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Transl Res.公司。作者手稿;PMC 2012年10月1日提供。
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尼姆斯:尼姆斯320614
PMID:21925115

肌动蛋白细胞骨架在肌成纤维细胞分化中的作用:超微结构定义形式和驱动功能

内森·桑博医学博士和尼克莱·杜林,博士

摘要

肌成纤维细胞是经过修饰的成纤维细胞,其特征是存在发育良好的收缩装置,并形成强健的肌动蛋白应激纤维。这些机械活性细胞被认为在正常伤口愈合过程中协调细胞外基质重塑,以应对组织损伤,以及在纤维性疾病中发现的异常组织重塑。本文综述了肌动蛋白应激纤维在肌成纤维细胞生物学中的作用。从最初对其超微结构和形态学特征的描述,到广泛接受的观察结果,证明其参与收缩、局部黏附成熟和细胞外基质重组,最后是最近的观察结果,证明了其在将机械力转化为生化信号、运动、收缩和基质重组相关基因的转录控制以及mRNA翻译的局部调控中的作用。肌动蛋白应力纤维的这种广泛功能性通过诱导蛋白质表达来增强和放大其机械功能,这些蛋白质本身可增强收缩、局部粘附形成和基质重塑。在复合材料中,肌动蛋白细胞骨架的功能通常是一致的,允许整合和放大促进肌成纤维细胞分化和基质重塑的信号。

定义肌成纤维细胞的特征

形态学

20世纪70年代,Gabbiani及其同事[1,2,]详细描述了收缩伤口肉芽组织中存在的改性成纤维细胞。通过电子显微镜(EM),这些成纤维细胞在形态上与“正常”成纤维细胞不同,存在平行于细胞长轴的大束微丝(而正常组织成纤维细胞很少或没有[1]. 这些微丝通常具有周期性延伸,以平行方向与外部纤维连接蛋白原纤维相连,称为纤维连接[4]. 细胞膜上进行这些连接的区域是电子密集的(后来被确定为焦点粘附点)[5]. 这些细胞缺乏真正的基底膜,而在细胞外膜(后来被确定为纤维连接蛋白)附近有一个不连续的电子致密纤维结构[6])具有广泛的粗面内质网,与成纤维细胞相一致,与分化的平滑肌细胞形成对比,细胞核折叠,暗示有收缩细胞。由于存在:1)平滑肌细胞中的EM结构的形态学特征,如密集的微丝和膜相关致密体[5,7];2) 平滑肌α-actin抗血清的强免疫荧光染色[]以及3)这些细胞收缩肉芽组织的能力[1,2,]这些修饰的成纤维细胞表现为介于成纤维细胞和平滑肌细胞之间的表型中间物,被称为肌成纤维细胞。

肉芽组织中肌成纤维细胞最容易识别的形态学特征之一是存在显著的细胞质微丝[1,2,]. 这些细胞骨架结构很容易被培养中的塑料或玻璃基质上的成纤维细胞生长所重现。令人惊讶的是,这些观察结果是在1899年的固定细胞中报告的(参见[8]),但作为固定过程中的人工制品被丢弃。在细胞培养中,这些微丝可以通过EM和光学显微镜看到[8]、和被确定为由聚合和捆绑肌动蛋白组成[9]. 由于正常皮肤成纤维细胞缺乏类似的微丝束[,10]有人认为肌动蛋白丝的形成和肌成纤维细胞表型本身可能是细胞培养条件的产物,然而,随后体内离体研究表明,在正常器官、正常肉芽组织、对局部损伤作出反应的组织以及以强烈纤维化反应为特征的组织中都存在肌成纤维细胞[11]. 这些早期的初步研究确定了肌动蛋白细胞骨架的结构对肌成纤维细胞的表型和形态学定义的重要性。四十年后在体外体内研究将揭示这种结构对多种肌成纤维细胞功能的重要性(下文综述)。

肌成纤维细胞的基因表达特征

肌成纤维细胞的概念已远远超出其最初的形态学定义,相应地,对肌成纤维纤维细胞在正常伤口愈合反应和纤维化疾病异常组织重塑过程中所起作用的理解也有所增加。肌成纤维细胞参与基质蛋白的产生以及纤维化反应的自分泌和旁分泌介质,并在这些条件下表现出增强的细胞存活率[12,13,14]. 正在分化的肌成纤维细胞的基因表达谱发生了深刻变化[15]它既可以增强成纤维细胞作为收缩细胞的能力,也可以作为细胞外基质重组和重塑的效应细胞。

激活的肌成纤维细胞的基因表达重复是广泛的,所有修饰基因的完整目录超出了本综述的范围。然而,已经确定了几个关键基因,这些基因表征了肌成纤维细胞表型,并与肌成纤维功能建立了联系。虽然这些基因都不是肌成纤维细胞特有的,但它们有助于深入了解该细胞在组织损伤反应中的功能能力和作用。肌成纤维细胞分化与细胞外基质成分(如纤维连接蛋白)的显著上调有关,包括关键的剪接变异体EDA纤维连接[16,17]胶原蛋白的多种亚型[18,19,20]、蛋白多糖,如tenascin C[21,22];基质金属蛋白酶及其抑制剂[23,24]丝氨酸蛋白酶,如组织型纤溶酶原激活物(t-PA)和尿激酶纤溶酶激活物(uPA)、纤溶酶原生质激活物抑制剂-1(PAI-1)[25,26]以及参与细胞-基质偶联的蛋白质,如整合素和糖蛋白受体。此外,组成增强的细胞收缩机制的基因也被深度上调[27,28]. 一种特别有趣的蛋白质是肌动蛋白细胞骨架的组成部分,即平滑肌相关肌动蛋白亚型,平滑肌(SM)-α-肌动蛋白(α-SMA)。虽然α-SMA最初被认为是组织限制性的(因此得名),但它也被鉴定为在伤口愈合和纤维化过程中由肌成纤维细胞表达的蛋白质[11,12,13,29,30,31]在这种情况下是肌动蛋白应力纤维的一个组成部分[32]. 历史上,α-SMA被广泛用作全分化肌成纤维细胞的生化标记物[11,12].

肌成纤维细胞的功能

肌成纤维细胞存在于多种对组织损伤的正常和异常反应中。肌成纤维细胞生物学可能发挥作用的临床条件和疾病状态示例包括对创伤和组织损伤的正常生理反应、对缺血/再灌注和血管闭塞或血栓形成的组织反应,以及异常伤口愈合障碍,如肺、肾、肝和心脏纤维化。肌成纤维细胞也已被鉴定体内在正常、无损伤的结缔组织中,它们作为调节正常器官功能的收缩细胞发挥作用。例如,肌成纤维细胞已在肺泡间质细胞、肠腺周细胞、肝窦周细胞以及其他细胞的亚群中被鉴定出来[33]. 为了应对组织损伤,例如皮肤(皮肤伤口)的机械组织破坏,肌成纤维细胞用于生产和重塑肉芽组织,产生基质成分,并最终促进伤口的收缩和闭合[,14,34]. 虽然皮肤伤口闭合模型提供了组织愈合过程中肌成纤维细胞功能的最可靠信息,但其他形式的组织损伤也揭示了肌成纤维纤维细胞参与解决“伤口”。这包括:急性肺损伤临床综合征的纤维增生期,特征是感染或毒性损伤导致的弥漫性上皮损伤,随后是成纤维细胞增殖和受损和炎症肺泡结构的重塑[35]心肌梗死缺血损伤后的重塑反应,缺血组织的愈合导致心肌细胞替换成纤维瘢痕[36]以及对血管血栓形成的局部反应,其中肌成纤维细胞浸润到血栓中导致其组织和随时间的推移而稳定[37]. 肌成纤维细胞参与上皮性肿瘤周围的基质反应,在重塑正常组织基质中发挥重要作用,为癌细胞的侵袭创造更宽松的环境[14,33,38,39]. 最后,在疾病状态下的病理标本中也发现了大量的肌成纤维细胞,在这些状态下,最初的组织损伤可能是模糊的或暂时性的。这些疾病的主要特征是大量和无法解决的进行性纤维化。这类疾病包括特发性肺纤维化等实体[30],肾间质纤维化[40],肝硬化[41]Dupuytren挛缩[42]和增生性瘢痕[43].

虽然最初的组织损伤或破坏是所有这些疾病的一个组成部分,但肌成纤维细胞作为反应中发生的结构破坏和细胞外基质重组的中心介质。这是由于其作为以下物质的合成和分泌位点的作用:1)基质金属蛋白酶,其可以溶解预先存在的基质结构;2) 新的基质成分,有助于伤口愈合反应中发生的重塑;和3)两种基质金属蛋白酶的组织抑制剂,提供了基质累积的平衡。然而,除了单纯的合成细胞外,肌成纤维细胞的收缩功能允许新合成的基质成分的主动重组。这包括促进纤维蛋白原原纤维并入基质并重塑基质,以及通过等长收缩将张力传递给基质及其组成蛋白。

为了说明这些在纤维化条件下的不同作用,考虑特发性肺纤维化(IPF)的病理生物学,其中定义的病理损伤是成纤维细胞病灶,即位于受损基底膜管腔侧的线性排列的肌成纤维细胞集合。肌成纤维细胞的这种聚集已被确定为早期基质元素的合成位点,包括前胶原I和EDA纤维连接蛋白。成纤维细胞病灶的这些特征与皮肤伤口的病理学相似。与这些病理损伤直接相似的是上皮层紊乱或上皮脱落,提示以前的上皮细胞损伤[30]. 由此推测,肌成纤维细胞可能通过基质金属蛋白酶的局部表达而破坏基底膜[44,45]然后分泌高蛋白聚糖如透明质酸的临时基质[46]在原始基底层的管腔侧。这个新的基质“边缘”将成为成纤维细胞进一步迁移的场所。虽然在病理标本上很难解剖时间关系,但可能成纤维细胞随后会重建这个临时基质,表达早期胶原形式和EDA纤维连接蛋白(两者都与早期成纤维细胞病灶有关)。同时,表达蛋白酶抑制剂,如TIMPs,促进基质积累[45]. 随着成纤维细胞病灶的持续发展,肌成纤维细胞通过纤维纤维连接的形成以及成熟胶原形式的产生和掺入促进进一步的基质重塑。分化的肌成纤维细胞显示出较高水平的收缩力(由于肌成纤维收缩装置),这一过程导致肺部结构更加坚硬、紧凑。这样的例子表明,尽管以不同的疾病速度影响不同的器官,但肌成纤维细胞行为的许多组成部分仍然得以保留。

尽管肌成纤维细胞表型及其在上述疾病中的作用具有广泛的形态、生化和功能改变,但本综述的其余部分将集中于肌动蛋白应激纤维的形成及其在调节肌成纤维功能中的作用。

肌动蛋白应力纤维的组成和形成

最近发表了一篇关于肌动蛋白应力纤维组成的综合综述[47],读者可参考本综述进行详细讨论。简而言之,肌动蛋白应力纤维是由聚合肌动蛋白丝束组成的[9,48],与修饰的局部粘附复合物的位置相邻[4,6,49]提供与细胞外基质成分的跨膜连接。在基质和肌动蛋白细胞骨架之间形成关键连接的跨膜分子是整合素分子α和β亚基的异二聚体[50]. 在成纤维细胞和肌成纤维细胞中,异二聚体α5β1或αv(v)β构成与突出肌动蛋白应力纤维相关的细胞接触部位的局灶黏附复合体形成相关的整合素[49,51,52]. 在细胞外表面,整合素受体与基质分子(如纤维连接蛋白或玻璃体凝集素)上的特异性(RGD)序列结合[50,53],将细胞膜锚定在基质上。在细胞质表面,整合素附着和聚集后,一个局部粘附复合体迅速组装,由数种高丰度蛋白质组成,包括塔林、长春花苷和帕西林,以及以整合素相互作用和肌动蛋白相互作用域为特征的多种评估蛋白[50,51,52]. 整合素和许多相关的焦点黏附蛋白具有肌动蛋白结合域,形成焦点黏附复合体的细胞质表面充当肌动蛋白丝形成的成核部位。与焦点接触部位肌动蛋白聚合物的初始形成一致,几个与焦点接触的细胞质表面密切相关的蛋白质交联单个肌动蛋白丝,其中最重要的是α-肌动蛋白[54,55]. 虽然α-肌动蛋白定位于焦点接触部位,但它也沿肌动蛋白应力纤维的长度呈周期性分布,用于将单个肌动蛋白丝捆绑在一起,形成较大的肌动蛋白“应力纤维”。最后,非肌肉肌球蛋白沿着应力纤维周期性排列[56]与α-肌动蛋白结合位点交替,具有双重功能:1)增强肌动蛋白纤维束(via是交联作用),以及2)通过Rho依赖信号对肌动蛋白丝产生收缩力(有关应力纤维收缩的综述,请参阅[47,57,58]).

