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胃肠病学。作者手稿;PMC 2013年10月23日提供。
以最终编辑形式发布为:
2009年12月21日在线发布。 数字对象标识:10.1053/j.gastro.2009.12.005
预防性维修识别码:项目经理3806111
NIHMSID公司:美国国立卫生研究院165815
PMID:20026066

胰腺导管腺是对慢性损伤做出反应并介导Shh诱导的上皮化生的独特导管室

关联数据

补充资料

摘要

背景和目标

胰腺上皮内瘤变(PanIN)是起源和意义不明的胰腺癌前病变。PanIN异常表达胰腺癌始发者声波刺猬(Shh)和胃肠粘蛋白。大多数PanIN被认为来自管道。我们发现了一个新的导管室,它聚集在主要导管的腺体样外溢物(胰腺导管腺体,PDG)中,并描述了其在损伤和化生中的作用。

方法

对人类和小鼠正常胰腺和慢性胰腺炎的导管系统进行了分析。通过连续的H&E切片和腐蚀铸型的扫描电子显微镜对解剖进行评估。用免疫组织化学或RT-qPCR检测粘蛋白、发育基因的表达和增殖。通过体外暴露Shh和体内转基因错误表达来研究Shh对导管细胞的影响。

结果

三维分析显示,在小鼠和人类胰腺中存在盲肠导管外溢。这些PDG在形态和分子上与正常导管不同;即使在正常胰腺中,也显示PanIN和化生特征,如Shh和胃粘液的表达。它们表达其他发育基因,例如第1页赫斯-1在损伤中,Shh与胃粘液一起上调。PDG室的扩张导致粘液化生。Shh在体内外促进这种转化。

结论

PDG是一个独特的腺体样粘液隔室,具有独特的分子特征。作为对损伤的反应,PDG发生Shh介导的具有PanIN样特征的粘液性胃肠道化生。PDG可能提供Shh、粘液化生和肿瘤之间的联系。

背景

慢性损伤与包括胰腺癌在内的几种肿瘤的致癌有关。慢性胰腺炎(CP)和胰腺癌共同存在胰腺上皮内瘤变(PanIN),被认为是癌症的先兆。1尽管PanIN和癌症的形态和分子特征使其可能起源于导管,但其细胞起源仍在争论中;最近的研究表明,至少部分病变起源于腺泡。25导管上皮本身的特征很差,常被讨论为单个细胞群。更好地描述导管隔室可能会促进我们对CP和胰腺癌等疾病的理解。定义PanIN的一个主要特征是黏蛋白表达增加、异常,提示粘液化生是致癌的早期步骤。对于这种化生的起源、发病和潜在的分子事件知之甚少。

参与胚胎发育的相同基因似乎在再生中起作用,通过不适当的调控,在化生和最终的肿瘤形成中起作用。6,7Pdx-1对胰腺早期发育和再生很重要。6,810Notch信号通路参与胰腺发育、再生和肿瘤形成;其效应子Hes-1被认为是祖细胞的标记物。6,1113声波刺猬(Shh)抑制胰腺发育,并将前肠中胚层导向胃肠道(GI)命运。14Shh在PanIN和胰腺癌中异常表达,并参与致癌。15与Pdx-1和Hes-1相比,以前在正常胰腺中未发现Shh。14,15

Shh和胃粘液的鉴定使我们注意到正常胰腺中主要导管的小突起。在这里,我们确定并表征了这种聚集在前哨胰腺导管腺(PDG)中的新型导管隔室。PDG具有不同于胰腺上皮的独特分子特征:它们保留胃粘蛋白和Shh的表达。此外,PDG还表达其他发育基因,如Pdx-1和Hes-1,这些基因也在胰腺的其他区域表达。作为对慢性损伤的反应,PDG上调发育基因和增殖率,并经历Shh介导的粘液化生。这种反应表明PDG可能在胰管保护、更新、化生以及可能的肿瘤形成中发挥作用。

