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国家协议。作者手稿;PMC 2013年9月5日提供。
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EMSID:EMS54584型
PMID:23424750

胚胎小鼠后脑作为研究血管生成分子和细胞机制的定性和定量模型

关联数据

补充资料

摘要

小鼠胚胎后脑是研究新生血管萌芽的一个强大且适应性强的模型。它允许对正常小鼠和基因突变导致晚期胚胎或围产期死亡的小鼠株的器官血管形成进行时空分析。与视网膜血管生成或Matrigel植入物等产后模型不同,无需繁殖条件敲除小鼠。后脑血管系统独特的结构允许对血管进行全套免疫标记和高分辨率成像,并可轻松量化血管新生芽、网络密度和血管口径。后脑模型也允许配体与血管结合的可视化就地以及分析天然多细胞微环境中的血管生长,其中内皮细胞(EC)与非内皮细胞相互作用,以完善3D器官结构。从胚胎分离到成像再到结果分析,整个过程大约需要4天。

简介

在本方案中,我们描述了使用小鼠胚胎后脑来阐明萌芽血管生成的分子和细胞机制的研究实例,并提出了一个实验方案,以高时空分辨率成像和定量该器官中的萌芽血管形成。

小鼠胚胎后脑

由于其独特的结构和早期发育中的血管形成,小鼠胚胎后脑已成为研究新生血管形成的关键模型系统体内与脊椎动物中枢神经系统的其他部分类似,后脑在发育早期就有血管形成,以支持快速增殖的神经祖细胞及其后代的生长和功能。大约在胚胎第9.75天(E),血管首先从神经束周围血管丛发芽进入小鼠后脑,然后向心向心室区生长(图1a,第1阶段)1从E10开始,这些桡血管以接近直角的角度延伸出芽,平行于脑室后脑表面,但延伸到脑室下(图1a,步骤2)1当相邻的芽相遇并吻合时,心室下血管丛(SVP)开始形成(图1a,步骤3)1,2毛细血管网络建立后,后脑的动静脉分化似乎很好。因此,后脑中的灌注血管网络从E10.5开始出现1但动脉标记物平滑肌α-肌动蛋白(SMA)仅在E14.5左右的后脑中表达(A.Plein和C.Ruhrberg,未发表的观察结果)。

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小鼠胚胎后脑血管生长的时间进程

()后脑血管的示意图。在E9.75左右,血管开始从神经周血管丛萌芽,侵入后脑,并向心室区放射状生长(阶段1)。从E10.0左右开始,桡动脉在心室表面以下停止,并开始侧向萌芽,以接近直角的方向转动(第2阶段)。在E10.5左右,相邻的芽开始吻合,形成SVP(阶段3)。

(b条)后脑新生血管萌芽机制示意图。新生血管(红色)由丝状突尖细胞引导;丝足类检测神经祖细胞(橙色)分泌的VEGF梯度(灰色),以引导血管萌芽。邻近顶端细胞的吻合由丝足接触启动,并由卵黄囊衍生的组织巨噬细胞(MΦ,绿色)优化,该巨噬细胞与顶端细胞和顶端细胞丝足相互作用。

(c、 天)用IB4(红色)荧光标记指定发育阶段的后脑组织,以突出血管,用F4/80(绿色)荧光标记巨噬细胞;横截面如所示(c(c)),心室侧朝上的扁平后脑的平面图如所示(d日). 清晰的箭头表示内皮柄细胞、实心箭头-丝状突起内皮尖端细胞和实心箭头-组织巨噬细胞与尖端细胞相互作用的区域。比例尺:100μm(c(c))和25μm(d日). 缩写:hb,后脑;v、 脑室表面;p、 软脑膜脑表面;PNP,神经周血管丛;rv,桡血管;SVP,室下血管丛。所有动物程序均按照机构和英国内政部指南进行。

小鼠胚胎后脑血管生成模型

我们率先将小鼠胚胎后脑作为一种模型,以期研究生长因子在新生血管生成中的信号传导2具体而言,我们对表达可溶性与基质结合血管内皮生长因子A(VEGF-A)单一亚型的小鼠突变体后脑的分析表明,该亚型平衡调节血管分支和管径2因此,基质结合亚型的丢失破坏了生长血管细胞外环境中VEGF-A梯度的形成,从而减少了丝状内皮芽的形成,同时增加了管腔的生长。反之亦然,VEGF-A亚型的表达以牺牲可溶性亚型为代价,最强烈地结合基质,导致血管超支化和纤细2这些发现为小鼠视网膜的进一步研究奠定了基础,该研究表明生长血管前部的丝状突起内皮尖端细胞感知VEGF-A亚型梯度以指导血管生长(图1B).

使用Cre/Lox公司创建特定于细胞类型的删除的技术素食主义者后来证明,神经祖细胞是VEGF-A的来源,用于后脑的适当血管化4而杂合靶向性素食主义者这些细胞中的等位基因表明,VEGF剂量对SVP形成过程中血管萌芽的调节至关重要1后脑模型也被用来表明共享的VEGF-A/第3类信号素受体神经纤维蛋白1(NRP1)对后脑正常的丝状伪足引导至关重要5独立于其绑定语义的能力6此外,后脑模型在精神病学研究中表现出磷脂酰肌醇3-激酶(PI3K)p110α亚型在内皮细胞迁移中的重要作用7netrin作为新生血管生成的负调控因子的重要作用8此外,后脑模型显示,周细胞向生长血管募集需要硫酸肝素蛋白多糖9并且VEGFR3在血管发育过程中促进内皮细胞尖端到柄的转换10最近,我们利用小鼠胚胎后脑来确定组织巨噬细胞在血管吻合中的作用1这些细胞独立于血管侵入胚胎大脑,并与相反的内皮尖端细胞相互作用,促进芽吻合(图1b-d)1.

