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高血压。作者手稿;2013年10月1日在PMC上市。
以最终编辑形式发布为:
2012年9月4日在线发布。 数字对象标识:10.1161/高血压AHA.112.199661
预防性维修识别码:PMC3632309型
NIHMSID公司:美国国家卫生研究院404490
PMID:22949532

α转录上调2δ-1升高动脉平滑肌细胞CAV(V)1.2遗传性高血压的通道表面表达与脑血管收缩

约翰·班尼斯特,博士,1 西蒙·布利,博士,1 达莫达兰·纳拉亚南,博士,1 坎迪斯·托马斯·盖特伍德,博士,1 帕特里克·卢兹尼,医学博士,1 朱迪思·帕丘,博士,1乔纳森·贾格尔,博士1,*

关联数据

补充资料

摘要

高血压的一个特征是动脉肌细胞电压依赖性钙升高2+(钙V(V)1.2)诱导病理性血管收缩的电流。V(V)1.2通道是包含成孔Ca的异聚络合物V(V)1.2α1带辅助α2δ和β亚单位。升高Ca的分子机制V(V)1.2高血压期间的电流和钙的潜在贡献V(V)1.2辅助亚单位尚不清楚。在这里,我们研究了α2高血压相关血管收缩的δ亚单位。

自发性高血压大鼠(SHR)高血压的年龄依赖性发展与α2δ-1和CaV(V)1.2α1脑动脉肌细胞的信使核糖核酸和蛋白质,α2δ-1增加超过CaV(V)1.2α1.其他α2高血压患者未出现δ亚型。高血压SHR患者的肌细胞和动脉显示较高的表面定位α2δ-1和CaV(V)1.2α1蛋白质,表面α2δ-1至CaV(V)1.2α1比率(α2δ-1:CaV(V)1.2α1),加利福尼亚州V(V)1.2与Wistar-Kyoto对照组相比,电流密度和非激活电流以及压力和去极化诱导的血管收缩。普瑞巴林,α2δ-1配体,不改变α2δ-1或CaV(V)1.2α1总蛋白,但归一化α2δ-1和CaV(V)1.2α1表面表达式,表面α2δ-1:CaV(V)1.2α1,加利福尼亚州V(V)1.2高血压大鼠心肌细胞和动脉的电流密度和失活以及血管收缩,以控制水平。

遗传性高血压与α2促进钙表面转运的δ-1表达V(V)1.2脑动脉肌细胞通道。这导致钙增加V(V)1.2电流密度和导致血管收缩的电流失活减少。数据还表明α2δ-1靶向是一种新的策略,可用于逆转病理性钙V(V)1.2在高血压患者中,通道贩运导致脑血管扩张。

关键词:钙通道,遗传性高血压,血管舒张,血管收缩

介绍

高血压与动脉收缩力升高有关,动脉收缩力会增加全身血压,限制器官血流,导致终末器官损伤。1高血压也是多种脑疾病的主要预测因素,包括中风、阿尔茨海默病和痴呆。高血压的一个特征性病理改变是血管平滑肌细胞(肌细胞)电压依赖性钙离子的升高2+大量涌入。2,依赖电压的L型Ca2+(钙V(V)1.2)通道是主要的Ca2+动脉肌细胞的进入途径,对多种刺激物(包括血管内压力、膜电位和血管收缩剂)的收缩性调节至关重要。48高血压相关的钙升高V(V)1.2电流导致细胞内Ca增加2+浓度([Ca2+])和血管收缩。911然而,升高动脉肌细胞钙的分子机制V(V)1.2导致血管收缩的高血压电流尚不清楚。

V(V)1.2通道是包含成孔α1带辅助α2δ和β亚基。12四个α2δ(1至4)亚单位亚型已被鉴定,每种亚单位亚单位都由不同的基因编码。13,14α2δ亚单位翻译后裂解为高度糖基化的细胞外α2和较小的δ亚单位,它们随后通过二硫键结合形成单一功能蛋白。14,15α2δ亚基是由双层跨膜δ亚基结合的膜。最近,α2δ-1被确定为对钙的功能性运输至关重要V(V)1.2α1动脉肌细胞质膜(表面)的亚单位。16迄今为止,还没有研究调查Ca的病理或疾病相关分子变化V(V)1.2辅助亚单位,包括α2δ亚单位,在阻力大小动脉的肌细胞中。此外,尚不清楚动脉肌细胞表面钙的亚单位组成V(V)1.2通道在疾病中发生改变。考虑到动脉肌细胞CaV(V)1.2高血压期间电流升高,导致血管收缩,我们测定了钙的亚单位组成V(V)1.2通道并调查α的参与2这种病理改变中的δ亚单位。911阐明控制α的分子机制2钙的δ亚基调节V(V)1.2高血压中的通道可能导致开发治疗心血管疾病的新方法。

在这里,我们使用高血压的遗传模型,即自发性高血压大鼠(SHR),来研究动脉肌细胞α2高血压的δ亚单位。我们发现,在高血压期间,α2δ-1表达增加质膜CaV(V)1.2导致血管收缩的动脉肌细胞电流。我们还确定了α2δ-1作为一种新的治疗靶点诱导高血压脑血管扩张。

方法

细胞分离和组织制备

田纳西大学健康科学中心动物护理和使用委员会审查并批准了所有使用的动物方案。通过腹腔注射戊巴比妥钠(150 mg/Kg体重,美国密歇根州迪尔伯恩Vortech Pharmaceuticals)对6周或12周龄的雄性SHR和Wistar Kyoto(WKY)大鼠实施安乐死。研究了大脑中动脉、大脑后动脉和小脑动脉(直径约100-200μm)。如前所述,从解剖的大脑动脉中酶解出肌细胞。4