材料和方法

人体样本根据IRB批准进行收集和分析。组织学正常对照胰腺(n=8)取自n=6名器官捐赠者(21–48岁)或因胰腺外疾病接受胰十二指肠切除术的患者(n=2,1名十二指肠癌和1名胆管癌)。组织学证实的人类CP样本取自MGH的胰十二指肠切除标本(n=10)。

鼠标示例

所有实验均由MGH研究动物护理小组委员会批准。健康CD-1小鼠(Charles River)作为对照组(n=10)。通过每6小时腹腔注射50μg/kg天蓝蛋白(Sigma),在任何性别的CD-1小鼠中诱导急性胰腺炎。慢性胰腺损伤2,16在CD-1小鼠和Ptch1-LacZ报告小鼠中,通过每周3次连续注射诱导,持续3周(n=10)、6周(n=4)、10周(n=3)和18周(n=2)。最后一次注射72小时后,使用显微外科显微镜(Codman Microsystems,放大15–45倍)采集胰腺。术后通过免疫染色评估增殖体内采集前2–3小时,以1 mg/10 g体重腹腔注射溴脱氧尿苷(BrdU,Sigma)进行脉冲标记。每组4个样本的每个样本在两个高功率场中计数阳性和阴性细胞核。

Shh-表达错误的转基因小鼠

如前所述,通过原核注射产生Pdx-Shh小鼠。15

组织学和免疫组织化学

标本在4%多聚甲醛或10%福尔马林/PBS中固定过夜。组织学分析由经验丰富的胃肠道病理学家(G.Y.L.)对3-4μm石蜡包埋切片进行。使用阿尔西安蓝(pH 2.8)和周期性酸-雪夫染色检测粘蛋白。免疫组织化学的主要抗体和条件见补充表1内源过氧化物酶活性被3%H猝灭2O(运行)2生物素化二级抗体以1:1000的稀释度使用。使用DAB(Zymed)通过棕色色素沉着对蛋白质进行可视化。用苏木精对载玻片进行复染。

通过用LacZ底物5-溴-4-氯-3-吲哚β-D-半乳糖苷(X-Gal)(Sigma)染色,确定Ptch1-LacZ动物中Ptch1的表达。样品在4°C的4%多聚甲醛中预先放置75–90分钟,在缓冲液中清洗,并在室温下在含有蛋白酶抑制剂的X-Gal溶液中培养24小时。标本在4%多聚甲醛中固定4小时,脱水,石蜡包埋,切片,并用抗核红进行复染。年龄匹配的野生型窝鼠为阴性对照。

管道系统铸件

通过导管内灌注铸型介质(Mercox Resin,Ladd Research Industries,用10%甲基丙烯酸甲酯单体稀释),获得器官捐赠的五只小鼠胰腺和一只人类胰腺导管系统的腐蚀铸型。将树脂填充的组织浸泡在热水(60°C)中1小时以进行树脂固化。然后,通过在5–10%氢氧化钾和热水交替冲洗中浸渍去除组织,在甲酸中清洗,在蒸馏水中清洗并冻干。铸件通过光学显微镜成像,然后用金/铂溅射涂层(Hummer V,Anatech),用于15kV的LEO 1450VP扫描电子显微镜(Carl Zeiss)的扫描电子显微镜。

定量实时PCR

从RNAlater(Ambion)中储存于−20°C的组织中提取RNA(RNA隔离试剂盒,Ambion。使用ABI 7700序列检测器系统进行一步多重TaqMan实时RT-PCR。用18S RNA作为内部对照,评估SHH、IHH、DHH、PTCH、SMO、GLI1和GLI2的表达。探针和引物设计成跨越外显子-外显子连接,以避免基因组DNA扩增。热循环条件为:在48℃下逆转录30分钟,在95℃下初始激活10分钟,然后在95℃进行40次变性15秒,在60℃下退火/延伸60秒。在退火过程中收集荧光数据,并使用SDS1.7软件(Applied Biosystems)进行分析。根据相应的Ct(阈值周期)值确定相对基因表达。