有趣的是,构成肌动蛋白应激纤维的特定肌动蛋白亚型影响其形成和功能。肌动蛋白有六种异构体,所有这些异构体都可以参与应激纤维的形成。其中四种亚型,α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)、γ-平滑肌肌肌动蛋白、α-骨骼肌肌动素和α-心脏肌动蛋白受到组织限制,而β-肌动蛋白和γ-肌动素在所有细胞中普遍表达[59]. 肌成纤维细胞具有细胞质β-和γ-肌动蛋白亚型,这两种亚型都参与肌动蛋白应激纤维的形成,肌成纤维母细胞亚群在基础状态下表达α-SMA亚型体内在细胞培养中。在增加等长张力的条件下或在转化生长因子-β1的刺激下,α-SMA在肌成纤维细胞群体中强烈诱导表达。当出现时,α-SMA迅速并入肌动蛋白应力纤维[32,60]并导致肌成纤维细胞产生收缩力的能力增强[61,62].

形成或维持肌动蛋白应激纤维所需的信号传导由小GTPase Rho家族成员介导[58,63]. Rho的抑制作用肉毒梭菌C3毒素导致肌动蛋白应激纤维的分解[64]. 同样,微量注射Rho蛋白会导致从头开始肌动蛋白应力纤维的组装[65]. 虽然RhoA是Rho家族蛋白成员,在肌动蛋白应力纤维形成中发挥着最重要的作用,但RhoA、RhoB或RhoC的异位表达可诱导肌动蛋白应力纤维形成[66]. 特别值得注意的是,从头开始在TGF-β诱导的肌成纤维细胞分化过程中,肌动蛋白应激纤维的形成需要Rho家族成员RhoB的表达[67]. Rho蛋白通过其效应物:丝氨酸/苏氨酸激酶ROCK1和ROCK2介导下游信号传导[68]或哺乳动物透明蚁族的成员,如mDia1。ROCK1和ROCK2可以不同地调节细胞内的靶点,ROCK1用于装配应力纤维,而ROCK2则是可有可无的[69],但可能通过影响肌球蛋白轻链磷酸化和亚细胞定位,对肌球蛋白II介导的纤维连接蛋白基质组装更为重要[70]. 虽然存在formin家族的几个成员,但mDia1与应力纤维的形成有关[71,72,73]. ROCK1和mDia1都需要产生Rho刺激所见的特征性厚肌动蛋白应力纤维[72,74,75].

除了促进肌动蛋白成核和纤维组装外,依赖Rho的信号传导还最终导致肌球蛋白轻链磷酸化和肌球蛋白收缩[58,76],有关详细信息,请参阅[47]. 这种平行信号传导也需要并促进肌动蛋白应激纤维的形成,因为抑制肌球蛋白丝组装、肌球蛋白ATP酶活性或肌球蛋白轻链激酶活性可以消除肌动蛋白胁迫纤维的形成[58,77,78,79,80].

细胞外基质对肌动蛋白应激纤维形成的控制

与成纤维细胞相互作用的基质环境对于诱导与肌成纤维细胞分化相一致的特征也至关重要,例如肌动蛋白应激纤维的形成。许多(但不是所有)正常组织中的成纤维细胞没有肌动蛋白微丝[1]由此推测肉芽组织的物理或生化特性可能会影响参与成纤维细胞的形态。使用可变形胶原蛋白凝胶基质进行研究,旨在模拟体内条件,进一步支持了这一假设[81,82]. 在漂浮的、未粘附的凝胶中,任何产生成纤维细胞收缩的张力都会迅速传递到凝胶基质,导致凝胶收缩。在这种情况下,细胞没有处于持续的张力下,也没有观察到肌动蛋白应力纤维[81]. 相反,在胶原基质中培养的成纤维细胞附着且不能收缩,肌动蛋白应力纤维迅速出现,与肌成纤维细胞形态一致[83]. 随后从附着物中释放这些相同的基质会导致肌动蛋白应力纤维的分解[83,84,85]. 在可变矩阵张力或力施加的其他模型中也观察到了类似的结果[86,87,88]. 因此,张力传递到成纤维细胞似乎在诱导肌动蛋白细胞骨架和促进肌成纤维细胞表型方面很重要[62,85,89].

基质张力向成纤维细胞的传递至少部分通过整合素(尤其是β亚单位,β1和β)在局灶黏附复合体中发现,β1亚单位抗体的阻断导致肌动蛋白应激纤维的丢失和细胞的圆形[89]. 就肌成纤维细胞而言,局部黏附的特殊分子组成在介导力传递和肌动蛋白细胞骨架重排方面也可能很重要,因为α-SMA亚型向应力纤维中募集需要所谓的“超天然”局部黏附[90]. 虽然基质硬度可以诱导与肌成纤维细胞表型一致的变化,但它似乎也是转化生长因子-β1完全分化肌成纤维纤维细胞的必要先决条件,因为处理生长在浮动胶原基质上的细胞不会导致α-SMA的诱导或应力纤维的形成[89]. 单独的基质张力不足以实现肌成纤维细胞的完全分化,因为TGF-β1治疗进一步增加了刚性基质上肌动蛋白应激纤维的形成,以及具有完全分化肌成纤维母细胞特征的生化标记物的表达,如α-SMA。这些观察结果导致了“原肌成纤维细胞”和肌成纤维纤维细胞的概念,基质硬度导致形态学改变的形成,例如局部粘连扩大和肌动蛋白应力纤维的形成,以及TGF-β诱导α-SMA,肌动蛋白应力纤维进一步增强,局灶黏附复合体完全成熟,与完全分化的肌成纤维细胞一致[11].

基质本身的分子组成也会对肌成纤维细胞的分化产生重要影响。早期对转化成纤维细胞的研究表明,仅添加可溶性纤维连接蛋白就能诱导肌动蛋白应激纤维[91]. 此外,纤连蛋白EDA剪接异构体的存在是必需的,但不足以使肌成纤维细胞分化[16].

转化生长因子-β1(TGF-β1)对应力纤维形成的影响

TGF-β1是肌成纤维细胞分化的最有力和最成熟的刺激因子。TGF-β1可以自分泌或旁分泌的方式释放,并与其潜在激活蛋白和非活性状态的潜在结合蛋白以复合物的形式结合到细胞外基质中,与αv(v)含有整合素[92,93]. 在TGF-β1复合物的蛋白水解裂解或通过对相关整合素施加张力,TGF-[92,94]. 在TGF-β1的刺激下,成纤维细胞通过改变其超微结构作出反应,细胞骨架应力纤维形成增加[95,96]以及它们的基因表达谱从头开始表达细胞骨架和收缩蛋白,通常在平滑肌细胞中发现,修饰的黏附复合体[49,90,97]和细胞外基质的成分[11,18,19,98,99,100,101]. TGF-β1广泛参与了疾病组织纤维化的发病机制[102,103,104,105,106,107,108].

TGF-β1通过其跨膜受体丝氨酸/苏氨酸激酶典型地向磷酸化受体相关Smad蛋白(Smad2/3)发出信号,随后与共激活物Smad4发生异源三聚反应,并对复合物进行核移位,通过激活启动子上的Smad-binding元件(SBE)来驱动TGF-β响应基因的转录[100,109,110] (图1A). TGF-β1还可以招募非Smad通路来激活MAP激酶ERK、p38和JNK。通过TGF-β受体招募衔接蛋白ShcA,然后刺激受体酪氨酸激酶常见的Ras介导的信号传导,TGF-?激活ERK[111] (图1B). TGF-β激活JNK和p38 MAP激酶是通过TRAF6和TAK1结合蛋白(TAB)征募TGF-?活化激酶TAK1来实现的,TAK1激活JNK和p38的相应上游激酶(MEK)[112,113,114]. 此外,p38也可以通过与独立于MEK的TAB1直接相互作用而激活[115](图1C). TGF-β也可以激活AKT,最初通过下调转录抑制因子Zeb2的miR-192的Smad依赖性表达,导致miR-216a和miR-217上调。miR-216a和miR-217下调磷酸酶和紧张素同源物PTEN的表达。因此,PIP3水平升高导致AKT激活[116,117] (图1D). 最后,TGF-β的“非规范”信号也包括Rho小GTPases的激活,从而导致应力纤维的形成[118,119,120,121],尽管这个过程可能间接依赖于Smad信号[122] (图1E).

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TGF-β信号通过Smads(A)和非规范信号传导,导致ERK(B)、JNK和p38 MAP激酶(C)、AKT(D)和Rho/应激纤维形成(E)的激活。

Rho的激活由一大类鸟嘌呤交换因子(RhoGEFs)介导,其活性由多种刺激物诱导[123]然而,至少在成纤维细胞中,TGF-β受体信号与RhoGEF没有直接联系。相反,TGF-β驱动内分泌和细胞内分子的Smad依赖性表达,进而促进Rho激活。例如,TGF-β1可以促进产生1-磷酸鞘氨醇(S1P)的鞘氨醇激酶-1(SK-1)的Smad依赖性表达,进而激活G蛋白偶联受体信号以激活RhoA,并通过白血病相关RhoGEF(LARG)激活α-SMA表达[124,125,126,127]. TGF-β还可以以Smad依赖的方式上调GEF的表达,包括Net1和GEF-H1/Lfc,后者介导TGF-α诱导的Rho活化[128,129,130]. 总之,这些研究可能表明TGF-β诱导的Rho活化和应力纤维形成可能由“非标准”介导,但Smad介导的机制。

肌动蛋白细胞骨架在肌成纤维细胞功能中的作用

焦点粘附组件

肌成纤维细胞中的焦点粘附(FA)复合体作为基质的锚定点,在基质与细胞之间提供稳定的连接,允许细胞内收缩力传递到周围基质,并随后进行组织收缩。局灶性粘连还充当肌动蛋白应力纤维形成和加强的成核部位,以及相关信号分子的支架[50,52,57]. 因此,局部粘附的形成和成熟是肌成纤维细胞分化的重要过程。

成纤维细胞等运动细胞中的局灶性粘附形成是一个复杂的过程,由跨膜整合素的连接和聚集以及通过rhoGTP酶的信号传导启动,从而诱导肌动球蛋白收缩和肌动蛋白应力纤维的形成[52,57]. 肌动蛋白收缩性和细胞内张力的产生是局部黏附形成所必需的,因为肌动蛋白伸缩性的特定抑制剂可以破坏肌动蛋白应力纤维的形成和局部黏附组装[58,80,131]. 同样,肌动蛋白细胞骨架的完整性对于这种形成是必需的,因为细胞松弛素或latrunculin A的破坏会导致局部粘连的消失[49,87,132]. 这些结果都与目前的局灶性粘连形成和扩大模型相一致,局灶性黏附形成和扩大依赖于通过肌动蛋白细胞骨架和肌动蛋白收缩传递张力[88].

