鲜血。2011年2月3日;117(5): 1662–1669.
淋巴瘤
慢性淋巴细胞白血病患者CCL3(MIP-1α)血浆水平与疾病进展风险
,1 ,2 ,三 ,三 ,1 ,1 ,1 ,4 ,4 ,5 ,5 ,1 ,1 ,1 ,1 ,2和1 玛丽埃拉·西维纳
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
埃琳娜·哈特曼
2德国维尔茨堡维尔茨堡大学病理学研究所;
托马斯·基普斯
三加利福尼亚大学圣地亚哥分校医学系血液学/肿瘤学部慢性淋巴细胞白血病研究联合会;
劳拉·拉塞蒂
三加利福尼亚大学圣地亚哥分校医学系血液学/肿瘤学部慢性淋巴细胞白血病研究联合会;
戴安娜·克鲁普尼克
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
苏珊勒纳
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
鲁斯·拉普欣
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
肖连春
4德克萨斯大学安德森癌症中心生物统计学系,德克萨斯州休斯顿;和
黄雪林
4德克萨斯大学安德森癌症中心生物统计学系,德克萨斯州休斯顿;和
莉莲·沃纳
5马萨诸塞州波士顿Dana-Farber癌症研究所生物统计学和计算生物学系
唐娜·纽伯格
5马萨诸塞州波士顿Dana-Farber癌症研究所生物统计学和计算生物学系
哈古普·坎塔尔吉恩
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
苏珊·奥布莱恩
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
威廉·威尔达
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
迈克尔·J·基廷
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
安德烈亚斯·罗森瓦尔德
2德国瓦茨堡大学病理学研究所;
Jan A.汉堡
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
1德克萨斯大学安德森癌症中心白血病系,德克萨斯州休斯顿;
2德国瓦茨堡大学病理学研究所;
三加利福尼亚大学圣地亚哥分校医学系血液学/肿瘤学部慢性淋巴细胞白血病研究联合会;
4德克萨斯大学安德森癌症中心生物统计学系,德克萨斯州休斯顿;和
5马萨诸塞州波士顿Dana-Farber癌症研究所生物统计学和计算生物学系
通讯作者。 2010年9月13日收到;2010年11月15日接受。
- 补充资料
补充表格和图表
GUID:0BF08E51-38B2-474C-A02B-941D5940D593
GUID:B188A3B8-1B87-4C65-8E7D-A0C8DE17C514
摘要
B细胞受体(BCR)信号被认为是慢性淋巴细胞白血病(CLL)和其他B细胞恶性肿瘤疾病进展的重要机制。作为对BCR激活的反应,CLL细胞分泌趋化因子CCL3,这促进了CLL细胞和白血病微环境之间的相互作用。CCL3分泌与70-kDaζ相关蛋白(ZAP-70)的表达和CLL克隆对BCR刺激的反应性相关。在这里,我们用酶联免疫吸附试验(ELISA)测定了351例慢性淋巴细胞白血病患者的CCL3血浆水平,并检查了CCL3水平与已建立的预后标志物以及从诊断到初始治疗的时间之间的关系。我们发现CCL3血浆浓度与已建立的预后标志物密切相关。在Cox比例风险回归模型中,CCL3以及已建立的预后标志物(免疫球蛋白重链可变区突变状态、CD38或ZAP-70细胞遗传学、临床分期)与治疗时间显著相关。多变量分析显示CCL3(危险比[HR]=2.33,P(P)<.0001),临床晚期(HR=2.75,P(P)=0.0025),低风险细胞遗传学(del 17p,HR=2.38;del11q,HR=2.36,P(P)=0.001)和CD38表达(HR=1.43,P(P)=0.023)是独立的预后标志物。总之,CCL3是一种新的、稳健的、独立的CLL预后标记物,可以通过ELISA轻松可靠地进行检测。因此,CCL3应该对CLL患者的风险评估有用。
