糖尿病护理。2012年9月;35(9): 1817–1820.
CD4的给药+CD25型高的CD127型负极调节性T细胞在儿童1型糖尿病中保护β细胞功能
、VMD、PHD、,1 医学博士、博士,2 ,MSC,1 、MSC、,1 ,医学博士,2 医学博士、博士,三 医学博士、博士,4 医学博士、博士,5 医学博士、博士,6 医学博士、博士,2 医学博士、博士,7和医学博士、博士1中,8
娜塔莉亚·马雷克·塔佐科夫斯卡
1波兰根斯克医科大学临床免疫学和移植学系
MaŁgorzata我的希利威克
2波兰根斯克医科大学儿科、血液学、肿瘤学和内分泌学系
安妮塔·多比舒克
1波兰根斯克医科大学临床免疫学和移植学系
马塞琳娜·格拉博夫斯卡
1波兰根斯克医科大学临床免疫学和移植学系
伊洛纳科技公司
2波兰根斯克医科大学儿科、血液学、肿瘤学和内分泌学系
乔兰塔·朱希钦斯卡
三波美拉尼亚地区血库,波兰根斯克根斯克单位
Magdalena A.Wujtewicz
4波兰格但斯克医科大学麻醉学和重症监护系
彼得·维特科夫斯基
5伊利诺伊州芝加哥市芝加哥大学移植科外科
沃伊切赫·Młynarski
6波兰罗兹医科大学儿科、肿瘤学、血液学和糖尿病系
安娜·巴尔切尔斯卡
2波兰根斯克医科大学儿科、血液学、肿瘤学和内分泌学系
乔兰塔我的希斯利夫斯卡
7波兰根斯克医科大学免疫学系
彼得·特松科夫斯基
1波兰根斯克医科大学临床免疫学和移植学系
8波兰根斯克医科大学三城学术实验设施
1波兰根斯克医科大学临床免疫学和移植学系
2波兰根斯克医科大学儿科、血液学、肿瘤学和内分泌学系
三波美拉尼亚地区血库,波兰根斯克根斯克单位
4波兰根斯克医科大学麻醉学和危重病护理系
5伊利诺伊州芝加哥市芝加哥大学移植科外科
6波兰罗兹医科大学儿科、肿瘤学、血液学和糖尿病系
7波兰根斯克医科大学免疫学系
8波兰根斯克医科大学三城学术实验设施
摘要
目标
1型糖尿病是一种胰岛被自我激活的T细胞破坏的疾病。调节性T细胞(Tregs)数量和抑制活性的不足促进了这一过程。在这里,我们首次表明,输注自体Tregs可延长最近诊断的儿童1型糖尿病的缓解期。
研究设计和方法
自确诊后2个月内,我们对10名1型糖尿病儿童(8–16岁)进行了Tregs治疗。共有4例患者接受10×106Tregs/kg体重,其余6名患者接受20×106Tregs/kg体重。该制剂由分选的自体CD3组成+CD4细胞+CD25型高的CD127型负极Tregs在良好的生产实践条件下进行了扩张。
结果
未发现该疗法的毒性。自输液之日起,外周血中Tregs的百分比显著增加。这些患者与未接受Tregs治疗的匹配的1型糖尿病患者一起进行随访。在1型糖尿病发病半年后(输注Tregs后4-5个月),8名接受Tregs治疗的患者仍然需要每天<0.5 UI/kg体重的胰岛素,其中2名患者完全失去胰岛素,而非治疗组的病情缓解已结束。此外,治疗组的血浆C肽水平显著高于未治疗组。
结论
这项研究表明,Tregs在近期发作的1型糖尿病儿童中是安全和可耐受的。
1型糖尿病在世界范围内是一个日益严重的问题。例如,据估计,波兰的发病率每10年翻一番(1). 这种情况是由浸润胰岛并破坏胰岛素分泌β细胞的自我激活T细胞的自身免疫攻击引起的(2,三). 糖尿病动物自身活性T细胞的转移会在先前健康的动物中诱发胰岛炎和糖尿病(4). 高度抑制性调节性T细胞(Tregs)可以阻止这种自身免疫过程(5,6). 在一些动物模型中发现CD4+CD25型+福克斯P3+Tregs可以阻止胰岛的破坏,并防止自身免疫性1型糖尿病(7,8). 在人类中foxp3(foxp3)基因导致免疫失调、多内分泌疾病、肠病、X连锁综合征(与功能性Tregs缺乏相关)以及随后的自身免疫性糖尿病(9).