Hinz等人在肌成纤维细胞分化模型中扩展了这一概念,表明α-SMA并入肌动蛋白应力纤维与肌成纤维母细胞中黏附复合体的扩大有关[97]以及阻止α-SMA并入应力纤维的阻断抗体阻止了局部粘连的进一步扩大,导致附着强度降低。这些观察结果与α-SMA亚型在肌成纤维细胞分化过程中,当α-SMA并入应力纤维时,肌动球蛋白收缩装置产生增加的收缩力的作用一致。这种增加的力可能被传递到焦点粘附部位,导致焦点粘附相关分子的进一步张力依赖性招募和组装。虽然组装需要肌动蛋白应力纤维产生张力并将其传递到焦点粘附部位,但负责响应张力差异而招募单个分子的机制尚未完全确定。一种潜在的机制是依赖于talin的vinculin与焦点粘附,其中talin分子的张力依赖性拉伸暴露了vinculin-结合位点[133]. 在黏附灶的组装和成熟过程中,这种机制是否更普遍,这是一个积极探索的领域[134].

运动细胞中黏附复合体/肌动蛋白应力纤维结合点的形成也与该部位的几个信号分子支架有关。这种结构允许将细胞外或细胞内的力转换为生化信号,即所谓的“机械传递”[51,135,136,137]. 这种“感应”机制通过配体与整合素(如β1-整合素)的结合以及整合素分子的聚集而激活[51]导致文丘林的招募(塔林)[133]、额外的局灶粘附相关蛋白和p125局灶粘附激酶(FAK)[138]. 广泛的酪氨酸磷酸化与FA的形成有关[57,139],靶点包括SH2结构域上的多个FA相关蛋白[137,140],下游效应器包括小GTPase、Rho和Rap1[141,142,143]. 酪氨酸磷酸化似乎是维持FA蛋白并将其额外掺入FA复合物所必需的,因为酪氨酸激酶抑制剂的抑制会导致FA复合物的分解[51,57,137]. 这些信号有无数下游靶点,影响细胞行为,如增殖、迁移和细胞存活,赋予肌动蛋白应激纤维/局灶黏附复合体在生化信号转导中的重要作用[144,145].

细胞外基质重组

肌成纤维细胞是创伤愈合过程中重组细胞外基质及其组分的活性细胞。特别是,许多数据支持成纤维细胞在纤维连接蛋白纤维组装和重塑中的作用[146,147,148]. 纤维结合蛋白是在成纤维细胞上发现的整合素的配体,尤其是α5β1[51,149,150]. 当成纤维细胞附着在ECM上时,整合素与纤维结合和受体聚集导致可溶性纤维结合蛋白并入基质[151]以及基质结合的纤维连接蛋白重组为有组织的纤维[152]. 在整合素附着的细胞质表面上,肌动蛋白丝的形成与局灶性粘连细胞外表面上纤维连接蛋白纤维的形成一致[152,153]. 重要的是,细胞松弛素B破坏肌动蛋白细胞骨架导致纤维连接蛋白原纤维的分散[152,154]表明纤维生成需要完整的肌动蛋白细胞骨架。以下观察结果表明,肌动球蛋白介导的收缩力和力的产生是纤维连接蛋白纤维生成的几个组成部分的先决条件,从而解释了这一发现。为了促进可溶性纤维连接蛋白并入ECM的原纤维,必须产生依赖Rho的张力,以将纤维连接蛋白从紧密构象转换为较不紧密构象[155,156,157]. 这一过程暴露了允许成熟纤维的纤维结合蛋白-纤维结合蛋白交联的分子模块[146,147]. Rho激活通过整合素依赖性信号传导或通过相关跨膜连接受体(如syndecan 4或tenascin-C)的激活发生[158,159]. 这些信号的最终结果是张力传递到纤连蛋白基质[155,156]组装纤维连接蛋白基质所需的[160]. 在由整合素α5β1组成并富含局灶黏附蛋白张力蛋白的特殊黏附部位,纤维粘连蛋白原纤维发生进一步重塑[161,162]. 随着时间的推移,这些粘附结构相对于肌动蛋白应力纤维介导的向心位错的ECM是可移动的[163]. 纤维黏附介导的纤维连接蛋白聚合物的拉伸作用是暴露纤维连接蛋白分子沿线的位点,从而进一步整合和基质重塑[146,148,164].

愈合伤口收缩

成人肉芽组织愈合的一个普遍特征是伴随肉芽组织成熟出现伤口收缩。此外,肉芽组织可以对可溶性激动剂产生收缩力[2]. 在完整的肉芽组织中,肌动蛋白应力纤维的出现与收缩力的产生有关[62]成纤维细胞收缩未捆绑的胶原凝胶需要完整的肌动蛋白微丝[85]. 胶原晶格的皱褶是由细胞骨架发育良好的细胞介导的,如成纤维细胞[165]细胞松弛素B或细胞松弛素D等试剂对肌动蛋白细胞骨架的破坏完全抑制了这种能力[81,166]. 此外,研究表明,孤立的应力纤维会因ATP和Mg而缩短++[167,168,169]表明肌动蛋白应力纤维具有缩短的内在能力。应力纤维收缩受非肌肌球蛋白的Rho依赖性调节控制[47,58]这与应力纤维有关[56]. 然而,在完整细胞中,应力纤维与局部黏附复合体紧密相关[6]产生等距张力[165]在局灶性粘连紧密结合到不动的基底上的情况下。肌动蛋白微丝的进一步重塑可以调节细胞培养系统中额外收缩力的产生[170]在完整的肉芽组织中[62]. 该系统用于进一步重塑肉芽组织基质元素(如纤连蛋白),并促进伤口闭合[11].

迁移期间尾巴缩回

虽然早期的研究表明肌动蛋白应力纤维的形成可能对迁移能力很重要,但随后的研究表明,肌动蛋白应激纤维产生的力超出了迁移细胞所需的力[165]. 具有强健肌动蛋白应激纤维系统(收缩表型)的细胞迁移较少[171]高度能动的细胞产生的牵引力最弱[165]. 肌动蛋白应激纤维形成的靶向破坏将细胞转化为更迁移的表型[172,173].

尽管如此,Rho依赖性肌动球蛋白的收缩对高度运动细胞的尾部收缩显然很重要[174,175,176,177]肌动蛋白应力纤维朝向运动方向[178,179]. 因此,应力纤维形成的定位对于调节迁移能力显然很重要。有关肌动蛋白应力纤维在迁移中的作用的详细讨论,请参见[47].

平移机械的国产化

除了肌成纤维细胞收缩和运动功能中肌动蛋白细胞骨架的功能性作用已得到充分证实外,新出现的证据表明肌动蛋白细胞骨架参与了基因表达的精确时空定位[180,181]. 这可能通过某些mRNA转录物(如β-actin mRNA)的调节细胞内定位来实现。所谓的mRNA定位“zipcode”假说是通过3'UTR内特定核糖核苷酸序列与细胞内RNA-结合蛋白的相互作用来实现的,允许特定转录物的亚细胞靶向区域从头开始需要基因表达[182]例如在迁移的成纤维细胞中形成跛足。这一过程在细胞形态发生中似乎很重要,并且在物种之间是保守的[183]. β-肌动蛋白mRNA的亚细胞靶向性是对生长因子的反应[184]是肌动蛋白应力纤维形成所必需的[185]和局部粘连[186,187]在成纤维细胞中,这一过程可能在由多种机制诱导的肌成纤维细胞分化过程中起作用。肌动蛋白和微管丝都与含有mRNA的拉链的运动有关[188,189,190]. 在成纤维细胞中,肌动蛋白丝与mRNA共同定位,通常位于局部粘连部位[186,187]而这种共同定位依赖于完整的肌动蛋白细胞骨架和肌动球蛋白的rho介导收缩[191] [192,193]. β-肌动蛋白mRNA向成纤维细胞边缘的募集可以通过应用整合素依赖性张力或通过血清刺激来诱导[184,193,194]. 此外,翻译装置本身的成分,如多核糖体[187,195,196,197,198,199]和伸长起始因子1a(eIF1a)[200,201,202,203,204],定位于肌动蛋白细胞骨架,需要肌动蛋白丝的完整性来维持这种定位[205]. Zipcode binding protein-1(ZBP-1)是在真核细胞中发现的第一个与3'-UTR中的mRNA结合并通过与肌动蛋白的相互作用介导空间定位的蛋白。ZBP-1还通过抑制80S核糖体的形成起到翻译阻遏物的作用。细胞边缘附近SRC对ZBP-1的磷酸化导致ZBP1释放对β-肌动蛋白mRNA翻译的抑制[180]. 因此,含有zipcode序列的mRNAs的定位翻译需要蛋白质的协调运动,包括多核糖体、翻译机制和含有zipccode的mRNA通过肌动蛋白丝状物移动到亚细胞位置进行组装。一旦到达该位点,通过SRC介导的ZBP-1磷酸化介导翻译抑制的释放,从而使局部基因表达发生[180].

多聚体和相关mRNA调控靶向的一个潜在功能后果是细胞骨架蛋白的局部翻译,这些蛋白在细胞功能(如迁移)过程中对细胞极化或局部黏附形成很重要[206]. 这一点得到了在局灶性接触位点进行翻译的肌动蛋白细胞骨架中含有编码信使核糖核酸的拉链的直接可视化的支持[207,208]. 此外,使用靶向β-肌动蛋白mRNA邮政编码区的反义寡核苷酸破坏mRNA靶向性,导致在迁移过程中抑制跛足形成的方向性[209]. 此外,稳态mRNA靶向在正常细胞极性的形成和抑制转移潜能方面也很重要[210,211,212].

转录调控

肌动蛋白细胞骨架在细胞骨架基因表达的翻译控制中起到补充作用,积极参与调控编码细胞骨架和收缩元件的基因的转录活性。

肌动蛋白依赖性转录调控是通过肌动蛋白结合蛋白的亚细胞定位来实现的,肌动蛋白可以作为转录因子的辅激活因子。这种调节的最好例子是控制转录因子、血清反应因子(SRF)的活性。SRF是一种转录因子,在发育和平滑肌细胞分化过程中控制肌原基因的表达[213]. SRF对血清的反应最初显示依赖于小GTPase Rho的活性,它也重组肌动蛋白细胞骨架[214]. 随后,发现肌动蛋白动力学对SRF活性也是必需的,肌动蛋白聚合的诱导导致SRF依赖性基因表达的诱导[215]. 这种效应似乎取决于G(单体)肌动蛋白库的水平。最终,我们确定这种作用是由肌动蛋白结合蛋白MKL1/心肌相关转录因子-A(MRTF-A)介导的,该蛋白已知与单体肌动蛋白(G)有关[216]. 肌动蛋白聚合后(F-肌动蛋白形成),MRTF-A从单体肌动蛋白中释放并转移到细胞核,与SRF结合激活SRF靶基因。

这种信号机制提供了一种优雅的方式,通过这种方式,细胞外信号可以被转导到基因表达的效应中。这已经在成纤维细胞中建立了激素受体-配体相互作用,如LPA、磷酸鞘氨醇-1和内皮素-1,已知它们通过G蛋白偶联受体激活Rho蛋白发挥作用[217,218,219]. 其他证据支持该机制在粘附受体与相互作用中的作用,例如整合素介导的Rho在力传导过程中的激活[220]. 此外,TGF-β本身的非规范信号似乎激活了rho和MRTF-A易位,上调了肌成纤维细胞分化过程中SRF的表达和激活[221,222,223]. 在肌成纤维细胞分化过程中,细胞内含物破坏或TGF-β诱导的上皮-间充质转化也需要该途径[224,225]. 有趣的是,TGF-β诱导rho/actin/MRTF-A/SRF信号通路的成分,如G蛋白偶联受体激动剂、rho蛋白和rhoGEF以一种smad依赖的方式。通过这种方式,MRTF-A/SRF激活可能与肌成纤维细胞分化过程中的smad依赖基因表达互补,进一步增强了一部分SRF-依赖基因的表达,超出了smad单独诱导的水平,并可能启动该途径以供其他激动剂(如GPCR受体激动剂)额外激活该数据支持该信号通路的模型,将其作为促进肌成纤维细胞分化的各种细胞环境依赖信号的重要汇聚点。肌动蛋白/MRTF-A/SRF信号通路已被证明控制多种细胞系统中收缩器、黏附复合体和细胞骨架中的许多基因[226,227]. 鉴于细胞骨架完整性、收缩性和张力在促进肌成纤维细胞分化方面的重要性,SRF-依赖性基因表达可能是在伤口愈合和纤维化过程中促进这一转变的重要前馈机制。

最后,核肌动蛋白聚合物也可以与RNA聚合酶I、II、III相互作用[228,229,230]这种相互作用是转录起始所必需的。然而,目前尚不清楚聚合肌动蛋白或肌动蛋白的收缩性是否需要实现这一功能,或者细胞溶质肌动蛋白结构是否有助于调节这一功能[230,231]. 未来对核肌动蛋白在转录机制控制中的作用,以及转录因子和共激活物的定位的研究,很可能会对肌动蛋白在此亚细胞室中的功能产生新的见解。

肌动蛋白细胞骨架在损伤反应过程中如何参与肌成纤维细胞这些多重功能的整合?