体外SHH实验

人胰腺导管上皮细胞17,18在补充有牛垂体提取物和人表皮生长因子(GIBCO,Invitrogen)的无血清角质形成细胞培养基中培养。细胞在培养基中暴露于0、5、10或20 nM重组人SHH(R&D系统)。每48小时更换一次培养基。8天后(192小时),对细胞进行PAS染色,并采集总RNA以进行RTq-PCR分析。

统计

使用GraphPad Prism4软件进行统计分析。使用双向列联表分析和Chi-square和Fisher精确测试比较PDG与主导管的增殖。定量基因表达是正常胰腺或对照细胞中平均表达的倍数。Wilcoxon配对试验用于比较主导管与实质组织。P值是双尾的。

结果

胰管有盲端输出:胰管腺体

用连续切片的H&E染色对健康小鼠和正常人胰腺的正常胰腺导管系统进行形态学评估。在小鼠和人类中,发现了与正常导管上皮形态不同的上皮细胞隔室。这种独特的隔室表现为腺体样的突起或盘绕在较大导管周围的间质内的结构(图1). 这些结构的上皮衬里由细胞核位于基底和丰富的核上细胞质的细胞组成。近端(乳头附近)导管和外周导管的比较显示,近端导管中的这些分支/外溢更常见。3μm连续切片的组织学评估表明,这些结构是盲目的突起,而不是分支(补充图1和2).

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形态独特的导管室。正常小鼠(A)和人类(B)胰腺。具有丰富的核上细胞质和位于基底的细胞核(箭头)的细胞位于导管壁间质内的前哨/小分支(箭头)中。该隔室在形态学上与相邻主腔(星号)和大小相当的外周导管(下面板)的上皮衬里不同。(C) 连续切片显示,新的隔室具有独特的分子特征,例如Muc6(棕色)的表达。

为了根据三维信息可靠地区分封闭的“腺体”和小分支导管,我们使用了导管腐蚀铸型的SEM。我们获得了五只小鼠和一个人的整个导管系统的详细、高分辨率铸型(图2 A和B). 人类和啮齿动物胰腺中的分支都是分层次的:大的小叶间导管从主导管分支到小的小叶之间导管,然后再分支到小导管(图2 C&D). 不存在大型风管的多个小分支。扫描电镜(SEM)直接证实了小鼠和人类导管系统中存在外溢物(图2E). 这些流出物的分布并不均匀:在小鼠中,流出物经常出现在胆胰管、引流胰腺左侧的主导管和近端小叶间导管中。在小胰腺导管中很少观察到前哨。有趣的是,外流通常位于导管分支部位附近(图2E). 总的来说,这种分布导致近端模式,从大导管到小导管的频率逐渐降低。人类的流出物分布相似,但其观察频率低于啮齿动物。输出可以有单个管腔,也可以显示多个囊状扩张的复杂排列(下面板图2E).

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腐蚀铸型显示导管有盲目的外溢物:胰腺导管腺体。(A,B)概述显示(A)小鼠和(B)人类导管系统的完整腐蚀铸型。(C,D)光学显微镜显示导管系统的分级分支,而不是大导管的多个小分支。(E) 扫描电镜显示,胰腺导管有小的腺体样突起,通常位于分支点(箭头)附近。它们主要存在于大型管道(上部面板)中,但也可以在小型管道(中部面板)中观察到。这些腺体可以表现为单个突起,也可以表现为多个囊状扩张的复杂排列(下面板)。