血压测量

使用尾袖血压计(康涅狄格州托林顿肯特科学公司)测量清醒大鼠的舒张压和收缩压。

逆转录聚合酶链反应

如前所述,在显微镜下使用放大的斑点灯移液管对单独收集的心肌细胞进行RT-PCR,以防止其他类型的动脉壁细胞受到污染。4

定量实时PCR

使用Trizol(Invitrogen,Grand Island,NY)从大脑动脉中分离出总RNA。使用亲和脚本多温度逆转录酶(Stratagene,Clara,CA)转录cDNA。使用通用探针库(UPL)设计基因特异性引物和探针。所用引物和探针的序列以及PCR反应效率见表S1.

蛋白质分析与生物化学

蛋白质在SDS-PAGE凝胶上分离,并通过Western blotting进行分析。在75 kDa标记处切割印迹,以便同时探测上部α2δ-1和肌动蛋白的下段。然后重新检测印迹上部的钙V(V)1.2α1使用Quantity One(BioRad,Hercules,CA)软件测定蛋白质带强度。为了量化,首先将蛋白质带强度标准化为肌动蛋白,然后再标准化为适当的对照样品。

动脉表面生物素化

确定α的分布2δ-1和CaV(V)1.2α1如前所述,在表面和细胞内隔间使用亚单位蛋白,动脉表面生物素化。16

斑贴灯电生理学

全细胞钙V(V)1.2如前所述,使用全细胞斑贴灯配置在分离的心肌细胞中记录电流。16

加压动脉肌电图

如前所述,在存在和不存在尼莫地平(1μmol/L)的情况下,使用边缘检测肌电图在一系列血管内压力(20–100 mmHg)下测量内皮剥脱的动脉直径。17细胞外钾升高的直径反应+在吡那地尔(10μmol/L)、K三磷酸腺苷开沟器,也被记录下来。在这些实验中,用普瑞巴林处理动脉24小时后,也用普瑞巴林维持动脉以抑制钙V(V)1.2亚单位膜再插入。

统计分析

总结数据以平均值±SEM表示。对多个组使用配对或非配对t检验(带威尔士校正)或方差分析(ANOVA)以及学生-纽曼-凯尔斯(Newman Keuls)来确定显著性。P<0.05为显著性。在P>0.05的情况下进行功率分析,以验证样本大小足以给出>0.8的值。

展开的方法部分可用作补充文件.

结果

遗传性高血压的年龄依赖性发展与动脉肌细胞α升高相关2δ-1和CaV(V)1.2α1亚单位表达

动脉肌细胞Ca的病理改变V(V)利用大鼠高血压遗传模型研究了1.2个亚基。6周龄时,WKY和SHR大鼠的舒张压、收缩压和平均动脉压相似(图S1). 相反,在12周龄时,SHR大鼠的舒张压、收缩压和平均动脉压分别比WKY大鼠高约63、65和72 mmHg(图S1).

四个不同的α2δ亚型已被描述,α2δ-1是血压正常的Sprague-Dawley(SD)大鼠脑动脉心肌细胞中唯一表达的亚型。14,16我们检验了高血压与α变化相关的假说2阻力大小动脉肌细胞δ亚型表达。RT-PCR仅检测到α212周龄WKY和高血压SHR大鼠纯脑动脉心肌细胞中δ-1的表达(图1A). 相反,相同的引物扩增了所有α2WKY和SHR全脑δ亚型(图1A).

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α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压患者亚单位mRNA和蛋白水平升高。A、 说明α转录物RT-PCR扩增的代表性凝胶(共3个实验)212周龄WKY和SHR大鼠离体动脉肌细胞和全脑δ-1至-4。B、 α的平均定量PCR数据2δ-1和CaV(V)1.2α16周龄SHR大鼠(n=8)和12周龄SHR6大鼠(n=6)动脉中的mRNA分别归一化为Rps5和年龄匹配的WKY对照组。C、 举例说明α的Western blot2δ-1和CaV(V)1.2α1来自6周龄和12周龄WKY和SHR大鼠全动脉裂解液的蛋白质。以75kDa对印迹进行物理切割,以便探测肌动蛋白和α2δ-1/CaV(V)1.2α1.D,表明α的平均数据2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压患者的蛋白质水平升高与6周时的mRNA/蛋白质相比,表示P<0.05,#表示与Ca相比,P<0.05V(V)1.2α112周时的信使核糖核酸/蛋白质(每个年龄的每个蛋白质n=8)。

进行定量PCR以比较α2δ-1和CaV(V)1.2α16周龄和12周龄WKY和SHR脑动脉中的信息水平。筛选了8个不同的参考基因,以鉴定WKY和SHR脑动脉中mRNA水平相似的基因(表S1). WKY和SHR动脉中Rps5 mRNA水平相似,因此,Rps5被用作这些实验的参考基因(表S2). 定量PCR显示平均α2δ-1和CaV(V)1.2α16周龄WKY和SHR动脉的mRNA水平相似(图1B). 相反,α2δ-1和CaV(V)12周龄SHR的1.2 mRNAs分别是WKY动脉的2.1倍和1.5倍(图1B). 年龄依赖性高血压的发展也与α2δ-1比CaV(V)1.2α1信使核糖核酸(图1B). 这些数据表明,高血压与α2δ-1和CaV(V)1.2α1亚单位mRNA,但与其他α的出现无关2δ亚型,在动脉肌细胞中。

接下来,我们研究了遗传性高血压的年龄依赖性发展是否与α2δ-1和CaV(V)1.2α1脑动脉中的蛋白质。α2δ-1和CaV(V)1.2α16周龄WKY和SHR动脉的蛋白质水平相似(图1C、D). 6至12周的年龄不会改变α2δ-1和CaV(V)1.2α1WKY大鼠动脉中的蛋白质,但SHR动脉中的这些蛋白质增加了约2.1倍和1.4倍(图S2). 12周龄时,α2δ-1和CaV(V)1.2α1SHR中的蛋白质比年龄匹配的WKY动脉高约2.5倍和1.7倍(图1C、D). 与信息水平一致,高血压的年龄依赖性发展也增加了α2δ-1大于CaV(V)1.2α1蛋白质(图1C、D,S2系列).

