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临床投资杂志。2013年3月1日;123(3): 1096–1108.
2013年2月22日在线发布。 doi(操作界面):10.1172/JCI66700
PMCID公司:项目经理3582144
PMID:23434591

抑制肌成纤维细胞的机械敏感性信号改善实验性肺纤维化

关联数据

补充材料

摘要

基质硬化和肌成纤维细胞对凋亡的抵抗是涉及不同器官系统的慢性纤维化疾病的主要特征。改变的组织生物力学和维持进行性纤维化的细胞信号之间的相互作用尚不明确。在本研究中,我们使用体内外方法定义了一种涉及Rho/Rho激酶(Rho/ROCK)、肌动蛋白细胞骨架重塑和机械敏感性转录因子巨核细胞白血病1(MKL1)的机械传递途径,该转录因子协调调节肌成纤维细胞的分化和存活。在实验性肺纤维化小鼠模型和特发性肺纤维化(IPF)人类受试者中,我们观察到Rho/ROCK通路激活,肌动蛋白细胞骨架聚合增强,MKL1细胞质-核穿梭。通过下调BCL-2和激活固有线粒体凋亡途径的机制,用ROCK抑制剂fasudil对该机械传导途径进行药理学破坏,从而诱导肌成纤维细胞凋亡。法舒地尔治疗肺损伤炎症后纤维化阶段或基因消融Mkl1型保护小鼠免受实验性肺纤维化。这些研究表明,以肌成纤维细胞中的机械敏感性信号为靶点触发内在凋亡途径可能是治疗纤维化疾病的有效途径。

介绍

纤维化疾病包括一组病因已知和未知的多种疾病,这些疾病影响多器官系统并导致显著的发病率和死亡率(1). 肌成纤维细胞是以持续或进行性纤维化为特征的纤维化疾病中的关键效应细胞(1). 肌成纤维细胞还通过促进伤口闭合和ECM蛋白合成参与正常伤口愈合(4). 肉芽组织中肌成纤维细胞的明显消失预示着导致正常伤口愈合的修复反应的终止(1,5,6). 这种消失可能涉及肌成纤维细胞向静止祖细胞表型的去分化(7)或清除凋亡或衰老的肌成纤维细胞(810). 相反,损伤组织中肌成纤维细胞的持续存在导致非溶解性和进行性纤维化,如人类特发性肺纤维化(IPF)(11).

肌成纤维细胞获得与平滑肌细胞相似但不相同的收缩活性(12,13). 肌成纤维细胞的收缩力增强是肌成纤维纤维细胞分化的重要表型特征(5,14,15). 然而,肌成纤维细胞的收缩性是否能相互调节其分化和命运,目前尚不清楚。最近的研究表明,肌成纤维细胞收缩提供了一种前馈机制,通过将机械刺激转化为成纤维信号来维持肌成纤维细胞表型,主要是通过激活潜在的TGF-β的外源性机械转导(1619). 相比之下,我们最近发现了一种内在的机械转导途径,在该途径中,巨核细胞白血病1(MKL1)将来自肺成纤维细胞收缩的机械刺激转化为促进成纤维细胞向肌成纤维细胞分化的成纤维细胞核信号,以响应基质硬化(20). 在本研究中,我们研究了肌成纤维细胞收缩性在调节肌成纤维纤维细胞分化和命运中的作用,以响应生化(即TGF-β1)和生物力学(即基质硬化)刺激。

Rho激酶(ROCK)家族成员包括ROCK1(也称为ROKβ或p160ROCK,ROCK2又称为ROKα),是由Rho GTPases激活的丝氨酸/苏氨酸激酶。ROCKs调节重要的细胞功能,包括增殖、迁移、粘附和凋亡/存活(21). ROCK介导的效应是由下游靶点的磷酸化引起的,其中许多与细胞收缩性、肌动蛋白细胞骨架组织、应力纤维形成和局部黏附组装的调节有关(22). ROCK1缺乏的小鼠在压力超负荷下可防止心脏纤维化(23,24). 这种保护作用可能是心脏成纤维细胞对生物力学应力的感知和/或反应受损的结果。ROCK抑制剂正在开发中,用于治疗多种心血管疾病(25). 在使用气管内博莱霉素的肺损伤模型中,同时给予ROCK抑制剂Y-27632抑制中性粒细胞和巨噬细胞浸润以及成纤维细胞增殖和迁移(26). 然而,这种实验设计限制了对ROCK抑制的抗纤维化(相对于抗炎)作用潜在疗效的解释;重要的是,靶向ROCK通路调节肌成纤维细胞分化和命运的生物力学信号的作用尚不明确。

Fasudil是一种小分子ROCK抑制剂,在日本已被批准用于治疗脑血管痉挛(27). 法舒地尔由两个官能团组成,一个是异喹啉环,另一个是高哌嗪环,通过磺胺连接剂连接(28). 它通过在ROCK激酶结构域的N端和C端叶之间的疏水间隙与ATP结合竞争来抑制ROCK(29). 具体来说,高哌嗪环连接活性残基聚集的缝隙入口,而平面异喹啉环插入规范腺嘌呤结合囊中(29).