鉴于肌成纤维细胞生物学中影响肌动蛋白细胞骨架的多种信号,伤口愈合过程中肌成纤维组织行为的时间动力学仍然很难分析。尽管如此,几个主题是显而易见的,包括存在相互增强的信号,促进额外的肌成纤维细胞活化和基质重塑。肌动蛋白细胞骨架影响的互连功能示意图如所示图2并对肌成纤维细胞生物学的机制提供一些见解。当成纤维细胞在化学引诱剂的影响下迁移到受损组织时,成纤维细胞可能会遇到类似于正常组织的低硬度[232]. 成纤维细胞可以表达和释放基质金属蛋白酶,以帮助溶解预先存在的基质,同时合成和分泌糖蛋白、早期胶原形式和EDA纤连蛋白,这些蛋白依赖于典型的TGF-β/smad信号,而不是TGF-依赖于rho/actin/MRTF-A/SRF信号。同时,当迁移到伤口部位时,成纤维细胞开始形成更稳定的局灶性粘连,相应的诱导和需求rho信号/肌动蛋白应激纤维的形成和收缩力的发展。由于细胞收缩力的增加,这一过程迅速自我增强,并进一步诱导和扩大局灶性粘附大小[97]张力通过其与纤维连接蛋白的连接传递到周围基质。纤维连接蛋白的张力依赖性去折叠导致额外的纤维连接蛋白交联和结合。在细胞内,肌动蛋白细胞骨架在将这些机械信号转导为生物化学信号中发挥着关键作用,通过MRTF-a易位激活促存活信号的FAK依赖性激活和SRF依赖性基因表达。随着重构过程的进行,细胞骨架和收缩基因的SRF依赖性基因表达可通过诱导平滑肌特异性肌球蛋白和α-SMA的表达,促进收缩机制的增强和重构。总的来说,这些事件将进一步增强收缩力以及细胞内和基质张力的发展。TIMP的表达补充了基质成分的产生,可以抑制新分泌的基质元素的溶解,而肌成纤维细胞会积极整合和重组这些元素,包括纤维纤维连接蛋白。收缩性和基质积累、合并和重组增加的总体效果是基质硬度增加,这为细胞内依赖肌动蛋白的信号提供了正反馈。

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肌动蛋白细胞骨架在调节肌成纤维细胞功能中的作用。肌动蛋白细胞骨架在肌成纤维细胞分化过程中调节几个机械功能(局部粘附形成、收缩和基质重塑),但同时控制参与这些相同机械功能的几个基因的转录和翻译。通过这种方式,肌动蛋白应激纤维在放大导致肌成纤维细胞分化的信号方面发挥着重要作用。这种反馈是双向的,因为基体刚度、焦点粘附形成和收缩性都是增强应力纤维形成的刺激因素。

鉴于肌动蛋白依赖性信号在整合多种输入促进肌成纤维细胞分化和基质重塑方面的潜在作用,它是纤维化疾病药物干预的一个诱人目标。潜在的干预点包括抑制Rho信号传导,包括ROCK1或ROCK2,或新发现的小分子甲酸抑制剂[233]. 这些方法具有广泛干扰肌动蛋白依赖信号的优点,但其中许多方法可能对正常器官功能产生重大不利影响。一种潜在的更有用的方法可能是尝试针对肌成纤维细胞分化过程中通过肌动蛋白发出信号的适应性反应,从而干扰发生的前馈信号。一种潜在的策略是通过阻断SRF共激活剂来靶向肌动蛋白依赖性转录调控。值得注意的是,SRF共激活物MRTF-A的种系缺失产生了存活的动物,可以保护其免受心肌梗死后心脏纤维化的影响[221].

总结和未来方向

肌动蛋白肌丝被鉴定为表征肌成纤维细胞表型的原始表型调制之一。早期推测,这种突出的细胞骨架结构在伤口愈合和纤维化过程中促进了肌成纤维细胞的机械功能,实验数据证实了其在迁移、收缩和基质重塑中的作用。最近的研究已经确定了肌动蛋白细胞骨架在机械刺激向生化信号转导以及转录和翻译调控中的其他作用。在介导这些效应的过程中,肌动蛋白细胞骨架是各种信号输入(包括基质成分、可溶性生长因子和体力输入)的中央集成商。作为对这些不同信号输入的响应,肌动蛋白细胞骨架可以调节细胞内和细胞外张力生成、局部粘附形成和基质重塑,以及导致细胞骨架、收缩性、局部粘附和基质基因表达增加的细胞信号,在伤口愈合过程中增强这些肌成纤维细胞的功能。鉴于这些不同的作用,介导这些反应的肌动蛋白相关分子是纤维形成过程中肌成纤维细胞行为调节的一个有吸引力的靶点。

未来的研究应揭示肌动蛋白细胞骨架是如何通过其作为支架的作用,使信号成分接近,从而激活局灶黏附复合体附近的生化信号的,或者可能通过张力依赖性募集的额外机制,导致信号分子的物理修饰,从而激活它们。需要进行更多的研究,以了解修饰细胞(如肌成纤维细胞)的适应性反应与传统细胞模型在局灶黏附复合体组装及其对基质相互作用的影响方面的差异。确定这样的差异可能会告诉我们如何最好地干扰肌动蛋白依赖性信号来抑制肌成纤维细胞反应,而不干扰组织内稳态。此反应中的一组潜在靶点是肌动蛋白/MRTF-A/SRF依赖性基因表达,已知其调节适应性收缩基因表达,但在肌成纤维细胞分化过程中诱导更广泛的粘附和基质相关基因也可能很重要。这种反应的关键成分的识别可能为广泛的纤维化疾病的干预提供新的靶点。

总之,自从肌动蛋白细胞骨架最初被确定为肌成纤维细胞的关键超微结构成分以来,它已被证明参与了对其功能至关重要的多种作用。未来的研究应阐明这些功能,并可能对异常纤维化反应的病理生物学产生有益的见解。

致谢

赠款支持:NIH 5K08HL093367(N.S);CSCR 2010年早期职业发展奖(N.S.);ALA Dalsemer研究补助金(N.S.);NIH 5R01HL071755(N.D.);5R01GM085058(未注明)

感谢Douglas Yau博士和Jacob Kach在编写本手稿期间提供的编辑协助。

脚注

出版商免责声明:这是一份未经编辑的手稿的PDF文件,已被接受出版。作为对客户的服务,我们正在提供这份早期版本的手稿。手稿在以最终可引用的形式出版之前,将经过编辑、排版和校对结果证明。请注意,在制作过程中可能会发现可能影响内容的错误,适用于该期刊的所有法律免责声明均适用。