总之,这些数据表明遗传性高血压与α2δ-1和CaV(V)1.2α1大脑动脉肌细胞。α2δ-1和CaV(V)1.2α1蛋白质的含量高于其各自的mRNA(图1B-D,S2系列)表明翻译后事件中高血压相关的变化也有助于钙的增加V(V)1.2高血压时通道亚单位的表达。此外,在高血压期间,α2δ-1比CaV(V)1.2α1.

高血压与α表面升高有关2δ-1和CaV(V)1.2α1动脉中的蛋白质

α2δ-1诱导钙的膜转运V(V)1.2α1SD大鼠动脉肌细胞亚单位。16因此,我们检验了以下假设:α2δ-1导致表面Ca升高V(V)1.2在高血压中的表达。表面(质膜)和细胞内α2δ-1和CaV(V)1.2α1用生物素化法测定年龄匹配的WKY和高血压SHR脑动脉中的蛋白质。表面放大α2δ-1和CaV(V)1.2α1SHR中的蛋白质分别比WKY大鼠动脉高约2.6倍和2倍(图2A、B). 总α的较大百分比2δ-1和CaV(V)1.2α1位于SHR的质膜上,而非WKY动脉(图2A、C). 在WKY动脉中2δ-1(~85%)比CaV(V)1.2α1(~77%)位于表面。相反,在SHR动脉中,α2δ-1(~93%)和CaV(V)1.2α1位于表面的(~92%)相似(图2A、C). 这些数据表明,在高血压期间,α2δ-1和CaV(V)1.2α1总蛋白转化为动脉肌细胞中这些亚单位的表面表达增加。此外,高血压与α分布的改变有关2δ-1和CaV(V)1.2α1细胞内和表面间的蛋白质。

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动脉表面α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压患者亚单位升高。A、 典型的Western blot显示两种α的表面表达增加2δ-1和CaV(V)1.2α112周龄WKY和SHR动脉中的蛋白质。在75 kDa下物理切割Blot,以便探测α2δ-1和CaV(V)1.2α1.B,平均值数据表明,α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压时动脉中的亚单位较高。C、 说明总(表面+细胞内)α百分比的平均数据2δ-1和CaV(V)1.2α1位于表面的蛋白质*表示与年龄匹配的WKY大鼠动脉中的相同蛋白质相比P<0.05,#表示与WKYα相比P<0.052δ-1(WKY和SHR分别为5–9)。

普瑞巴林减少钙的表面运输V(V)1.2通道亚单位在高血压大鼠动脉中比正常大鼠动脉更有效

普瑞巴林,α2δ-1/2配体,减少钙的表面转运V(V)神经元和动脉肌细胞中的1.2、2.1和2.2通道。14,16,1820接下来,我们研究了普瑞巴林对α2δ-1和CaV(V)1.2α1WKY和SHR脑动脉亚单位表面表达和亚单位细胞分布。在这些实验中,动脉在加入或不加入普瑞巴林的情况下培养24小时。普瑞巴林(24小时)未改变α的总蛋白2δ-1(%对照:WKY,115±9;SHR,118±20)或CaV(V)1.2α1(%对照:WKY,116±10;SHR,109±14)(图3AWKY n=4-5,SHR n=5,P>0.05)。相反,普瑞巴林降低了表面α2δ-1和CaV(V)1.2和WKY和SHR动脉中这些蛋白的细胞内水平增加(图3A、B、C,第3章). 普瑞巴林降低的质膜α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压SHR患者的SHR动脉分别是WKY对照动脉的3.1倍和1.9倍(图3C). 评估普瑞巴林对α的调节2δ-1和CaV(V)1.2计算细胞分布、表面蛋白与细胞内蛋白的比值。与中显示的数据一致图2C,α的比例较大2δ-1和CaV(V)SHR的质膜上存在1.2个亚单位,而WKY动脉中存在1.2个(图3D). 普瑞巴林诱导细胞内α2δ-1和CaV(V)SHR中1.2倍于WKY动脉(图3D).