Tregs可以调节正在进行的免疫反应,因此可以用来抑制它们。2009年,我们成功地对慢性移植物抗宿主病患者进行了扩大Tregs治疗(10). 最近,这种方法在预防移植物抗宿主病方面的效果已得到证实(11,12). 在这里,我们展示了过继转移Tregs对新近诊断为1型糖尿病的儿童的影响。
研究设计和方法
在当前的研究中,10名儿童(年龄8–16岁,6名女孩和4名男孩)被诊断为符合世界卫生组织标准的1型糖尿病(13),用Tregs治疗(补充图1). 入选标准为5-18岁;自1型糖尿病确诊后2个月内;抗GAD65抗体、胰岛细胞抗体和胰岛素自身抗体的存在;连续两次测量的空腹C肽水平>0.4 ng/mL(伦理委员会不允许进行激发试验);特定年龄段的BMI范围为25-75%;以及足够的静脉通路。采用以下排除标准:任何细胞减少或低血红蛋白水平;携带HLA-DQB1*0602等位基因;乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、艾滋病毒、,苍白密螺旋体或其他活动性感染;肿瘤病史;与手术相关的过度焦虑;以及需要药物治疗的慢性病。在麻醉辅助下抽取高达250 mL的外周血。对于体重<50 kg的儿童,抽取的血容量等于体重的0.5%(见研究方案和患者同意书在线补充数据).
Tregs的制备如前所述(10,14). 简而言之,血细胞被分类为CD3+CD4细胞+CD25型高的CD127型负极林负极双倍的负极Tregs使用免疫磁性/荧光激活联合技术,纯度为~100%(中位数[最小值-最大值]98%[97-99])。与我们之前的方案相比,细胞处理方面的重要改进是应用了适用于良好生产规范(GMP)的荧光激活细胞分选机(FACS),该分选机配备了一次性样品管线(Influx;BD Biosciences,San Jose,CA),消除了交叉污染的风险,以及GMP级CellGro培养基(CellGenix,Breisgau,Germany)的应用,该培养基补充有10%自体血清、白细胞介素-2(1000单位/mL;Proleukin;Chiron,San Diego,CA)和临床级抗CD3/抗CD28珠粒(Invitrogen,Carlsbad,CA),与细胞成1:1比例。培养Tregs,直到达到所需数量,但不超过2周(中位数[最小值-最大值]:10天[7-14])。考虑到所有这些措施,我们在最终产品中显著提高了Tregs的稳定性和质量。Tregs制剂的释放标准为FoxP3表达>90%(93%[90-97]),通过干扰素(IFN)-γ抑制试验,微生物试验阴性(无乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒或HIV的遗传物质,培养上清液中无微生物污染)。将输液用Tregs完全冲洗干净,悬浮在250 mL 0.9%NaCl中(波兰波尔法,Starogard Gd.),并在产品释放后1小时内,在麻醉协助下缓慢输注给患者。给药剂量为20×106/kg车身重量(n个=6)或当方案要求在2周时停止Tregs扩张时,10×106/kg车身重量(n个= 4). 作为对照,其他10名1型糖尿病患者及其各自的匹配特征被纳入随访,但未接受Tregs治疗。该试验既不是盲的,也不是随机的,对比组没有进行任何干预,例如细胞处理或模拟输血的初始抽血(对比中提供的各组的临床特征). 研究终点为空腹C肽、HbA1c个水平和胰岛素需求,特别注意每日胰岛素剂量(DDI;0.5 UI/kg体重)作为我们方案中缓解的临界值。该研究是根据格但斯克医科大学伦理委员会批准的方案(NKEBN/8/2010)进行的。在开始手术之前,获得了书面知情同意。
结果
在整个随访期间,服用Tregs后未观察到严重感染、急性高血糖或低血糖发作或其他不良反应。在其中一名患者中,输液与流感巧合,在手术后第二天被诊断出流感(经鼻咽标本证实[法国马西·勒托利,bioNexia influenza;bioMérieux])。服用Tregs后,外源性胰岛素的需求显著降低,HbA下降1c个2周后所有患者的水平(和补充图2和3). 此外,自治疗当天以来,外周血中Tregs的百分比显著增加(Wilcoxon试验,P(P)= 0.04) (和补充图2和3).
