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美国生理学杂志《心循环生理学》。2008年6月;294(6):H2855–H2863。
2008年6月1日在线发布。 数字对象标识:10.1152/ajpheart.91451.2007
预防性维修识别码:PMC3962545型
PMID:18456724

星形胶质细胞衍生信号的声调依赖性血管反应

关联数据

补充资料

摘要

越来越多的研究支持星形胶质细胞对神经血管耦合的重要贡献,即神经元活动的变化触发局部血流变化的现象,以满足神经元的代谢需求。然而,由于在星形胶质细胞刺激下观察到脑实质小动脉收缩和扩张,这些细胞对血管系统的具体影响尚不清楚。使用急性脑切片,我们提供的证据表明,大鼠皮层小动脉的特定收缩程度(血管张力)是神经血管耦合信号引起的直径变化的大小和极性的关键决定因素。因此细胞外钾的升高+代谢性谷氨酸受体(mGluR)的浓度、刺激或应用11,12-环氧乙酸三烯酸都会诱发血管反应,这些反应受到特定静息小动脉张力的影响。有趣的是,数据表明,血管反应的程度和/或极性受到以30%和40%色调为中心的界限设定点的影响。此外,我们报告称,在花生四烯酸途径的酶(即磷脂酶A)受到抑制期间,mGluR的刺激会对小动脉直径产生明显的色调依赖性影响2,细胞色素P(P)-450(CYP)ω-羟化酶、CYP环氧酶和环氧化酶-1]。我们的研究结果可能与先前的证据相一致,即直接星形胶质细胞刺激可引起血管收缩或舒张,并且还提出了一个新的概念,即除了参与功能性充血外,星形胶质细胞衍生信号还可在调节血管张力至最佳扩张反应范围内发挥作用。

关键词:钾、谷氨酸、环氧乙酸、胶质细胞、神经血管偶联

尽管受到了很多关注研究了介导“功能性充血”的信号特征,即神经元激活后出现的局部快速血流增加(41,53),在我们对影响整个神经血管反应的血管因素的理解上仍然存在一个显著的差距。因为血管活性刺激通常影响血管平滑肌细胞(VSMC)两个相互依赖的生理参数的变化,即膜电位(V)和细胞内钙2+浓度([Ca2+])可以想象,血管对这种刺激的反应性反过来会受到静息小动脉张力的影响,这是由V的特殊状态定义的和[Ca2+]在VSMC中。先前对软脑膜小动脉的研究确实表明,血管张力对几种神经源性刺激诱发的反应类型有重要影响(,52). 相反,血管张力对大脑皮质内小动脉对与胶质细胞激活相关信号的反应的影响尚未评估。

星形胶质细胞与神经元和血管建立密切接触,因此被独特地定位为这些细胞类型之间的桥梁,有助于神经血管耦合(NVC)和功能性充血(24). 我们对星形胶质细胞在介导NVC中的作用的理解出现了一个转折点,即神经元刺激后皮质小动脉的扩张涉及代谢性谷氨酸受体(mGluR)的激活,导致[Ca增加2+]在星形胶质细胞中(60). 最近,星形胶质细胞[Ca迅速增加2+]体感刺激已被证明与活体小鼠皮层血流动力学反应的开始时间相关(59). 星形细胞[Ca升高2+]已知可通过血管扩张剂(例如K)调节血管活性物质的合成和/或释放+、环氧二十碳三烯酸(EETs)和前列腺素]或血管收缩剂[例如20-羟基二十碳四烯酸(20-HETE)]的作用,在控制脑微循环中起重要作用(28). 此外,星形胶质细胞可能对GABA能中间神经元释放的信号作出反应,这些中间神经元也被证明可以调节皮层小动脉的收缩(例如神经肽Y和生长抑素)或扩张(例如一氧化氮(NO)和血管活性肠肽)(10,55). 值得注意的是,最近的一项研究表明,空间定义的血管舒张和血管收缩是体内血管对体感刺激反应的特征(13). 虽然星形胶质细胞在这些现象中的参与并没有得到特别的解决,但对啮齿动物皮层和视网膜的研究清楚地证明了胶质细胞收缩和扩张血管的能力(39,42). 在皮层,而不是视网膜,有证据表明基础血管张力影响神经胶质细胞[Ca]升高引起的反应类型2+](42). 与之前的建议一致(49)我们假设,尽管收缩剂和扩张剂都可以在神经元激活时释放,但VSMC(血管张力)的收缩程度是后续反应方向和程度的关键决定因素。

我们通过评估脑实质内小动脉对三种与NVC相关的刺激的反应中血管张力的影响来阐述这一假设:1)细胞外钾中度升高+浓度([K+]o个),一种已知的血管扩张刺激物,2)mGluR活化和随后的Ca2+-花生四烯酸(AA)途径的依赖性激活,以及)暴露于11,12-EET,一种所谓的星形胶质细胞衍生的血管扩张信号。其中一些结果已以初步形式呈现(6,7).