与其他方法的比较:优点和局限性

老鼠胚胎的后脑比其他的有几个优点体内研究血管生成的模型。首先,它非常适合量化血管生成的萌芽和血管复杂性,因为它形成了简单几何形状的血管网络。因此,在平板安装后,从软脑膜侧进入大脑的三维血管可以被视为一维过程,而在大脑内发芽则在心室侧表现为接近二维的过程(图2,图S1). 其他器官的血管化,如发育中的肾脏、心脏或肺,以及皮下基质凝胶塞中的血管生成反应,也在三维中进行;然而,这些器官不适合平面安装以获得更简单的全血管网络几何表示。其次,后脑的定量比其他血管床更容易、更准确,因为动静脉专业化与早期萌芽和融合的时间分离导致形成相对均匀和广泛的毛细血管网络。例如,原发性视网膜血管丛也可以像后脑脑室下丛一样在二维上可视化11但动静脉重塑发生在径向扩张血管丛的血管前部后面12,减小了包含适于定量分析的毛细管的区域的大小。

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免疫标记显示小鼠胚胎后脑血管发育

用PECAM免疫组织化学标记E12.5后脑,平贴并在指定的放大倍数下成像。(a-c公司)将后脑扁平化,软脑膜面朝上,可以看到进入大脑的桡血管。(d-f型)将后脑平放,心室侧朝上,可以看到心室下血管丛。中的虚线框(a、 d日)以更高的放大倍数显示区域(b、 电子),中的虚线框(b、 e(电子))放大倍率较高时显示的图像(c、 (f))分别为;中每个字段的大小(c、 (f))为500μm×500μm,即0.25 mm2. (g、 小时)图中所示区域中桡血管和血管交叉点的计数(c、 (f)); 绿色圆点用于跟踪已计数的血管。(i-k公司)穿过E12.5后脑的100μm横向振动部分,如所示(); 桡血管从后脑软脑膜侧延伸,然后在后脑心室侧下方分支形成SVP;(j、 k个)面板上显示的后脑两侧的高倍图像(). 比例尺:(a、 d日)1毫米;(b、 e、i-k)200微米(c、 (f))100微米。所有动物程序均按照机构和英国内政部指南进行。

小鼠后脑可以在比其他血管生成模型更早的发育阶段使用。例如,小鼠视网膜适合于分析出生后前两周的血管生成,而神经管是最早发育的器官之一,其血管生成早于肾脏、心脏或肺。与后脑一样,原始皮肤在发育早期就有血管生成,但后脑形成了一个更均匀的毛细血管网络。由于后脑在发育早期有血管生成作用,因此后脑模型适合研究存活在血管生成期但在E12.5后致命的小鼠突变体。例如,只表达VEGF-A的可溶性VEGF120亚型,但缺乏肝素/神经磷脂结合VEGF164亚型的小鼠,出生后很快死亡13而缺乏VEGF164受体神经纤维蛋白(NRP)1的小鼠在E12.5左右死亡14在这两种情况下,血管生成缺陷的机械细节可以用后脑模型来确定2,5.

当特定突变,如VEGF-A、VEGFR2或VEGFR1的缺失时(参考文献综述。15)在E10.5之前导致小鼠胚胎死亡,后脑模型不能用于研究血管生成。然而,这种局限性可以通过现代遗传技术来克服,例如组成型或他莫昔芬诱导型Cre-Lox公司技术16例如,本构Cre-Lox公司该方法用于灭活素食主义者后脑神经祖细胞1避免因切除胚胎而导致早期胚胎死亡素食主义者种系中的等位基因17,18.

小鼠胚胎后脑的一个缺点是,它不能像视网膜那样进行类似的实验操作,例如注射生长因子或功能阻断剂11此外,血管网络在器官型培养中迅速退化19,排除实时成像或体外视网膜移植的药理学操作20最后,从E13.5开始,小鼠后脑厚度的增加抑制了抗体渗透到深层组织部分,器官形状的改变阻止了整体成像的平面安装。因此,在发育后期或出生后阶段的后脑血管系统最好在免疫标记组织切片中进行可视化。

实验设计

用isolectin B4(IB4)对横切面进行荧光或组织化学染色,提供了一种稳健且广泛使用的方法来可视化中枢神经系统中的血管,包括大脑、脊髓和视网膜21该方法标记神经周和神经内血管丛中的内皮细胞,包括内皮柄细胞和尖端细胞丝足(图1c、d;图S1; 例如参考文献。[1,5]). 此外,IB4标记可被F4/80抗体双重标记的组织巨噬细胞,以将其与内皮细胞区分开来(图1c、d;图S1)22或者,内皮标记物血小板内皮细胞粘附分子(PECAM,也称为CD31)23可以用来可视化后脑中的内皮细胞(图2).

在荧光染色的情况下,使用不同物种中产生的初级抗体进行多重标记,可以同时分析几种蛋白质或细胞群,并可以与IB4染色相结合。也可以按照以下步骤进行强健表位染色,例如IB4就地杂交19.BrdU或用于增殖研究的等效化合物可在后脑隔离前给怀孕的母鼠注射,允许对整窝产仔进行同质标记,以便对携带隐性遗传突变的鼠种中的同窝突变和对照进行比较2当分析转基因小鼠胚胎的后脑以确定血管生长和模式的改变时,必须包括适当的控制,包括野生型同卵鼠的后脑,或者在条件无效突变体的情况下,来自同卵鼠表达Cre公司,但缺乏漂浮的靶基因,后脑缺乏Cre公司但携带着漂浮的靶基因。

在用血管标记物(如PECAM或IB4)染色后,可以在平板安装的后脑的软脑膜上看到进入大脑的径向血管(图2a-c,图S1a-c)SVP血管在心室视图中很明显(图2d-f,图S1d-f)1,2,6虽然组织化学方法特别适合于在平板安装后提供整个后脑血管系统的概览图像(图2a、d,图S1a、d),解剖后脑的振动切片突出了软脑膜和SVP血管段的关系(图2i-k,图S1i,j)1后脑也为碱性磷酸酶(AP)标记配体的定性结合分析提供了一个有用的平台,以评估配体与其血管受体的结合情况就地6例如,它可以用于显示VEGF165和替代NRP1配体SEMA3A与发育中的后脑血管的结合(图3)6.