工具书类

1Gabbiani G,Ryan GB,Majne G。肉芽组织中存在改性成纤维细胞及其在伤口收缩中的可能作用。体验。1971;27:549–550.[公共医学][谷歌学者]
2Majno G,Gabbiani G,Hirschel BJ,Ryan GB,Statkov PR.肉芽组织体外收缩:与平滑肌的相似性。科学。1971;173:548–550.[公共医学][谷歌学者]
三。Ryan GB、Cliff WJ、Gabbiani G、Irle C、Montandon D等。人体肉芽组织中的肌成纤维细胞。Hum Pathol(Hum病态)。1974年;5:55–67.[公共医学][谷歌学者]
4歌手II。纤维连接蛋白:仓鼠和人成纤维细胞中含纤维连连接蛋白纤维和5纳米微丝束的跨膜联合。单元格。1979;16:675–685.[公共医学][谷歌学者]
5Eyden B.肌成纤维细胞:对有争议问题的评估以及对诊断和研究有用的定义。超微病理学。2001;25:39–50。[公共医学][谷歌学者]
6歌手II、考卡DW、卡扎兹DM、克拉克RA。肉芽组织中纤维连接蛋白和肌动蛋白纤维的体内共分布:肌成纤维细胞表面纤维连接的免疫荧光和电子显微镜研究。细胞生物学杂志。1984;98:2091–2106. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Panner BJ,Honig CR。脊椎动物平滑肌中的纤维超微结构和组织。基于肌动蛋白和肌球蛋白定位的收缩假说。细胞生物学杂志。1967;35:303–321. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
8Buckley IK,Porter KR。活培养细胞中的细胞质纤维。光学和电子显微镜研究。原生质体。1967;64:349–380.[公共医学][谷歌学者]
9Goldman RD,Lazarides E,Pollack R,Weber K。肌动蛋白在非肌肉细胞中的分布。肌动蛋白抗体在小鼠3T3细胞微丝束内肌动蛋白定位中的应用。实验细胞研究。1975;90:333–344.[公共医学][谷歌学者]
10Ehrlich HP,Hembry RM。大鼠冷冻和烧伤愈合中成纤维细胞的比较研究。《美国病理学杂志》。1984;117:218–224. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Tomasek JJ、Gabbiani G、Hinz B、Chaponnier C、Brown RA。肌成纤维细胞与结缔组织重塑的机械调节。Nat Rev Mol细胞生物学。2002年;:349–363.[公共医学][谷歌学者]
12Desmouliere A、Chaponnier C、Gabbiani G。组织修复、收缩和肌成纤维细胞。伤口修复再生。2005;13:7–12.[公共医学][谷歌学者]
13Hinz B、Phan SH、Thannickal VJ、Galli A、Bochaton-Piallat ML等。肌成纤维细胞:一种功能,多种来源。美国病理学杂志。2007;170:1807–1816. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14Powell DW、Mifflin RC、Valentich JD、Crowe SE、Saada JI等。肌成纤维细胞。旁分泌细胞在健康和疾病中具有重要作用。美国生理学杂志。1999;277:C1–C9。[公共医学][谷歌学者]
15Kapoun AM、Gaspar NJ、Wang Y、Damm D、Liu YW等。转化生长因子β受体1型(TGFbetaRI)激酶活性而非p38激活是TGFbeta RI诱导的肌成纤维细胞分化和纤维化前基因表达所必需的。摩尔药理学。2006;70:518–531.[公共医学][谷歌学者]
16Serini G、Bochaton-Piallat ML、Ropraz P、Geinoz A、Borsi L等。纤维连接蛋白结构域ED-A对通过转化生长因子-beta1诱导肌纤维母细胞表型至关重要。细胞生物学杂志。1998;142:873–881. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Borsi L、Castellani P、Risso AM、Leprini A、Zardi L。转化生长因子-beta调节纤维连接蛋白信使RNA前体的剪接模式。FEBS信函。1990;261:175–178.[公共医学][谷歌学者]
18Roberts AB、Sporn MB、Assoian RK、Smith JM、Roche NS等。转化生长因子β型:体内快速诱导纤维化和血管生成,体外刺激胶原形成。美国国家科学院院刊。1986;83:4167–4171. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
19Roberts CJ、Birkenmeier TM、McQuillan JJ、Akiyama SK、Yamada SS等。转化生长因子β刺激培养的人肺成纤维细胞表达纤维连接蛋白及其受体的两个亚单位。生物化学杂志。1988;263:4586–4592.[公共医学][谷歌学者]
20Fine A,Goldstein RH。转化生长因子-β对肺成纤维细胞增殖和胶原形成的影响。生物化学杂志。1987;262:3897–3902。[公共医学][谷歌学者]
21Hanamura N、Yoshida T、Matsumoto E、Kawarada Y、Sakakura T。人结肠腺瘤和癌中肌成纤维细胞、血管细胞和上皮细胞纤维连接蛋白和tenascin-C mRNA的表达。国际癌症杂志。1997;73:10–15.[公共医学][谷歌学者]
22De Wever O、Nguyen QD、Van Hoorde L、Bracke M、Bruyneel E等。体外由肌成纤维细胞产生的Tenascin-C和SF/HGF通过RhoA和Rac向人类结肠癌细胞提供聚合的前侵入信号。美国财务会计准则委员会J。2004;18:1016–1018.[公共医学][谷歌学者]
23总的来说,CM、Wrana JL、Sodek J.转化生长因子对胶原酶、72 kDa-丙明胶酶、TIMP和PAI-1在大鼠骨细胞群和人成纤维细胞中的表达的调节。连接组织研究。1989;20:289–294.[公共医学][谷歌学者]
24总的来说,CM、Wrana JL、Sodek J.通过转化生长因子-β对人类成纤维细胞中胶原酶、72-kDa前胶氨酸酶和金属内蛋白酶抑制剂表达的独立调节。生物化学杂志。1989;264:1860–1869.[公共医学][谷歌学者]
25Eddy AA。肾间质纤维化的分子见解。《美国肾脏病学会杂志》。1996;7:2495–2508.[公共医学][谷歌学者]
26Eddy AA。蛋白尿大鼠肾间质纤维化促进基因的表达。肾脏Int补充剂。1996;54:S49–S54。[公共医学][谷歌学者]
27Chambers RC、Leoni P、Kaminski N、Laurent GJ、Heller RA。成纤维细胞对转化生长因子-beta1反应的整体表达谱揭示了分化抑制因子-1的诱导,并提供了平滑肌细胞表型转换的证据。《美国病理学杂志》。2003;162:533–546. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
28Malmstrom J、Lindberg H、Lindbeg C、Bratt C、Wieslander E等。转化生长因子-beta 1特异性诱导参与肌成纤维细胞收缩器的蛋白质。分子细胞蛋白质组学。2004;:466–477.[公共医学][谷歌学者]
29Evans JN、Kelley J、Krill J、Low RB、Adler KB。肺纤维化中的肌成纤维细胞。胸部。1983;83:97秒–98秒。[公共医学][谷歌学者]
30Kuhn C,日本麦当劳。肌成纤维细胞在特发性肺纤维化中的作用。活性细胞外基质合成位点的超微结构和免疫组织化学特征。《美国病理学杂志》。1991;138:1257–1265. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
31Phan SH.肌成纤维细胞在肺纤维化中的作用。肾脏Int补充剂。1996;54:S46–S48。[公共医学][谷歌学者]
32Darby I、Skalli O、Gabbiani G.实验性伤口愈合期间,肌成纤维细胞瞬时表达α-平滑肌肉肌动蛋白。实验室投资。1990;63:21–29.[公共医学][谷歌学者]
33Desmouliere A,Gabbiani G.病理状态下成纤维细胞骨架特征的调节:细胞外基质和细胞因子的作用。细胞运动细胞骨架。1994;29:195–203.[公共医学][谷歌学者]
34韦尔奇议员、奥德兰GF、克拉克RA。F-肌动蛋白束形成、胶原和纤维连接蛋白基质组装以及纤维连连接蛋白受体表达与伤口收缩的时间关系。细胞生物学杂志。1990;110:133–145. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
35Pache JC、Christakos PG、Gannon DE、Mitchell JJ、Low RB等。肺弥漫性肺泡损伤中的肌成纤维细胞。中度病理学。1998;11:1064–1070.[公共医学][谷歌学者]
36Porter KE,Turner NA。心脏成纤维细胞:心肌重塑的心脏。药物治疗学。2009;123:255–278.[公共医学][谷歌学者]
37Feigl W、Susani M、Ulrich W、Matejka M、Losert U等。实验性血细胞血栓形成的组织。单核细胞转化为肌成纤维细胞和内皮细胞的证据。Virchow Arch A Pathol Anat Histopathol公司。1985;406:133–148.[公共医学][谷歌学者]
38Kunz-Shughart LA,Knuechel R.肿瘤相关成纤维细胞(第一部分):肿瘤发展和进展中的活跃基质参与者?组织病理学。2002年;17:599–621.[公共医学][谷歌学者]
39Kunz-Schughart LA,Knuechel R.肿瘤相关成纤维细胞(第二部分):对肿瘤组织的功能影响。组织病理学。2002年;17:623–637.[公共医学][谷歌学者]
40Meran S、Steadman R.肾纤维化中的成纤维细胞和肌成纤维细胞。国际实验病理学杂志。2011 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
41Rudolph R,McClure WJ,Woodward M.慢性酒精性肝硬化中的收缩性成纤维细胞。胃肠病学。1979;76:704–709.[公共医学][谷歌学者]
42VandeBerg JS、Rudolph R、Gelberman R、Woodward MR。Dupuytren挛缩中皮肤与结节和脐带的超微结构关系。整形再造外科。1982;69:835–844.[公共医学][谷歌学者]
43Eddy RJ、Petro JA、Tomasek JJ。肉芽组织和增生性瘢痕“肌成纤维细胞”非肌肉性质的证据。免疫荧光研究。《美国病理学杂志》。1988;130:252–260。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
44Hayashi T、Stetler-Stevenson WG、Fleming MV、Fishback N、Koss MN等。弥漫性肺泡损伤和特发性肺纤维化患者肺部金属蛋白酶及其组织抑制剂的免疫组织化学研究。《美国病理学杂志》。1996;149:1241–1256。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
45Selman M、Ruiz V、Cabrera S、Segura L、Ramirez R等。特发性肺纤维化的TIMP-1、−2、−3和−4。一个普遍存在的非降解性肺微环境?美国生理学杂志肺细胞分子生理学。2000;279:L562–L574。[公共医学][谷歌学者]
46Bensadoun ES,Burke AK,Hogg JC,Roberts CR。肺纤维化中的蛋白聚糖沉积。Am J Respir Crit Care Med.美国急救医学杂志。1996;154:1819–1828.[公共医学][谷歌学者]
47Pellegrin S、Mellor H.肌动蛋白应力纤维。细胞科学杂志。2007;120:3491–3499.[公共医学][谷歌学者]
48Kreis TE、Winterhalter KH、Birchmeier W.微量注射到人成纤维细胞中的荧光标记肌动蛋白的体内分布和周转。美国国家科学院院刊。1979;76:3814–3818. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
49Dugina V、Fontao L、Chaponnier C、Vasiliev J、Gabbiani G。肌纤维母细胞分化过程中的局部粘连特征受细胞内和细胞外因素控制。细胞科学杂志。2001;114:3285–3296.[公共医学][谷歌学者]
50海因斯RO。整合素:双向变构信号机。单元格。2002年;110:673–687.[公共医学][谷歌学者]
51Geiger B,Bershadsky A,Pankov R,Yamada KM。细胞外基质间的跨膜串扰——细胞骨架串扰。Nat Rev Mol细胞生物学。2001;2:793–805.[公共医学][谷歌学者]
52Dubash AD、Menold MM、Samson T、Boulter E、Garcia-Mata R等人,第1章。焦点粘连:旧结构上的新角度。Int-Rev细胞分子生物学。2009;277:1–65.[公共医学][谷歌学者]
53整合素:细胞粘附中的多功能性、调节和信号传递。单元格。1992;69:11–25.[公共医学][谷歌学者]
54Lazarides E.组织培养细胞中肌动蛋白丝结构的免疫荧光研究。组织化学与细胞化学杂志。1975;23:507–528.[公共医学][谷歌学者]
55Lazarides E,Burridge K.Alpha-actinin:非肌肉细胞中肌肉结构蛋白的免疫荧光定位。单元格。1975;6:289–298.[公共医学][谷歌学者]
56Weber K,Groeschel-Stewart U。肌球蛋白抗体:非肌肉细胞中含肌球蛋白细丝的特异性可视化。美国国家科学院院刊。1974年;71:4561–4564. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
57Burridge K,Chrzanowska-Wodnicka M.局部粘连、收缩性和信号传导。年收入细胞开发生物。1996;12:463–518.[公共医学][谷歌学者]
58Chrzanowska-Wodnicka M,Burridge K.Rho刺激的收缩力驱动应力纤维和局部粘连的形成。细胞生物学杂志。1996;133:1403–1415. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
59Chaponner C,Gabbiani G。肌动蛋白亚型表达改变的病理情况。病理学杂志。2004;204:386–395.[公共医学][谷歌学者]
60Serini G,Gabbiani G。肌成纤维细胞活性和表型调节的机制。实验细胞研究。1999;250:273–283。[公共医学][谷歌学者]
61Hinz B,Gabbiani G,Chaponnier C.α-平滑肌肌动蛋白的NH2末端肽在体内外抑制肌成纤维细胞产生的力。细胞生物学杂志。2002年;157:657–663. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
62Hinz B、Mastrangelo D、Iselin CE、Chaponnier C、Gabbiani G。机械张力控制肉芽组织收缩活动和肌成纤维细胞分化。美国病理学杂志。2001;159:1009–1020. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
63Ridley AJ,Hall A.小GTP结合蛋白Rac和Rho调节的肌动蛋白组织的独特模式。冷泉Harb Symb Quant生物。1992;57:661–671。[公共医学][谷歌学者]