在本研究中,我们旨在建立一种证据,即靶向调节肌成纤维细胞分化和促进肌成纤维纤维细胞存活的机械敏感性信号通路可能是一种有效的抗纤维化治疗策略。我们在体内外测试了法舒地尔对肌成纤维细胞分化和存活的调节作用。我们的发现有力地支持了机械转导途径的作用,该途径涉及Rho/ROCK途径、增强的肌动蛋白细胞骨架聚合和MKL1在持续的肌成纤维细胞活化中的作用。本研究还发现了一个新的MKL1转录靶点(BCL-2),该靶点可促进肌成纤维细胞存活。

结果

法舒地尔在体内外诱导肺肌成纤维细胞凋亡,而正常肺成纤维细胞不易受到法舒地尔诱导的细胞死亡的影响。

肌成纤维细胞凋亡预示着组织损伤修复反应的终止(8)肌成纤维细胞对凋亡的抵抗与纤维化的持续存在有关(30). 为了确定ROCK抑制剂法舒地尔对体外培养的肺肌成纤维细胞和正常肺成纤维细胞凋亡的影响,我们从IPF患者的肺和失败的供体肺中分离(myo)成纤维细胞。通过α-SMA的表达鉴定肌成纤维细胞(图(图1A)。1A) ●●●●。在24小时和48小时,法舒地尔治疗显著增加了α-SMA阳性肺肌成纤维细胞中凋亡细胞的数量,而正常肺成纤维细胞对法舒地勒的凋亡诱导作用不敏感(图(图1,1、A和B)。为了确定法舒地尔对从TGF-β1治疗的正常肺成纤维细胞分化而来的肌成纤维细胞凋亡的影响,我们在TGF-。通过形成α-SMA阳性应力纤维,成纤维细胞向肌成纤维细胞分化明显(图(图1A)。1A) ●●●●。与IPF肌成纤维细胞类似,法舒地尔治疗可诱导大多数来源于TGF-β1治疗的正常成纤维细胞的肌成纤维纤维细胞发生凋亡(图(图1,1、A和B)。为了确定法舒地尔是否在体内诱导肌成纤维细胞凋亡,我们通过气管内滴注化疗药物博莱霉素来损伤小鼠的肺部。对照组小鼠给予生理盐水。在博莱霉素损伤后第14-27天(即炎症后纤维化阶段),小鼠每天腹腔注射25 mg/kg法舒地尔或PBS作为对照。第28天采集小鼠肺部。原位TUNEL和与α-SMA共染显示,在接受PBS的博莱霉素损伤小鼠中,细胞凋亡主要局限于肺泡衬里上皮,而纤维化区域的间质α-SMA阳性肺细胞大多具有抗凋亡性(图(图1,1、C和D)。相反,法舒地尔对受伤小鼠的治疗导致肺泡壁内出现TUNEL阳性、α-SMA表达细胞(图(图1,1、C和E)。细支气管和肺动脉中的平滑肌细胞在对法舒地尔的反应中没有发生显著的凋亡(补充图1;本文在线提供的补充材料;doi:10.1172/JCI66700DS1号机组). 这些数据表明,法舒地尔治疗选择性地促进肌成纤维细胞在体内外发生凋亡。

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法舒地尔在体内外均可诱导肌成纤维细胞凋亡,而正常肺成纤维细胞不易受到法舒地尔诱导的细胞死亡的影响。

(A类)从IPF患者肺部分离的肌成纤维细胞(n个=8)和非IPF对照受试者的成纤维细胞(失败的供体;n个=6)在存在或不存在25μM法舒地尔(Fasu)的情况下培养24-48小时。对照组成纤维细胞(Ctrl FBs)用4 ng/ml TGF-β1(Tβ1)和/或法舒地尔处理。TUNEL(绿色)和α-SMA(红色)双重染色;细胞核用DAPI(蓝色)染色。共聚焦荧光图像叠加显示凋亡的肌成纤维细胞。比例尺:20μM。(B类)凋亡细胞(即TUNEL阳性)被量化并表示为总细胞的百分比。每个条件下至少计数300个细胞**P(P)< 0.01, ***P(P)与PBS相比<0.001;##P(P)与TGF-β1相比<0.01。(C类E类)用生理盐水(Sal)或博来霉素(Bleo)与PBS或法舒地尔联合治疗的小鼠的冷冻肺组织切片进行TUNEL、α-SMA和细胞核染色,如图所示A类博莱霉素加PBS和博莱霉素+法舒地尔图像中方框区域的高倍视图如所示D类E类分别(放大×4至×5倍)。比例尺:50μM。

法舒地尔通过下调BCL-2表达诱导肺肌成纤维细胞凋亡。

ROCK途径调节肌动蛋白动力学,这可能通过线粒体途径影响细胞凋亡敏感性(21). 细胞色素的释放c(c)线粒体是激活固有凋亡途径的关键步骤(31). 我们首先研究了法舒地尔是否诱导线粒体细胞色素的激活c(c)释放。法舒地尔治疗IPF(myo)成纤维细胞诱导细胞色素的时间依赖性释放c(c)来自线粒体(图(图2A)。2A) ●●●●。细胞色素水平下降c(c)法舒地尔治疗后8~24h,观察线粒体内细胞分数;细胞色素水平c(c)在同一时间段内,细胞溶质分数增加。

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Fasudil通过下调BCL-2促进肌成纤维细胞凋亡。

(A类)用25μM法舒地尔治疗IPF肺肌成纤维细胞24小时。在指定的时间点收集细胞裂解物。细胞色素释放c(c)通过细胞色素水平的变化评估线粒体的(Cyto-c)c(c)线粒体(Mito)和细胞质(Cyto)部分。VDAC和GAPDH分别用作线粒体和细胞质蛋白的负荷控制。(B类)用0–50μM法舒地尔处理IPF肺肌成纤维细胞24小时。的相对水平BCL2级,Bcl-xL公司、和Mlc-1型实时RT-PCR检测mRNA。18秒rRNA被用作内部参考对照。数据为3个单独实验的平均值±SD。(C类)用免疫印迹法测定BCL-2、BCL-xL和Mlc-1(治疗24小时后)的蛋白水平。GAPDH被用作负荷控制。(D类)用25μM法舒地尔或等量PBS处理IPF肺肌成纤维细胞24小时。免疫印迹分析测定caspase 9和caspase 3的裂解。GAPDH被用作负荷控制。用比色法测定半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶活性。数据为3个独立实验的平均值±标准差。(E类)通过免疫印迹分析测定IPF肌成纤维细胞和非IPF对照成纤维细胞BCL-2蛋白的组成性表达。GAPDH被用作负荷控制。使用ImageJ进行密度测定。BCL-2的相对密度归一化为GAPDH。数据为平均值±SD(n个=每组4人)*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01.