这些扫描电镜数据证实了一个独特的腺体样导管室的存在,我们将其命名为胰腺导管腺体(PDG)。特殊导管相关腺体的存在提出了它们的功能及其在胰腺疾病中的作用的问题。

慢性损伤导致PDG发生增生

通过建立一个成熟的慢性胰腺损伤小鼠模型,评估整个导管系统的形态学变化。2,16

慢性损伤6周或6周以上,导管上皮和间质均发生严重变化;PDG频率和形态变化(图3). 对照组近端导管周围有一层薄的间充质壁,PDG很少。PDG很小,通常只有一个管腔,很少显示几个腺体单位(图3A). 对慢性损伤的反应是导管间质增厚。PDG的数量和大小都增加,显示出复杂的结构,有分支和褶皱,以及乳头状和核假层化等异型性特征(图3B). 上皮呈现出更粘稠的外观。这些PanIN-like特征在较大导管的PDG中更常见,但可以在周围导管中检测到。

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慢性损伤导致PDG增生。对照动物(a)和慢性损伤和化生动物(B)的近端导管系统概述。(A) 正常胰腺有少量小PDG(箭头所示),在薄的导管间质中有规则的单层粘液样内层。(B) 在慢性损伤中,PDG的数量和大小都显著增加(箭头所示)。PDG表现为增生,形态复杂(星号),内衬不太规则的上皮,有多层和乳头(插图)。近端PDG的变化更为明显。导管间质增厚。

因此,作为对慢性损伤的反应,PDG似乎经历了增生,并发展成具有PanIN样特征的粘液化生。

PDG保留胃肠粘液是胃肠道转移的来源

转移性导管病变,包括PanIN和癌症,经常表达GI标记物。19,20正常胰腺导管表达PAS+,但不是Alcian-blue+粘蛋白。相反,化生病变经常表现为阿尔西安蓝+粘蛋白和胃Muc5ac,这被认为是化生的早期迹象。19,21为了确定PDG是否是一种可能的来源,对正常胰腺和受损胰腺的粘蛋白表达模式进行了表征,并与正常胰腺和胃肠道上皮进行了比较。

小鼠试验结果(图4)密切反映人类的结果(补充图3). PAS公司+粘蛋白和Muc1存在于整个导管系统的管腔膜上(图4A). 然而,只有PDG表现出强烈的细胞质的PAS染色,提示粘蛋白分泌功能(图4B). 此外,PDG express Alcian blue+粘蛋白,包括通常存在于胃幽门腺深层的粘蛋白,即Muc6(图4 B&E). 因此,正常胰腺中的PDG表达粘蛋白,到目前为止被认为是化生的。作为对慢性损伤的反应,PDG出现增生,不仅表现出Muc6的上调和扩张,而且还表现出从头开始Muc5ac表达,导致粘液化生(图4 C&D). 然而,胃粘膜Muc5ac经常在PDG中发现,以应对损伤,从头开始很少观察到肠道Muc2的表达。

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小鼠胰腺:PDG保留胃肠粘液,是胃肠粘液化生的来源。(A) 正常外周胰管有立方至低柱状上皮,PAS低表达+粘蛋白(洋红)和Muc-1,但为阿尔西安蓝(B)PDG含有PAS的独特上皮+和阿尔西安蓝+(绿松石色)粘蛋白。PDG,但不是主管腔内壁(下图),表达通常在胃深部粘膜(下壁)(E中的胃肠道)中发现的粘蛋白。(C,D)在慢性损伤中,PDG肥大,粘蛋白表达增加,形态异型性增加。胃粘蛋白上调(下两排)。Muc5ac经常表达,Muc2很少表达。这导致类似幽门区(E)的化生表型,而非正常胰腺导管(a)。

粘蛋白表达模式证实PDG不同于胰腺导管上皮的其他部分,并经历进行性粘液化生,这与胃幽门上皮的特征密切相关。

PDG保留和上调发育途径,包括Shh

胰腺导管上皮的更新率较低,对其再生的了解较少。在许多组织中,再生和化生的形成受发育过程中指导组织分化的相同基因控制。7因此,我们的下一步是分析PDG中已知在胰腺发育和疾病中起关键作用的发育基因的表达。在对照组中分析Hh通路基因以及Pdx-1和Hes-1的表达,并在先前使用的相同小鼠中分析其对慢性损伤的反应。此外,通过Ki-67表达或BrdU掺入分析增殖活性。