64Chardin P、Boquet P、Madaule P、Popoff MR、Rubin EJ等。哺乳动物G蛋白rhoC通过肉毒梭菌外酶C3进行ADP-核糖基化,并影响Vero细胞中的肌动蛋白微丝。Embo J。1989;8:1087–1092. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
65Paterson HF、Self AJ、Garrett MD、Just I、Aktories K等。微量注射重组p21rho可诱导细胞形态的快速变化。细胞生物学杂志。1990;111:1001–1007. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
66Giry M、Popoff MR、von Eichel-Streiber C、Boquet P。HeLa细胞中RhoA、-B和-C GTPases的瞬时表达增强了对艰难梭菌毒素A和B的抵抗力,但对索氏梭菌致死毒素的抵抗力不强。感染免疫。1995;63:4063–4071. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
67Vardouli L、Vasilaki E、Papadimitriou E、Kardasis D、Stournaras C。由Smad蛋白和Rho GTPases介导的TGF-beta诱导肌动蛋白重组的新机制。2月J日。2008;275:4074–4087.[公共医学][谷歌学者]
68Riento K,Ridley AJ。岩石:细胞行为中的多功能激酶。Nat Rev Mol细胞生物学。2003;4:446–456.[公共医学][谷歌学者]
69Yoneda A、Multhaupt HA、Couchman JR。Rho激酶I和II调节肌球蛋白II活性的不同方面。细胞生物学杂志。2005;170:443–453. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
70Yoneda A、Ushakov D、Multhaupt HA、Couchman JR。纤维结合蛋白基质组装需要Rho激酶I和-II的不同贡献。分子生物学细胞。2007;18:66–75. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
71Hotulainen P和Lappalainen P。运动细胞中两种不同的肌动蛋白组装机制产生应力纤维。细胞生物学杂志。2006;173:383–394. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
72Watanabe N、Kato T、Fujita A、Ishizaki T、Narumiya S。mDia1和ROCK在Rho诱导肌动蛋白重组中的合作。自然细胞生物学。1999;1:136–143.[公共医学][谷歌学者]
73Zigmond SH.Formin诱导肌动蛋白丝成核。当前操作细胞生物学。2004;16:99–105.[公共医学][谷歌学者]
74Leung T,Chen XQ,Manser E,Lim L.p160 RhoA结合激酶ROKα是激酶家族的成员,参与细胞骨架的重组。分子细胞生物学。1996;16:5313–5327. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
75渡边N、Madaule P、Reid T、Ishizaki T、渡边G等。p140mDia是果蝇的哺乳动物同源物,是Rho小GTPase的靶蛋白,也是profilin的配体。Embo J。1997;16:3044–3056. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
76Katoh K、Kano Y、Amano M、Onishi H、Kaibuchi K等。Rho激酶介导的孤立应力纤维收缩。细胞生物学杂志。2001;153:569–584. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
77Honer B,Jockusch BM。通过抗肌球蛋白抗体探测的应力纤维动力学。欧洲细胞生物学杂志。1988;47:14–21.[公共医学][谷歌学者]
78Lamb NJ、Fernandez A、Conti MA、Adelstein R、Glass DB等。cAMP依赖性蛋白激酶和肌球蛋白轻链激酶对活的非肌肉细胞肌动蛋白微丝完整性的调节。细胞生物学杂志。1988;106:1955–1971. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
79Fernandez A、Brautigan DL、Mumby M、Lamb NJ。蛋白磷酸酶1型(而非2A型)调节活的非肌肉细胞中的肌动蛋白微丝完整性和肌球蛋白轻链磷酸化。细胞生物学杂志。1990;111:103–112. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
80Volberg T,Geiger B,Citi S,Bershadsky AD。蛋白激酶抑制剂H-7对微丝系统收缩性、完整性和膜锚定的影响。细胞运动细胞骨架。1994;29:321–338.[公共医学][谷歌学者]
81Bell E,Ivarsson B,Merrill C。体外不同增殖潜能的人成纤维细胞通过收缩胶原晶格产生组织样结构。美国国家科学院院刊。1979;76:1274–1278. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
82Bellows CG,Melcher AH,Aubin JE。从牙周膜、牙龈和骨骼培养的细胞对胶原凝胶的收缩和组织表明细胞类型之间的功能差异。细胞科学杂志。1981;50:299–314.[公共医学][谷歌学者]
83Farsi JM,Aubin JE。成纤维细胞诱导三维水合胶原蛋白凝胶收缩过程中的微丝重排。细胞模型。1984;4:29–40.[公共医学][谷歌学者]
84Mochitate K,Pawelek P,Grinnell F.收缩胶原蛋白凝胶的应力松弛:肌动蛋白纤维束的破坏,细胞表面纤维连接蛋白的释放,以及DNA和蛋白质合成的下调。实验细胞研究。1991;193:198–207.[公共医学][谷歌学者]
85Tomasek JJ、Haaksma CJ、Eddy RJ、Vaughan MB。成纤维细胞收缩发生在附着的胶原晶格张力释放时:依赖于有组织的肌动蛋白细胞骨架和血清。Anat记录。1992;232:359–368。[公共医学][谷歌学者]
86Choquet D,Felsenfeld DP,Sheetz MP。细胞外基质刚性导致整合素-细胞骨架连接增强。单元格。1997;88:39–48.[公共医学][谷歌学者]
87Riveline D、Zamir E、Balaban NQ、Schwarz US、Ishizaki T等。作为机械传感器的焦点接触:外部施加的局部机械力通过依赖mDia1和岩石的机制诱导焦点接触的增长。细胞生物学杂志。2001;153:1175–1186. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
88Galbraith CG、Yamada KM、Sheetz MP。力与焦点复合体发展之间的关系。细胞生物学杂志。2002年;159:695–705. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
89Arora PD、Narani N、McCulloch CA。胶原凝胶的顺应性调节成纤维细胞中α-平滑肌肌动蛋白的转化生长因子-β诱导。《美国病理学杂志》。1999;154:871–882. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
90Hinz B.力的主人和仆人:基质粘附在肌成纤维细胞力感知和传递中的作用。欧洲细胞生物学杂志。2006;85:175–181.[公共医学][谷歌学者]
91Yamada KM、Yamada SS、Pastan I.细胞表面蛋白部分恢复形态、粘附性和对转化成纤维细胞运动的接触抑制。美国国家科学院院刊。1976;73:1217–1221. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
92Wiff PJ、Hinz B.整合素和潜在转化生长因子β1的激活——一种密切的关系。欧洲细胞生物学杂志。2008;87:601–615.[公共医学][谷歌学者]
93Margadant C,Sonnenberg A.整合素-TGF-beta在纤维化、癌症和伤口愈合中的串扰。EMBO代表。2010;11:97–105。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
94Wipf PJ、Rifkin DB、Meister JJ、Hinz B。肌成纤维细胞收缩激活细胞外基质中潜在的TGF-β1。细胞生物学杂志。2007;179:1311–1323。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
95Desmouliere A、Geinoz A、Gabbiani F、Gabbani G。转化生长因子-beta 1诱导肉芽组织肌成纤维细胞以及静止和生长的培养成纤维细胞中α-平滑肌肌动蛋白的表达。细胞生物学杂志。1993;122:103–111. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
96Vaughan MB、Howard EW、Tomasek JJ。转化生长因子-beta1促进肌成纤维细胞的形态和功能分化。实验细胞研究。2000;257:180–189.[公共医学][谷歌学者]
97Hinz B、Dugina V、Ballestrem C、Wehrle-Heller B、Chaponnier C。Alpha-平滑肌肌动蛋白对肌成纤维细胞的局灶黏附成熟至关重要。分子生物学细胞。2003;14:2508–2519. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
98Ignotz RA,Heino J,Massague J.通过转化生长因子-β调节细胞粘附受体。调控卵黄凝集素受体和LFA-1。生物化学杂志。1989;264:389–392.[公共医学][谷歌学者]
99Ignotz RA,Massague J.转化生长因子-β刺激纤维连接蛋白和胶原蛋白的表达,并将其并入细胞外基质。生物化学杂志。1986;261:4337–4345。[公共医学][谷歌学者]
100Leask A,Abraham DJ。TGF-β信号转导与纤维化反应。法赛布·J。2004;18:816–827.[公共医学][谷歌学者]
101Phan SH.肺纤维化中的成纤维细胞表型。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2003;29:S87–S92。[公共医学][谷歌学者]
102Broekelmann TJ、Limper AH、Colby TV、McDonald JA。转化生长因子β1存在于人肺纤维化细胞外基质基因表达部位。美国国家科学院院刊。1991;88:6642–6646. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
103桑塔纳A、萨克塞纳B、诺布尔NA、金李、马歇尔BC。博莱霉素诱导的肺纤维化中转化生长因子β亚型(β1、β2、β3)的表达增加。美国呼吸细胞分子生物学杂志。1995;13:34–44.[公共医学][谷歌学者]
104Phan SH,Kunkel SL。博莱霉素诱导的肺纤维化中肺细胞因子的产生。实验肺研究。1992;18:29–43.[公共医学][谷歌学者]
105Sime PJ,Xing Z,Graham FL,Csaky KG,Gauldie J.腺病毒介导的活性转化生长因子-beta1基因转移诱导大鼠肺长期严重纤维化。临床投资杂志。1997;100:768–776. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
106Kang HR、Cho SJ、Lee CG、Homer RJ、Elias JA。转化生长因子(TGF)-β1通过涉及基质金属蛋白酶-12的Bax依赖性bid激活途径刺激肺纤维化和炎症。生物化学杂志。2007;282:7723–7732.[公共医学][谷歌学者]
107Giri SN,Hyde DM,Hollinger MA。转化生长因子β抗体对博莱霉素诱导的小鼠肺胶原积聚的影响。胸部。1993;48:959–966。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
108Wang Q,Wang Y,Hyde DM,Gotwals PJ,Koteliansky VE,等。通过转化仓鼠生长因子β可溶性受体减少博莱霉素诱导的肺纤维化。胸部。1999;54:805–812. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
109Feng XH,Derynk R.通过Smads在tgf-β信号转导中的特异性和多功能性。年收入细胞开发生物。2005;21:659–693.[公共医学][谷歌学者]
110Derynck R,Zhang YE。TGF-β家族信号转导中的Smad依赖和Smad依赖途径。自然。2003;425:577–584.[公共医学][谷歌学者]
111Lee MK、Pardoux C、Hall MC、Lee PS、Warburton D等。TGF-β通过直接磷酸化ShcA激活Erk MAP激酶信号。Embo J。2007;26:3957–3967. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
112Yamaguchi K、Shirakabe K、Shibuya H、Irie K、Oishi I等。鉴定MAPKKK家族成员作为TGF-β信号转导的潜在介质。科学。1995;270:2008–2011.[公共医学][谷歌学者]
113Shibuya H、Yamaguchi K、Shirakabe K、Tonegawa A、Gotoh Y等。TAB1:TGF-β信号转导中TAK1 MAPKKK的激活剂。科学。1996;272:1179–1182。[公共医学][谷歌学者]
114Yamashita M、Fatyol K、Jin C、Wang X、Liu Z等。TRAF6通过TGF-β介导Smad依赖性激活JNK和p38。分子细胞。2008;31:918–924. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
115Ge B,Gram H,Di Padova F,Huang B,New L,等。通过TAB1依赖的p38alpha自身磷酸化介导的p38alpha的MAPKK依赖性激活。科学。2002年;295:1291–1294.[公共医学][谷歌学者]
116Kato M,Zhang J,Wang M,Lanting L,Yuan H,等。糖尿病肾小球中的MicroRNA-192及其通过抑制E-box阻遏物在TGF-β诱导的胶原表达中的作用。美国国家科学院院刊。2007;104:3432–3437. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
117Kato M,Putta S,Wang M,Yuan H,Lanting L,等。TGF-β通过靶向PTEN的微RNA依赖性扩增电路激活Akt激酶。自然细胞生物学。2009;11:881–889. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
118Bhowmick NA、Ghiassi M、Bakin A、Aakre M、Lundquist CA等。转化生长因子-beta1通过依赖RhoA的机制介导上皮向间质的转分化。分子生物学细胞。2001;12:27–36. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