B细胞淋巴瘤2(BCL-2)是控制线粒体外膜通透性的BCL-2家族的原型成员,已知其抑制细胞色素的释放c(c)来自线粒体(32). 我们接下来试图确定法舒地尔是否调节肺肌成纤维细胞中BCL-2的表达。尽管法舒地尔在24小时后以剂量依赖性方式下调了IPF肺肌成纤维细胞BCL-2的mRNA和蛋白表达,但BCL-2家族另外2个成员BCL-xL和Mlc-1的mRNA及蛋白水平不受法舒地勒治疗的影响(图(图2,2、B和C)。此外,法舒地尔诱导的BCL-2表达下调与caspase 9和caspase 3的激活有关,如前酶裂解和酶活性增加所证明的(图(图2D)。2D) 。Fasudil没有激活caspase 8,这是死亡受体介导的外源性凋亡途径的下游效应器(补充图2)。总之,这些结果表明,法舒地尔介导了BCL-2表达的下调,并激活了固有的线粒体凋亡途径。

与法舒地尔对IPF肌成纤维细胞的促凋亡作用相反,该ROCK抑制剂不会使对照成纤维细胞对线粒体凋亡途径的激活敏感,因为法舒地l治疗不会诱导细胞色素c(c)释放、调节BCL-2蛋白表达或激活caspase 9/3(补充图3)。因此,法舒地尔通过下调BCL-2表达和激活固有线粒体凋亡途径选择性诱导肌成纤维细胞凋亡。为了确定在人IPF肌成纤维细胞中这种生存前BCL-2通路是否构成性上调,我们对非IPF对照成纤维细胞和IPF肌纤维细胞的细胞裂解物进行了免疫印迹分析,后者表达的BCL-2水平显著升高(图(图22E) ●●●●。

Fasudil通过MKL1介导的内在机械转导的失活来下调BCL-2的表达。

MKL1是一种肌动蛋白动力学传感器和SRF辅激活子,在许多纤维化前基因的激活中起着关键作用(20,3338). 当G-actin聚合成F-actin时,MKL1从G-actin释放并进入细胞核,在那里它与SRF结合并靶向启动子区的CArG共有序列以激活基因转录(38). 生物信息学搜索显示,在人类近端控制区有2个CArG盒、盒1(约-565至-558 bp)和盒2(约-1190至-1181 bp)BCL2级基因。确定fasudil-regulatedBCL2级MKL1介导了肺肌成纤维细胞中的基因表达,我们比较了IPF肺肌成细胞和对照肺成纤维细胞的MKL1-细胞质-核穿梭。MKL1亚细胞定位分析表明,与对照细胞相比,IPF肺肌成纤维细胞在核组分中表达更高水平的MKL2(图(图3A)。A) ●●●●。G-actin和F-actin含量分析表明,与对照肺成纤维细胞相比,肺肌成纤维细胞在总肌动蛋白池中含有更多的F-actin(图(图3B)。B) ●●●●。发现肺肌成纤维细胞和对照肺成纤维细胞中的总肌动蛋白水平相等(补充图4)。这些数据表明,F-actin聚合增加与IPF肺肌成纤维细胞中MKL1核信号的组成性激活有关。

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Fasudil下调BCL-2表达是通过MKL1介导的内在机械传导失活实现的。

(A类)通过亚细胞分离和免疫印迹测定MKL1在IPF肺肌成纤维细胞和对照成纤维细胞中的亚细胞分布。层蛋白A/C和GAPDH分别用作核酸和细胞质蛋白的负载控制。(B类)通过免疫印迹和密度分析测定IPF肺成纤维细胞和对照成纤维细胞中的F-actin(F)和G-actin(G)含量。(C类D类)IPF肌成纤维细胞和对照成纤维细胞用PBS或25μM法舒地尔处理24小时。(C类)MKL1亚细胞定位,如A类. (D类)F-actin和G-actin含量,按B类. (E类)MKL1-SRF复合物与BCL2级启动子通过定量ChIP进行定量。数据为3个单独实验的平均值±SD。(F类)WT和3突变人类BCL2级启动子:CArG box1(b1 mut)、CArG box 2(b2 mut)或box1和box2(b1&2 mut)。将启动子报告子转染到IPF肌成纤维细胞中,并用PBS或25μM法舒地尔处理24小时。通过荧光素酶分析测定启动子活性。数据为三个单独实验的平均值±SD,每个实验一式三份。EV,空矢量。(G公司)用PBS或25μM法舒地尔处理IPF肌成纤维细胞,加入或不加入200 nM茉莉糖苷(Jas)24小时。在法舒地尔治疗前,用组成活性MKL1(caMKL1)或空载体转染一组细胞。免疫印迹法检测BCL-2和GAPDH蛋白水平。(H(H))IPF肌成纤维细胞在1μM latrunculin B(LatB)或1μM CCG-1423(CCG)存在或不存在下培养24小时。用dnMKL1表达质粒或空载体转染细胞亚群。免疫印迹法检测BCL-2和GAPDH蛋白水平*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01.

