1和Chk2的激活导致Cdc25的磷酸化,导致通常在G2/M边界激活Cdc2/Cyclin B的Cdc25亚细胞隔离、降解和/或抑制(94). Chk2还可以磷酸化p53-Ser20,诱导辐射后p53蛋白的稳定(84). ATM、ATR和Chk2激酶激活p53导致p21蛋白的诱导,p21蛋白可以直接抑制Cdc2/Cyclin B复合物的活性(84).

总之,辐射诱导的细胞周期检查点信号通路促进细胞周期阻滞,而细胞周期阻滞反过来又对细胞对辐射的生存作出积极贡献。

6.DNA修复途径

电离辐射引起的细胞毒性主要是DNA损伤的结果。辐射会导致几种形式的DNA损伤,包括SSB、DSB、糖和碱修饰以及DNA-蛋白质交联(95,96). 其中,DSBs不仅是电离辐射造成的主要损伤形式(97,98)也是最致命的DNA损伤形式,因为未修复的DSB可能导致细胞死亡(97,99).

作为对电离辐射的响应,磷酸肌醇3-激酶相关激酶(PIKK)的激活,包括ATM、ATR和DNA-PK,可以传递和放大DNA-损伤信号,触发DNA修复装置在损伤部位的组装并启动DNA修复(10). DSB通过两种竞争机制之一修复:非同源末端连接修复(NHEJ)和同源重组(HR)(10)这两种机制均由PIKK监管。在不需要序列同源性的情况下,NHEJ在一个通常在连接点产生错误的过程中重新加入自由端(100). Ku70/Ku80异二聚体识别两端,然后招募DNA-PK(100). 一旦形成,这些复合物将末端聚集在一起,以便进一步处理并通过DNA连接酶IV连接(100). 与NHEJ相比,HR以非常高的保真度准确地修复DSB(100). 这个过程在S期和G2期进行,利用完整的姐妹染色单体中的序列信息修复DSB(100). 辐射也会产生SSB,主要是通过ROS/RNS驱动的碱氧化(98). 这种损伤的修复采用碱基切除修复,即使用DNA糖苷酶和AP内切酶去除受损的碱基,然后通过DNA聚合酶和DNA连接酶的作用填补缺口(101). 因此,成功的DNA修复可以促进细胞对辐射的反应,而修复DNA损伤的失败会增强辐射的细胞毒性效应,导致细胞死亡。

7.结论

放射治疗作为一种护理标准,在癌症治疗中发挥着重要作用。然而,放射抗性仍然是限制放射治疗癌症疗效的主要障碍。为了提高放射治疗的疗效,我们有必要充分了解驱动癌细胞克服辐射诱导的细胞毒性的信号网络,从而实现生存。如上所述,电离辐射引起的致命细胞毒性主要是DSB的结果。然而,辐射也会同时诱导多种信号通路,从而保护细胞免受辐射的细胞毒性影响。其中,HER受体、ERK1/2和AKT介导的信号阻止受照细胞发生凋亡诱导,而ATM、ATR和DNA-PK介导的信息则促使细胞进入周期阻滞并启动DNA修复。此外,HER ERK1/2和AKT信号也积极调节细胞周期检查点反应和DNA修复机制。因此,这些信号通路共同作用,将细胞从辐射诱导的损伤中拯救出来,并促进生存(图4). 为了克服放射治疗的耐药性,未来的研究应侧重于开发药理方法,以阻断辐射细胞中这些促生存信号通路的激活。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为IJO-45-05-1813-g03.jpg

促进细胞存活的辐射诱导信号通路概述。辐射激活ATM、ATR和DNA-PK信号导致细胞周期阻滞和DNA修复。辐射激活HER、ERK1/2和AKT信号通路抑制细胞凋亡诱导。辐射后HER、ERK1/2和AKT信号的激活积极调节细胞周期检查点反应和DNA修复。

致谢

这项研究得到了内布拉斯加州DHHS-LB506 2010-40年对Y.Y.的拨款和NCI SPORE对M.M.O.的拨款(P50 CA127297)的支持。

工具书类

1Pignon JP、le Maitre A、Maillard E、Bourhis J.《头颈癌化疗的荟萃分析》(MACH-NC):93项随机试验和17346名患者的最新资料。放射疗法。2009;92:4–14.[公共医学][谷歌学者]
2Ramnath N,Dilling TJ,Harris LJ等人,《III期非小细胞肺癌的治疗:肺癌的诊断和治疗》,第3版:美国胸科医师学会循证临床实践指南。胸部。2013年;143:eS314–eS340。[公共医学][谷歌学者]