119Smith PC、Caceres M、Martinez J.通过转化生长因子-beta1诱导人类牙龈成纤维细胞中的肌纤维母细胞表型:RhoA-ROCK和c-Jun N末端激酶信号通路的作用。牙周病研究杂志。2006;41:418–425.[公共医学][谷歌学者]
120Lee J,Ko M,Joo CK.Rho在TGF-β1诱导的人视网膜色素上皮细胞骨架重排中起关键作用。细胞生理学杂志。2008;216:520–526.[公共医学][谷歌学者]
121Masszi A、Di Ciano C、Sirokmany G、Arthur WT、Rotstein OD等。Rho在TGF-beta1诱导的α-平滑肌肌动蛋白表达中的中心作用。美国生理学杂志肾生理学。2003;284:F911–F924。[公共医学][谷歌学者]
122Vardouli L、Moustakas A、Stournaras C.LIM-kinase 2和cofilin磷酸化介导由转化生长因子β诱导的肌动蛋白细胞骨架重组。生物化学杂志。2005;280:11448–11457.[公共医学][谷歌学者]
123Rossman KL、Der CJ、Sondek J.GEF意味着去:用鸟嘌呤核苷酸交换因子启动RHO GTPases。Nat Rev Mol细胞生物学。2005;6:167–180.[公共医学][谷歌学者]
124Yamanaka M、Shegogue D、Pei H、Bu S、Bielawska A等。鞘氨醇激酶1(SPHK1)由转化生长因子β诱导并介导TIMP-1上调。生物化学杂志。2004;279:53994–54001.[公共医学][谷歌学者]
125Kono Y、Nishiuma T、Nishimura Y、Kotani Y、Okada T等。鞘氨醇激酶1通过TGF-β1介导调节人和小鼠肺成纤维细胞的分化。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2007;37:395–404.[公共医学][谷歌学者]
126Cencetti F、Bernacchioni C、Nincheri P、Donati C、Bruni P。转化生长因子-beta1通过上调鞘氨醇激酶-1/S1P3轴诱导成肌细胞转分化为肌成纤维细胞。分子生物学细胞。21:1111–1124. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
127Medlin MD、Staus DP、Dubash AD、Taylor JM、Mack CP。鞘氨醇1-磷酸受体2通过白血病相关RhoGEF(LARG)发出信号,促进平滑肌细胞分化。动脉硬化血栓血管生物学。30:1779–1786. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
128沈X,李J,胡PP,Waddell D,Zhang J,等。鸟嘌呤交换因子NET1的活性对转化生长因子介导的应力纤维的形成至关重要。生物化学杂志。2001;276:15362–15368.[公共医学][谷歌学者]
129Lee J,Moon HJ,Lee JM,Joo CK.Smad3通过NET1在转化生长因子-β诱导的人视网膜色素上皮细胞上皮-间充质转化中调节Rho信号。生物化学杂志。285:26618–26627. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
130Tsapara A、Luthert P、Greenwood J、Hill CS、Matter K等。RhoA激活剂GEF-H1/Lfc是一种转化生长因子-靶基因和效应器,可调节α-平滑肌肌动蛋白的表达和细胞迁移。分子生物学细胞。21:860–870. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
131Delanoe-Ayari H、Al-Kurdi R、Vallade M、Gulino-Debrac D、Riveline D。膜和动肌球蛋白张力促进粘附蛋白的聚集。美国国家科学院院刊。2004;101:2229–2234. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
132Domnina LV、Gelfand VI、Ivanova OY、Leonova EV、Pletjushkina OY等。小剂量细胞松弛素对成纤维细胞的影响:活性边缘和焦点接触的优先变化。美国国家科学院院刊。1982;79:7754–7757. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
133del Rio A、Perez-Jimenez R、Liu R、Roca-Cusachs P、Fernandez JM等。拉伸单个塔利班分子激活vinculin结合。科学。2009;323:638–641. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
134Geiger B、Spatz JP、Bershadsky AD。通过焦点粘着进行环境传感。Nat Rev Mol细胞生物学。2009;10:21-33。[公共医学][谷歌学者]
135Discher DE、Janmey P、Wang YL。组织细胞感受并响应其基质的硬度。科学。2005;310:1139–1143。[公共医学][谷歌学者]
136Vogel V,Sheetz M.局部力和几何传感调节细胞功能。Nat Rev Mol细胞生物学。2006;7:265–275.[公共医学][谷歌学者]
137Giannone G,Sheetz MP。底物刚性和作用力通过酪氨酸磷酸酶和激酶途径定义形式。趋势细胞生物学。2006;16:213–223.[公共医学][谷歌学者]
138Sawada Y,Sheetz MP。Triton细胞骨架的力传递。细胞生物学杂志。2002年;156:609–615. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
139Schoenwaelder SM,Burridge K.细胞骨架和整合素之间的双向信号传导。当前操作细胞生物学。1999;11:274–286.[公共医学][谷歌学者]
140韩斌,白XH,洛迪加M,徐杰,杨碧波,等。机械力转化为生化信号的研究。生物化学杂志。2004;279:54793–54801.[公共医学][谷歌学者]
141Nobes CD,Hawkins P,Stephens L,Hall A.生长因子受体激活小GTP结合蛋白rho和rac。细胞科学杂志。1995;108(第1部分):225–233。[公共医学][谷歌学者]
142Schoenwaelder SM、Petch LA、Williamson D、Shen R、Feng GS等。蛋白质酪氨酸磷酸酶Shp-2调节RhoA活性。当前生物量。2000;10:1523–1526.[公共医学][谷歌学者]
143Tamada M,Sheetz MP,Sawada Y.通过细胞骨架拉伸激活信号级联。开发单元。2004;7:709–718.[公共医学][谷歌学者]
144Romer LH、Birukov KG、Garcia JG。焦点粘连:信号联系的范例。圆形Res。2006;98:606–616.[公共医学][谷歌学者]
145Tilghman RW,Parsons JT。黏附斑激酶作为肿瘤进展中细胞张力的调节器。塞明癌症生物学。2008;18:45–52。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
146Mao Y,Schwarzbauer JE。纤维结合蛋白纤维生成,一种细胞介导的基质组装过程。基质生物。2005;24:389–399.[公共医学][谷歌学者]
147Wierzbicka Patynowski I,Schwarzbauer JE。纤连蛋白基质组装的来龙去脉。细胞科学杂志。2003;116:3269–3276.[公共医学][谷歌学者]
148Ohashi T、Kiehart DP、Erickson HP。纤维连接蛋白绿色荧光蛋白显示活细胞培养中纤维连连接蛋白基质的动力学和弹性。美国国家科学院院刊。1999;96:2153–2158. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
149福格蒂FJ,秋山SK,山田KM,摩舍尔DF。抗整合素(α5β1)抗体抑制纤维连接蛋白与基质组装部位的结合。细胞生物学杂志。1990;111:699–708. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
150Miranti CK,Brugge JS公司。感知环境:整合素信号转导的历史视角。自然细胞生物学。2002年;4:E83–E90。[公共医学][谷歌学者]
151McKeown-Longo PJ,Mosher DF。血浆纤维连接蛋白与人皮肤成纤维细胞层的结合。细胞生物学杂志。1983;97:466–472。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
152Wu C、Keivens VM、O’Toole TE、McDonald JA、Ginsberg MH。整合素激活和细胞骨架相互作用对于纤维连接蛋白基质的组装至关重要。单元格。1995;83:715–724.[公共医学][谷歌学者]
153Hynes RO,Destree AT。纤维连接蛋白(LETS蛋白)和肌动蛋白之间的关系。单元格。1978;15:875–886.[公共医学][谷歌学者]
154Ali IU,Hynes RO.细胞松弛素B和秋水仙碱对成纤维细胞主要表面蛋白附着的影响。Biochim生物物理学报。1977;471:16–24.[公共医学][谷歌学者]
155Zhang Q,Magnusson MK,Mosher DF。溶血磷脂酸和微管固定剂通过依赖Rho的肌动蛋白应激纤维形成和细胞收缩刺激纤维连接蛋白基质组装。分子生物学细胞。1997;8:1415–1425. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
156Zhong C、Chrzanowska-Wodnicka M、Brown J、Shaub A、Belkin AM等。Rho介导的收缩性暴露了纤维连接蛋白中的一个隐蔽部位,并诱导纤维连接蛋白基质组装。细胞生物学杂志。1998;141:539–551. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
157Baneyx G,Baugh L,Vogel V.纤维连接蛋白在细胞骨架张力控制的细胞基质纤维中的延伸和展开。美国国家科学院院刊。2002年;99:5139–5143. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
158Midwood KS,Schwarzbauer JE。Tenascin-C通过黏着斑激酶和Rho介导的信号通路调节基质收缩。分子生物学细胞。2002年;13:3601–3613. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
159Saoncella S,Echtermeyer F,Denhez F,Nowlen JK,Mosher DF,et al.Syndecan-4与整合素以Rho依赖性方式协同作用于焦点粘连和肌动蛋白应力纤维的组装。美国国家科学院院刊。1999;96:2805–2810. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
160Halliday NL,Tomasek JJ。细胞外基质的机械特性影响体外纤维连接蛋白原纤维组装。实验细胞研究。1995;217:109–117.[公共医学][谷歌学者]
161Pankov R、Cukierman E、Katz BZ、Matsumoto K、Lin DC等。整合素动力学和基质组装:α(5)β(1)整合素的张力依赖性易位促进早期纤维连接蛋白纤维生成。细胞生物学杂志。2000;148:1075–1090. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
162Peters DM,Mosher DF。纤维连接蛋白纤维生成相关细胞表面位点的定位。细胞生物学杂志。1987;104:121–130. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
163Zamir E、Katz M、Posen Y、Erez N、Yamada KM等。培养成纤维细胞中细胞基质粘附的动力学和分离。自然细胞生物学。2000;2:191–196.[公共医学][谷歌学者]
164Ohashi T、Kiehart DP、Erickson HP。用绿色荧光蛋白变体双重标记纤维连接蛋白基质和肌动蛋白细胞骨架。细胞科学杂志。2002年;115:1221–1229.[公共医学][谷歌学者]
165Harris AK,Stopak D,Wild P.成纤维细胞牵引作为胶原形态发生机制。自然。1981;290:249–251.[公共医学][谷歌学者]
166Kolodney理学硕士,Wysolmerski RB。组织培养中成纤维细胞和内皮细胞的等长收缩:定量研究。细胞生物学杂志。1992;117:73–82. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
167Isenberg G、Rathke PC、Hulsmann N、Franke WW、Wohlfarth-Bottermann KE。组织培养细胞中的细胞质肌动球蛋白纤维:通过激光微束切割分离的纤维中ATP诱导收缩的可视化直接证明收缩性。细胞组织研究。1976;166:427–443.[公共医学][谷歌学者]
168Kreis TE,Birchmeier W。成纤维细胞的应力纤维肌节具有收缩性。单元格。1980;22:555–561.[公共医学][谷歌学者]
169Katoh K、Kano Y、Masuda M、Onishi H、Fujiwara K。应力纤维的分离和收缩。分子生物学细胞。1998;9:1919年至1938年。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
170Hinz B、Celetta G、Tomasek JJ、Gabbiani G、Chaponnier C.Alpha-平滑肌肌动蛋白表达上调成纤维细胞收缩活性。分子生物学细胞。2001;12:2730–2741。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
171伯里奇K。压力纤维收缩吗?自然。1981;294:691–692.[公共医学][谷歌学者]
172Nobes CD,Hall A.Rho GTPases控制细胞运动期间的极性、突起和粘附。细胞生物学杂志。1999;144:1235–1244. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
173Totsukawa G,Wu Y,Sasaki Y,Hartshorne DJ,Yamakita Y等。成纤维细胞迁移过程中,MLCK和ROCK在调节膜突起和局部粘附动力学中的不同作用。细胞生物学杂志。2004;164:427–439. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
174Jay PY、Pham PA、Wong SA、Elson EL。肌球蛋白II在细胞运动中的机械功能。细胞科学杂志。1995;108(第1部分):387–393。[公共医学][谷歌学者]
175Kolega J.肌球蛋白IIA和IIB的细胞质动力学:运动细胞中亚型的空间“排序”。细胞科学杂志。1998;111(第15部分):2085–2095。[公共医学][谷歌学者]
176Alblas J、Ulfman L、Hordijk P、Koenderman L。Rhoa和ROCK的激活对迁移白细胞的分离至关重要。分子生物学细胞。2001;12:2137–2145. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
177Worethake RA、Lemoine S、Watson JM、Burridge K.RhoA是跨内皮细胞迁移期间单核细胞尾部收缩所必需的。细胞生物学杂志。2001;154:147–160. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