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普瑞巴林降低α2δ-1和CaV(V)1.2α1与对照组相比,高血压大鼠动脉中的通道蛋白更有效。A、 代表性蛋白质印迹显示普瑞巴林不会改变总(全动脉)α2δ-1和CaV(V)1.2α1WKY和SHR动脉中的蛋白质。B、 说明普瑞巴林(24小时)诱导的表面和细胞内α2δ-1和CaV(V)1.2α1蛋白质。在75 kDa下切割斑点,以便探测α2δ-1和CaV(V)1.2α1.C,普瑞巴林还原表面α2δ-1和CaV(V)1.2α1SHR中的蛋白质多于WKY动脉中的蛋白质。D、 说明α的平均数据2δ-1和CaV(V)1.2α1WKY和SHR动脉中的亚单位分布及普瑞巴林的调节。E、 表面α2δ-1至CaV(V)1.2α1普瑞巴林的调节作用。所有数据中普瑞巴林浓度为100μmol/L。*表示与未经治疗的WKY相比P<0.05,#表示与未治疗的SHR大鼠动脉相比P<0.05。

高血压与α2δ-1比CaV(V)1.2α1动脉中的蛋白质(图2A、B). 我们计算了表面α的能带强度比2δ-1至CaV(V)1.2α1普瑞巴林的调节。虽然该方法无法确定亚单位化学计量比,但每个通道中装载的总蛋白是相同的,可以从相同的印迹比较SHR和WKY动脉中的该比率。平均表面α2δ-1:CaV(V)1.2α1SHR动脉和WKY动脉的频带强度比分别为~1.38和~1.06,SHR的频带强度比约为1.3倍(图3E). 普瑞巴林降低了表面α2δ-1至CaV(V)1.2α1SHR大鼠动脉的带强度比为~0.91,但WKY大鼠动脉中的带强度比率没有改变(图3E).

总之,这些数据表明普瑞巴林阻断α2δ-1和CaV(V)1.2α1亚单位在高血压大鼠动脉中比正常大鼠动脉更有效。高血压期间,表面α2δ-1蛋白的升高程度高于钙V(V)1.2α1蛋白质,导致质膜α比率增加2δ-1至CaV(V)1.2α1亚单位。普瑞巴林逆转了α表面的高度2δ-1至CaV(V)1.2α1亚单位。这些数据还表明α2δ-1对表面钙的上调至关重要V(V)1.2遗传性高血压时动脉肌细胞的通道。

α2δ-1靶向逆转钙的高血压相关修饰V(V)1.2动脉肌细胞的电流密度和失活

研究升高的α对功能的影响2δ-1的表达及α的影响2δ-1靶向,CaV(V)在年龄匹配的WKY和高血压SHR脑动脉肌细胞中测量1.2电流。平均峰值CaV(V)1.2电流密度(Ba2+作为电荷载体)在高血压SHR中为约5.3 pA/pF,而在WKY细胞中为约2.4 pA/pF,或约2.2倍(图4A、B表1). 普瑞巴林(24小时)降低钙峰值V(V)1.2 SHR细胞中的电流密度为~2.2 pA/pF,或约59%,WKY细胞中为~1.6 pA/pF,或约32%(图4A、B表1). 普瑞巴林降低峰值钙V(V)1.2 SHR肌细胞的电流密度与未处理WKY细胞的电流密度之比(图4A、B表1). 电池电容与峰值钙的关系V(V)调查了1.2电流(图4C). 当数据与线性函数拟合时,SHR的斜率为−5.41,WKY细胞的斜率为−2.40,或高出2.3倍(图4C). 普瑞巴林使SHR和WKY细胞的斜率分别降低约58%和25%(图4C). 未经处理的WKY和普瑞巴林处理的SHR细胞的斜率相似(图4C,P>0.05)。WKY细胞(16.3±0.8 pF)和SHR细胞(SHR 17.1±1.3 pF)的平均细胞电容相似,普瑞巴林未改变(WKY,18.8±1 pF;SHR 15.8±0.8 P F;比较时P>0.05),表明电流密度和斜率因Ca的变化而增加V(V)1.2通道(图4B、C).

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普瑞巴林逆转钙升高V(V)1.2高血压大鼠动脉平滑肌细胞电流。A、 代表性CaV(V)1.2对照组和普瑞巴林处理的WKY和SHR动脉平滑肌细胞(10 mmol/L Ba)的电流密度记录2+作为电荷载体)。B、 WKY细胞(n=17)、普瑞巴林处理的WKY(n=13)、SHR(n=16)和普瑞巴林处理的SHR(n=18)细胞的平均电流密度-电压关系。C、 Ca峰值线性拟合散点图V(V)1.2 WKY(n=17)、预加巴林处理的WKY细胞(n=13)、SHR(n=16)和预加巴林处理的SHR细胞(n=18)中的电流与细胞电容的关系。WKY:斜率=−2.40,r=−0.76,p=3.3×10-4。WKY+普瑞巴林:斜率=−1.79,r=−0.90,p=7.5×10-4。SHR:斜率=−5.41,r=−0.77,p=3.5×10-4。SHR+普瑞巴林:斜率=−2.25,r=−0.72,p=1.1×10-4。D、 电压依赖性钙V(V)1.2在WKY(n=13)、普瑞巴林处理的WKY细胞(n=9)、SHR细胞(n=12)和普瑞巴林处理的SHR细胞中的电流激活。E、 WKY细胞(n=17)、普瑞巴林处理的WKY(n=13)、SHR(n=16)和普瑞巴林处理的SHR(n=18)细胞的电压依赖性电流失活*表示WKY在指示电位下的显著性(P<0.05)。F、 钙的时间进程图解V(V)1.2电流(+20 mV)和急性普瑞巴林(100μmol/L)的抑制作用。WKY(对照n=8,普瑞巴林n=9),SHR(对照n=14,普瑞巴林n=6)细胞。箭头(不适用于对照)指示添加普瑞巴林的位置。所有数据中普瑞巴林浓度均为100μmol/L。*表示与未治疗的WKY相比P<0.05,#表示与普瑞巴灵治疗的WK相比P<0.05;§表示与未处理的SHR相比P<0.05。