三。Wilkinson-Ryan I、Binder PS、Pourabolghasem S等。晚期子宫内膜癌的联合化疗和放射治疗。妇科肿瘤。2014;134:24–28.[公共医学][谷歌学者]
4Johnstone RW、Ruefli AA、Lowe SW。细胞凋亡:癌症遗传学和化疗之间的联系。单元格。2002;108:153–164.[公共医学][谷歌学者]
5Milas L,Raju U,Liao Z,Ajani J.靶向肿瘤放化疗耐药性的分子决定因素。塞明·昂科尔。2005;32:S78–S81。[公共医学][谷歌学者]
6Bernier J.目前同步放化疗的最先进技术。塞明放射癌。2009;19:3–10.[公共医学][谷歌学者]
7Ghiam AF,Spayne J,Lee J.局部晚期乳腺癌放射治疗的当前挑战和未来展望。当前操作支持Palliat Care。2014;8:46–52.[公共医学][谷歌学者]
8Gewirtz DA。电离辐射和化疗药物诱导DNA损伤后乳腺癌细胞的生长停滞和细胞死亡。乳腺癌研究治疗。2000;62:223–235.[公共医学][谷歌学者]
9Hawkins AJ、Golding SE、Khalil A、Valerie K。DNA双链断裂诱导的促生存信号。放射疗法。2011;101:13–17. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
10Raleigh DR,Haas-Kogan DA。利用DNA损伤反应途径进行放射增敏的分子靶点和机制。未来Oncol。2013年;9:219–233. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Navolanic PM,Steelman LS,McCubrey JA。EGFR家族信号转导及其与乳腺癌发生和化疗耐药的关系(综述)国际癌症杂志。2003;22:237–252.[公共医学][谷歌学者]
12Linggi B,Carpenter G.ErbB受体:机制和生物学的新见解。趋势细胞生物学。2006;16:649–656.[公共医学][谷歌学者]
13Arteaga Carlos L、Engelman Jeffrey A.ERBB受体:从癌基因发现到基础科学再到基于机制的癌症治疗。癌细胞。2014;25:282–303. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Rexer BN,Arteaga CL.HER2基因扩增乳腺癌对HER2靶向治疗的内在和获得性耐药性:机制和临床意义。Oncog评论。2012;17:1–16. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
15Valerie K,Yacoub A,Hagan MP,等。辐射诱导的细胞信号:内外向。摩尔癌症治疗。2007;6:789–801.[公共医学][谷歌学者]
16Goldkorn T,Balaban N,Shannon M,Matsukuma K。EGF受体磷酸化受电离辐射影响。Biochim生物物理学报。1997;1358:289–299.[公共医学][谷歌学者]
17Lee H-C,An S,Lee H,等。一氧化氮对电离辐射的反应激活表皮生长因子受体及其下游信号通路。摩尔癌症研究。2008;6:996–1002.[公共医学][谷歌学者]
18Kiyozuka M、Akimoto T、Fukutome M、Motegi A、Mitsuhashi N。EGFR的辐射诱导二聚体形成:西妥昔单抗放射增敏作用的影响。抗癌研究。2013年;33:4337–4346.[公共医学][谷歌学者]
19Yan Y,Hein AL,Greer PM,等。HER2/Neu在γ射线照射下激活G2/M检查点的新功能。致癌物。2014年6月9日;doi:10.1038/onc.2014.67。(印刷前Epub)[交叉参考][谷歌学者]
20Meng TC、Fukada T、Tonks NK。体内蛋白质酪氨酸磷酸酶的可逆氧化和失活。分子细胞。2002;9:387–399.[公共医学][谷歌学者]
21Leach JK、Van Tuyle G、Lin PS、Schmidt-Ullrich R、Mikkelsen RB。电离辐射诱导的、依赖线粒体的活性氧/氮生成。癌症研究。2001;61:3894–3901.[公共医学][谷歌学者]