方法

脑片准备。

根据辛辛那提大学动物护理管理办公室批准的方案,从3至10周龄的Sprague-Dawley大鼠制备大脑皮层切片。戊巴比妥麻醉后,迅速取出大脑,并在含有(mM)3 KCl、120 NaCl、1 MgCl的冷冻人工脑脊液(aCSF)中切割300μm厚的冠状片2,26氯化钠,1.25 NaH2人事军官4,2氯化钙2、10葡萄糖和0.4-抗坏血酸,与95%O平衡2-5%一氧化碳2.添加抗坏血酸以减少与氧化应激相关的细胞肿胀(8). 在所有实验中,均使用成分相同的aCSF进行浴灌流,但评估高外部钾影响的实验除外+浓度([K+])其中对照aCSF含有4.2 mM KCl,KCl取代NaCl以增加[K+]至10 mM。aCSF的渗透压为~290 mosm/kgH2O.切片后,将切片保存在室温下与95%O平衡的aCSF中2-5%一氧化碳2(pH~7.45)直到使用。

试剂。

血栓素A2受体激动剂9,11-二脱氧-11α,9α-环氧甲基前列腺素F(U-46619),前列腺素F,花生四烯酸甲酯氟膦酸酯(MAFP),N个-羟基-N个′-(4-丁基-2-甲基苯基)-甲脒(HET-0016),N个-甲基磺酰基-6-(2-丙炔氧基苯基)-己酰胺(MS-PPOH)、sc-560和奥扎格雷(均购自密歇根州安阿伯市开曼化学公司)作为二甲基亚砜(DMSO)的库存制备,随后添加到aCSF中。实验溶液中DMSO含量≤0.1%。变速箱-1-氨基环戊烷-1,3-二羧酸(t-ACPD;Tocris,Ellisville,MO)在等摩尔NaOH中从50 mM原料中在aCSF中稀释。11,12-EET从Biomol(普利茅斯会议,PA)中获得,并从156μM等分乙醇中添加到所提供的aCSF中。内皮素-3(美国肽,加利福尼亚州森尼维尔)从dH的库存中添加到aCSF中2O.将四乙基铵(TEA;西格玛,密苏里州圣路易斯)溶解在脑脊液中。

视频显微镜。

使用配备红外差分干涉对比(IR-DIC)光学系统、浸水物镜(蔡司63x,数字孔径0.9)和EMCCD相机(iXon+885;Andor Technology,南温莎,康涅狄格州)。图像以每秒1帧的速度采集、可视化并使用IQ软件(Andor Tech)存储。用95%O气体的脑脊液(35±2°C)对切片进行灌注2-5%一氧化碳2在开始记录之前,让其平衡≥10分钟。到达记录室的灌流液中测得的氧活度为54.8±2%(35°C;n个= 3; ISO2氧气系统;佛罗里达州萨拉索塔的世界精密仪器公司)。每个切片只记录一个小动脉。

用含U-46619的aCSF灌流切片以诱导血管收缩,在达到稳定的预狭窄后,在恒定存在的情况下使用试验溶液。在使用药物阻滞剂的实验中,在实验之前,大脑切片在这种阻滞剂中预孵育至少30分钟。在整个实验过程中,还灌注HET-0016、sc-560和奥扎格雷(100 nM)以及MS-PPOH(10μM)。

在对照条件下或在药物抑制剂中预孵育后,暴露于U-46619(50–250 nM)后未收缩的血管比例如下:对照=22.8%(n个= 127); MAFP=20.8%(n个= 24); HET-0016=9.1%(n个= 22); MS-PPOH=10.5%(n个=19);sc-560=14.3%(n个= 21); 奥扎格雷=20%(n个= 20). 这些数据表明,U-46619诱导的收缩不受这些药物治疗的影响。对U-46619没有反应的容器被丢弃进行分析。

钙成像。

2+使用上述成像系统和显微镜物镜,使用共焦旋转装置(横河CSU 10)进行成像。在含有10μM fluo 4-AM(Invitrogen,Eugene,OR)和pluronic acid(2.5μg/ml)的CSF中,在室温下培养皮层切片(~1 h),CSF位于一个定制的充满95%氧气的小室中2-5%一氧化碳2使用二极管泵浦固体激光器(加利福尼亚州卡尔斯巴德市梅勒斯·格里特)在488 nm处激发Fluo 4,并在>495 nm处收集荧光发射。以3-6帧/秒的速度采集图像。