表1

动脉肌细胞钙的特性V(V)1.2电流。括号中的数字表示实验数字。

WKY公司WKY+普瑞巴林SHR公司SHR+普瑞巴林
四、关系
峰值电流密度(pA/pF)2.40±0.15 (17)1.65±0.13 (13)*5.33±0.38 (16)*,#2.23±0.14 (16)
峰值电压(mV)10.25±0.74 (17)12.31±1.45 (13)11.09±1.03 (16)11.26±0.89 (18)
电压相关激活
V(V)1/2实际(毫伏)9.24±1.88 (12)10.70±3.72 (9)11.62±1.80 (12)11.18±3.29 (5)
坡度13.09±1.55 (12)14.56±1.66 (9)12.74±2.84 (12)10.51±1.09 (5)
电压依赖性失活
V(V)1/2不正确(毫伏)−14.23±1.57 (8)−17.20±1.28 (13)−11.33±1.90 (16)−14.71±1.15 (11)
坡度6.44±0.76 (8)8.58±1.16 (13)7.86±0.70 (16)8.09±0.69 (11)
*与WKY和
#与SHR+普瑞巴林相比,P<0.05。

半最大Ca的电压依赖性V(V)1.2电流激活(V1/2实际)未经治疗的对照组和普瑞巴林处理的WKY和SHR动脉肌细胞的斜率(k)相似(图4D表1). 半最大失活的电压依赖性(V1/2不正确)未经处理的对照组和普瑞巴林处理的WKY和SHR细胞中的k也相似(图4E表1). 相反,未经处理的SHR细胞显示出非激活性钙V(V)1.2电流,比WKY细胞大约2倍(图4A、E). 普瑞巴林(24小时)降低SHR细胞中的非激活电流,使其与WKY细胞相似(图4A、E). V(V)1.2对照组和普瑞巴林处理的WKY和SHR细胞的电流失活率(τ)相似(图S4).

除了作为α的抑制剂2δ-1诱导钙V(V)1.2通道贩运,普瑞巴林是一种弱钙V(V)1.2不会直接改变Ca的通道孔阻滞剂V(V)1.2正常血压SD大鼠动脉肌细胞的电流电压依赖性。16确定钙的减少V(V)1.2普瑞巴林处理的WKY和SHR大鼠心肌细胞的电流振幅是由钙引起的V(V)1.2孔块,我们测量了CaV(V)1.2急性浴敷普瑞巴林对未处理细胞的电流调节。急性普瑞巴林降低钙V(V)1.2 WKY电池电流增加约12%(图4F). 相反,普瑞巴林降低钙V(V)SHR心肌细胞的1.2电流约为WKY细胞的23%或1.9倍(图4F). 急性普瑞巴林诱导钙V(V)1.2在WKY(约32%抑制)和SHR(约59%抑制)细胞中,电流抑制均显著小于普瑞巴林处理24小时后所诱导的电流抑制(图4B、C、F). 结合中所示的生化数据图3这些数据表明,急性和慢性普瑞巴林抑制钙V(V)1.2通过动脉肌细胞不同机制的电流。

总的来说,数据表明遗传性高血压与α2δ-1的表达刺激Ca的表面表达V(V)1.2α1亚单位,导致钙V(V)1.2电流升高和非激活电流增加。α2δ-1靶向降低高血压相关α2δ-1诱导Ca升高V(V)1.2α1表面表达,导致钙减少V(V)1.2电流密度。α2δ-1靶向还可恢复CaV(V)1.2电流失活。

α2δ-1靶向逆转高血压患者血压升高和去极化诱导的血管收缩

α高血压相关改变的功能意义2通过测量动脉收缩力来研究δ-1信号传导。在含或不含普瑞巴林孵育24小时的WKY和SHR脑动脉中测量血管内压力(20–100 mmHg)的直径调节。在整个压力范围内,SHR动脉比WKY动脉产生更多肌源性张力(图5A、B). 普瑞巴林降低WKY和SHR动脉的肌张力,SHR比WKY动脉的肌紧张度降低更多(例如,60 mmHg时肌紧张度减少%:SHR,约41%;WKY,约28%),SHR动脉张力降低到未经治疗的WKY血管的水平(图5A、B). 尼莫地平(1μmol/L),一种电压依赖性钙2+研究了通道阻滞剂、完全扩张对照和普瑞巴林处理的WKY和SHR动脉在所有压力下(20–100 mmHg),表明肌源性张力是由钙引起的V(V)1.2通道激活(图5B). WKY(249±11μm)和高血压SHR(242±9μm)脑动脉的被动动脉直径相似(在60 mmHg下给出的值,n=10,每个,P>0.05)。

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普瑞巴林逆转高血压患者升高的压力诱导的血管收缩。A、 说明WKY(黑色)和SHR(红色)动脉血管内压力增加时稳态肌源性张力的典型轨迹。水平黑色条表示镀液K增加+从6到60 mmol/L.B普瑞巴林(24小时,100μmol/L)降低高血压大鼠动脉中由压力(20–100 mmHg)诱导的肌源性张力(填充符号)比对照组更明显。尼莫地平(1μmol/L,空符号)可消除肌源性色调。平均数据(n:WKY,6-10;WKY+普瑞巴林,6-9;SHR,6-10,SHR+普瑞巴林,6-7)。*与未治疗的WKY相比,表示P<0.05,#表示SHR+普瑞巴林与未治疗SHR相比,P<0.05。