22Nyati MK、Maheshwari D、Hanasoge S等。泛ErbB抑制剂CI-1033在体内外的放射增敏作用。临床癌症研究。2004;10:691–700.[公共医学][谷歌学者]
23Liang K,Lu Y,Jin W,Ang KK,Milas L,Fan Z。曲妥珠单抗对乳腺癌细胞的辐射致敏作用。摩尔癌症治疗。2003;2:1113–1120.[公共医学][谷歌学者]
24Geoerger B,Gaspar N,Opolon P等。EGFR酪氨酸激酶抑制在恶性神经胶质瘤和儿童室管膜瘤异种移植物中放射增敏并诱导细胞凋亡。国际癌症杂志。2008;123:209–216.[公共医学][谷歌学者]
25Dittmann K、Mayer C、Fehrenbacher B等。辐射诱导的表皮生长因子受体核导入与DNA依赖性蛋白激酶的激活有关。生物化学杂志。2005;280:31182–31189.[公共医学][谷歌学者]
26Dittmann K、Mayer C、Rodemann HP。C225(头孢菌素)抑制辐射诱导的EGFR核导入抑制DNA-PK活性。放射疗法。2005;76:157–161。[公共医学][谷歌学者]
27Dent P,Yacoub A,Fisher PB,Hagan MP,Grant S.辐射反应中的MAPK通路。致癌物。2003;22:5885–5896.[公共医学][谷歌学者]
28Cui W、Yazlovitskaya EM、Mayo MS、Pelling JC、Persons DL。顺铂诱导一系列顺铂耐药卵巢癌细胞株中c-jun N末端激酶1和细胞外信号调节蛋白激酶1和2的反应。霉菌致癌。2000;29:219–228.[公共医学][谷歌学者]
29雅培DW,霍尔特JT。在暴露于电离辐射的细胞中,有丝分裂原激活的蛋白激酶2激活对于通过G2/M检查点阻滞的进展至关重要。生物化学杂志。1999;274:2732–2742.[公共医学][谷歌学者]
30Tang D,Wu D,Hirao A,等。ERK激活独立于p53介导DNA损伤后的细胞周期阻滞和凋亡。生物化学杂志。2002;277:12710–12717.[公共医学][谷歌学者]
31Yan Y,Black CP,Cowan KH。辐照诱导的G2/M检查点反应需要ERK1/2激活。致癌物。2007;26:4689–4698.[公共医学][谷歌学者]
32Munshi A,Ramesh R.有丝分裂原活化蛋白激酶及其在辐射反应中的作用。基因癌症。2013年;4:401–408. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
33Boucher MJ、Morisset J、Vachon PH、Reed JC、Laine J、Rivard N.MEK/ERK信号通路调节Bcl-2、Bcl-X(L)和Mcl-1的表达,并促进人类胰腺癌细胞的存活。细胞生物化学杂志。2000;79:355–369.[公共医学][谷歌学者]
34Aoudjit F,Vuori K.基质附着调节Fas诱导的内皮细胞凋亡:c-flip的作用和失巢凋亡的意义。细胞生物学杂志。2001;152:633–643. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
35Jost M、Huggett TM、Kari C、Boise LH、Rodeck U。表皮生长因子受体依赖性通过MEK依赖性途径控制角质形成细胞存活和Bcl-xL表达。生物化学杂志。2001;276:6320–6326.[公共医学][谷歌学者]
36Bonni A、Brunet A、West AE、Datta SR、Takasu MA、Greenberg ME。Ras-MAPK信号通路通过转录依赖和独立机制促进细胞存活。科学。1999;286:1358–1362.[公共医学][谷歌学者]
37Clark CJ、McDade DM、O'Shaughnessy CT、Morris BJ。神经元Msk1和Rsk2在错误磷酸化和Erk信号反馈调节中的作用对比。神经化学杂志。2007;102:1024–1034.[公共医学][谷歌学者]