数据分析。

小动脉直径(IR-DIC)和Ca数据2+使用阿德里安·博内夫博士(佛蒙特大学)创建的定制软件对成像实验进行分析。小动脉内径(管腔)的变化由小动脉管腔多个点的平均测量值决定。基线直径(表示为100%)在任何实验刺激前的第一至10分钟取样期间测定。在此期间,小动脉出现扩张,没有或几乎没有振荡活动。所有小动脉直径值均表示为相对于基线的百分比(%)。血管张力表示为相对于基线的“收缩程度”。例如,对于直径为60%的容器,相应的色调为40%。

摘要数据表示为平均值±SE。两个平均值之间的差异使用双尾Student’st吨-测试。采用单因素方差分析(ANOVA)和邓内特检验(Dunnett’s test)对对照数据进行多组比较。P(P)<0.05被认为是显著的。

结果

U-46619诱导的分级血管收缩。

血栓素A2受体激动剂U-46619已成功用于诱导脑薄片实质小动脉预狭窄(20,21,36,37). 为了表征血管的收缩反应,测试了不同浓度的U-46619(50、100、150和250 nM)。非刺激小动脉的静息腔内直径为12.2±0.4μm(范围=8-19μm;n个= 56). U-46619引起剂量依赖性收缩(图1; 补充视频1)(本文的补充数据可在美国生理学杂志:心脏和循环生理学网站)。收缩开始于使用U-46619后3.4±0.3分钟,并在12.6±0.7分钟达到稳定(50–250 nM U-46618的合并数据),此后保持不变。在这里介绍的其余实验中,应用不同的U-46619浓度(从50到250 nM)来诱导不同程度的预狭窄。

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U-46619诱导的分级血管收缩。皮质脑片中U-46619在实质小动脉中诱导的剂量依赖性血管收缩的直方图。结果代表平均值±SE。56条血管中有6条暴露于两种U-46619浓度。

增加细胞外钾+诱导张力依赖性血管舒张。

适度标高(单位:[K)+]o个导致钙超极化和减少2+进入VSMC并在脑循环中构成强大的血管扩张刺激(32,35,38). 最近的工作证明K+星形胶质细胞的信号传导是NVC的关键机制(21). 作为解决静息血管张力对皮质小动脉对星形胶质细胞衍生信号反应的影响的第一步,适度升高[K+]o个进行了研究。为此,我们测量了使用U-46619(50–250 nM)预狭窄到不同程度并暴露于10 mM K的微动脉的直径变化+,保持原有U-46619浓度不变。提升[K+]o个具有净血管扩张作用。血管舒张的幅度与预狭窄的初始水平呈正相关:随着血管张力的增加,相应地会诱发更大的血管舒张反应(第页= 0.65). 观察到的变化的代表性轨迹如所示图2A类.英寸图2B类响应10mM K的直径变化+表示为小动脉初始(预限制)直径的函数(n个= 19). 暴露于10 mM K后,血管舒张开始出现0.9±0.1分钟+平均峰值扩张时间为4.5±0.5 min。检测升高[K的声调依赖性效应是有益的+]o个当直径在低(控制)和高[K时+]o个按初始预狭窄水平排列的单个小动脉的初始基线百分比绘制(图2C类). 低预狭窄水平(>60%基线;n个=9),K+-诱导扩张几乎将直径恢复到初始基线扩张状态,而对于更多预狭窄的小动脉,相对于基线,最终稳态直径更低,变化更大。

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细胞外钾升高+浓度([K+])引起音调依赖性血管舒张。A类:暴露于升高的细胞外[K+]([K+]o个)(10mM)。B类:在暴露于10 mM[K+]o个.C类:数据来自B类表示为接触10 mM[K前后的直径百分比(相对于基线)+]o个每个小动脉。