正常胰腺

与之前未在正常胰腺中发现Shh的研究相比,Shh是专门在PDG中发现的(图5A). 在Ptch1-LacZ动物中,在PDG周围的导管间质中发现了Hh受体Ptch1。Ptch2受体与Shh在PDG上皮和正常导管上皮的单个细胞中共同表达。Pdx-1主要在PDG中表达,但也可在主管腔的上皮衬里中发现。已知Hes-1在外周导管和中心泡细胞中表达,12主要在PDG中的大导管中表达(图5A).

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PDG是发育因子和增殖的优先表达位点。(A) 在正常状态下,Shh在PDG(箭头)中以低水平表达,但在管腔上皮中不表达。受体Ptch2在PDG中与Shh共表达,在导管表面上皮(箭头)的一些细胞中也有表达;Ptch1在PDG周围的间质中表达。Pdx-1主要在PDG(箭头)中表达,但可以在导管上皮中识别。Hes-1主要在大导管(箭头)的PDG中表达,但可以在导管上皮中识别。(B) 作为对慢性损伤的反应,所有这些标记物似乎都上调了。Shh对PDG内的黏液细胞仍具有特异性。Ptch2在PDG中表达,但在表面上皮(箭头)中扩张;Ptch1广泛分布于导管间质。Pdx-1和Hes-1在导管上皮中的表达增加或广泛。(C) 在重度化生和异型性中,这些变化更为明显。Shh对粘液上皮仍具有特异性。Pdx-1和Hes-1扩张至表面上皮,但在深层上皮中仍强烈表达。(D) 作为对损伤的反应,大导管中的增殖(BrdU掺入)主要位于PDG(箭头所示)。在慢性损伤和化生中,增殖标记物Ki-67的表达主要见于PDG和粘膜皱襞顶点。MD:主管上皮衬里。

慢性损伤

作为对慢性损伤的反应,所有三种途径都以不同的模式上调(图5B&C). Shh似乎上调,但对粘液化生PDG仍具有特异性。此外,Shh在位于周围的粘液性病变中被局部观察到。Ptch1在纤维化导管间质中表达增加,Ptch2在PDG和主导管上皮中表达增加。Pdx-1和Hes-1在整个导管上皮中的表达均增加,但Pdx-1的表达更近,Hes-1的表达则更周边。所有发育基因在严重化生PDG中均保持表达(图5C).

增殖

与胃肠道上皮相比,胰腺导管上皮的更替率较低。在对照组中,仅偶尔在导管上皮中检测到增殖,包括PDG(图5D). 在对损伤的反应中,增殖主要局限于PDG。在明显化生的导管中,Ki-67主要在PDG和粘膜皱襞深部表现出增殖活性,并向表面消失。为了应对受伤,BrdU+或Ki-67+与导管内壁相比,PDG中的细胞核明显更频繁(p<0.001;急性损伤的比值比6.6(3.9-11.0),慢性损伤的比值比值比14.0(8.2-24.1))。

人类胰腺的结果(补充图4)反映在老鼠身上的观察结果。

外围PDG证据

为了寻找外周PDG,在对照小鼠和慢性损伤小鼠的外周导管中评估PDG室的特异性标记物Shh、Alcian蓝和胃粘液。这些标记物在对照组的小胰腺导管中均未发现;但在两小叶间增厚的间质中都可以发现共同表达这些标记的外溢物(图6A)和小叶内导管(图6B)作为对慢性损伤的反应,这表明它们的存在可能太小,无法在非增生状态下识别。

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PDG室位于外围管道中。在慢性损伤Shh中,Alcian blue和Muc6识别小叶间(A)和小叶内(B)导管间质中的PDG室。