38Ewings KE、Hadfield-Moorhouse K、Wiggins CM等。BimEL的ERK1/2依赖性磷酸化促进其与Mcl-1和Bcl-xL的快速分离。EMBO J。2007;26:2856–2867. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
39Allan LA、Morrice N、Brady S、Magee G、Pathak S、Clarke PR。ERK MAPK通过Thr 125磷酸化抑制caspase-9。自然细胞生物学。2003;5:647–654.[公共医学][谷歌学者]
40Tamamoto T、Ohnishi K、Takahashi A等。γ射线诱导的G2阻滞与两种人类癌细胞放射抗性之间的相关性。国际放射肿瘤生物学杂志。1999;44:905–909.[公共医学][谷歌学者]
41Fritz G,Brachetti C,Kaina B.洛伐他汀通过消除G2阻滞,使HeLa细胞对电离辐射诱导的凋亡敏感。国际放射生物学杂志。2003;79:601–610。[公共医学][谷歌学者]
42Yan Y,Black CP,Cao PT,等。γ射线诱导的DNA损伤检查点激活涉及细胞外信号调节激酶1/2和BRCA1之间的反馈调节。癌症研究。2008;68:5113–5121。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
43Yacoub A、McKinstry R、Hinman D、Chung T、Dent P、Hagan MP。表皮生长因子和电离辐射通过MAPK信号上调DU145和LNCaP前列腺癌中的DNA修复基因XRCC1和ERCC1。辐射Res。2003;159:439–452。[公共医学][谷歌学者]
44Golding SE、Morgan RN、Adams BR、Hawkins AJ、Povirk LF、Valerie K.EGFR和突变型EGFRvIII的生存AKT和ERK信号增强人类胶质瘤细胞的DNA双链断裂修复。癌症生物治疗。2009;8:730–738. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
45Wei F,Yan J,Tang D,等。通过增加DNA-PKcs的活化,通过非同源末端连接来抑制ERK激活,增强双链断裂的修复。Biochim生物物理学报。18332013:90–100.[公共医学][谷歌学者]
46ERK信号通路中的Cohen-Armon M.PARP-1激活。药物科学趋势。2007;28:556–560.[公共医学][谷歌学者]
47Cohen-Armon M、Visochek L、Rozensal D等。磷酸化ERK2激活DNA-非依赖性PARP-1增加Elk1活性:与组蛋白乙酰化有关。分子细胞。2007;25:297–308.[公共医学][谷歌学者]
48Golding SE、Rosenberg E、Neill S、Dent P、Povirk LF、Valerie K。细胞外信号相关激酶积极调节共济失调毛细血管扩张症突变、同源重组修复和DNA损伤反应。癌症研究。2007;67:1046–1053.[公共医学][谷歌学者]
49Yan Y,Greer PM,Cao PT,Kolb RH,Cowan KH。RAC1 GTPase在γ射线诱导的G2/M检查点激活中起重要作用。乳腺癌研究。2012;14:R60。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
50Sasaoka T、Langlois WJ、Leitner JW、Draznin B、Olefsky JM。表皮生长因子受体与p21ras活化耦合的信号通路。生物化学杂志。1994;269:32621–32625.[公共医学][谷歌学者]
51Janes PW,Daly RJ,deFazio A,Sutherland RL.人乳腺癌细胞过度表达erbB-2时Ras信号通路的激活。致癌物。1994;9:3601–3608.[公共医学][谷歌学者]
52Dent P、Reardon DB、Park JS等。辐射诱导转化生长因子α的释放激活了癌细胞中的表皮生长因子受体和有丝分裂原激活的蛋白激酶途径,导致增殖增加,并防止辐射诱导的细胞死亡。分子生物学细胞。1999;10:2493–2506. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