介绍
慢性淋巴细胞白血病(CLL)是成人最常见的白血病,是一种具有高度可变临床病程的淋巴细胞增殖性疾病。CLL的特征是成熟的、抗原刺激的CD5的克隆扩增+/CD23型+血液、次级淋巴组织和骨髓中的B淋巴细胞。1Rai等人开发的临床分期系统2和Binet等人三仍然是慢性淋巴细胞白血病风险评估的标准方法,但它们不允许预测早期疾病患者(大多数患者)疾病进展的风险。大量研究调查了预后标志物,这有助于预测疾病早期的个体风险。免疫球蛋白可变基因片段的突变状态是CLL中最被接受和广泛使用的预后标记(免疫球蛋白V小时),4,5CD38的表达4以及70-kD的ζ相关蛋白(ZAP-70),6,7以及细胞遗传学风险群体。8
在各种B细胞恶性肿瘤中,如弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL),B细胞抗原受体(BCR)信号越来越被认为是促进克隆扩张的关键因素9和CLL。1两种慢性淋巴细胞白血病风险因素(IgV小时突变状态和ZAP-70)与BCR有功能联系。的突变状态免疫球蛋白V小时BCR片段区分“突变”和“非突变”CLL,疾病进展的风险分别为低或高,每个约占患者的50%。BCR中的体细胞突变量与预后之间的关联表明抗原刺激在疾病进展中起作用。1,10ZAP-70主要在“未突变”CLL病例中表达,11ZAP-70表达与BCR信号增强有关。12BCR衍生信号在CLL的发病机制和预后中发挥关键作用的进一步证据来自于这样一个概念,即CLL患者表达BCR序列确定的BCR限制集。这些BCR的免疫球蛋白(Ig)重链可变(V)基因序列在患者亚群中相同或定型,13,14表明这些BCR结合与CLL发病相关的类似抗原。此外,来自预后不良的未突变CLL患者的细胞免疫球蛋白V小时这些基因显示表明BCR下游激活的基因表达谱。11
CLL细胞在组织中增殖,而不是在外周血中;在这些组织室(骨髓、淋巴组织)中,CLL细胞与附属细胞相互作用,统称为CLL“微环境”15CLL细胞在这些组织中的生长约占克隆的0.1%至1%,如CLL患者体内的重水掺入所示。16CLL增殖区被称为增殖中心或假滤泡,这是CLL组织病理学的标志性发现,也称为本病的增殖室。在这些区域,CLL细胞与多个辅助细胞(如T细胞)结合17和CD68+nurselike细胞(NLC),18,19并显示BCR激活标志,20提示CLL增殖是由BCR和T细胞驱动的。
研究CLL中CCL3和CCL4血浆水平的理论基础是我们最近的研究,其中我们分析了微环境对体外CLL基因表达的影响。21我们发现CLL细胞响应BCR刺激以及在与NLCs共培养中上调并分泌CCL3和CCL4,21类似淋巴组织微环境的模型系统。15,18CCL3和CCL4的BCR和NLC依赖性诱导对使用脾酪氨酸激酶抑制剂抑制BCR信号敏感。21,22
CCL3和CCL4,以前称为巨噬细胞炎性蛋白-1α(MIP-1α)和MIP-1β,是CC亚家族的趋化因子,可在许多造血细胞中诱导,尤其是参与适应性免疫反应的细胞(巨噬细胞、树突状细胞、B和T淋巴细胞)。CCL3通过趋化因子受体CCR1和CCR5发出信号,而CCL4仅通过CCR5发送信号。CCL3和CCL4是单核细胞和淋巴细胞的化学引诱剂。23先前的体外和体内研究强调CCL3是正常和肿瘤B细胞对BCR信号的反应中上调的关键反应基因,21,24,25被Bcl-6抑制。26