C肽、DDI、HbA1c个和1型糖尿病儿童的空腹血糖(n个=10)。未接受Tregs治疗的匹配对照患者的数值(n个=10)显示为灰色列。数值以中间值(最小值-最大值)表示*显著差异。
CD3水平+CD4细胞+CD25型高的CD127型负极福克斯P3+Tregs输注治疗1型糖尿病儿童的Tregs(n个=10)。−10天点的值是指Tregs分类的抽血日期。灰色列描述了未接受Tregs治疗的匹配对照患者的测量值(只有6名患者可用)。数据显示为中位数(最小值-最大值)*显著差异。
在诊断出1型糖尿病半年后(服用Tregs后4-5个月),研究组和对照组首次出现显著差异。在接受Tregs治疗的10名患者中,8名患者仍处于临床缓解期,定义为DDI<0.5 UI/kg体重(DDI中位数[最小值-最大值]0.22 UI/kg重量[0–0.60]),2名患者完全失去胰岛素。同时,未接受Tregs治疗的对照组10名患者中有6名患者病情缓解(DDI 0.52 UI/kg体重[0.18–0.69];Mann-WhitneyU型测试,P(P)= 0.04). 此外,Tregs组患者的血浆C肽水平显著高于未治疗组(0.75[0.38–2.11]vs.0.48 ng/mL[0.15–0.56];Mann-WhitneyU型测试,P(P)= 0.01) (). 使用的两种Tregs剂量之间没有差异,因此,患者被列为一个队列。
结论
如前所述,糖尿病患者的Tregs可以有效地扩大(15). 然而,人们怀疑自体Tregs能否有效治疗1型糖尿病。值得注意的是,IFN-γ的一部分+福克斯P3+糖尿病患者的Tregs抑制效率降低(16). 我们也可以检测到这种细胞,尽管在我们的1型糖尿病儿童中比例很低(~1%的Tregs;数据未显示),而且它们从未影响体外抑制试验的结果。因此,1型糖尿病的大多数缺陷可能与自我激活效应T细胞有关,这可能是Tregs难以控制的(17,18). 最近在人类中发现了这种对自我slet特异的活化效应T细胞(19). 幸运的是,在NOD小鼠中,转移Tregs可以抑制自我激活效应T细胞的活性并阻止糖尿病(20). 我们的研究证实了这种Tregs移植在人类环境中的类似效果。
我们研究中使用的Tregs剂量具有生物学意义,因为它能够显著增加FoxP3水平+外周血中的Tregs。有几个问题使我们的协议有效。在所有已发表的试验中,应用了Tregs的免疫磁性分离,导致FoxP3的最大值为~60%+产品中的T细胞,但该数字可能小于20%(11,12). 因此,给患者服用的产品中至少有40%的细胞从一开始就不是Tregs。这使得很难评估具有免疫抑制活性的给药细胞的确切水平。通过FACS分拣,我们可靠地实现了~100%CD3+CD4细胞+CD25型高的CD127型低的福克斯P3+T细胞,在儿童中>90%的这些细胞仍然是FoxP3+膨胀后的Tregs。尽管FACS分类被认为是一种非GMP程序,但其与新分类机的安全性可与临床级免疫磁选相媲美。事实上,新型的一次性射流管线可防止交叉污染,并在洁净室设施中执行该程序,再加上由此产生的纯度,使FACS分选优于免疫磁性分选。另一个与剂量评估有关的问题是对即将使用的扩展Tregs产品进行质量检查。文献中建议,抑制增殖试验不能包括在释放标准中,因为试验开始后5天可以获得结果。在这段时间内,对扩展Treg的抑制可能会发生巨大变化。我们的IFN-γ抑制试验可以包括在释放标准中,因为在数小时内可以获得结果,并且在将Tregs转移给患者之前,产品的抑制活性得到了确认。
该研究在患者数量和时间方面存在一些局限性。此外,很可能HbA水平的快速初始下降1c个与患者临床状况的改善以及除Tregs输液外的医疗干预有很大关系。然而,即使在我们研究的早期4个月,当我们将患者与精心匹配的未治疗受试者进行比较时,我们已经看到了胰岛素剂量和C肽水平的差异。正在进行的进一步随访将证实这是一种持续缓解还是只是胰岛破坏的延迟。
在我们看来,增加Treg数量的操作是安全和可耐受的,有可能控制1型糖尿病。正如这项研究所表明的,在最近诊断为1型糖尿病的儿童中,输注扩增的自体Tregs后β细胞功能的一些改善就是这一概念的证明。这些结果应鼓励进一步研究我们的新方法。
致谢
该研究得到了波兰科学部的支持(NN402-3530-38和NR13-0126-10)。N.M.-T.是科西乌斯科基金会的研究员。
没有报告与本文相关的潜在利益冲突。
N.M.-T、M.M.和P.T.为研究设计、方案编写、细胞准备、数据收集、分析、解释以及手稿的编写和审查做出了贡献。A.D.有助于细胞分离和数据收集。M.G.和I.T.为数据收集和解释做出了贡献。J.J.和M.A.W.为数据收集做出了贡献。P.W.参与了数据分析和解释,并审查了报告。W.M.对数据收集、分析和解释做出了贡献,并审阅了手稿。A.B.和J.M.为数据收集和解释做出了贡献,并审阅了手稿。所有作者都同意提交手稿。P.T.是这项工作的担保人,因此,他可以完全访问研究中的所有数据,并对数据的完整性和数据分析的准确性负责。
2012年6月8日至12日,在宾夕法尼亚州费城举行的美国糖尿病协会第72届科学会议上,以摘要形式介绍了本研究的部分内容。
作者感谢格但斯克医科大学儿科、血液学、肿瘤学和内分泌学系的Lucyna Szumacher-Sharma在临床程序中提供的完美协助。
工具书类