53Hagan M,Wang L,Hanley JR,Park JS,Dent P.电离辐射诱导DU145前列腺癌细胞中有丝分裂原活化蛋白(MAP)激酶激活:MAP激酶抑制增强辐射诱导的细胞杀伤和G2/M期阻滞。辐射Res。2000;153:371–383.[公共医学][谷歌学者]
54Polivka J,Jr,Janku F.PI3K/AKT/mTOR途径中癌症治疗的分子靶点。药物治疗学。2014;142:164–175.[公共医学][谷歌学者]
55Yamaguchi H,Wang HG。蛋白激酶PKB/Akt通过抑制Bax构象变化来调节细胞存活和凋亡。致癌物。2001;20:7779–7786.[公共医学][谷歌学者]
56Gardai SJ,Hildeman DA,Frankel SK,等。Akt对Bax Ser184的磷酸化调节其在中性粒细胞中的活性和凋亡。生物化学杂志。2004;279:21085–21095.[公共医学][谷歌学者]
57Qi XJ,Wildy GM,Howe PH.BimEL的Ser87被Akt磷酸化并调节BimEL凋亡功能的证据。生物化学杂志。2006;281:813–823.[公共医学][谷歌学者]
58Engström m,Karlsson R,Jönsson J-I。通过试剂配体使叉头转录因子FoxO3失活对于PKB介导的造血祖细胞存活至关重要。实验血液学。2003;31:316–323.[公共医学][谷歌学者]
59Yang JY,Xia W,Hu MC。电离辐射激活FOXO3a、Fas配体和Bim的表达,并诱导细胞凋亡。国际癌症杂志。2006;29:643–648. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
60Obexer P、Geiger K、Ambros PF、Meister B、Ausserlechner MJ。FKHRL1介导的Noxa和Bim的表达通过神经母细胞瘤细胞中的线粒体诱导细胞凋亡。细胞死亡不同。2007;14:534–547.[公共医学][谷歌学者]
61Jang S-W,Yang S-J,Srinivasan S,Ye K.Akt磷酸化MstI并阻止其蛋白水解激活,阻止FOXO3磷酸化和核移位。生物化学杂志。2007;282:30836–30844.[公共医学][谷歌学者]
62Ozes ON、Mayo LD、Gustin JA、Pfeffer SR、Pfeffer LM、Donner DB。肿瘤坏死因子激活NF-kappaB需要Akt-丝氨酸-苏氨酸激酶。自然。1999;401:82–85.[公共医学][谷歌学者]
63Dan HC,Sun M,Kaneko S,等。X连锁凋亡抑制蛋白(XIAP)的磷酸化和稳定生物化学杂志。2004;279:5405–5412.[公共医学][谷歌学者]
64Shaw RJ、Cantley LC.Ras、PI(3)K和mTOR信号控制肿瘤细胞生长。自然。2006;441:424–430.[公共医学][谷歌学者]
65Fumarola C、Bonelli MA、Petronini PG、Alfieri RR。非小细胞肺癌中靶向PI3K/AKT/mTOR通路。生物化学药理学。2014;90:197–207.[公共医学][谷歌学者]
66Fleckenstein K,Zgonjanin L,Chen L,等。肺照射后缺氧和氧化应激的暂时性发作。国际放射肿瘤生物学杂志。2007;68:196–204. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
67Sendoel A,Hengartner MO.缺氧条件下细胞凋亡。生理学。2014;29:168–176.[公共医学][谷歌学者]
68King TD,Bijur GN,Jope RS。通过抑制线粒体复合物I诱导的Caspase-3激活由糖原合成酶激酶-3β促进,而锂则减弱。大脑研究。2001;919:106–114.[公共医学][谷歌学者]