在IPF肺肌成纤维细胞中,法舒地尔治疗降低了核组分中MKL1的水平,同时增加了细胞质中MKL2的表达(图(图3C),C) ,这表明法舒地尔在“患病”细胞中“失活”组成型MKL1核信号传导。法舒地尔治疗后,在对照肺成纤维细胞中未观察到MKL1亚细胞定位的明显变化。尽管法舒地尔显著降低了肺肌成纤维细胞中的F-actin含量,但在正常肺成纤维细胞内,法舒地尔治疗后仅观察到F-actin的含量略有下降(图(图3D)。D) 。这些数据表明,法舒地尔抑制肺肌成纤维细胞中的F-actin聚合,并使MKL1信号激活失活。

进一步确定MKL1核信号的fasudil失活是否与观察到的BCL2级基因表达,我们进行了定量ChIP分析,以检查法舒地尔对MKL1-SRF复合物与BCL2级发起人。本构富集BCL2级SRF抗体中的启动子DNA——IPF肌成纤维细胞的免疫沉淀染色质被法舒地尔抑制(图(图3E) ●●●●。

接下来,我们确定法舒地尔是否诱导MKL1-SRF与BCL2级启动子抑制BCL2级启动子活性。1096 bp WT人类近端BCL2级启动子报告子和3个在特定MKL1-SRF-binding DNA序列(CArG box1、CArG box2或box1和box2两者)存在突变的突变启动子报告员被转染到肺肌成纤维细胞中(图(图3F)。F) ●●●●。转染WT的细胞内BCL2级启动子报告者,fasudil显著降低荧光素酶的表达(图(图3F),F) 这表明法舒地尔抑制BCL2级启动子活性。CArG box1的突变既没有降低组成型BCL2级启动子活性或消除法舒地尔对此活性的抑制(图(图3F),F) 这表明它不参与BCL-2调节。CArG box2突变以及box1和box2组合基线降低BCL2级肺肌成纤维细胞中的启动子活性(图(图3F),F) 这表明组成型启动子活性依赖于MKL1-SRF。总的来说,这些结果表明CArG盒2(约为-1190至-1181 bpBCL2级启动子)负责MKL1依赖的本构激活BCL2级肺肌成纤维细胞的基因表达。这些数据表明fasudil下调BCL2级通过抑制MKL1-SRF复合物与CArG盒2的结合实现基因表达。

F-肌动蛋白稳定剂茉莉酸激酶内酯处理MKL1的强迫核移位(38)或过表达组成活性(即核)MKL1(33)挽救法舒地尔下调肺肌成纤维细胞BCL-2表达(图(图3G)。G) ●●●●。相反,通过用latrunculin B破坏F-actin聚合抑制MKL1核信号(39),阻止MKL1-SRF复合物绑定到BCL2级CCG-1423启动子(40)或显性负性MKL1(dnMKL2)过度表达(33)肺肌成纤维细胞中BCL-2表达下调(图(图3H),H) ,效果与法舒地尔治疗相当。综上所述,这些数据表明,法舒地尔下调肺肌成纤维细胞BCL-2表达至少部分是通过激活肌动蛋白细胞骨架依赖的MKL1核信号介导的。

法舒地尔预防肺成纤维细胞向肌成纤维细胞分化,以应对TGF-β1和基质硬度。

成纤维细胞向肌成纤维细胞的分化以α-SMA表达和增强收缩活性为特征(4). 虽然成纤维细胞因子/生长因子已被公认为成纤维细胞向肌成纤维细胞分化的促进剂,但直到最近才认识到ECM的机械特性(即基质硬度)是肌成纤维组织分化的重要调节器(20,41). 因此,我们试图确定法舒地尔是否阻断肺成纤维细胞向肌成纤维细胞分化,以响应TGF-β1和基质硬度。TGF-β1和/或基质硬化在有或无法舒地尔的情况下诱导成纤维细胞向肌成纤维细胞分化。定量实时PCR和免疫印迹分析表明,TGF-β1和基质硬化单独或联合促进α-SMA的mRNA和蛋白表达显著增加,表明肌成纤维细胞分化,而法舒地尔在这些条件下消除了α-SMA蛋白和mRNA表达的诱导(图(图4,4、A和B)。共聚焦免疫荧光显微镜显示TGF-β1和/或基质硬化促进α-SMA掺入应力纤维;用fasudil阻断α-SMA–正应力纤维形成共同处理,以响应TGF-β1和基体硬化(图(图4C)。4C) ●●●●。这些数据表明,法舒地尔能够阻断来自调节肌成纤维细胞分化的生化(TGF-β1)和生物力学(基质硬度)线索的整合信号。

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Fasudil抑制肺成纤维细胞向肌成纤维细胞分化,以应对TGF-β1和基质硬化。

(A类)将正常人肺成纤维细胞培养在软(0.5 kPa)和硬(20 kPa)PA凝胶上,加入PBS、25μM法舒地尔、4 ng/ml TGF-β1或法舒地尔加TGF-。α的相对水平-斯马实时RT-PCR检测mRNA。18秒rRNA被用作内部参考对照。条形图是3个单独实验的平均值±SD。(B类)免疫印迹法测定α-SMA和GAPDH蛋白水平。(C类)通过共焦免疫荧光双重染色法检测α-SMA(绿色)和F-actin(红色)在应激纤维中的掺入。细胞核用DAPI(蓝色)染色。比例尺:50μm。(D类)磷酸化(p-)和总MLC的表达20免疫印迹法检测GAPDH。(E类)成纤维细胞的收缩性通过三维胶原凝胶法进行评估。柱状图是三个单独实验的平均值±SD,每个实验重复三次*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, ***P(P)< 0.001.