178Cramer LP,Siebert M,Mitchison TJ。识别运动心脏成纤维细胞中新的分级极性肌动蛋白纤维束:运动力产生的意义。细胞生物学杂志。1997;136:1287–1305. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
179Oliver T,Lee J,Jacobson K。运动细胞施加的力。精液细胞生物学。1994;5:139–147.[公共医学][谷歌学者]
180Huttelmaier S、Zenklusen D、Lederer M、Dictenberg J、Lorenz M等。通过ZBP1的Src-依赖性磷酸化对β-肌动蛋白翻译的空间调控。自然。2005;438:512–515.[公共医学][谷歌学者]
181Rodriguez AJ、Czaplinski K、Condeelis JS、Singer RH。哺乳动物细胞局部蛋白质合成的机制和细胞作用。当前操作细胞生物学。2008;20:144–149. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
182Lawrence JB,Singer RH.细胞骨架蛋白信使RNA的细胞内定位。单元格。1986;45:407–415.[公共医学][谷歌学者]
183Kislauskis EH,Singer RH.mRNA定位的决定因素。当前Opin细胞生物学。1992;4:975–978.[公共医学][谷歌学者]
184Latham VM,Jr,Kislauskis EH,Singer RH,Ross AF。β-肌动蛋白mRNA定位受信号转导机制调节。细胞生物学杂志。1994;126:1211–1219. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
185Kislauskis EH,Zhu X,Singer RH。负责β-肌动蛋白信使RNA细胞内定位的序列也影响细胞表型。细胞生物学杂志。1994;127:441–451. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
186Bassell G,Singer RH.mRNA和细胞骨架丝。当前操作细胞生物学。1997;9:109–115.[公共医学][谷歌学者]
187Lenk R,Ransom L,Kaufmann Y,Penman S.从HeLa细胞获得的具有相关多核糖体的细胞骨架结构。单元格。1977;10:67–78.[公共医学][谷歌学者]
188Fusco D、Accornero N、Lavoie B、Shenoy SM、Blanchard JM等。单个信使核糖核酸分子在活哺乳动物细胞中表现出概率运动。当前生物量。2003;13:161–167. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
189Sundell CL,Singer RH.肌动蛋白信使RNA分类中微丝的要求。科学。1991;253:1275–1277.[公共医学][谷歌学者]
190Taneja KL,Lifshitz LM,Fay FS,Singer RH.Poly(A)RNA与微丝的共分布:通过原位杂交和定量数字成像显微镜进行评估。细胞生物学杂志。1992;119:1245–1260. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
191Latham VM、Yu EH、Tullio AN、Adelstein RS、Singer RH。通过肌球蛋白操作的Rho依赖性信号通路定位成纤维细胞中的β-actin mRNA。当前生物量。2001;11:1010–1016.[公共医学][谷歌学者]
192Ornelles DA、Fey EG、Penman S.细胞松弛素从细胞骨架骨架释放mRNA并抑制蛋白质合成。分子细胞生物学。1986;6:1650–1662. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
193Chicurel ME、Singer RH、Meyer CJ、Ingber DE。整合素结合和机械张力诱导mRNA和核糖体向局部粘连移动。自然。1998;392:730–733.[公共医学][谷歌学者]
194Hill MA,Schedlich L,Gunning P.血清诱导的信号转导决定了β-actin mRNA在细胞内的外围位置。细胞生物学杂志。1994;126:1221–1229. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
195Toh BH,Lolait SJ,Mathy JP,Baum R.线粒体与中间丝的关联,以及多核糖体与细胞质肌动蛋白的关联。细胞组织研究。1980年;211:163–169.[公共医学][谷歌学者]
196Heuser JE,Kirschner MW。冷冻干燥细胞骨架的铂复制品中揭示的细丝组织。细胞生物学杂志。1980;86:212–234. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
197Hesketh JE,Horne Z,Campbell GP。3T3成纤维细胞中核糖体与微丝相关的免疫组织化学证据。细胞生物学国际报告。1991;15:141–150.[公共医学][谷歌学者]
198Zumbe A,Stahli C,Trachsel H。婴儿仓鼠肾细胞中Mr 50000帽结合蛋白与细胞骨架的关联。美国国家科学院院刊。1982;79:2927–2931. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
199Heuijerjans JH、Pieper FR、Ramaekers FC、Timmermans LJ、Kuijpers H等。mRNA和eIF-2α与缺乏波形蛋白的细胞骨架的关联。实验细胞研究。1989;181:317–330.[公共医学][谷歌学者]
200Edmonds BT、Wyckoff J、Yeung YG、Wang Y、Stanley ER等。延伸因子-1α是转移性大鼠乳腺癌中一种过度表达的肌动蛋白结合蛋白。细胞科学杂志。1996;109(第11部分):2705–2714。[公共医学][谷歌学者]
201Shestakova EA、Wyckoff J、Jones J、Singer RH、Condeelis J。大鼠腺癌细胞系中β-肌动蛋白信使RNA定位与转移潜能的相关性。癌症研究。1999;59:1202–1205.[公共医学][谷歌学者]
202Liu G,Grant WM,Persky D,Latham VM,Jr,Singer RH,等。延伸因子1alpha与F-actin和β-actin mRNA的相互作用:对细胞突起中锚定mRNA的影响。分子生物学细胞。2002年;13:579–592. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
203Pittman YR,Kandl K,Lewis M,Valente L,Kinzy TG.真核生物翻译延伸因子1A(eEF1A)在肌动蛋白组织中的功能与鸟嘌呤核苷酸交换因子eEF1Alpha的翻译延伸的协调。生物化学杂志。2009;284:4739–4747. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
204Mateyak MK,Kinzy TG.eEF1A:核糖体外的思考。生物化学杂志。2010;285:21209–21213. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
205Hesketh JE,Pryme IF.mRNA、核糖体和细胞骨架之间的相互作用。生物化学杂志。1991;277(第1部分):1-10。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
206Condeelis J,Singer RH.β-肌动蛋白mRNA如何以及为什么靶向?生物细胞。2005;97:97–110.[公共医学][谷歌学者]
207Mingle LA、Okuhama NN、Shi J、Singer RH、Condeelis J等。成纤维细胞突起中肌动蛋白聚合成核因子Arp2/3复合物的所有七种信使RNA的定位。细胞科学杂志。2005;118:2425–2433。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
208Rodriguez AJ,Shenoy SM,Singer RH,Condeelis J.活细胞中mRNA翻译的可视化。细胞生物学杂志。2006;175:67–76. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
209Shestakova EA,Singer RH,Condeelis J.β-肌动蛋白mRNA定位在确定细胞极性和定向运动中的生理意义。美国国家科学院院刊。2001;98:7045–7050. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
210Wang W,Wyckoff JB,Frohlich VC,Oleynikov Y,Huttelmaier S,et al.转移性原发性乳腺肿瘤中的单细胞行为与分子剖析揭示的基因表达模式相关。癌症研究。2002年;62:6278–6288.[公共医学][谷歌学者]
211Wyckoff JB,Jones JG,Condeelis JS,Segall JE。转移中的关键步骤:原发肿瘤的体内灌注分析。癌症研究。2000;60:2504–2511.[公共医学][谷歌学者]
212Lapidus K、Wyckoff J、Mouneimne G、Lorenz M、Soon L等。ZBP1增强细胞极性并降低趋化性。细胞科学杂志。2007;120:3173–3178. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
213血清反应因子:在不同的基因表达程序之间切换。分子细胞心血管杂志。2003;35:577–593。[公共医学][谷歌学者]
214Hill CS、Wynne J、Treisman R.Rho家族GTPases RhoA、Rac1和CDC42Hs通过SRF调节转录激活。单元格。1995;81:1159–1170.[公共医学][谷歌学者]
215Sotiropoulos A、Gineitis D、Copeland J、Treisman R。血清反应因子的信号调节激活由肌动蛋白动力学变化介导。单元格。1999;98:159–169.[公共医学][谷歌学者]
216Miralles F、Posern G、Zaromytidou AI、Treisman R.肌动蛋白动力学通过调节其辅活化因子MAL来控制SRF活性。单元格。2003;113:329–342.[公共医学][谷歌学者]
217Descot A、Hoffmann R、Shaposhnikov D、Reschke M、Ullrich A等。肌动蛋白-MAL介导的Mig6/Errfi-1诱导对EGFR-MAPK级联的负调控。分子细胞。2009;35:291–304.[公共医学][谷歌学者]
218Lockman K、Hinson JS、Medlin MD、Morris D、Taylor JM等。1-磷酸鞘氨醇通过激活单独的血清反应因子辅因子刺激平滑肌细胞分化和增殖。生物化学杂志。2004;279:42422–42430.[公共医学][谷歌学者]
219Gohla A、Offermanns S、Wilkie TM、Schultz G.Galpha12和Galpha13在受体介导的应力纤维形成中的差异参与。生物化学杂志。1999;274:17901–17907.[公共医学][谷歌学者]
220Zhao XH,Laschinger C,Arora P,Szaszi K,Kapus A等。力通过Rho信号通路激活平滑肌α-肌动蛋白启动子活性。细胞科学杂志。2007;120:1801–1809.[公共医学][谷歌学者]
221Small EM、Thatcher JE、Sutherland LB、Kinoshita H、Gerard RD等。心肌卡蛋白相关转录因子-a控制心肌梗死时肌成纤维细胞的活化和纤维化。圆形Res。107:294–304. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
222Hinson JS、Medlin MD、Lockman K、Taylor JM、Mack CP。平滑肌细胞特异性转录受心肌蛋白相关转录因子的核定位调节。美国生理学杂志心脏循环生理学。2007;292:H1170–H1180。[公共医学][谷歌学者]
223Sandbo N,Kregel S,Taurin S,Bhorade S,Dulin NO。血清反应因子在TGF-β诱导的肺肌成纤维细胞分化中的关键作用。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2009;41:332–338. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
224Fan L、Sebe A、Peterfi Z、Masszi A、Thirone AC等。通过rho-rho激酶-磷酸肌球蛋白途径对上皮-肌成纤维细胞转化的细胞接触依赖性调节。分子生物学细胞。2007;18:1083–1097. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
225Morita T,Mayanagi T,Sobue K。心肌蛋白相关转录因子通过蛞蝓诱导和肌动蛋白重塑在上皮-间质转化中的双重作用。细胞生物学杂志。2007;179:1027–1042. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
226孙强,陈刚,斯特雷布·JW,龙X,杨毅,等。哺乳动物CArGome的定义。基因组研究。2006;16:197–207. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
227Morita T,Mayanagi T,Sobue K。通过心肌相关转录因子(MRTFs/MAL/MKL)对细胞骨架/局部粘附基因的转录调节,重组肌动蛋白细胞骨架实验细胞研究。2007;313:3432–3445。[公共医学][谷歌学者]
228Philimonenko VV、Zhao J、Iben S、Dingova H、Kysela K等。RNA聚合酶I转录需要核肌动蛋白和肌球蛋白I。自然细胞生物学。2004;6:1165–1172.[公共医学][谷歌学者]
229Hofmann WA、Stojiljkovic L、Fuchsova B、Vargas GM、Mavrommatis E等。肌动蛋白是预引发复合物的一部分,是RNA聚合酶II转录所必需的。自然细胞生物学。2004;6:1094–1101.[公共医学][谷歌学者]
230Visa N.Actin正在转录。真核细胞核中所有三种RNA聚合酶的转录都需要肌动蛋白。EMBO代表。2005;6:218–219. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
231Vartiainen MK。核肌动蛋白动力学——从形式到功能。FEBS信函。2008;582:2033–2040.[公共医学][谷歌学者]
232Kaufman LJ、Brangwynne CP、Kasza KE、Filippidi E、Gordon VD等。I型胶原基质中的胶质瘤扩张:分析胶原浓度依赖性生长和运动模式。生物物理学杂志。2005;89:635–650. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
233Rizvi SA、Neidt EM、Cui J、Feiger Z、Skau CT等。一种小分子抑制剂的识别和表征。化学生物。2009;16:1158–1168. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]