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AP融合蛋白与小鼠胚胎后脑的结合

新解剖的E12.5后脑与带有AP标记的VEGF165发生反应(a、 b、d、e)和SEMA3A(c、 (f)). (a-c公司)将后脑平放,软脑膜面朝上,可以看到进入大脑的桡血管(箭头);请注意,VEGF165还检测到后脑背外侧的轴突束(箭头所示)。(d-f型)将后脑平放,心室侧朝上,可以看到心室下血管丛。中的虚线框(a、 d日)以更高的放大倍数显示区域(b、 e(电子)). 比例尺:(a、 d)500微米(b、 c、e、f)100微米。所有动物程序均按照机构和英国内政部指南进行。

这里我们提供后脑解剖的方案(图4,图S2和补充视频1和2)、用大鼠抗血清和IB4标记的通用协议(图2,图S1),有用的商业抗体表(表1,,2),2),一种AP融合蛋白与整个后脑结合的方案(图3),该表详细列出了各种血管生成参数,这些参数可以在后脑模型中进行量化,并概述了适用于此类定量分析的胚胎年龄(表3)和故障排除指南(表4) .

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E12.5小鼠胚胎后脑的解剖

图的左手侧显示了示意图,右手侧显示了解剖的组织。

(a-d公司)用镊子将胚胎及其卵黄囊从子宫中取出(b条); 从卵黄囊中分离胚胎(c(c)); 沿着管路1施加压力,用镊子将头部从身体上取下(a、 d日).

(电子-小时)定位头部((f))以方便的方向()并用镊子沿管路2施压(e、 g)用周围的间充质组织获取后脑(小时).

(i-l公司)将后脑与周围的间充质组织放在一个方便的方向(j个)将镊子插入位置3,在屋顶板上打一个洞(i、 j个). 用镊子沿着虚线4和5撕开顶板()露出后脑(k个)并允许其展开(弯曲箭头i;).

(米)用镊子将软脑膜和周围的间质从神经组织中取出(内弯箭头m、 n个). 用镊子沿着虚线6和7挤压,分别取出中脑和脊髓组织(m、 o(o)). 后脑现在完全展开,准备固定甲醛;用玻璃盖玻片仔细盖住后,可以很容易地看到它(第页).

比例尺:1 mm。所有动物程序均按照机构和英国内政部指南执行。经参考文献许可改编。28.

表1

内皮细胞和血管相关细胞类型特异性单克隆抗体的示例
电池类型抗体稀释
所有EC大鼠抗鼠PECAM(CD31,MEC13.3)
BD Pharmingen,猫。编号553370
1:200
毛细血管/静脉EC大鼠抗小鼠内粘蛋白(克隆V.7C7)
圣克鲁斯,猫。编号:sc65495
1:200
平滑肌细胞小鼠抗SMA
西格玛,猫。编号A5228
1:200
巨噬细胞大鼠抗鼠F4/80
AbD Serotec,猫。编号:MCA497G
1:500

表2

血管细胞外基质、血管相关细胞类型、有丝分裂细胞和调节血管生成的蛋白质的多克隆抗体示例
电池类型抗体稀释
基底膜兔抗鼠IV型胶原
AbD Serotec,猫。编号:21501470
1:200
周细胞兔抗小鼠NG2硫酸软骨素蛋白多糖
猫Millipore。编号AB5320
1:200
细胞增殖兔抗鼠磷酸化组蛋白H3(pH3,Ser10)
猫Millipore。编号06-570
1:200
各种电池类型,包括EC山羊抗鼠/大鼠NRP1
研发系统,目录。编号AF566
1:200
欧盟委员会山羊抗鼠VEGFR2
研发系统,目录。编号AF644
1:200

表3

适合量化各种血管生成参数的胚胎年龄示例
年龄血管生成参数抗体放大倍率

心室图10.5-11.5尖端细胞和丝状体数IB4(IF)40倍,63倍
图10.5-12.5支点或交叉点IB4、PECAM(IF或HRP)10×
图10.5-12.5容器直径IB4、PECAM(IF)63×
E10.5-12.5欧元内皮细胞增殖pH3+IB4(IF)10×
图10.5-12.5组织巨噬细胞数F4/80±IB4(IF)10×, 20×
图10.5-12.5周细胞密度NG2+IB4(IF)10×, 20×

软脑膜图11.5-12.5桡血管密度IB4、PECAM(IF或HRP)10×
图10.5-12.5容器直径IB4、PECAM(IF)63×
图10.5-12.5内皮细胞增殖pH3+IB4(中频)10×

表4

故障排除指南
步骤问题可能的原因解决方案
13年无染色固定不足;次优的
抗体浓度。
使用新鲜的4%甲醛溶液;用温和的方式将样品固定在冰上2小时
煽动;用固定剂固定10倍体积的组织;或者,测试不同的
固定试剂;优化抗体浓度;测试替代抗体。
荧光
斑点
二级抗体形式
沉淀。
之前在冷冻台式离心机中以最高速度旋转二级抗体
使用。
弱染色组织渗透不足
抗体;抗体浓度
次优;光漂白。
增加孵化时间;优化抗体浓度;把样品放在黑暗中
(例如用锡箔纸包裹容器);将样品装入防褪色溶液中。
13Bviii号无染色固定不足;次优的
抗体浓度。
使用新鲜的4%甲醛溶液,将后脑在冰上轻轻固定2小时
煽动;用固定剂固定10倍体积的组织;优化抗体
浓度;检测新鲜批次的一级或二级抗体。