Shh错误引导胰腺导管朝向胃肠道粘膜转移

在发育过程中,Shh将前肠中胚层导向胃肠道命运;在成人中Shh似乎促进胃腺分化,22并被确定为胰腺癌发生的早期介质。15在PDG中Shh和胃型粘液化生的严格共定位使我们推测,Shh的不适当上调可能是导致慢性损伤中的化生的原因,该化生通过引导胰腺导管上皮朝向胃的方向。转染Hh效应物Gli1的HPDE细胞上调前肠标记物23我们的目的是确定胰腺导管上皮是否对配体Shh有直接反应,以及Shh水平升高是否会导致胃粘液化生。

HPDE细胞17,18暴露于重组Shh并分析Ptch和黏蛋白的表达。与对照细胞相比,暴露于重组SHH 8天的HPDE显示出粘蛋白表达增强的表型变化(图7A). 定量RT-PCR显示HPDE细胞表达Hh受体和下游基因PTCH2,并上调其表达以响应Shh暴露,显示Hh途径激活。此外,HPDE细胞上调胃粘蛋白MUC6的表达,尤其是MUC5ac的表达(图7A). 因此,HPDE细胞对配体Shh反应,并在Hh途径激活后进行胃粘液转化在体外.

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Shh错误地将胰腺导管上皮导向胃肠道粘液化生。(A) Shh暴露导致HPDE细胞中粘蛋白表达增强(PAS:洋红,箭头)。实时定量RT-PCR显示HPDE细胞是表达受体的Hh靶细胞PTCH2公司.为响应Shh暴露,该途径被激活(PTCH2公司上调)以及胃粘液蛋白上调(MUC5ac、MUC6)。(B) Pdx-Shh小鼠中Shh转基因错误表达导致胰管GI表型表达PAS+(洋红)和阿尔西安蓝+粘蛋白,包括Muc5ac。比例尺指示100μm。

分析Shh是否具有类似效果体内,我们评估了工程化Shh错表达对胰腺导管表型和粘蛋白表达的影响。对Pdx-Shh转基因小鼠胰腺的分析表明,导管上皮首先具有非粘液外观,其次发展为粘液化生。同样,Shh介导的化生以胃粘蛋白的表达为特征,如Muc5ac(图7B).

体外体内结果表明,成人胰腺导管上皮对Shh信号有反应,Shh水平升高足以导致胃肠道粘液化生。因此,PDG-衍生的Shh可能会导致胰腺疾病中的粘液化生和PanIN样形成。

PDG显示慢性胰腺炎中SHH的上调和转移

为了评估我们的发现与人类疾病的相关性,我们分析了人类胰腺中Shh的表达和化生变化。

正常人胰腺(n=8)外周胰管、腺泡或胰岛中未检测到SHH。然而,SHH以PDG表示(图8A). 在CP(n=6)中,SHH似乎上调。在所有经评估的胰腺中,SHH在扩张的、形态增生的上皮中异常表达,表现出粘蛋白表达增加和细胞异型性,这是PanIN的特征(图8A). 近端比较(图8A)至外围管道(图8B)显示这些变化在整个导管上皮中局灶性存在,但以近端为主。SHH在外周导管中的表达通常与粘液化生或异型性共存。

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SHH在人PDG中表达,在化生中上调。(A) 主管道的PDG。控制:SHH在PDG中以低水平表示(箭头)。PAS染色(品红色)确定粘蛋白的共同表达。CP:H&E显示肥大的突起/分支,显示乳头状结构(箭头)和假层核(箭头),这是PanIN的特征。SHH上调,通过棕色核上颗粒染色鉴定。PAS显示粘蛋白表达增强。(B)控制:外周导管有立方上皮,Shh不表达,黏蛋白表达极少。内容提供商:具有PanIN特征(箭头,箭头)的非典型外周导管表达SHH(箭头),同时黏蛋白表达增加。比例尺指示100μm。(C) HH途径基因在CP中的表达表现为正常胰腺的倍表达。Shh和效应器Gli-1和Gli-2显著上调。受体基因PTCH1型SMO公司受到较小程度的上调。对比主导管组织(黑条)和外周实质(白条)中的表达水平,发现HH通路激活主要局限于近端导管系统。误差线表示S.E.M.*,P<0.05。