(肌)成纤维细胞的收缩性与肌球蛋白轻链(MLC)的磷酸化有关20) (4). 我们检测到最高水平的MLC20生长在经TGF-β1处理的硬基质上的成纤维细胞磷酸化,然后是生长在未经处理的硬基体上的成细胞,最后是生长在经转化生长因子-β1处理过的软基质上的纤维细胞;法舒地尔治疗抑制了这些对可溶性和基质信号的反应(图(图4D)。4D) 。在三维胶原凝胶系统中评估的收缩性功能测量结果表明,法舒地尔抑制了基线和TGF-β1诱导的收缩性(图(图4E)。4E) ●●●●。总之,这些数据表明,法舒地尔抑制了可溶性(TGF-β1)和基质(硬度)信号诱导的肌成纤维细胞分化(通过生化、形态学和功能参数测量)。

Fasudil通过防止MKL1核转位来抑制肌成纤维细胞分化。

为了确定MKL1在fasudil-调节的肌成纤维细胞分化中对TGF-β1和/或基质硬化的反应中的作用,我们要么过度表达核MKL2,要么添加茉莉花碱内酯迫使MKL1进入细胞核(20). MKL1的强制核定位消除了fasudil对肺成纤维细胞中α-SMA表达的抑制,以应对TGF-β1和基质硬化(补充图5A)。此外,latrunculin B对肌动蛋白聚合的抑制或CCG-1423对MKL1-SRF相互作用的破坏阻断了TGF-β1和基质硬化诱导的肺成纤维细胞中α-SMA的表达(补充图5B),与fasudil的作用类似。总之,这些数据表明,法舒地尔通过阻断MKL1核转位抑制肺成纤维细胞向肌成纤维细胞的分化。

RhoA/ROCK信号在人IPF和博莱霉素损伤诱导的小鼠肺纤维化中被激活。

MLC公司20和肌球蛋白磷酸酶靶向亚单位1(MYPT-1)是ROCK特异性底物(4244). 此前,我们报道了MLC的磷酸化20人IPF成纤维细胞病灶中丝氨酸19残基增加(45). 这里,使用检测MLC的抗体20只有当苏氨酸18和丝氨酸19双重磷酸化时,我们才证明MLC的双重磷酸化20在人IPF的成纤维细胞病灶中(图(图5A)。5A) ●●●●。此外,我们在博莱霉素诱导的肺损伤小鼠的活动性纤维化区域中证明了MYPT-1磷酸化增加(图(图5A)。5A) ●●●●。法舒地尔(25 mg/kg/d腹腔注射)阻断了纤维化小鼠肺中MYPT-1的磷酸化(图(图5A),5A) 验证法舒地尔对博莱霉素诱导的小鼠肺纤维化中ROCK信号的抑制作用。从博来霉素损伤后的IPF肺和小鼠肺中分离的(Myo)成纤维细胞与各自的对照相比,表现出高的组成型ROCK活性,如基于ELISA的ROCK活性测定所示(图(图5B)。5B) ●●●●。埃兹林磷酸化的免疫印迹分析通过567/根素通过564/莫西因通过558(ERM),一组ROCK特异性底物,在质膜和肌动蛋白细胞骨架之间起连接作用(42,46),表明小鼠和人类纤维化肺成纤维细胞中磷酸化ERM的基线水平较高(图(图5C)。5C) ●●●●。基于GTP-结合(即活性)RhoA的亲和沉淀,使用谷胱甘肽S-转移酶-Rhotekin(GST-RBD)融合蛋白和免疫印迹分析进行的Rhotein下拉分析表明,从纤维化肺分离的(肌)成纤维细胞表达的活性RhoA水平高于从对照未受损肺分离的细胞(图(图5D)。5D) 。这些数据表明,RhoA/ROCK信号在体内肺纤维化以及从纤维化肺分离的(肌)成纤维细胞中被激活。

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RhoA/ROCK信号在人IPF和博莱霉素诱导的肺损伤小鼠的活动性纤维化区域以及从纤维化肺分离的(肌)成纤维细胞中增强。

(A类)非IPF对照受试者的石蜡包埋肺组织切片(n个=3)和IPF患者(n个=5)对磷酸化MLC进行免疫组织化学染色20.生理盐水或博莱霉素处理小鼠的冷冻小鼠肺组织切片(n个=5个/组)对α-SMA(红色)和磷酸化MYPT-1(绿色)进行双重染色。细胞核用DAPI染色。重叠共聚焦显微镜图像以显示MYPT-1磷酸化与纤维化的相关性。箭头表示相对正常的肺部区域;箭头表示肺纤维化区域。比例尺:50μm;200μm(IPF面板中方框区域的高放大视图)。用免疫印迹法测定小鼠肺匀浆中磷酸化和总MYPT-1的水平。GAPDH用于装载控制。数据为平均值±标准差(n个=每组5人)。(B类)从IPF患者肺部分离的(Myo)成纤维细胞(n个=8),非IPF对照受试者(n个=6),博莱霉素治疗小鼠(n个=8)和盐处理小鼠(n个=8)使用比色法进行ROCK活性分析。数据为平均值±标准偏差(C类)通过密度分析测定分离(肌)成纤维细胞磷酸化与总ERM的相对蛋白水平。数据为平均值±SD(n个=6或8)。显示了具有代表性的免疫印迹。(D类)密度分析法测定分离(肌)成纤维细胞中活性RhoA水平(用GAPDH标准化)。数据为平均值±SD(n个=每组8个)。显示了具有代表性的免疫印迹*P(P)< 0.05, **P(P)< 0.01, ***P(P)< 0.001.