背景
残留内源性过氧化物酶
活性;之后清洗不足
抗体孵育;
反应过度。
检查染色前是否用过氧化氢进行了正确的漂白;
增加抗体洗涤的频率;观察HRP反应
立体显微镜每5分钟一次。
弱染色组织渗透不足
抗体(E12.5以上);
足够的HRP反应时间;
抗体浓度次优。
从E12.5开始,使用振动切片,然后进行免疫标记;允许
HRP反应至少30分钟,每隔5分钟在立体显微镜下观察反应
分钟;与新的开发解决方案一起孵化;优化抗体浓度。
13摄氏度后脑
与…分离
琼脂糖
多余的液体附着在后脑
嵌入时;的设置不正确
分段(例如改变分段
速度)。
包埋前用干净的纸巾仔细吸干样品中的液体;
优化振动器的速度和振幅。
13D(i,ii)组织
退化
使用PBT代替PBS
在组织固定之前。
在PBS中使用10%的FBS来阻止非特异性相互作用,然后再添加条件
中等。在组织固定之前,使用PBS清洗未结合的AP融合蛋白。
13Dviii号弱染色AP反应时间不足;
次优AP融合蛋白
浓度。
在立体显微镜下每隔5分钟进行观察;AP至少允许30分钟
反应;用新鲜显影液孵育;点条件培养基
硝化纤维过滤器和开发验证AP融合蛋白的表达。
14摄氏度气泡进入
安装
部分。

加上盖玻片。
小心地将盖子滑到部分上,以避免夹住气泡。

材料

试剂

4-硝基蓝四唑氯化物(NBT,Roche,目录号1087479)。

5-溴-4-氯-3-吲哚磷酸(BCIP,罗氏,目录号1585002)。

无水甲醇(Fisher Scientific,目录号M-4000-PC17)!小心。它对眼睛和皮肤有刺激性。吸入、皮肤接触和吞食有各种严重不可逆影响的危险。酌情穿戴护目镜、衣服和手套。

琼脂糖(例如来自BDH Electran,产品目录号438792U)。

二氨基联苯胺和尿素过氧化氢片(Sigma-Aldrich,目录号D4293-50SET)。

甘油(Acros Organics,目录号AC15892-2500)。

热灭活正常山羊血清(NGS,Sigma-Aldrich,目录号G9023)。

热灭活正常兔血清(NRS,Sigma-Aldrich,目录号R9133)。

过氧化氢(Sigma-Aldrich,目录号H1009)!小心。如果摄入,会对眼睛造成严重伤害。酌情穿戴护目镜、衣服和手套。氯化镁1 M(Sigma,分类号M1028)。

多聚甲醛(PFA,Sigma-Aldrich,目录号P6148)!小心。吸入和吞咽有害。对眼睛、呼吸系统和皮肤有刺激性。接触后可能导致皮肤过敏。酌情穿戴护目镜、衣服和手套。在通风柜中使用。

磷酸盐缓冲盐水片(PBS,Sigma-Aldrich,目录号P4417)。

现成的无血清蛋白块溶液(Dako,目录号X0909)。

SlowFade Antifade试剂盒(Life Technologies,产品目录号S2828)。

氯化钠(Sigma,目录号S3014)

Triton®声波风廓线仪X100(Sigma-Aldrich,产品目录号T8787)!小心。如果摄入,会对眼睛造成严重伤害。酌情穿戴护目镜、衣服和手套。

三(羟甲基)氨基甲烷(Tris,VWR,目录号443864E)

AlexaFluor488-共轭山羊抗鼠二级抗体(Life Technologies,目录号A11006)。关键步骤:该协议已使用该荧光团进行了优化,但可以选择其他荧光团)。

AlexaFluor488-共轭链霉亲和素(Life Technologies,目录号S32354)。关键步骤:该协议已使用该荧光团进行了优化,但可以选择另一种链亲和素共轭荧光团。

生物素化凝集素单叶斑潜蝇BS-I隔离素B4(IB4;Sigma,分类号L2140)。关键步骤:该方案已针对该凝集素进行了优化,因此建议使用。

HRP标记的兔抗大鼠第二抗体(Dako,猫号P045)。

HRP标记的链霉亲和素(Dako,目录号P0397)。

大鼠抗鼠PECAM单克隆抗体(CD31,MEC13.3;BD Pharmingen,目录号553370)。关键步骤:该方案已针对该抗体进行了优化,因此建议使用。

可能需要额外的一级和二级抗体来标记巨噬细胞、平滑肌细胞、毛细血管和静脉内皮、血管基膜、周细胞、有丝分裂细胞或VEGF-A受体。请参见表1和22了解详细信息。

怀孕的大坝。任何可育鼠种的成年雄性和雌性小鼠都可以配对以获得怀孕的母鼠。对于定时交配,小鼠在晚上交配,阴道堵塞形成的早晨计算为交配后0.5天(dpc)!警告:必须遵守有关啮齿动物使用的机构和政府道德规范。

DMEM(生命科技,目录号31966-021)。

FBS(生命科技,目录号10437-028)。

Lipofectamine(生命技术,目录号18324012)。

ddH(日/小时)2O。

质粒DNA。

设备

2.0 ml圆底试剂管(安全锁;例如Eppendorf,目录号022363352)。

24孔细胞培养板(例如BD Falcon,目录号353047)。

50 ml猎鹰管(例如BD falcon,目录号352098)。

台式管辊(例如Stuart SRT9、Stuart)。

共焦激光扫描显微镜(例如蔡司LSM710、蔡司)。

数据采集软件(例如OpenLab 3.5.1,Improvision Ltd.)。

一次性塑料模具(例如电子显微镜科学,目录号62352)。

配备数码相机(如哈马松C4742-95-12HR)的表观荧光立体显微镜(如奥林巴斯、SZX16)。

玻璃瓶(例如Schott Duran)。

玻璃盖玻片(22×55mm;VWR国际,目录号631-0137)。

玻璃载玻片(VWR国际,目录号631-0111)。

鹅颈灯(例如冷光源KL 2500 LCD、Schott)。

图像编辑器软件(例如Photoshop CS3、Adobe Inc.)。

塑料细胞培养皿(直径60 mm;例如BD Falcon,目录号353002)。

塑料巴斯德吸管(例如,来自Alpha Laboratories,目录号LW4003)。

配备数码相机(例如QImaging Micropublisher 3.3 RTV)的立体显微镜(例如Leica MZ16、Leica)。

台式天平(例如ED精密天平、Sartorius)。

振动器(例如,振动器1000Plus剖切系统,Intracel)。

5号钟表钳(例如来自Dumont,目录号91150-20)。

55号钟表钳(例如,来自Dumont,目录号11255-20)。

水浴(例如Stuart SWB15D、Stuart)。

试剂设置

阻隔缓冲液(10%,vol/vol):对于1 ml,混合100μl含900的血清μl的PBT。为每个免疫染色实验准备新鲜的。

显影缓冲液

将6 g Tris碱溶于50 ml ddH中2O并调节至pH 9.5,以产生1 M Tris缓冲液。在10 ml ddH中溶解2.9 g氯化钠2O生成5 M氯化钠。将1 ml 1 M Tris缓冲液与200μl 5 M氯化钠和50μl 1 M氯化镁混合。添加ddH20至10 ml。在室温(21°C)下无限期储存。展开液:向1ml展开缓冲液中加入3.5μl NBT和3.5μl BCIP。防止光线照射。为每个实验准备新鲜食物。