我们小组和其他研究人员的先前研究表明,活化的CLL细胞过度表达CCL3和CCL421,27,28CLL患者的CCL3和CCL4血浆水平升高。21,29因此,我们假设CCL3和CCL4血浆水平可能作为BCR依赖性CLL细胞在体内激活的替代标记物。为了探讨这一假设,我们检测了CLL患者的血浆样本中CCL3和CCL4的浓度,并研究了CCL3、CCL4水平与既定预后因素和临床结果的关系。
方法
患者选择和临床特征
根据M.D.Anderson癌症中心机构审查委员会批准的方案和赫尔辛基宣言获得知情同意,然后在M.D.白血病科从351名符合CLL诊断和免疫表型标准的连续患者中采集外周血样本。德克萨斯州休斯顿安德森癌症中心。用于第一个数据集的样本是在患者第一次到我们中心就诊时获得的。安德森癌症中心(M.D.Anderson Cancer Center)使用氟达拉滨、环磷酰胺和利妥昔单抗(FCR方案,n=53)进行一线化疗免疫治疗之前,从患者身上获取了一组有效的血浆样本。使用BD Vacutainer K2-乙二胺四乙酸管(BD Biosciences)提取外周血样本,离心后收集血浆并储存在−80°C下。临床数据的收集使用了3.4.4版诊所站、安德森癌症中心的电子病历系统和CLL研究联盟数据库。收集并分析了以下患者特征:根据Rai等人的临床分期,2常规实验室数据(淋巴细胞绝对计数,β2-微球蛋白),荧光原位杂交细胞遗传学,8免疫球蛋白V小时突变状态(未突变:≥98%同源性;突变<98%同源于种系序列),CD38表达(阴性:<30%;阳性≥30%),流式细胞术检测ZAP-70表达(阴性:<20%;阳性≥20%7). 临床特征总结如下和.
表1
351例慢性淋巴细胞白血病患者的临床特征:分类变量
特性 | 类别 | n(频率,%) |
---|
性别 | 女性 | 136 (38.7) |
| 男性 | 215 (61.3) |
RAI阶段 | 0 | 54(16.3) |
| 我 | 138 (41.6) |
| 二 | 73 (22) |
| 三 | 26 (7.8) |
| 四、 | 41 (12.3) |
细胞遗传学 | del 13q(删除13q) | 135 (41.4) |
| 二倍体 | 72 (22.1) |
| 三体12q | 36(11.0) |
| del 11q(删除11q) | 45 (13.8) |
死亡 | | 11 (3.1) |
免疫球蛋白V小时 | 突变的 | 142 (52.4) |
| 未突变 | 129 (47.6) |
CD38型 | 否定 | 252 (75) |
| 积极的 | 84 (25) |
ZAP-70型 | 否定 | 153 (53.5) |
| 积极的 | 133 (46.5) |
表2
351例慢性淋巴细胞白血病患者的临床特征:连续变量
特性 | 平均值±标准偏差 | 中位数(范围) |
---|
年龄,y | 60.7 ± 10.3 | 61 (30-86) |
白细胞计数,×109/L(左) | 57.3 ± 57.7 | 35.3 (2.4-398.3) |
血红蛋白,g/dL | 13.1 ± 1.8 | 13.2 (4.6-16.7) |
血小板,×109/我 | 185 ± 87.9 | 172 (18-949) |
β2-微球蛋白,mg/L | 3.3±1.8 | 2.9 (1.2-13) |
乳酸脱氢酶,单位/升 | 574.7 ± 227.8 | 526 (276-2394) |
CCL3,微微克/毫升 | 32.4 ± 66 | 9.6 (0.1-685.7) |
CCL4,微微克/毫升 | 128.1±243.2 | 58.3 (4.3-2229.3) |
用酶联免疫吸附试验分析CCL3和CCL4