法舒地尔治疗或MKL1缺乏可保护博莱霉素损伤引起的肺纤维化。

为了确定法舒地尔是否保护小鼠免受博莱霉素损伤诱导的肺纤维化,以及该保护作用是否与阻断MKL1介导的内在机械传导C57BL/6 WT有关,Mkl1型–/–、和Mkl1型+/+气管内滴注博莱霉素对小鼠造成肺损伤。同时,一组C57BL/6小鼠每天通过腹腔注射接受法舒地尔或PBS对照;为了更明确地针对纤维化和早期炎症反应,在博莱霉素损伤后14天开始给药法舒地尔,为期2周。我们的数据显示,在炎症后肺修复纤维化阶段使用法舒地尔治疗可以消除纤维化反应,这可以通过肺三色染色来评估胶原、全肺羟脯氨酸含量和肺匀浆中α-SMA蛋白的诱导(图(图6,6,A–C)。与…对比Mkl1型+/+老鼠,Mkl1型–/–通过相同的终点测量,小鼠的纤维化反应显著减少(图(图6,6,D–F)。总的来说,这些数据表明,即使给已建立纤维化的小鼠服用法舒地尔,也可能通过破坏肌成纤维细胞的收缩性和MKL1介导的内在机械传导来介导抗纤维化作用。

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用法舒地尔或基因缺失进行炎症后治疗Mkl1型保护小鼠免受博莱霉素损伤诱导的肺纤维化。

(A类C类)C57BL/6小鼠以5U/kg的剂量气管内给予博来霉素。对照小鼠给予等量的生理盐水。第14天,小鼠在14天内以25 mg/kg/d的剂量腹腔注射法舒地尔。对照组小鼠注射等量PBS。28天时采集肺组织,并进行Masson三色胶原染色(A类),羟脯氨酸含量测定(B类)α-SMA表达的免疫印迹分析(C类). (D类F类)Mkl1型–/–Mkl1型+/+如上所述,给小鼠注射博莱霉素或生理盐水。第28天采集小鼠肺组织并进行Masson三色染色(D类),羟脯氨酸含量测定(E类),和α-SMA表达分析(F类). 图表为平均值±SD(n个= 5–7). 显示了具有代表性的免疫印迹。比例尺:100μm**P(P)< 0.01; ***P(P)< 0.001.

讨论

肌成纤维细胞是纤维生成过程中的关键效应细胞,并被认为来自多种来源(47,48). 无论起源如何,利用肌成纤维细胞独特的生物力学收缩信号及其在受损组织中延长生存期的治疗策略可能对晚期纤维化疾病最有效。在这项研究中,我们首次证明了机械敏感性Rho/ROCK通路的治疗靶向性同时改变了肌动蛋白细胞骨架动力学、MKL1易位/激活以及促纤维化和促生存基因的调节(图(图77).

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通过靶向(myo)成纤维细胞收缩性和用ROCK抑制剂MKL1介导的内在机械转导抑制肌纤维母细胞表型和肺纤维化。

在细胞外生物力学(如基质硬度)和生物化学(如活性TGF-β1)刺激下,肺成纤维细胞进行肌动蛋白细胞骨架重塑和肌动蛋白收缩系统激活,导致MKL1从细胞质移位到细胞核,它激活了指定肌成纤维细胞分化的纤维化基因。抑制ROCK可阻止肌动蛋白细胞骨架重组、成纤维细胞获得收缩活性和MKL1核移位,阻止成纤维细胞向肌成纤维细胞分化。另一方面,ROCK抑制破坏了先前存在的肌成纤维细胞收缩所需的肌动蛋白细胞骨架。这使肌成纤维细胞中组成性激活的MKL1核信号失活,导致抗凋亡蛋白BCL-2的下调和内在凋亡途径的激活。

具体而言,我们发现ROCK途径介导肌成纤维细胞的收缩性、分化和存活。法舒地尔阻断这一途径可阻止肺成纤维细胞分化为肌成纤维细胞。重要的是,我们在体外和体内都证明了肌成纤维细胞收缩力的破坏会导致先前存在的肺肌成纤维纤维细胞发生凋亡。Fasudil诱导凋亡的能力对肌成纤维细胞具有选择性(与非肌纤维细胞相比),支持对肌动球蛋白系统的“内在依赖性”,以维持这些分化细胞的生存。我们的研究表明,这种生存信号通路由肌动蛋白动力学依赖性MKL1核易位控制,该易位分别对涉及基质硬化和TGF-β1的生物力学和生物化学纤维化刺激作出反应。ROCK抑制作用解聚肌动蛋白细胞骨架,降低肌成纤维细胞的收缩性,并使MKL1核信号失活,导致BCL-2表达下调,随后激活线粒体依赖的内在凋亡途径(图(图7)。7). 我们的研究结果表明,通过使用药物ROCK抑制剂(如fasudil)靶向肌成纤维细胞收缩性,可能通过阻止成纤维细胞向肌成细胞分化和诱导先前存在的肌成纤维纤维细胞凋亡,为有效治疗持续/进行性纤维化提供了一种新的方法。