69布鲁修斯足球俱乐部韦斯利E路Loberg路。糖原合成酶激酶-3β活性增强可介导低氧诱导的血管平滑肌细胞凋亡,并通过葡萄糖转运和代谢加以阻止。生物化学杂志。2002;277:41667–41673.[公共医学][谷歌学者]
70Toulany M、Kehlbach R、Florczak U等。靶向AKT1通过抑制DNA-PKcs依赖的DNA双链断裂修复增强人类肿瘤细胞的辐射毒性。摩尔癌症治疗。2008;7:1772–1781.[公共医学][谷歌学者]
71Soltoff SP、Carraway KL、III、Prigent SA、Gullick WG、Cantley LC。ErbB3参与表皮生长因子激活磷脂酰肌醇3-激酶。国际放射生物学杂志。1994;14:3550–3558. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
72Marone R,Cmiljanovic V,Giese B,Wymann MP。靶向磷脂酰肌醇3-激酶-走向治疗。Biochim生物物理学报。2008;1784:159–185.[公共医学][谷歌学者]
73Toulany M、Baumann M、Rodemann HP。通过配体或辐射诱导的EGFR介导的受刺激PI3K-AKT信号间接而非直接依赖于组成性K-Ras活性。摩尔癌症研究。2007;5:863–872.[公共医学][谷歌学者]
74Minjgee M、Toulany M、Kehlbach R、Giehl K、Rodemann HP。K-RAS(V12)诱导EGFR配体的自分泌,并通过EGFR-依赖性Akt信号和DNA-PKcs的激活介导放射抗性。国际放射肿瘤生物学杂志。2011;81:1506–1514.[公共医学][谷歌学者]
75Toulany M、Lee K-J、Fattah KR等。Akt通过DNA-PKcs依赖性DNA双链断裂修复的启动、进展和终止,促进人类肿瘤细胞的照射后存活。摩尔癌症研究。2012;10:945–957。[公共医学][谷歌学者]
76Sahlberg SH、Gustafsson AS、Pendekanti PN、Glimelius B、Stenerlow B。AKT亚型对结肠癌细胞系辐射敏感性和DNA修复的影响。肿瘤生物学。2014;35:3525–3534. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
77Shimura T,Kakuda S,Ochiai Y,Kuwahara Y,Takai Y,Fukumoto M。靶向AKT/GSK3β/细胞周期蛋白D1/Cdk4生存信号通路,根除分级放疗获得的肿瘤放射抵抗。国际放射肿瘤生物学杂志。2011;80:540–548.[公共医学][谷歌学者]
78Kim IA、Bae SS、Fernandes A等。Ras、磷酸肌醇3激酶和Akt亚型的选择性抑制增加了人类癌细胞系的放射敏感性。癌症研究。2005;65:7902–7910.[公共医学][谷歌学者]
79Contessa JN、Hampton J、Lammering G等。电离辐射激活癌细胞中Erb-B受体依赖性Akt和p70 S6激酶信号。致癌物。2002;21:4032–4041.[公共医学][谷歌学者]
80Kastan MB、Onyekwere O、Sidransky D、Vogelstein B、Craig RW。p53蛋白参与细胞对DNA损伤的反应。癌症研究。1991年;51:6304–6311.[公共医学][谷歌学者]
81Shonai T、Adachi M、Sakata K等。MEK/ERK通路保护电离辐射诱导的淋巴细胞白血病细胞线粒体膜电位损失和细胞死亡。细胞死亡不同。2002;9:963–971.[公共医学][谷歌学者]
82Lee YJ,Soh JW,Jeoung DI,等。PKCε介导的ERK1/2激活参与NIH3T3细胞辐射诱导的细胞死亡。Biochim生物物理学报。2003;1593:219–229.[公共医学][谷歌学者]
83戴X-F,丁J,张R-G,任J-H,马C-MC,吴刚。索拉非尼通过MEK/ERK信号通路增强人肝癌细胞SMMC-7721的放射敏感性。国际放射生物学杂志。2013年;89:1.[公共医学][谷歌学者]