mGluR激活引起皮质小动脉的张力依赖性收缩和扩张。

除K外+当星形胶质细胞[Ca增加时,可以产生和释放一些收缩和扩张信号2+]突触释放的谷氨酸激活mGluR后(19). 然而,目前尚不清楚这些血管活性物质的相反作用是如何整合到确定的血管反应中的。我们假设,脑小动脉对神经元和/或胶质细胞衍生信号的反应取决于所释放信号的性质和血管张力的程度。为了评估这一假设,我们将大脑皮层切片暴露于t-ACPD中,t-ACPD是一种选择性mGluR激动剂,已知可以诱导Ca2+星形胶质细胞增多(34,60),并测量显示不同程度预狭窄的小动脉的直径变化。如所示图3A类暴露于t-ACPD(100μM;~10分钟持续时间)持续诱发小动脉收缩,小动脉有低至中度的预狭窄(高达基线的~70%),而血管扩张最初表现出更明显的张力(n个= 27; 参见补充视频2A和2B)。收缩开始时间为1.9±0.6 min,收缩峰值为3.9±0.7 min(n个= 11). t-ACPD应用后2.4±0.5分钟开始扩张反应,5.5±0.6分钟达到稳定(n个= 16). 收缩与扩张的发作时间和峰值时间的比较没有显示出显著差异。为了进一步分析这些响应图3A类重新填图以显示t-ACPD诱导的直径(表示为最大基线直径的百分比)作为初始直径的函数(图3B类). 有趣的是,该图显示,在t-ACPD暴露后,19条最初显示低(小于~30%)或高(大于~50%)预狭窄的血管中,有16条达到了均匀的直径(~36.9±2%收缩),这在血管反应反转极性的音调范围内。另外两个观察结果表明,这种音调范围(约为基线直径的50–70%)可能代表了一个确定血管反应极性和程度的设定点。首先,以绝对值(即接近基线直径的值)计算,在初始直径和静止直径位于该假定设定值范围内的小动脉中观察到最大的血管扩张(图3B类). 其次,在t-ACPD刺激下,一些初始直径远离设定值的血管瞬间到达设定值,然后出现扩张(图3,B类C类).

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神经胶质的激活导致脑实质小动脉的张力依赖性收缩和扩张。A类:代谢型谷氨酸受体(mGluR)激动剂引起的血管直径变化图反式-1-氨基环戊烷-1,3-二羧酸(t-ACPD)(100μM)作为初始直径的函数(相对于基线)(n个= 27).B类:数据来自A类以显示t-ACPD暴露后的小动脉直径(•)作为其初始直径的函数。双相反应(○)表示最初因t-ACPD而收缩的血管中的二次扩张(用连接符号的虚线表示)。C类:描绘三个小动脉的直径变化的轨迹,如图1所示B类.D类:t-ACPD(100μM)对PGF预封闭的小动脉引起的反应的汇总数据(5-35μM)。结果表示平均值±SE。

因为观察到的反应可能受到预狭窄治疗的限制,即血栓素A的特定作用2受体激动剂U-46619对血管张力的影响,我们测试了mGluR激活对不同激动剂预狭窄的小动脉的影响,即PGF。如所示图3D类暴露于t-ACPD(100μM;~10分钟持续时间)时,在PGF预狭窄的小动脉中也观察到张力依赖性收缩和扩张(5-35μM)。在总共记录的9条小动脉中,有4条小动脉的初始直径≤基线的70%(即预狭窄≥30%)对t-ACPD有舒张作用。其余五条小动脉的静止直径大于基线的70%,显示为收缩。与U-46619一样,在后一组的五分之三的血管中也观察到双相反应(收缩后扩张)。由于在使用不同激动剂进行预狭窄时观察到类似的反应,这些结果表明,大脑皮层小动脉对mGluR激活的收缩和扩张强烈依赖于其静息张力。

AA代谢物在血管对mGluR激活的反应中起着不同的作用。

在星形胶质细胞中mGluR激活后,产生的[Ca2+]升高可以触发AA的产生,AA可以进一步代谢为几种血管收缩剂和血管舒张剂信号(33). 为了评估AA代谢物在mGluR激活诱导的血管收缩和舒张中的参与,以及血管张力对这些反应的影响,我们在AA生成或代谢的选择性阻断剂存在的情况下进行了与前一节所述类似的实验。在30分钟内灌注MAFP(100μM)、HET-0016(100 nM)、MS-PPOH(20μM)或sc-560(100nM)的对照实验中,基线直径(在对照aCSF的前10分钟内测量)未受到这些抑制剂的显著影响(变化范围=−2.6至3.5%;P(P)=0.106,ANOVA,然后进行Dunnett检验;n个=每个治疗4次)。在这些实验结束时,在试验药物的持续存在下,通过应用内皮素-3(100nM)来评估血管反应性。内皮素-3在所有血管和所有测试条件下均诱导显著的血管收缩(>50%),表明血管反应性得以保留(数据未显示)。

结果与来自图3A类,并将反应分为三类,包括初始小动脉张力的离散范围:1)<基线的70%,在这一范围内,小动脉可能扩张超过静止水平;2)基线的70–50%,这一范围对应于受压的脑实质内血管形成的活跃色调,可能类似于普遍的生理肌源性色调(9,12)、和)>50%的基线,这一范围可能表示收缩超过生理水平。首先,我们测试了磷脂酶A的选择性和不可逆抑制作用2(解放军2),催化钙的酶2+-膜磷脂依赖性AA生成。在用MAFP(100μM)预孵育的血管中,对U-46619的敏感性明显降低。在这些实验中,大多数情况下必须使用最高剂量的U-46619(250 nM),以实现明确的预狭窄。