DAB解决方案

将1片DAB溶于5 ml ddH中2室温下,在工作台顶部滚轮上为O。将药片量调整到所需的最终体积。防止光线照射。为每个免疫染色实验准备新鲜的。

DAB和尿素/过氧化氢溶液

将1片DAB和1片尿素过氧化氢片溶解在5 ml ddH中2室温下,在工作台顶部滚轮上为O。避光。为每个免疫染色实验准备新鲜的。

甲醛溶液(4%,wt/vol)

在化学通风橱下,称取2 g PFA到50 ml Falcon管中,并添加50 ml PBS。在水浴中将溶液加热至60°C,溶解PFA,频繁搅拌,直到PFA粉末溶解。在−20°C的温度下将其等分储存一年。在室温或37°C水浴中解冻,并在使用前在冰中冷却。

甲醇梯度

为了在PBT中制备50 ml 25%、50%或75%的甲醇,将12.5、25或37.5 ml的无水甲醇与37.5、25或12.5 ml的PBT在50 ml Falcon管中混合。在室温下无限期储存。

美国公共广播电视公司

将5片PBS溶于1 l ddH中20.在室温下无限期保存。关键步骤:使用PBS进行非渗透性组织染色,例如用于细胞外表位而非细胞质表位的可视化。

PBT公司

在50 ml Falcon试管中添加50μl Triton X-100至50 ml PBS;在室温下无限期储存。关键步骤:使用PBT渗透组织,检测细胞表面和细胞质表位。

AP融合蛋白的表达

编码分泌型AP的表达载体可从各种来源(例如pAPtag-4、GenHunter Corporation或APTag-124). 为了生成融合蛋白,将HEK-293T细胞在生长介质(含10%(vol/vol)FBS和抗生素的高糖DMEM)中的10-cm培养皿中培养至80%融合,并转染细胞,如下所示:培养25μl脂蛋白和10μg质粒DNA和两个分开的500-μ1份预热的无抗菌素血清DMEM,在室温下放置15分钟。接下来,将脂多糖和DNA溶液混合,在室温下培养15分钟;接下来,从HEK-293T细胞中取出培养基,并以滴状方式向细胞中添加脂质体/DNA溶液。添加4 ml预热的无血清和抗生素DMEM,并将细胞置于37°C 5%CO2腐殖培养箱中6小时;接下来,用预热的生长培养基替换培养基,并将细胞放回培养箱中42小时。最后,收集上清液并通过0.22-μm过滤器去除脱落的细胞;将上清液分成小份,并将其储存在−80°C的温度下。此过程需要约2天的时间。已发布替代方法24.

设备设置

塑料巴斯德吸管

用于在盘子之间转移胚胎和后脑:用干净的手术刀或剪刀剪掉尖端,形成一个大小合适的开口。或者,将移液管的球茎切成薄片,形成适合移植大胚胎的匙形开口。

台式管滚轮

应放置在冷藏室或冷藏柜中,因为抗体培养应在4°C下轻轻滚动的试管中进行。

程序

胚胎分离:每个胚胎计时~5分钟

1在规定的胎龄,以人道的方式杀死怀孕的母体(例如颈椎脱位)!小心。动物程序必须按照相关机构和政府道德准则执行。

2通过在腹部皮肤和隔膜上切割V形切口来解剖子宫。用产钳将子宫角从体腔中拔出,切断产道、脂肪组织和两根输卵管。将子宫角转移到一个装有冰冷PBS的干净塑料盘中。

在解剖立体显微镜下,用镊子将子宫角周围的肌层断裂,从而将每个胚囊取出。这可以在将子宫切成含有单个胚胎的碎片后进行,也可以通过从完整的子宫角上一个接一个地取出胚胎来完成(补充视频1和2).

4破裂每个胚囊直到胚胎出现,切断脐带,用塑料巴斯德吸管将胚胎收集到带有干净PBS的盘子中,然后将盘子放在冰上(补充视频1和2). 关键步骤。将胚胎浸入PBS中执行此步骤,以防止表面张力使胚胎破裂。这与10.5-11.5 dpc的胚胎解剖特别相关。

5用塑料巴斯德吸管一次将一个胚胎转移到含有冰镇PBS的新鲜盘子中进行后脑解剖。如果实验需要对幼崽进行基因分型,保留一片胚胎尾部或卵黄囊组织用于基因组DNA分离。

后脑疾病:每后脑约5分钟

6用镊子挤压,切断前肢上方的头部(图4a-d,第1行;图S2a)并取下头部和面部的前部(图4e-h,第2行;图S2b).