提高细胞外钾+诱导去极化,激活电压门控钙2+通道,Ca2+内流和血管收缩。4作为研究α的功能影响的替代方法2δ-1靶向,我们研究了K+-WKY和SHR动脉中诱导的血管收缩。增加细胞外钾+从6到20、40或60 mmol/L诱导的分级血管收缩在SHR中大于WKY脑动脉(图6A、B). 普瑞巴林降低K+-SHR引起的血管收缩多于WKY动脉(图6A、B). 例如,普瑞巴林降低了平均60 mmol/L K+-SHR和WKY的收缩率分别为54%和37%(图6B). 这些数据表明α2δ-1靶向降低高血压SHR中压力和去极化诱导的血管收缩比对照WKY大鼠动脉更有效。

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普瑞巴林逆转高血压患者升高的去极化诱导的血管收缩。A、 说明直径对细胞外钾增加反应的代表性痕迹+.B,普瑞巴林(24小时,100μmol/L)降低去极化(20、40和60 mmol/L K+)-与对照组相比,高血压大鼠的动脉收缩更明显。平均数据(n:WKY,6;WKY+普瑞巴林,6;SHR,6;SHR+普瑞巴林,6)。*与未治疗的WKY相比,表示P<0.05,#表示SHR+普瑞巴林与未治疗SHR相比,P<0.05。

讨论

迄今为止,没有研究调查钙的参与V(V)1.2动脉肌细胞Ca病理升高中的通道辅助亚单位V(V)1.2高血压的电流和血管收缩。在这里,我们首次证明遗传性高血压与α转录和翻译后上调相关2阻力大小动脉肌细胞δ-1亚单位。附加α2δ-1亚基增加钙的表面转运V(V)1.2α1亚单位,在高血压中也升高。表面α随之增加2δ-1和CaV(V)1.2α1蛋白质升高钙V(V)1.2电流密度,产生非激活电流,导致血管收缩。我们还证明了α2δ-1靶向使心肌细胞α正常化2δ-1和CaV(V)1.2α1表面表达,重建CaV(V)1.2电流密度和失活,并将高血压大鼠动脉收缩力降低至对照组水平。这些数据表明α2δ-1升高CaV(V)1.2电流和CaV(V)高血压期间1.2依赖性血管收缩,并证明α2δ-1靶向治疗是逆转这些病理改变并诱导脑血管扩张的可行治疗策略。

我们的数据表明,遗传性高血压的发展与α2δ-1和CaV(V)1.2α1在动脉肌细胞中。相反,其他α2δ亚型在高血压期间没有出现,这种改变可能导致病理性CaV(V)1.2当前修改。以前的研究已经描述了钙V(V)1.2α1高血压SHR的肠系膜动脉和主动脉中的mRNA和蛋白质含量高于WKY对照组。21,22相反,血管紧张素II和低氧诱导的高血压并不改变钙V(V)1.2α1mRNA,但Ca升高V(V)1.2α1培养肠系膜动脉和新生仔猪肺动脉中的蛋白质。23,24这些发现表明高血压可能与钙的增加无关V(V)1.2α1信息,但钙的翻译后上调V(V)1.2α1蛋白质。2124在这里,我们使用SHR中高血压的年龄依赖性发展以及与WKY大鼠对照组的比较来研究α2δ-1和CaV(V)1.2α1mRNA和蛋白质。我们的数据表明,α2δ-1(~2.1倍)和CaV(V)1.2α1(~1.5倍)mRNA不能完全解释α2δ-1(~2.5倍)和CaV(V)1.2α1(约1.7倍)的蛋白质。这些数据表明转录和翻译后机制都会升高α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压时大脑动脉肌细胞中的蛋白质。

利用生物素化的一种新应用,我们最近确定了动脉α的表面到细胞内分布2δ-1和CaV(V)1.2α1正常血压大鼠的蛋白质。16基本上所有(>95%)α2δ-1和CaV(V)1.2α1正常血压SD大鼠脑动脉肌细胞表面存在蛋白质。16这里,总α的较小百分比2δ-1(~85%)和CaV(V)1.2α1(~77%)位于WKY大鼠动脉的质膜上。α略有差异的解释2δ-1和CaV(V)1.2α1SD和WKY大鼠之间的分布包括不同的大鼠品系和动物年龄(参考文献7周)。16与这里的12周相比)。确定α的细胞分布2δ-1和CaV(V)1.2α1我们比较了SHR和WKY脑动脉表面和表面表达的总蛋白百分比:细胞内蛋白比率。这两种分析方法都表明α2δ-1和CaV(V)1.2α1位于高血压大鼠动脉的质膜上,而非对照组。α转录和翻译增加的净结果2δ-1和CaV(V)1.2α1蛋白质和较高的相对表面表达提高了这些蛋白质的质膜水平。我们的数据还表明,表面α有分数偏移2δ-1:CaV(V)1.2α1在高血压期间,由于表面α升高而发生的变化2δ-1比CaV(V)1.2α1这些结果证明α2δ-1至CaV(V)1.2α1亚单位比率可以改变天然CaV(V)1.2电流特性和可能不存在刚性α2δ-1:CaV(V)1.2α1动脉肌细胞亚单位化学计量。同样可能的是,在血压正常的情况下,动脉肌细胞钙的比例V(V)1.2通道复合体可能不含α2δ-1亚单位。高血压期间,α表面升高2δ-1比Ca高V(V)1.2α1可能会增加含有α的通道的比例2δ-1. 未来的研究应旨在进一步研究天然CaV(V)1.2动脉肌细胞的通道化学计量和心血管疾病中发生的变化。总的来说,这些结果表明α2δ-1增加Ca的表面表达和功能V(V)1.2α1高血压时动脉肌细胞中的亚单位。