根据制造商的说明(研发系统),使用Quantikine试剂盒测量CCL3和CCL4血浆水平。制造商建立了较高的分析内和分析间精度。通过微孔板阅读器(ELx808,Bio-Tek仪器)记录吸光度,并使用Gen5软件版本1.08(Bio-Teck仪器)进行数据收集和分析。
免疫染色法检测CCL3
根据制造商的方案,使用抗CCL3抗体(多克隆山羊IgG,克隆自R&D Systems的BAF270)和组织染色试剂盒(Zymed/Invitrogen),对渗入CLL细胞的福尔马林固定石蜡包埋淋巴结切片进行免疫染色。简而言之,在脱蜡和通过压力烹饪提取抗原后,使用兔血清(Zymed/Invitrogen)进行10分钟的封闭,然后与CCL3抗体(1:50)孵育1小时,然后与生物素化二级抗体孵育(多克隆兔抗原,1:400;Dako细胞形成)持续20分钟,然后用与链霉亲和素和辣根过氧化物酶结合的酶进行培养,最后用二氨基联苯胺系统进行可视化。每次孵育后,将载玻片在磷酸盐缓冲盐水中清洗5分钟3次。根据标准方案进行免疫荧光双重染色。使用共焦激光扫描显微镜(Leica TSC)对图像进行评估。
统计分析
用描述性统计方法总结连续变量,如平均值、标准差、中位数和范围。分类变量用频率和百分比制成表格。Fisher精确检验用于评估分类变量之间的相关性;采用Wilcoxon秩和检验比较两类不同二分法因子之间的每个连续变量。计算Spearman相关系数以评估两个连续变量之间的相关性。首次治疗时间(TTFT)被定义为从诊断到首次治疗的时间,如果患者在最后一次就诊日期接受了任何治疗或进行了审查,则使用Kaplan和Meier方法进行估计,并使用log-rank检验进行评估。对于多变量分析,我们使用带有逐步选择的Cox比例风险模型。在整个过程中,只有当WaldP(P)数值为<0.05。使用以下软件包进行统计分析:SAS 9.0版(SAS Institute)和S-plus 8(MathSoft)。
结果
慢性淋巴细胞白血病CCL3与已有预后标志物的相关性
为了分析CCL3和CCL4与临床和预后标志物之间的相关性,首先根据CCL3和CCL4的近似中值(分别为10pg/mL和60pg/mL;). 我们发现高血浆CCL3水平与不良预后标志物(如晚期Rai分期、未突变免疫球蛋白V小时状态、CD38阳性、ZAP-70阳性、β水平2-微球蛋白≥4mg/L和高危细胞遗传学异常(del 11q和del 17p,). 在分析时,11名CCL3高水平组患者死亡,而CCL3低水平组无死亡。
表3
慢性淋巴细胞白血病高CCL3水平(>10 pg/mL)与已建立的预后标志物之间的相关性
特性 | 类别 | 频率,% | P(P) |
---|
性别 | 女性 | 44.9 | .1886 |
| 男性 | 52.6 | |
RAI阶段 | 0 | 31.5 | <0.0001 |
| 我 | 39.9 | |
| 二 | 63 | |
| 三 | 84.6 | |
| 四、 | 75.6 | |
免疫球蛋白V小时 | 突变的 | 28.9 | < .0001 |
| 未突变 | 72.9 | |
CD38型 | 否定 | 41.7 | < .0001 |
| 积极的 | 75 | |
ZAP-70型 | 否定 | 35.3 | < .0001 |
| 积极的 | 69.9 | |
β2-微球蛋白 | <4毫克/升 | 37.8 | < .0001 |
| ≥4 mg/L | 86.2 | |
细胞遗传学 | del 13q(删除13q) | 34.8 | < .0001 |
| 二倍体 | 52.8 | |
| 三体12q | 69.4 | |
| 第11季度 | 71.1 | |
| del 17便士 | 71 | |
CCL4,微微克/毫升 | 高(≥60) | 74.3 | < .0001 |
| 低(<60) | 26.3 | |