对Hh途径进行RTq-PCR(图8C). 在正常胰腺(n=6)中,所有Hh转录物均检测到低水平。在CP(n=10)中,包括配体、受体和转录因子在内的整个通路上调。尽管所有三种配体都已鉴定,但SHH具有最高的上调作用。与匹配的外周活检相比,近端导管活检中Shh及其通路成员的表达水平要高得多。虽然通过免疫染色,Shh的增强表达似乎局限于化生上皮,但下游基因的上调也可能涉及间质。

免疫染色和RT-PCR共同证实SHH仍在人类胰腺的PDG室中表达,并表明人类SHH的作用与小鼠相似。

结论

胰腺导管上皮是一组异质性细胞。我们提供证据表明,这种上皮细胞有一个特殊的隔室,即胰腺导管腺。在正常状态下,该隔室保留包括Shh在内的发育标志物的表达,是胃液型粘蛋白的产生场所。对于慢性损伤的反应,隔室是Shh介导的胃粘液化生的来源。

胰腺中的特异性粘蛋白分泌腺最早发现于20世纪60年代。2420世纪80年代博克等。用电子显微镜和组织化学染色法研究胰腺导管内的分泌细胞。他们发现产生粘蛋白的细胞聚集在粘膜褶皱中,形成上皮内腺体,他们称之为“导管腺体”2527然而,它们作为盲肠结构的解剖学特征尚不能明确。到目前为止,还没有进一步分析这个隔间及其在损伤中的作用。

在本研究中,导管腐蚀铸型的SEM可以直接在啮齿动物和人类身上证明这些结构是盲目的溢出物。PDG在啮齿动物中的发病率高于人类,这与粘蛋白产生细胞频率的种间变异一致。24这些腺体中的主要细胞是分泌粘蛋白的细胞,具有位于基底的细胞核和丰富的核上细胞质。这种形态类似于PanIN-1A。由于PanIN-1A可能出现在其他正常胰腺中,因此最初的PanIN分类承认正常胰腺中可能存在非肿瘤性“病变”,称为PanIN/-1安培1我们的数据表明,PDG可能至少占早期PanIN的一个子集,并可能是后期PanIN的起源。

“胰管腺”的存在提出了它们的功能问题。显然,它们是用于粘膜保护的粘蛋白产生的特定场所。由于正常胰腺的导管细胞更新率较低,因此研究其更新很困难,对胰腺导管上皮的更新知之甚少。在一项对人类CP导管上皮的研究中,生长因子的表达模式确定了一种特殊的上皮,它从主管腔中萌发,并被认为在修复中发挥作用。28在胰腺损伤的啮齿动物模型中,Pdx-1是在主导管和“小外翻”处诱导的。10,29PDG表达并上调肠隐窝中标记祖细胞的几个基因Shh、Pdx-1和Hes-1。虽然增殖数据和发育标记物的表达表明,与肠隐窝不同,PDG不是可能参与上皮更新的细胞的唯一位点,但PDG在PDG中的优势表明PDG有助于上皮更新和修复。

再生和修复机制的失调可能导致化生,最终导致肿瘤。7在胰腺中,Hh途径参与再生。30其配体Shh已被确定为肿瘤形成的引发剂。15最近在胰腺癌干细胞中发现了Shh。31,32发现Shh仍在PDG中表达,具有“化生”特征,这可能解释了先前观察到的Shh和GI标记物在早期PanIN中的表达,即使没有其他异型性迹象或其他癌症相关基因的改变。PDG室特别容易发生Shh介导的胃肠道上皮化生,这一发现提示了病变胰腺上皮化生的来源和机制。有趣的是,受损的人类和小鼠胰腺显示出高度组织化的胃型化生,这与幽门的粘蛋白表达模式密切相关。虽然这是推测性的,但我们可能认为胰腺中Shh介导的化生可能与胃和食道中CDX-1介导的肠化生起着类似的作用,并且可能与Barrett的化生一样,33,34与癌症风险相关。