我们研究中一个有趣的发现是分化的肌成纤维细胞对ROCK抑制诱导的凋亡有显著的敏感性。法舒地尔(相对低浓度,5–25μM)诱导肌成纤维细胞凋亡,而对照组非肌成纤维纤维细胞具有耐药性。这种对凋亡的不同敏感性似乎与肌成纤维细胞中更成熟、聚合的肌动蛋白细胞骨架有关,如较高的F-肌动蛋白/G-肌动蛋白比率所证明的。IPF肺肌成纤维细胞基础水平的F-actin含量较高,丝状肌动蛋白占总肌动蛋白的37%–45%,而对照肺成纤维细胞的F-actim基线含量为8%–17%。ROCK抑制显著降低了肌成纤维细胞中的F-肌动蛋白含量,从平均42%降至平均7%。相比之下,法舒地尔仅略微降低了正常成纤维细胞中F-actin的含量,从14%降至6%。以前曾报道过与肌动蛋白动力学变化相关的细胞凋亡(4951)尽管其机制尚未明确阐明。我们目前的研究结果表明,F-actin/G-actin比值的变化为肺肌成纤维细胞的凋亡信号提供了一种感觉机制。重要的是,我们证明了MKL1在将肌动蛋白细胞骨架信号转导到线粒体介导的凋亡途径中的关键作用。ROCK抑制使肺肌成纤维细胞中的MKL1核信号失活,导致BCL-2表达下调并启动固有的凋亡级联反应。

据报道,MKL1可以调节肌上皮细胞的凋亡,肌上皮细胞是一种特殊的上皮细胞,具有与平滑肌细胞相似的收缩特性(52). 基因缺失Mkl1型哺乳期雌性小鼠乳腺肌上皮细胞凋亡和无法形成正常小叶泡结构(52). 相反,MKL1的过度表达抑制了细胞凋亡,伴随着caspase激活的抑制(53). 这些先前的报道和当前研究的发现强烈暗示MKL1是分化细胞命运的决定因素,分化细胞含有成熟的肌动球蛋白收缩元件。据报道,MKL1通过细胞间接触的分离和肌动蛋白细胞骨架重组的诱导,介导TGF-β1诱导的上皮-间充质转化(EMT)(33). MKL1被认为是EMT过程中完成成肌期的关键(36). 这些发现表明,阻断MKL1介导的信号可能通过抑制EMT而具有额外的抗纤维化益处。

Cofilin是Cofilin/ADF家族的成员,促进F-actin的解聚并参与单体G-actin的再循环(54,55). 去磷酸化(活性)cofilin以线粒体为靶点,诱导线粒体膜电位、细胞色素的丧失c(c)释放与细胞凋亡(49,56,57). 我们研究了cofilin依赖的凋亡机制是否与ROCK抑制诱导的肌成纤维细胞程序性死亡有关。我们发现,法舒地尔既没有改变cofilin的磷酸化,也没有改变其在肺肌成纤维细胞中的亚细胞定位(补充图6)。此外,我们的数据显示,法舒地尔诱导的细胞色素c(c)与之前报道的cofilin介导的细胞色素释放相比,释放发生在治疗后8–24小时c(c)释放发生在2-4小时内(49). 总之,这些数据表明,本文报道的法舒地尔诱导的肌成纤维细胞凋亡独立于cofilin介导的机制。此外,细胞色素所需的时间相对较长c(c)fasudil治疗(≥8小时)后线粒体的释放与我们的数据一致,支持fasudil-通过下调BCL2级基因表达。

组织损伤后组织修复的解决涉及肌成纤维细胞清除(10). 肌成纤维细胞的消除和/或失活可通过细胞凋亡、衰老和/或退化到更静止的表型发生(79,58). 虽然回归到非活性前体细胞可能会限制肌成纤维细胞的活性,但它们并不能完全消除再激活的可能性。例如,在四氯化碳诱导的小鼠肝纤维化模型中,HSC衍生的肌成纤维细胞退化到静止状态后,在随后的损伤中被更快地重新激活(与天然HSC相比),从而导致更严重的肝纤维化(7). 肌成纤维细胞回归到静止表型可能是解决纤维化的中间步骤。在成熟肌成纤维细胞中,释放机械张力在体内外触发细胞凋亡(5860). 在正常的伤口愈合过程中,机械张力的释放可能是通过恢复正常的ECM成分和力学性能来实现的。这将从根本上消除内在和外在的持续生物力学信号,否则这些信号将维持肌纤维母细胞表型。因此,细胞表型(收缩性)和基质属性(刚度)相互调节,并可作为维持纤维化反应的前馈机制。在持续性/进行性纤维化(如IPF)中,涉及基质转换的机制受到抑制(61); 这可能会损害正常ECM组成和生物力学张力的恢复。本研究的结果表明,靶向肌成纤维细胞收缩性和机械转导的基于细胞的方法为张力释放诱导的肌成纤维细胞凋亡提供了一种替代基质靶向的方法。

越来越多的证据支持TGF-β1的作用(62)ECM的生物物理特性(63)调节肌纤维母细胞表型。我们目前的数据支持MKL1作为主控开关的概念,调节TGF-β1和基质硬化诱导的成纤维细胞向肌成纤维细胞分化。这与证明MKL1通过其与受体激活的Smad物理结合的能力向细胞核传递TGF-β信号的研究一致(33,36,64). 在细胞核中,Smad与MKL1结合,促进MKL1/Smad复合物与转录调控元件的结合,转录调控元件控制编码收缩SMC蛋白和纤维化相关蛋白的基因子集的转录。我们的数据表明,破坏成纤维细胞收缩或阻断MKL1介导的内在机械传导足以抑制TGF-β1和/或基质硬度诱导的成纤维细胞向肌成纤维细胞分化。此外,小鼠缺乏Mkl1型对博莱霉素诱导的肺纤维化有保护作用。总之,我们的研究结果揭示了MKL1介导的生物力学信号在调节TGF-β1诱导的肌成纤维细胞分化和存活以及损伤诱导的肺纤维化中不可或缺的作用。