普瑞巴林是一种加巴喷丁类药物,用于治疗神经性疼痛、纤维肌痛和癫痫发作。25,26所有四个α2δ亚型,仅α2δ-1和-2包含完整的金属离子粘附位点和RRR基序,这些基序是加巴坦药物结合所必需的。14,20Gabapanetin还原α2从Rab-11阳性再循环内体中的δ亚单位再循环。27普瑞巴林还降低了α2δ-1和CaV(V)1.2α1正常血压SD大鼠脑动脉肌细胞中的蛋白质。16普瑞巴林没有改变总α2δ-1或CaV(V)1.2α1蛋白质。相反,普瑞巴林降低了表面α2δ-1和CaV(V)1.2α1高血压大鼠动脉中的蛋白质含量高于对照大鼠动脉,基本上使这些蛋白质的表面水平恢复到WKY的水平。普瑞巴林还降低了α2δ-1至CaV(V)1.2α1高血压大鼠动脉与WKY对照组的亚单位比率。鉴于普瑞巴林使Ca升高正常化V(V)1.2电流密度和非激活电流占WKY细胞的比例,我们的数据表明α2δ-1功能性有助于钙的增加V(V)1.2高血压患者动脉肌细胞电流。

电压依赖性钙2+当研究各种不同的高血压模型,如SHR、血管紧张素Ⅱ诱导的高血压、主动脉束带、中风型SHR、低氧诱导的肺动脉高压和高脂饮食的Osborne-Mendel大鼠时,包括肾动脉、脑动脉和肠系膜动脉在内的血管系统的心肌细胞中的电流升高。2,,7,9,21,23,24,2830V(V)1.2当使用WKY和SHR大鼠模型时,此处测量的电流密度与之前报道的大脑动脉肌细胞的电流密度一致。2,30我们的数据表明V(V)高血压大鼠动脉肌细胞的电流密度约为对照大鼠的2.2倍。相反,CaV(V)1.2电流V1/2个和V1/2不正确WKY和SHR细胞中的情况相似,与以前的报告一致。2,9,28,30一种非活性钙V(V)1.2高血压大鼠心肌细胞的电流是对照组的两倍,这种改变会显著增加钙2+稳态膜电位下的内流,从而刺激血管收缩。普瑞巴林(24小时)降低钙升高V(V)1.2电流密度和非激活电流达到对照组水平,表明这些病理改变是由于α2δ-1表面表达。我们的数据与普瑞巴林作为弱钙的作用一致V(V)1.2通道阻滞剂和α的有效慢性抑制剂2高血压大鼠动脉肌细胞δ-1表面表达。在我们之前的研究中,急性普瑞巴林降低钙V(V)SD大鼠大脑动脉肌细胞中约33%的1.2电流。16在这里,相同的急性普瑞巴林浓度降低了钙V(V)1.2 WKY大鼠心肌细胞电流约12%。我们之前的研究使用了7周龄SD大鼠,而这里在12周龄WKY大鼠心肌细胞中测量了急性普瑞巴林效应。我们的数据表明CaV(V)1.2 12周龄WKY心肌细胞的通道特性与7周龄SD大鼠心肌细胞的不同,包括钙的百分比V(V)1.2α1位于表面的蛋白质。这里的数据表明,急性普瑞巴林是一种更有效的钙抑制剂V(V)SHR中的电流比WKY心肌细胞中的电流大1.2倍。这可能是由于表面α的数量较高2δ-1亚基与高α2δ-1:CaV(V)SHR心肌细胞的比率为1.2。急性加巴喷丁也抑制电压依赖性钙2+锥体新皮质细胞中的电流,但不改变重组钙产生的电流V(V)2.1通道或内源性钙2+背根神经节神经元的通道。31,32在神经病理性疼痛模型中,α2δ-1上调,普瑞巴林慢性抑制α2δ-1转运到突触前终端,从而抑制Ca2+通道功能。19我们的数据表明,慢性普瑞巴林抑制α2δ-1诱导的钙迁移V(V)1.2α1通道亚基,从而减少CaV(V)1.2高血压时动脉肌细胞电流。

与对照组相比,血管内压力和去极化均刺激高血压大鼠动脉中更大的血管收缩。与我们的研究结果一致,压力诱导Ca2+遗传性和诱导性高血压动物模型的动脉内流和相关血管收缩更大。7,21,23,24我们发现尼莫地平在所有压力下都能消除肌张力,表明钙V(V)1.2通道活性对高血压和控制大鼠动脉张力至关重要。慢性普瑞巴林(24小时)是一种比对照大鼠动脉更有效的高血压血管扩张剂,能有效逆转病理性血管收缩。普瑞巴林也是一种弱钙V(V)1.2通道孔隙阻滞剂,可诱导轻微的血管舒张。16因此,普瑞巴林诱导的钙V(V)1.2孔堵塞也可能导致WKY和SHR动脉的血管舒张。尽管不太可能,普瑞巴林可能通过其他机制引起血管舒张,包括通过诱导膜超极化。我们的数据与这种可能性不一致,因为普瑞巴林同样降低了表面钙V(V)1.2亚基,CaV(V)1.2电流、肌原性张力和K+-诱导收缩和抑制压力-和去极化诱导的血管收缩是等效的。因此,数据表明普瑞巴林主要通过减少钙的表面表达来扩张高血压大鼠的动脉V(V)1.2肌细胞亚单位。