84Sancar A、Lindsey-Boltz LA、Unsal-Kacmaz K、Linn S.哺乳动物DNA修复的分子机制和DNA损伤检查点。生物化学年度收益。2004;73:39–85.[公共医学][谷歌学者]
85Smits VA,Medema RH。检查G(2)/M转换。Biochim生物物理学报。2001;1519:1–12.[公共医学][谷歌学者]
86O'Connell MJ,Cimprich KA。G2损伤检查点:开启的是什么?细胞科学杂志。2005;118:1–6.[公共医学][谷歌学者]
87Chen T,Stephens PA,Middleton FK,新泽西州科廷。针对S和G2检查点治疗癌症。今日毒品发现。2012;17:194–202.[公共医学][谷歌学者]
88Kharbanda S,Saleem A,Datta R,Yuan ZM,Weichselbaum R,Kufe D。电离辐射诱导p34cdc2的快速酪氨酸磷酸化。癌症研究。1994;54:1412–1414.[公共医学][谷歌学者]
89Rhind N、Furnari B、Russell P.Cdc2酪氨酸磷酸化是裂变酵母DNA损伤检查点所必需的。基因发育。1997;11:504–511.[公共医学][谷歌学者]
90O'Connell MJ、Raleigh JM、Verkade HM、Nurse P.Chk1是G2 DNA损伤检查点中的一种wee1激酶,通过Y15磷酸化抑制cdc2。EMBO J。1997;16:545–554. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
91Lundgren K、Walworth N、Booher R、Dembski M、Kirschner M、Beach D.mik1和wee1协同抑制cdc2的酪氨酸磷酸化。单元格。1991年;64:1111–1122.[公共医学][谷歌学者]
92Parker LL,Atherton-Fessler S,Piwnica-Worms H.第107页星期一是一种双特异性激酶,磷酸化酪氨酸15上的p34cdc2。美国国家科学院程序。1992;89:2917–2921. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
93Bulavin DV,Higashimoto Y,Demidenko ZN等。双重磷酸化控制Cdc25磷酸酶和有丝分裂进入。自然细胞生物学。2003;5:545–551.[公共医学][谷歌学者]
94Kastan MB、Bartek J.Cell-cycle检查站和癌症。自然。2004;432:316–323.[公共医学][谷歌学者]
95Nikjoo H、O'Neill P、Wilson WE、Goodhead DT。确定电离辐射引起的DNA损伤谱的计算方法。辐射Res。2001;156:577–583。[公共医学][谷歌学者]
96Yu H.电离辐射的典型细胞信号反应:DNA损伤和核外损伤。Chin J癌症研究。2012;24:83–89. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
97DNA损伤是电离辐射诱导基因激活的原因。辐射Res。1994;138:S85–S88。[公共医学][谷歌学者]
98Haddy N、Tartier L、Koscielny S等,《电离辐射诱导的DNA损伤修复与儿童癌症幸存者的第二次癌症风险》。致癌。2014年4月19日;Epub提前打印[公共医学][谷歌学者]
99Huhn D,Bolck HA,Sartori AA。靶向DNA双链断裂信号传递和修复:癌症治疗的最新进展。瑞士医学院。2013年;143:w13837。[公共医学][谷歌学者]
100Hosoya N,Miyagawa K。癌症治疗中针对DNA损伤反应。癌症科学。2014;105:370–388. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
101Iyama T,Wilson DM,III分裂和不分裂细胞中的DNA修复机制。DNA修复。2013年;12:620–636. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]

文章来自国际肿瘤学杂志由提供Spandidos出版物