7用锋利的镊子轻轻拉动,使覆盖在后脑第四脑室水平的薄而半透明的顶板破裂(图4i,j,图S2c和补充视频1和2). 继续向中脑方向撕裂膜(图4i,k,小箭头;图S2d,e)然后朝向脊髓打开后脑(图4i。,弯曲箭头;图S2f;补充视频1和2). 现在在解剖立体显微镜下可以清楚地看到后脑组织。关键步骤。不要将镊子插入太深,因为这可能会损坏后脑组织。

8从后脑下面剥下软脑膜(图4m,n;图S2g、h和补充视频1和2); 从E12.5开始,打开屋顶板后,它很容易脱落,在早期阶段,这是一个到处拉扯的问题,就像剥桔子一样-一些地区比其他地区更容易让路。

9移除中脑和脊髓,让后脑展开(图4m分别为第6行和第7行;图S2i,j). 转移分离的后脑(图4o,图S2k,l)将塑料巴斯德吸管平放在一个放置在冰上的24孔板中的一个孔的底部。关键步骤。不要让胚胎脱水。将胚胎保存在PBS中,直到在步骤10中添加固定剂,或者省略步骤10-13C并继续步骤13D进行AP融合蛋白结合分析。

固定:计时2小时

10去除PBS并向后脑添加4%的冷甲醛。关键步骤。对于本方案中提到的所有抗体(表1,,2),2)新鲜制备或解冻的甲醛固定剂是一种合适的固定剂。其他抗体可能需要另一种固定方案。

11在冰上轻轻搅拌固定2小时,在PBS中漂洗三次,然后继续染色方案。关键步骤:对于PECAM染色,最好对刚固定的组织进行染色,避免固定时间超过2小时或甲醇储存。如果固定后不能立即开始染色,则可以在第二天染色之前将样品在4°C的PBS中储存过夜。暂停点。或者,通过升高的甲醇梯度转移,在−20°C下储存最多3个月(梯度:PBS中25%、50%和75%的无水甲醇,然后是无水甲醇)。

染色程序:计时3天

12对于储存在甲醇中的组织,通过降低甲醇梯度转移(PBT中75%、50%和25%的无水甲醇,然后单独使用PBT)。

13将后脑放在2.0毫升圆底安全锁管中,准备好进行荧光或组织化学标记。按照选项A进行PECAM和/或IB4荧光染色。按照选项B进行PECAM或IB4组织化学染色。方框1中给出了使用替代抗体的指南。按照选项C进行振动切片,按照选项D进行全山AP融合蛋白结合。关键步骤。为了保存抗体并标准化不同样本之间的抗体暴露,以比较染色强度,可以标记单个后脑,以在形态学上区分它们,然后将它们合并到一个管中(例如,中脑或脊髓或两者均可附着;建议每个管子最多有4个带标签的后脑)。

  1. PECAM和/或IB4荧光染色TIMING 3d
    1. 在室温下轻轻滚动,在封闭溶液中培养30分钟。对于PECAM标记,使用PBT中10%(vol/vol)的正常山羊血清作为封闭溶液。对于生物素化IB4标记,使用在PBT中的10%(vol/vol)正常山羊或兔子血清作为封闭溶液。
    2. 在4°C下用含有一级抗体(大鼠抗鼠PECAM,稀释1:200或生物素化IB4,稀释1:2000)的封闭溶液轻轻滚动培养过夜。
    3. 在室温下用PBT彻底清洗后脑五次,每次15-30分钟。
    4. 在4°C下用含有二级抗体的封闭溶液(稀释1:200)轻轻滚动培养过夜。对于PECAM检测,使用AlexaFluor488标记的山羊抗鼠抗体。对于生物素化IB4检测,使用AlexaFluor488标记的链霉亲和素。
    5. 按照步骤13A iii.清洗后脑。
    6. 室温下,在4%(wt/vol)甲醛溶液中固化30分钟。暂停点。在此阶段,可以对样品进行成像处理,也可以在成像前在4°C的PBS中存储最多一周(见下文)。
  2. PECAM或IB4组织化学染色:TIMING 3d
    1. 通过在PBS中的1%(vol/vol)过氧化氢中培养30分钟,在室温下轻轻滚动,消除内源性过氧化物酶活性。
    2. 在PBT中清洗样品两次,每次5分钟。
    3. 在室温下,在封闭溶液中缓慢滚动培养30分钟。对于PECAM,使用PBT中10%(vol/vol)的正常兔血清作为封闭溶液。对于生物素化的IB4,使用在PBT中的10%(vol/vol)正常山羊或兔子血清作为封闭溶液。
    4. 在4°C下,在含有一级抗体的封闭溶液中培养过夜(大鼠抗鼠PECAM,稀释1:200或生物素化IB4,稀释1:2000)。
    5. 在室温下用PBT彻底清洗后脑五次,每次15-30分钟。
    6. 在4°C下用含有二级抗体的封闭溶液(稀释1:200)轻轻滚动培养过夜。对于PECAM检测,使用HRP标记的兔抗鼠抗体。对于生物素化IB4检测,使用HRP标记的链霉亲和素。
    7. 按照步骤13B v清洗后脑。
    8. 在室温下将后脑在二氨基联苯胺溶液中培养10分钟(轻轻滚动),然后在二氨基联苯胺和尿素/过氧化氢溶液中培养5分钟,或直到颜色形成。小心。样品需要避光,因为二氨基联苯胺和尿素/过氧化氢溶液是感光的。关键步骤。为了避免反应过度发展,应定期在立体显微镜下观察样品?故障排除
    9. 为了停止反应,用ddH短暂清洗后脑2O,然后PBS,在室温下在4%(wt/vol)甲醛中固定30分钟。暂停点。在此阶段,可以对样品进行成像处理,也可以在4°C下将其储存在PBS中,直至成像(见下文)。
  3. 染色后振动分段:每个后脑30分钟计时
    1. 将3 g琼脂糖放入100 ml ddH中20在玻璃瓶中,在微波炉或沸水浴中熔化。让其冷却,例如在60°C的烘箱中
    2. 将后脑放在方形塑料模具中,用吸管吸出附着在后脑外部的多余液体,然后用纸巾轻轻吸干。
    3. 当融化的琼脂糖冷却到足以接触玻璃时,将其倒入模具中,并在琼脂糖开始凝固之前快速定位后脑。
    4. 琼脂糖凝固后,从模具中取出含有后脑的琼脂糖块(可以重新使用),并用振动棒切割80-100μm的横截面?故障排除
  4. AP融合蛋白结合测定:时间2天
    1. 将后脑在10%(vol/vol)FBS中的PBS中培养30分钟,在4°C下轻轻滚动。关键步骤。在评估涉及语义蛋白的蛋白质相互作用时,必须向PBS中添加最终浓度为4 mM的氯化镁?故障排除
    2. 在4°C条件培养基中培养后脑,培养基中含有融合蛋白。关键步骤。将一只后脑与含有AP蛋白的条件培养基一起孵育,AP蛋白不与任何其他蛋白融合,作为阴性对照。
    3. 在室温下,在PBS中彻底清洗后脑三次,每次15分钟?故障排除
    4. 在4°C下,轻轻搅拌,在4%(wt/vol)甲醛中固定1小时。关键步骤。不要过量加注。长时间固定可能会降低AP酶活性。
    5. 在室温下用PBT彻底清洗后脑两次,每次15分钟。
    6. 将后脑在65°C的PBS中培养3小时,以灭活内源性碱性磷酸酶。
    7. 在培养液中培养后脑10分钟。
    8. 通过在室温下将后脑在显影溶液中孵育15分钟,或直到变色,来检测组织结合的热稳定重组AP活性。小心!样品需要避光,因为显影液中的NBT和BCIP是感光的。关键步骤。为了避免反应过度发展,应定期在立体显微镜下观察样品?故障排除
    9. 为了停止反应,用ddH短暂清洗后脑2O,然后PBS,在室温下在4%甲醛中固定30分钟。暂停点。在此阶段,可以对样品进行成像处理(见下文),也可以将其储存在4°C的PBS中,直至成像。