1Jarosz-Chobot P、Polanska J、Szadkowska A等人。1989年至2004年波兰儿童1型糖尿病发病率快速上升,2010年至2025年预测.糖尿病学2011年;54:508–515[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 2Gepts W,Lecompte PM。糖尿病患者的胰岛.美国医学杂志1981;70:105–115 [公共医学][谷歌学者] 三。艾森巴思GS。I型糖尿病。慢性自身免疫性疾病.N英格兰J医学1986;314:1360–1368 [公共医学][谷歌学者] 4本德拉克A、卡诺C、波伊塔德C、巴赫JF。糖尿病NOD小鼠自身免疫性糖尿病向健康新生儿的同基因转移。L3T4+和Lyt-2+T细胞的要求.实验医学杂志1987;166:823–832[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 5Sakaguchi S、Sakaguci N、Asano M、Itoh M、Toda M。表达IL-2受体α-chains(CD25)的活化T细胞维持免疫耐受性。自我容忍的单一机制失效会导致各种自身免疫性疾病.免疫学杂志1995;155:1151–1164[公共医学][谷歌学者] 6Salomon B、Lenschow DJ、Rhee L等人。B7/CD28共刺激对于控制自身免疫性糖尿病的CD4+CD25+免疫调节性T细胞的稳态至关重要.免疫2000;12:431–440 [公共医学][谷歌学者] 7Green EA、Gorelik L、McGregor CM、Tran EH、Flavell RA。1型糖尿病患者CD4+CD25+T调节细胞通过TGF-β-TGF-β受体相互作用控制抗胰岛CD8+T细胞.美国国家科学院程序2003;100:10878–10883[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 8You S、Slehoffer G、Barriot S、Bach JF、Chatenoud L。CD4+CD62L+调节性T细胞在T细胞受体转基因小鼠自身免疫性糖尿病控制中的独特作用.美国国家科学院程序2004;101(补充2):14580–14585[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 9Bennett CL、Christie J、Ramsdell F等人。免疫失调、多内分泌疾病、肠病、X连锁综合征(IPEX)是由FOXP3突变引起的.自然基因2001;27:20–21 [公共医学][谷歌学者] 10Trzonkowski P、Bieniaszewska M、Ju she cinn ska J等人。人类体外扩增CD4+CD25+CD127-T调节细胞治疗移植物抗宿主病患者的首次临床结果.临床免疫学2009;133:22–26 [公共医学][谷歌学者] 11Di Ianni M、Falzetti F、Carotti A等。Tregs在HLA同种异体移植中预防GVHD并促进免疫重建.血液2011年;117:3921–3928 [公共医学][谷歌学者] 12Brunstein CG、Miller JS、Cao Q等人。用脐带血移植成人体外扩增T调节细胞输注:安全性和检测动力学.血液2011年;117:1061–1070[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 13Alberti KG,Zimmete PZ公司。糖尿病及其并发症的定义、诊断和分类。第1部分:糖尿病的诊断和分类世卫组织咨询的临时报告.糖尿病医学1998;15:539–553 [公共医学][谷歌学者] 14Marek N、Bieniaszewska M、Krzystyniak A等。时间对于T调节细胞体外扩增治疗至关重要.细胞移植2011:12;1747–1758[公共医学][谷歌学者] 15Putnam AL、Brusko TM、Lee MR等人。1型糖尿病患者调节性T细胞的扩增.糖尿病2009;58:652–662[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 16McClymont SA、Putnam AL、Lee MR等。健康受试者和1型糖尿病患者调节性T细胞的可塑性.免疫学杂志2011年;186:3918–3926[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 17D'Alise AM、Auyeung V、Feuerer M等人。NOD小鼠T细胞调节的缺陷是对T细胞效应物的影响.美国国家科学院程序2008;105:19857年-19862年[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 18施耐德A、瑞克M、桑达S、皮霍克C、格林鲍姆C、巴克纳JH。糖尿病患者的效应T细胞对CD4+FOXP3+调节性T细胞的调节具有抵抗力.免疫学杂志2008;181:7350–7355[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 19Velthuis JH、Unger WW、Abreu JR等。使用组合MHC多聚体同时检测针对不同胰岛细胞相关表位的循环自反应CD8+T细胞.糖尿病2010;59:1721–1730[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者] 20Bluestone JA、Tang Q。使用CD4+CD25+抗原特异性调节性T细胞进行治疗性疫苗接种.美国国家科学院程序2004;101(补充2):14622–14626[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]