用MAFP(100μM)预孵育脑片可显著抑制t-ACPD诱导的收缩和扩张(n个=19)(图4). 这些结果与之前的观察结果一致,在之前的观察中,功能性PLA的缺失2显著抑制体内星形胶质细胞诱导的血管舒张(56),和体外血管收缩(42),并有力支持AA或其某些代谢物是mGluR激活引起的血管反应的关键决定因素的观点。

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花生四烯酸代谢物在mGluR激活诱导的收缩和扩张中有不同程度的参与。显示t-ACPD(100μM)在脑片与AA通路的药物阻断剂孵育后诱导的皮质小动脉直径变化的总结数据。血管反应根据预狭窄的初始程度进行分组。结果表示平均值±SE*P(P)<0.05和**P(P)< 0.01. 邓内特的测试。

以前的报告表明,细胞色素的抑制作用P(P)-450(CYP)ω-羟化酶是一种调节AA-衍生代谢物20-HETE生成的酶,它强烈减弱了啮齿动物大脑皮层胶质细胞激活后的血管收缩(42)和视网膜(39). 为了评估20-HETE在mGluR激活引起的血管反应中的作用,用选择性CYPω-羟化酶抑制剂HET-0016(100 nM)预孵育脑片(40). HET-0016治疗后,所有收缩均逆转为扩张(n个= 9;P(P)<0.01),而静息张力较高的血管的扩张没有显著影响(图4). 因此,这些数据支持20-HETE作为mGluR激活后的主要血管收缩信号。

近十年前,人们提出星形胶质细胞衍生EET在功能性充血中的作用(26). 星形胶质细胞在体外和原位表达CYP环氧酶亚型(2,48),其活性受谷氨酸刺激(1). 在实验上,抑制CYP环氧酶可减少体内大脑的充血反应(1,5,47,48)并废除脑片中AMPA受体激活诱导的晚期持续性血管舒张(36). 为了评估EET在t-ACPD诱导的血管反应中的作用,将脑切片与MS-PPOH(20μM)预孵育,MS-PPOH是一种选择性CYP环氧合酶底物抑制剂(57). 如所示图4MS-PPOH治疗显著减轻了血管扩张,且预狭窄明显(>50%)(n个= 6;P(P)<0.01),但不影响最初显示中等音调的血管的血管反应。此外,在最初显示最低预狭窄水平的血管组中,狭窄也显著减少(n个= 6;P(P)<0.05),表明EET以强烈依赖于特定小动脉张力的方式促进收缩和舒张反应。

体内研究强调了环氧合酶(COX)代谢产物在维持静息脑血流和作为神经血管反应介质中的重要作用(44,45,56)和体外试验(21,60)研究。因为COX-1的衰减,而不是COX-2的衰减,有效地降低了体内扩张器的反应(56),我们评估了COX-1活性是否会影响微动脉对mGluR激活的反应。用sc-560(100 nM)预孵育切片可选择性抑制COX-1。如所示图4,COX-1抑制显著降低t-ACPD诱导的收缩和扩张。然而,在中度预狭窄水平(基线水平的70-50%)的血管组中观察到最显著的效果,其中血管扩张逆转为血管收缩(n个= 4;P(P)< 0.01).

为了评估在COX-1阻断期间观察到的血管收缩减弱是否代表血栓素合成减少,将t-ACPD应用于使用血栓素合酶抑制剂奥扎格雷(100 nM)治疗的血管(30). 如所示图4,低预狭窄血管的血管收缩程度显著降低(n个= 9;P(P)< 0.05).

11,12-EET可诱导张力依赖性小动脉直径改变,并增加星形胶质细胞内的细胞内钙。

胶质衍生EET被认为是脑内NVC的重要介导物(26),尽管人们对其潜在机制仍知之甚少。有鉴于此,为了扩展我们的发现,我们探索了一种主要的胶质细胞CYP环氧酶产物,即11,12-EET的作用(2)小动脉直径和[Ca2+]星形胶质细胞动力学。在第一组实验中,用U-46619(50–250 nM)预限制皮质小动脉,并暴露于11,12-EET(100–500 nM)。值得注意的是,发现对11,12-EET的反应也高度依赖于血管张力。因此,在显示相对较低预狭窄(初始直径大于基线的~70%)的六分之四的血管中观察到双相反应(即先收缩后扩张),而相比之下,仅在呈现较高静息张力的小动脉中诱发扩张(n个= 10;图5,A类C类). 11,12-EET浓度与诱发反应类型无关。注意,正如mGluR激活的情况一样,收缩逆转为扩张的音调对应于基线直径的~70%(即~30%收缩)。这一观察进一步支持了血管设定点的概念,该设定点可调节小动脉反应的极性。