此外,我们注意到,CCL3的高水平与CCL4的高水平显著相关(). 因此,CCL4水平也与这些已确定的预后标志物相关,尽管相关性不太可靠(补充表1,可在血液网站;请参阅在线文章顶部的补充材料链接)。我们计算了不同预后亚组的平均CCL3水平,发现高危组的平均CCL3水平明显更高(). 补充图3显示了不同预后亚组中CCL3水平的分布(以及补充图4中CCL4的相应数据)。此外,我们计算了血浆采集时CCL3、CCL4和实验室值之间的相关性。我们发现CCL3和CCL4、CCL3或CCL4与白细胞计数、β2-微球蛋白和乳酸脱氢酶,以及CCL3或CCL4与血红蛋白和血小板计数之间的负相关(补充表2)。鉴于CCL3是一个比CCL4更可靠的预后指标,我们在手稿中提供了与CCL3相关的数据,而CCL4相关的数据在补充表1和补充图1中给出。
表4
特性 | CCL3,微微克/毫升 |
---|
RAI阶段 | |
0/I/II型 | 25.7 ± 45.8* |
三/四 | 65.7 ± 114.9 |
突变状态 | |
免疫球蛋白V小时变异的 | 14.4 ± 28.5* |
免疫球蛋白V小时无突变的 | 55.8 ± 95.7 |
CD38型 | |
否定 | 22.5 ± 44.6* |
积极的 | 55.8 ± 77.6 |
ZAP-70型 | |
否定 | 17 ± 36.1* |
积极的 | 53.1 ± 89 |
β2-微球蛋白 | |
< 4毫克/升 | 17.4 ± 28.8* |
≥4毫克/升 | 78.2 ± 111.2 |
白细胞计数 | |
< 100 000 | 28.7 ± 63.9* |
> 100 000 | 50.1 ± 73.2 |
细胞遗传学 | |
第13季度 | 16.1 ± 30.6† |
二倍体 | 38.0 ± 80.9 |
三体12q | 44.5 ± 111.8 |
del 11q(删除11q) | 51.5 ± 64.6 |
del 17便士 | 55.1 ± 75.5 |
CCL3与从诊断到初始治疗时间的关系
在研究的351名患者中,147名患者需要根据国家癌症研究所工作组的标准进行治疗。30整个人群的TTFT为72个月(95%置信区间为60-101)。如所示各亚组TTFT中位数差异显著。CCL3水平高的CLL患者的TTFT中位数明显短于CCL3含量低的患者(>250个月,P(P)< .0001). 在已确定预后不良标记物的患者中,TTFT中位数也显著缩短。未突变IgV患者的TTFT小时CD38为45个月,34个月+患者,ZAP-70治疗43个月+患者,高β患者47个月2-微球蛋白水平。A显示了描述CCL3(左面板)或CCL4(右面板)水平高或低患者TTFT的Kaplan-Meier曲线。显示了所研究的既定预后标志物的Kaplan-Meier曲线。
表5
特性 | 类别 | 总计 | 接受治疗的患者 | TTFT中值,mo(95%CI) | 5年无需治疗(95%CI) | P(P) |
---|
所有患者 | | 351 | 147 | 72(60-101) | 0.56 (0.50-0.62) | |
免疫球蛋白V小时 | 突变的 | 142 | 40 | 154 (100-> 250) | 0.73 (0.64-0.82) | < .0001 |
| 未突变 | 129 | 79 | 45 (33-58) | 0.37 (0.29-0.49) | |
CD38型 | 否定 | 252 | 89 | 101(70->250) | 0.60 (0.53-0.68) | < .0001 |
| 积极的 | 84 | 55 | 34 (21-66) | 0.37 (0.27-0.51) | |
ZAP-70型 | 否定 | 153 | 51 | 122 (79-> 250) | 0.65 (0.57-0.75) | < .0001 |
| 积极的 | 133 | 78 | 43 (32-58) | 0.38 (0.29-0.49) | |