有趣的是,我们的数据还表明,在博莱霉素诱导的小鼠肺纤维化模型中,法舒地尔可能在损伤修复后期对肺泡上皮细胞凋亡具有保护作用。尽管这一观察结果可能与法舒地尔对上皮的直接作用有关(如上文所述的EMT),但其他潜在的“间接”机制可能涉及已知的肌纤维母细胞生成的旁分泌介质的下调,这些介质可诱导肺泡上皮细胞凋亡。此类肌纤维母细胞衍生介质包括来自肌成纤维细胞收缩力诱导的潜在TGF-β1激活的活性TGF-(16,17),血管紧张素II(65),Fas配体(66)和活性氧物种(67). 这些对肺泡上皮细胞的直接或间接保护作用进一步支持了在已建立的肺纤维化中靶向ROCK通路。

针对顽固性肌成纤维细胞的抗纤维治疗有限。收缩性的获得不仅对肌纤维母细胞表型的出现至关重要,而且对其维持也至关重要。我们目前的数据提供了强有力的证据,即靶向肌成纤维细胞收缩性(或随后的机械传导途径)提供了一种有希望的新方法来阻止或可能逆转,通过阻止肌成纤维细胞从其前体分化和诱导先前存在的肌成纤维纤维细胞进行凋亡来实现持续/进行性纤维化。

方法

肺成纤维细胞的分离、培养、转染和治疗。

根据伯明翰阿拉巴马大学人类研究委员会的批准,从接受IPF肺移植患者或失败供体的组织样本中建立人肺(肌)成纤维细胞。有关肺成纤维细胞的分离、培养、转染、分选和治疗,请参阅补充方法。

TUNEL和免疫荧光双标记分析。

为了将TUNEL染色与特异性抗原的免疫荧光染色相结合,首先使用TdT-fluor原位凋亡检测试剂盒(Trevigen)进行TUNEL着色,然后用一种主要抗体暴露24小时。根据制造商的建议使用氟铬结合二级抗体。细胞核用DAPI染色。

共焦激光扫描显微镜。

荧光信号使用配备数字彩色相机(AxioCam)的蔡司LSM510共焦激光扫描显微镜进行检测。所有荧光图像都是使用顺序激光扫描生成的,仅使用相应的单波长激光线,使用声光可调谐滤波器激活,以避免交叉检测任何一个荧光通道。

定量ChIP分析。

成纤维细胞(1×106细胞)在37°C下用1%甲醛处理10分钟,以将组蛋白交联到DNA。对交联的染色质进行超声处理,剪切200-1000 bp的染色质片段。部分剪切的染色质在65°C下翻转4小时,交联DNA通过苯酚/氯仿萃取纯化。保存DNA并在随后的实时PCR反应中用作内部参考对照。其余的超声染色质用制造商推荐的浓度的抗SRF抗体进行免疫沉淀,而阴性对照则不使用抗体进行免疫沉淀。用蛋白A琼脂糖珠回收免疫复合物。反向交联并用蛋白酶K处理,以从DNA中去除蛋白质。通过苯酚/氯仿萃取纯化DNA。实时PCR用于量化SRF结合BCL2级启动子片段使用以下引物:正向,5′-CGCGCAGGACCAGGAGGAGAGAA-3′;背面为5′-CGGCGAGGGGGTGGGAGAGAGAGGGT-3′。

动物和实验方案。

伯明翰阿拉巴马大学动物护理和使用委员会批准了动物使用和博莱霉素方案。本研究选用6-8周龄无致病性雌性小鼠。将硫酸博来霉素(Almirall)溶解在无菌盐水溶液中,并使用步进式重复吸管(Tridak)将其气管内滴入小鼠,每只动物在50μl盐水溶液中单次剂量为0.08 mg(5 U/kg BW)。对照小鼠接受50μl生理盐水。对于法舒地尔治疗,在给予博莱霉素后14天开始,向小鼠腹腔注射25 mg/kg BW/d的剂量,持续14天或等量的PBS。第28天处死小鼠。切除肺组织,用OCT或PBS中4%(m/v)多聚甲醛充气,进行免疫荧光或免疫组织化学分析。

为了制备肺匀浆,将新鲜肺组织转移到含有T-PER(Thermo Scientific)和完整微型蛋白酶抑制剂鸡尾酒(Roche)的预冷试管中,比例为1片/10 ml T-PER,并在4°C下进行匀浆。匀浆在9000℃下离心在4°C下保持10分钟。上清液被转移到清洁的微型离心管中。使用BCA蛋白质测定试剂盒(Thermo Scientific)测定肺组织匀浆中的总蛋白质浓度。

统计。

使用单因素方差分析和纽曼-凯尔斯方法确定治疗条件之间的统计差异,以进行多重比较。A类P(P)值小于0.05被认为是显著的。

研究批准。

动物研究按照NIH实验室动物护理和使用指南进行,并得到伯明翰阿拉巴马大学IACUC的批准。阿拉巴马大学伯明翰分校IRB批准了涉及人类受试者的研究,参与者提供了书面知情同意书。

补充材料

补充数据:
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致谢

这项工作得到了NIH拨款HL097215、美国心脏协会科学家发展拨款0835432N、伯明翰阿拉巴马大学医学系向Y.Zhou提供的启动资金以及NIH向V.J.Thannickal提供的HL067967和HL107181的部分支持。

脚注

利益冲突:提交人声明,不存在利益冲突。

本文引文: 临床投资杂志。2013;123(3):1096–1108. doi:10.1172/JCI66700。

参见第页开头的相关评论1005.

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文章来自临床研究杂志由以下人员提供美国临床研究学会