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11,12-环氧二十碳三烯酸(EET)诱导实质皮质小动脉的张力依赖性收缩和扩张,并增加星形胶质细胞内Ca2+浓度([Ca2+]).A类:10条小动脉对11,12-EET(100–500 nM)的个别反应。基线预狭窄(黑色)值小于~30%的血管出现收缩(灰色),随后出现扩张(白色),而收缩程度更大的血管出现扩张反应。B类:11,12-EET(500 nM)在皮质小动脉中引起的双相反应(收缩后扩张)的典型例子。C类:在没有或存在TEA(1 mM)的情况下,暴露于11,12-EET(200 nM)的小动脉管腔直径的变化。注意,11,12-EET诱导的血管舒张被TEA阻断。D类:[Ca的示例2+]血管周围神经胶质终末局部应用11,12-EET(1μM)引起的瞬态。虚线表示船只的边界。ROI,感兴趣区域。E类:11,12-EET在不存在(填充条)或存在花生四烯酸甲酯(MAFP)(100μM)或TEA(1 mM)的情况下引起的血管直径变化的柱状图。MAFP数据(和相应的对照)是从最初显示预狭窄<20%的小动脉获得的(n个= 4); TEA数据(和相应的对照)来自最初显示预狭窄>30%的血管(n个= 3). 结果表示平均值±SE***P(P)< 0.001.

问题是,调节11,12-EET血管作用的机制是什么?已知EET可激活大电导率Ca2+-从属K+VSMC中的信道(BK信道)(23)导致血管舒张。此外,由于一些EET区域异构体已被证明可以调节[Ca的增加2+]在血管内皮细胞中(58)和培养的星形胶质细胞(54),其他机制也可能发挥作用。为了深入了解11,12-EET诱导的收缩和扩张的机制,我们研究了11,12-EET对星形胶质细胞[Ca2+].使用共焦Ca2+脑片钙负荷成像2+指示剂fluo 4,我们发现短时间(5–30 s)施用11,12-EET(1μM)可使[Ca迅速而强劲地增加2+]星形细胞体和末梢(ΔF/Fo个= 2.2 ± 0.3;n个=8片)。此响应的典型示例如所示图5D类(另请参阅补充视频3)。因此,与之前培养的星形胶质细胞中5,6-EET的作用一致(54)我们的数据表明,除了可能对血管系统产生旁分泌作用外,胶质源性EET也可能以自分泌方式发挥作用,例如,扩增和/或维持谷氨酸诱导的[Ca]2+]增加,这可能反过来影响AA的生产以及其他钙2+-相关流程。为了评估这种可能性,用MAFP(100μM)预孵育脑片,并评估微血管收缩反应(<20%)。如所示图5E类,MAFP治疗显著消除了对11,12-EET(300 nM)的血管收缩反应(n个= 4;P(P)< 0.001).

最后,为了测试BK通道是否参与11,12-EET诱导的血管舒张,我们进行了实验,在存在BK通道抑制剂TEA(1 mM)的情况下应用11,12-EE(200 nM)。为了支持BK通道的参与,在TEA存在的情况下血管舒张被取消(图5,C类E类;P(P)< 0.01;n个= 3). 需要进一步研究来评估11,12-EET诱导的扩张效应是否涉及VSMC、星形细胞终末或两者上表达的BK通道。

讨论

越来越多的证据表明,星形胶质细胞中mGluR的激活以及随后胶质细胞[Ca2+]在功能性充血中起重要作用(28). 然而,体内和体外研究都与[Ca2+]星形胶质细胞的增加不仅导致血管舒张(20,36,39,55,60)而且对血管收缩也有影响(11,39,42). 尽管这些反应在某些情况下与收缩和扩张信号的特定作用有关,但决定血管扩张或收缩是否影响神经元和/或胶质细胞激活的因素仍不清楚。在这项研究中,我们试图通过解决一个基本问题来阐明决定血管对星形胶质细胞激活反应的机制:血管系统本身特性的改变是否解释了所诱发的反应类型?

Mulligan和MacVicar提出了血管张力对脑小动脉对mGluR反应的可能影响(42). 在他们的工作中,t-ACPD诱导最初扩张的血管收缩,以及通过抑制NO合成酶而预狭窄的血管扩张。然而,由于NO生成受阻,尚不清楚扩张器反应在多大程度上受血管张力改变本身的影响,或者说取决于NO的可用性。从这个意义上讲,NO在分离的大鼠视网膜神经胶质诱导的收缩和扩张中起着关键作用,尽管这里报道血管的初始张力没有影响(39).