成像:时间可变,每个后脑0.5-1小时

14如选项A所述,对全身标记HRP或AP的后脑进行荧光成像。按照选项B对振动部分进行成像。

  1. 荧光标记的后脑。
    1. 将两层黑色电工胶带粘在玻璃滑板上,然后切下矩形口袋,形成一个间隔。用SlowFade试剂将每个后脑平放在一个口袋里,并用玻璃盖玻片盖住。
    2. 用荧光立体显微镜或共焦扫描激光显微镜对后脑进行成像。
  2. HRP或AP标记的后脑
    1. 将每个后脑分别放入一个空的塑料盘(直径60毫米)中,取出多余的液体,并用玻璃盖玻片盖住。或者,如果将后脑放在琼脂糖盘上的一个孔中,可以将其轻轻压扁(这个孔是用吸管尖舀出一点琼脂糖而形成的)。当玻璃盖玻片被轻轻推下以压平后脑时,这可以防止组织撕裂。
    2. 用配备合适相机的标准立体显微镜对后脑进行成像。请注意,在拍摄图像之前,可能有必要弄湿盖玻片,以清除灰尘并使后脑适当平坦。
  3. 对振动部分进行成像。
    1. 将切片安装在PBS中90%(vol/vol)甘油的玻璃载玻片上,用于HRP标记样品,或用于荧光标记样品的SlowFade试剂,并用玻璃盖玻片覆盖?故障排除

方框1:替代免疫染色方案:时间与单一染色程序相同(3天)

使用来自不同物种的初级抗体或抗体与IB4(例如IB4和F4/80双重染色,如图1c、d). 对于此类实验,将一级抗体或IB4和一级抗体一起应用于封闭溶液中;清洗后,将二级抗体(如果是IB4,则使用链霉亲和素)一起涂抹在封闭溶液中。上文使用的抗体以及适用于标记巨噬细胞、平滑肌细胞或毛细血管和静脉内皮细胞的单克隆抗体的一些进一步示例在表1可用于标记血管基底膜、周细胞、有丝分裂细胞和VEGF-A受体NRP1和VEGFR2的多克隆抗体的单独列表可在表2然而,多克隆抗体可能表现出分批特异性变化,需要用户测试其适用性。

为了阻止非特异性抗体结合,染色方案通常包括与一级和二级抗体兼容的血清,即来自与二级抗体产生的物种相同的血清。相反,对于包括山羊体内初级抗体的染色方案,我们建议使用无血清血清块(例如来自DAKO,目录号X0909);没有必要在抗体稀释液中加入该块。此外,我们建议在实验中仅使用荧光团结合的Fab片段作为次级抗体,包括在山羊体内饲养的初级抗体。

IB4结合糖蛋白上的α-D-半乳糖残基,这种凝集素表位通常比蛋白质表位更稳定;因此,IB4染色与酸水解后的BrdU免疫标记或原位杂交的免疫标记兼容。

时间安排汇总

AP融合蛋白的表达,可选(试剂设置):2天

步骤1-5,胚胎分离:每个胚胎约5分钟

步骤6-9,后脑解剖:每后脑~5分钟

步骤10-11,固定:2 h

步骤12-13,染色程序:~3 d

第14步,成像:可变,每后脑0.5-1小时

方框1,替代染色方案:与单一染色程序相同(3d)

数据分析(在预期结果中讨论):可变,取决于样本数量,0.5-2小时

故障排除

可以在中找到故障排除建议表4.

预期结果

量化中描述的血管生成参数表3,从后脑两侧随机选择几个区域进行成像,并平均每个区域的数值,以将技术误差降至最低。对于使用立体显微镜获得的高倍亮场图像,例如11.5倍放大倍数(取决于显微镜的规格),至少获得三个0.25 mm的场2(图2c、f;图S1c,f)并计算每个区域的血管交叉点(例如。图2h和图S1h)。为了量化低功率共焦图像中的血管生成参数,至少使用大约0.85 mm的两个场2(带10个物镜)或0.2 mm2(20个目标),后脑两侧各一个(图5c、d). 为了量化高倍率共焦图像中的血管生成参数,例如40×或63x,至少使用4个字段,如图5e-g。在所有情况下,一个后脑中所有字段的平均数值将产生该后脑的最终值。

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小鼠后脑血管缺陷示例素食主义者+/120交叉

E11.5来自定时交配的同窝后脑素食主义者+/120父母用IB4荧光标记,并在指定的放大倍数下成像。分支点量化和组织巨噬细胞(实心箭头)的血管交叉点示例如所示(c、 天). 组织巨噬细胞(实心箭头)、内皮尖端细胞(实心箭头(电子-克). 用星号表示的区域显示了深入后脑深层的血管,并显示为“截止”,因为共焦z堆栈并没有跨越整个SVP。显示的区域()是用白色方框表示的区域的放大倍数(d日). 比例尺:(a、 b条)500微米;(c、 天)100微米(电子-克)50微米。所有动物程序均按照机构和英国内政部指南进行。