高血压与脑疾病风险增加有关,包括中风、阿尔茨海默病和痴呆。与血压正常的对照组相比,高血压患者和12周龄SHR大鼠的脑血流量减少。33,34电压依赖性钙2+通道阻滞剂用于治疗高血压已有二十多年的历史。35然而,Ca2+通道阻滞剂抑制钙V(V)1.2多个单元类型中的通道体内并诱发多种副作用,包括出汗、水肿和恶心。35,36因此,针对钙的替代方法的发展V(V)与电流抑制剂相比,动脉肌细胞中的1.2通道可提供显著益处。在这里,我们使用普瑞巴林作为在体外测试α概念的工具2δ-1靶向诱导高血压动物脑动脉血管舒张。这里的数据为未来旨在开发靶向α的新方法的研究奠定了基础2δ-1在动脉肌细胞中表达。我们研究中的所有数据都是通过研究调节大脑区域血流但不控制全身血压的脑动脉获得的。在用于治疗神经性疼痛、纤维肌痛和癫痫发作的剂量下,临床普瑞巴林似乎不会改变血压正常的人的全身血压。26对这一观察有几种解释。首先,有许多不同的机制控制大脑和系统动脉收缩。迄今为止,还没有研究检测α的分子特性或生理功能2系统动脉肌细胞中调节舒张压和收缩压的δ亚基。α2δ-1可能不是主α2δ亚型或α2δ亚基可能不调节钙V(V)1.2体动脉肌细胞的通道活性。普瑞巴林是α2δ-1/2配体。如果α2δ-1或α2δ-2不表达或不调节CaV(V)1.2在体动脉肌细胞的通道中,普瑞巴林不应诱导全身血管舒张或改变血压。其次,用于治疗神经病理性疼痛、纤维肌痛和癫痫发作的普瑞巴林的临床剂量可能不足以诱导血管舒张体内加巴喷丁是一种低亲和力的普瑞巴林类似物,通过系统L中性氨基酸转运体进入细胞。32动脉肌细胞摄取普瑞巴林的效率可能不如神经元。体内,细胞内心肌细胞普瑞巴林浓度可能低于获得的浓度在体外改变Ca的V(V)1.2功能。第三,很多体内机制,包括压力感受器或肾素-血管紧张素系统介导的机制,可以补偿普瑞巴林诱导的全身血管舒张,导致血压无净变化。第四,我们的数据表明普瑞巴林更有效地抑制钙V(V)1.2α1高血压大鼠脑动脉肌细胞亚单位运输量高于正常血压大鼠。体内普瑞巴林对高血压患者可能是一种更有效的血管扩张剂,而对已获得临床全身血压测量值的血压正常者则影响较小。我们的研究首次证明动脉肌细胞α2高血压患者δ-1功能上调,α2δ-1靶向治疗是一种减少高血压病理性血管收缩的新方法。数据还表明α2δ-1靶向可以改变脑动脉收缩性,为将来研究使用多种其他α2δ-1靶向策略,包括RNA干扰和遗传模型,以研究α2其他血管床动脉中的δ亚单位体内.

总之,我们首次发现α2δ-1升高CaV(V)1.2α1动脉肌细胞表面表达导致压力和去极化诱导的血管收缩。我们的数据还表明2δ-1靶向是逆转钙升高的新方法V(V)1.2高血压患者动脉肌细胞通道表面表达与血管收缩。

视角

高血压的一个特征是电压依赖性钙升高V(V)1.2诱导血管收缩的动脉肌细胞中的电流。1提高动脉肌细胞钙的分子机制V(V)1.2高血压电流和辅助亚单位在这种病理改变中的意义尚不清楚。我们发现遗传性高血压的发展与α转录和翻译后上调有关2脑动脉肌细胞δ-1亚单位。α的增加2δ-1亚基升高CaV(V)1.2通道表面表达,CaV(V)1.2电流密度和血管收缩。α2使用普瑞巴林α靶向δ-12δ-1配体,还原α2δ-1和CaV(V)1.2表面表达和CaV(V)1.2心肌细胞电流密度。普瑞巴林也能扩张高血压大鼠的脑动脉。我们的研究首次证明α2高血压时脑动脉肌细胞δ-1亚基上调,导致心肌细胞Ca病理性升高V(V)1.2电流和血管收缩。我们还确定了α2δ-1是一种潜在的新的治疗高血压脑血管扩张的靶点。

新颖性和意义

1) 有什么新功能?

  • 我们首次证明遗传性高血压与α转录和翻译后上调相关2电阻大小脑动脉肌细胞中增加钙的δ-1亚单位V(V)1.2α1亚单位表面运输,从而提高CaV(V)1.2电流密度和动脉收缩性。
  • α的药理靶向性2δ-1抑制钙的病理性升高V(V)1.2高血压时的电流密度和脑动脉收缩性。本研究确定了α2δ-1作为高血压脑血管舒张的新治疗靶点。

2) 相关内容是什么?

  • α上调2δ-1亚基对钙的升高至关重要V(V)1.2遗传性高血压的电流密度和脑血管张力。
  • α的药理靶向性2δ-1可以逆转表面Ca的病理性升高V(V)1.2通道,CaV(V)1.2脑动脉肌细胞的电流密度和血管收缩。

3) 总结

  • α上调2遗传性高血压时δ-1亚单位增加CaV(V)1.2通道表面表达与钙V(V)1.2电流密度,导致血管收缩。α2δ-1靶向逆转钙的病理性增加V(V)1.2通道表面表达,CaV(V)1.2脑动脉的电流密度和收缩性。

补充材料

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致谢

我们感谢玛丽·丹尼斯·利奥博士对手稿的批判性阅读。

资金来源

这项工作得到了NIH向J.H.J。

非标准缩略语和缩写

脚注

利益冲突/披露

没有。

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