使用与神经血管信号机制相关的各种刺激(适度升高[K+]o个mGluR激动剂和11,12-EET),我们表明大脑皮层小动脉中诱发直径变化的极性和大小实际上是由其特定的血管张力决定的。值得注意的是,所有刺激都会引发不同的反应模式,由以~30–40%色调为中心的设定点的存在来定义。因此升高[K+]o个(从4.2到10 mM)在初始直径高达基线的~60%的血管中诱导了一致的、接近最大的扩张,而在收缩程度更大的血管中观察到的扩张,尽管比例更大,但没有达到相同的最终振幅。这表明[K的增加+]o个在胶质-血管界面,被认为是脑内NVC的关键机制(21)当小动脉的张力处于或高于设定点时,可以非常有效地引起功能性充血。然而,必须注意的是,神经元对升高[K+]o个不排除,最高可达10 mM K+将降低V在神经元中。尽管升高了[K+]o个用t-ACPD激活mGluR后,可观察到收缩和扩张。小动脉收缩最初表现为低至中度张力(收缩高达~30%),而扩张发生在预狭窄程度高于~30%的血管中。值得注意的是,对于轻度和高度预狭窄的血管,mGluR激活倾向于使小动脉直径达到一致水平(约37%收缩),接近t-ACPD反应极性反转的水平。此外,直径已经在设定点附近的血管以及一些最初收缩并达到设定点的小动脉也发生了显著的扩张。因为后者类似于在承受广泛腔内压力(20–100 mmHg)的体外穿透脑小动脉中测量的肌源性收缩水平(9,12)我们推测,在体内生理条件下,血管可能会稳定在这个假定的设定点附近,因此一旦神经元激活,血管很容易扩张。总之,我们的结果可能表明,星形胶质细胞衍生信号协同作用,在预先确定的设定点周围调整血管张力,该设定点代表扩张器反应最佳的血管张力水平。他们还表明血管系统对扩张器和收缩器刺激的敏感性主要取决于VSMC的固有特性,主要表现为V的波动和[Ca2+](31).

作为对mGluR激活的反应,扩张和收缩都依赖于功能性PLA2活性,证实AA代谢物参与这些反应。可以认为,药物阻断AA代谢后,星形胶质细胞[Ca升高2+]由mGluR激活产生的结果仍然会导致胶质终末的BK通道激活,随后的K通道激活+-诱导血管舒张。我们推测,在没有神经元刺激的情况下,K+梯度缺失或减少(29)和端脚[K+]没有达到该机制运行的实质性水平。我们还表明,阻断特定AA代谢途径的效果高度依赖于血管张力。因此,与以前的报告一致(39,42)选择性抑制CYPω-羟化酶介导的20-HETE合成将血管的收缩转化为扩张,且预狭窄程度较低。因为在骨骼肌微循环中,20-HETE介导的血管收缩和氧压之间存在正相关(27)初步形式也适用于大脑(25),很可能在我们的实验中血管收缩也同样增强,其中灌注aCSF的O2活性为~55%。

在中度张力的小动脉中,但在高度收缩的小动脉内,t-ACPD诱导的血管舒张在抑制20-HETE合成后明显减弱(~50%)。虽然这种减少没有达到统计学意义,但20-HETE在皮层小动脉mGluR激活诱导的血管舒张中发挥许可或直接作用的可能性需要进一步评估(16). 还需要更多的研究来阐明20-HETE是否由星形胶质细胞产生和释放(43),由VSMC从胶质衍生AA中产生(22)或这两个事件。

在轻度预狭窄的血管中,t-ACPD诱导的血管收缩在抑制CYP环氧合酶、COX-1或血栓素合酶后显著减弱,这表明EET和COX-1衍生的前列腺素(例如血栓素)促进了这种反应。抑制CYP环氧合酶对t-ACPD诱导的收缩作用的影响尚不清楚,但可能涉及钙的改变2+星形胶质细胞的动力学(见下文),导致这些细胞产生的血管收缩剂减少。值得注意的是,因为CYP环氧酶和COX-1不仅存在于星形胶质细胞中(2,56)也存在于血管内皮细胞中(18),不能排除后一种细胞类型对观察到的效应的贡献。抑制COX-1,但不抑制CYP环氧合酶,可有效防止中度张力血管扩张(30-50%预狭窄)。因为我们表明,t-ACPD引起的最大舒张反应发生在这一静息色调范围内,这可能类似于体内普遍存在的生理色调,所以我们的结果在原则上似乎与Takano等人的结果一致(56)这表明,抑制COX-1,而不是抑制CYP环氧合酶,可以减少体内星形细胞激活后的血管舒张。

相反,我们的结果表明EET以及COX-1产品(例如PGE2)有助于实质性收缩(>50%)血管的舒张。在这方面,两个PGE的潜在目标2EET是VSMC中的BK信道。因此,cAMP同时增加[由PGE介导2通过前列腺素E发挥作用2受体亚型EP2/欧洲药典4受体(51)]和[Ca2+][通过EET(14,17)]可能通过磷酸化机制导致BK通道激活(4,15)和/或通过增加钙的频率2+“火花”(14,46,50). 综上所述,这些结果强烈表明,尽管星形胶质细胞中的mGluR激活后可能释放收缩和扩张信号,但总的血管反应由小动脉的特定静息张力决定。