对于血管生成特征(如内皮尖端细胞、血管分支点、交叉点或组织巨噬细胞)的手动计数,建议通过在数字图像中标记符号或使用Adobe Photoshop(Adobe Inc)中的“计数工具”来跟踪所有计数的结构。长度测量,例如血管段或血管直径,可以通过Adobe Photoshop中的“标尺工具”功能或适当的成像软件(如Openlab(Improvision))实现。经过仔细验证后,还可以使用自动化协议量化血管交叉点和其他血管生成参数,例如使用免费的AngioTool25,它基于免费软件ImageJ(网址:http://rsb.info.nih.gov/ij; 国家卫生研究所,马里兰州贝塞斯达)。ImageJ也可以进行修改,以开发适合特定需求的替代量化方法。或者,诸如Imaris(Bitplane)或Volocity(Improvision)提供的商业软件有助于量化血管生成参数。

根据我们的经验,当基因型之间的表型差异较大时(例如,与只表达VEGF120的后脑相比,后脑表达所有VEGF-a亚型,图5a-e,g). 对于更精细的表型,分析5-10个后脑通常适合获得足够的统计能力(例如,后脑表达两个等位基因的所有VEGF-A亚型,而后脑仅表达一个等位蛋白的VEGF120;图5e、f). 在表示从生物实验中获得的数据时,请考虑有关使用误差线的公开建议26.

图1显示了用于标记内皮尖端和柄细胞以及组织巨噬细胞的典型荧光染色结果的示例。图2显示了PECAM的典型组织化学染色,以及后脑软脑膜侧桡血管和脑室下区血管交叉点的定量分析示例;所示区域包含每0.25 mm 44个径向血管2和每0.25毫米95个交点2在脑室下血管丛。E10.5和E12.5之间的一些典型容器编号值之前已经发布1并可用于指导不同发育阶段的预期值;然而,精确的数量可能因精确的发育阶段或小鼠遗传背景而异,因此应始终使用同窝对照来评估可能的突变表型。

图3显示了新解剖的完整后脑与AP-标记的VEGF165或SEMA3A蛋白反应的示例。该分析显示AP-ligand与软脑膜侧两条桡血管的结合(图3a-c)心室侧的SVP血管(图3d-f)6VEGF165以高亲和力结合后脑血管(图3a、b和d、e)6由于内皮细胞表达多种受体,包括VEGFR2和VEGF165特异性受体NRP11,因为NRP1可以额外结合信号蛋白,SEMA3A融合蛋白也能结合后脑血管(图3c、f)6.

图5显示了E11.5后脑的血管表型,其中包含一个敲除蛋白突变,该突变允许产生VEGF120亚型,但干扰肝素/神经磷脂结合VEGF-a亚型的产生。与野生型同卵双胞胎相比,纯合子素食主义者120/120显示血管分支显著减少,血管口径增加(比较图5a、c、e和5b、d、g),如之前发布的2. The phenotype of素食主义者+/120与野生型和纯合子同卵双胞胎相比,突变体更精细,具有中等数量的血管分支和管径图5f和5e,g). 内皮尖端细胞定量中的一个常见问题在图5c-e星号表示的区域表示血管潜入后脑的深层并出现“截断”;应注意不要将这些血管碎片与新血管芽混淆,新血管芽由丝状突尖细胞领导。

补充视频2显示了对内皮细胞中NRP1缺失的后脑的解剖Cre-Lox公司产量技术Tie2-Cre;编号1fl/−后脑27这种方法延迟了由以下两个无效等位基因引起的胚胎致死编号1从E12.5到出生时间14,27,但保留了后脑血管畸形的形成,这些畸形在解剖过程中已经可见(比较补充视频1和2).

补充材料

电影1

单击此处查看。(2600万英里/加仑)

电影2

单击此处查看。(2800万英里/加仑)

补充的

单击此处查看。(440万,pdf)

鸣谢

我们感谢伦敦大学学院眼科研究所生物资源部的工作人员在小鼠饲养方面的帮助,以及伦敦大学学院眼科学研究所成像设备对共焦显微镜的维护。本手稿中描述的方案是由Wellcome Turst[095623/Z/11/Z]和MRC[项目拨款G0601093]资助的,由英国心脏基金会授予A.F.[ref.44626]和A.P.[ref.FS/10/54/28680]博士学位,由MRC授予C.H.M.[G0700020]博士学位。

缩略语清单

AP公司碱性磷酸酶
业务连续性计划5-溴-4-氯-3-吲哚磷酸
溴化铀5-溴-2′-脱氧尿苷
ddH(日/小时)2O(运行)双蒸馏H2O(运行)
数据处理中心交配后天数
欧盟委员会内皮细胞
FBS公司胎牛血清
人力资源计划辣根过氧化物酶
IB4类异凝集素B4
NBT公司4-硝基蓝四氮唑
NGS公司正常山羊血清
尼泊尔卢比1神经纤毛蛋白1
尼泊尔卢比正常兔血清
美国公共广播电视公司磷酸盐缓冲盐水
PBT公司PBS+0.1%Triton®声波风廓线仪×100
PDGF-BB公司血小板衍生生长因子B
PECAM公司血小板内皮细胞粘附分子
PFA公司多聚甲醛
第3页磷酸化组蛋白3
PI3K系列磷脂酰肌醇3-激酶
座椅模块组件平滑肌α肌动蛋白
高级副总裁脑室下血管丛
血管内皮生长因子血管内皮生长因子
血管内皮生长因子受体血管内皮生长因子受体
音量体积
重量重量

脚注

相互竞争的金融利益

作者声明,他们没有相互竞争的经济利益。

作者贡献声明

A.F.、A.P.、C.H.M.和C.R.准备了数字和补充视频.所有作者都为研究方案的制定做出了贡献,并撰写了手稿。

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