最近的关注焦点是旁分泌Hh信号在结缔组织增生和胰腺癌进展中的重要性。35,36在田最近的一项研究中等。Hh配体在上皮细胞中表达,但在胰腺癌发生过程中,只有基质室能够传递下游通路的活性。37与我们的研究类似,田等。使用Ptch1-LacZ小鼠,与我们的结果一致,Hh途径活性仅在间质中报告37在发育过程中,Ptch1优先在间质中表达,而Ptch2同源物与Shh在上皮中共同表达。38我们的数据表明,Ptch受体的这种差异表达一直维持到成年。针对慢性损伤,我们发现Ptch2和Shh在PDG和导管表面上皮中的共同表达增强,而Ptch1在纤维化基质中表达。Ptch2在表面上皮中的表达和上调体内和HPDE细胞在体外证明PDG-衍生的Shh不仅可以影响PDG中的应答靶细胞,而且可以影响整个导管上皮中的应答目标细胞,这与生长因子信号传导类似。28然而,我们关注的是Hh信号的上皮效应及其在上皮化生和早期致癌、旁分泌基质Hh激活中的作用3537通过Ptch1受体可能代表整个组织内Hh活化的平行甚至主导机制。目前,Hh信号在上皮-间充质相互作用复杂性中的确切作用尚不清楚。

虽然PDG在保护、再生和癌症中的作用仍需做大量工作,但很明显,PDG代表一个独特的腺体样隔室,主要位于近端导管系统,具有独特的分子特征,与正常胰腺导管上皮不同。因此,PDG可能在损伤、Shh激活、粘液化生和肿瘤之间提供联系,并代表一种可能的起源细胞。

补充材料

01

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致谢

拨款支持:这项工作得到了德国研究基金会(STR 690/1-1)和海德堡外科基金会(Lautenschläger奖学金)(O.S.)、Karin Grunebaum癌症研究基金会、Lustgarten胰腺癌研究基金会的资助(RFP05-008),和国家卫生研究院(K08DK71329、P50CA127003和P01CA117969)(S.P.T.)。

我们感谢Matthew Scott的Ptch1 LacZ小鼠,Ming Sound Tsao的HPDE细胞,Chris Wright的Pdx-1抗体,Tetsuno Sudo的Hes-1抗体,Samuel Ho的小鼠胃粘蛋白抗体,以及Victoria Petkova和Rebecca Stearns的RTq PCR和SEM协助。

缩写

PDG公司胰管腺
面板IN胰腺上皮内瘤变
人物配对关系慢性胰腺炎
GI公司胃肠道
PAS公司周期性酸-Schiff’s
扫描电镜扫描电子显微镜
小时刺猬
HPDE细胞人胰腺导管上皮细胞

脚注

作者贡献:研究概念和设计:O.S.、C.F.C、A.L.W.、S.P.T.,数据采集:O.S.D.E.R.、E.Y.R.、A.G.T、J.A.、S.P.T,数据分析和解释:O.S、G.Y.L.、C.F.C.、A.L.W、S.P.T.,手稿起草和批判性修订

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所有作者都没有利益冲突。

出版商免责声明:这是一份未经编辑的手稿的PDF文件,已被接受出版。作为对客户的服务,我们正在提供这份早期版本的手稿。手稿在以最终可引用的形式出版之前,将经过编辑、排版和校对结果证明。请注意,在制作过程中可能会发现可能影响内容的错误,适用于该期刊的所有法律免责声明均适用。

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