本工作的最后一部分集中于CYP环氧酶产品的血管活性作用,即11,12-EET。我们的结果表明,与t-ACPD诱发的反应类似,11,12-EET以张力依赖的方式收缩和扩张皮质小动脉:双相反应(收缩后扩张)在轻度预狭窄血管中占主导地位,而扩张发生在静息张力较高的血管中。值得注意的是,与t-ACPD诱导的收缩和扩张一样,对11,12-EET的主要反应的极性也在类似的音调水平(~30%的收缩)附近逆转,这加强了假定的血管设定点的存在。EET的一些影响可能源于其影响钙的能力2+星形胶质细胞的变化,如前面5,6-EET所示(54)在本研究中为11,12-EET。由于星形胶质细胞能够合成EET,这些证据支持EET可能在钙的扩增中发挥自分泌作用2+瞬态(54),这可能是体内充血机制的功能。11,12-EET诱导的血管收缩被MAFP阻止,这表明它依赖于AA的合成,可能由AA衍生的血管收缩剂(例如20-HETE和血栓素)介导。与此一致,MS-PPOH抑制EET合成后,t-ACPD的血管收缩作用减弱(参见图4)也可能是由于上述AA代谢物的合成减少。然而,在这两种情况下,AA及其下游缩肌副产物的细胞来源仍不清楚。另一方面,外源性11,12-EET对预狭窄大于~30%的血管有明显的血管舒张作用,但仅在高度狭窄(>50%)的血管中,CYP环氧酶抑制期间mGluR激活引起的血管舒张反应部分减少。这可能是因为所使用的11,12-EET浓度相对较高,可能直接作用于VSMC,或可能刺激了扩张剂前列腺素的合成,其次是钙2+星形胶质细胞增多。我们的研究结果还表明,与EET作为VSMC中BK通道激活剂的作用一致(14,23),11,12-EET诱导的血管舒张对1mM TEA敏感。总之,这些数据清楚地表明,CYP环氧酶产品的血管活性作用取决于小动脉张力状态。

总之,本研究对血管张力对大脑皮质内小动脉对神经元和神经胶质衍生信号的反应的影响进行了全面的研究,并支持星形胶质细胞在大脑微循环的动态控制中发挥新的作用。所涉及机制的初步模型如下所示图6必须强调的是,在压力诱导肌张力和决定体外对U-46619收缩的机制中,一定存在一些差异。重要的是,内皮细胞的影响可能受到脑切片模型缺乏腔内灌注特性的限制。尽管如此,我们的研究结果揭示了一种可能性,即除了导致功能性充血外,星形胶质细胞衍生信号在将血管张力调整到一个确定的“设定点”(充血反应优化的围绕点)方面发挥着重要作用。可以想象,这种机制不仅限于增强神经元激活的情况,还可能在大脑基础活动期间起作用。

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工作模式。我们建议,在生理条件下,内在机制和外在机制的结合将血管张力保持在最佳范围内,此处定义为“设定点”(B类). 神经元刺激后,释放的谷氨酸激活星形胶质细胞中的mGluR,导致[Ca增加2+].[Ca的上升2+]促进K+通过大电导Ca在血管周围空间的运动2+-从属K+末端通道(BK)激活,并通过磷脂酶A的激活启动花生四烯酸(AA)的代谢2(解放军2). 快速血管舒张(C类)因此由K和+和源自AA代谢的血管活性信号,特别是环氧合酶(COX)-1代谢物(例如PGE2). 我们建议,当血管张力偏离其设定值时,可能发生在病理或生理条件下(A类),星形胶质细胞衍生的信号将使血管张力恢复到其设定值。尽管星形胶质细胞可能会释放收缩和扩张信号的组合,但对血管直径的影响将取决于血管对这些信号的敏感性,而这又取决于血管的特定音调。

赠款

这项工作得到了美国心脏协会[0535231N(J.A.Filosa)和0640092N(J.E.Stern)]以及国家卫生研究院国家心脏、肺和血液研究所[R01-HL089067(J.A.Felosa)]的资助。

补充材料

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致谢

我们感谢Marilyn Cipolla博士、Jonathan Ledoux博士(佛蒙特大学)和Laura Gonzalez-Bosc博士(新墨西哥大学)对手稿的讨论和有益评论。

脚注

这篇文章的出版费用部分由支付版面费支付。因此,物品必须在此标记“广告“根据《美国法典》第18卷第1734节,仅为了表明这一事实。

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文章来自美国生理学杂志-心脏和循环生理学由以下人员提供美国生理学会