β2-微球蛋白 | <4毫克/升 | 262 | 92 | 101 (69-> 250) | 0.59 (0.52-0.67) | .0003 |
| ≥4 mg/L | 87 | 55 | 47 (36-72) | 0.46 (0.36-0.60) | |
CCL3型 | 低 | 177 | 35 | > 250 (181-> 250) | 0.75 (0.67-0.84) | < .0001 |
| 高 | 174 | 112 | 40 (32-59) | 0.40 (0.33-0.49) | |
CCL4级 | 低 | 180 | 49 | 181 (101-> 250) | 0.66(0.58-0.76) | .0002 |
| 高 | 171 | 98 | 58 (40-72) | 0.47 (0.40-0.57) | |
CCL3、CCL4与从诊断到初始治疗的时间的关系。(A) Kaplan-Meier曲线显示了根据诊断后的时间,无治疗生存的概率。CLL患者分为低或高CCL3(左曲)或CCL4(右曲)血浆水平的患者组。这些类别基于CCL3和CCL4的临界水平,与我们人群中CCL3与CCL4浓度的中位数相对应(); 在每条曲线的旁边显示相应的截止级别。(B) 根据CCL3和CCL4水平显示4个CLL亚组中未治疗患者比例的Kaplan-Meier曲线。与CCL3水平较低(<10 pg/mL)和CCL4水平较高或较低的患者相比,CCL3含量较高(≥10 pg/mL)、CCL4含量较低或较高的患者无治疗生存率较低。
已确定的预后标志物与从诊断到初始治疗的时间之间的关系。五个Kaplan-Meier图表明,根据是否存在既定的预后标记物(突变状态、CD38、ZAP-70、β2-微球蛋白和细胞遗传学)。
为了更好地了解CCL3和CCL4对TTFT的不同影响,我们将患者分为4组(B) :CCL3高的/CCL4级高的,CCL3高的/CCL4级低的,CCL3低的/CCL4级高的和CCL3低的/CCL4级低的CCL3高水平和CCL4高水平或低水平患者的TTFT中位数明显短于CCL3低水平和CCL高或低水平的患者(分别大于250和181个月)(分别为40和35个月),B) ●●●●。总的来说,这些数据表明CCL3(而非CCL4)对TTFT有强大的影响。
多变量分析
患者临床特征、危险因素、CCL3和CCL4水平通过逐步选择拟合到Cox比例风险回归模型中。当ZAP-70和IgV小时突变状态分别拟合到多变量分析IgV中小时通过该过程选择突变状态(P(P)<.05)但不是ZAP-70(P(P)= .07). 我们还包括ZAP-70和IgV小时突变状态为一个多变量模型,并伴有其他临床特征(不包括CCL3和CCL4)。再次,IgV小时通过该过程选择突变状态。最后,我们纳入了ZAP-70和IgV小时突变状态和其他临床特征(包括CCL3和CCL4)合并为多变量模型。在此,我们发现临床分期、荧光原位杂交、细胞遗传学异常、CD38和CCL3与首次治疗时间相关(). 有趣的是,CCL4、ZAP-70和IgV小时突变状态与治疗时间无显著相关性。该模型表明,CCL3高水平患者需要治疗的瞬时风险是CCL3低水平患者的2.33倍。
表6
特性 | 类别 | 心率(95%置信区间) | P(P) |
---|
RAI阶段 | 0 | 基线 | .0025 |
| 一至四 | 2.75 (1.43-5.31) | |
细胞遗传学 | del 13q(删除13q) | 基线 | .001 |
| 二倍体 | 1.69(1.05-2.75) | |
| 三体12q | 1.41 (0.78-2.56) | |
| del 11q(删除11q) | 2.36 (1.44-3.86) | |
| del 17便士 | 2.38 (1.35-4.20) | |
CD38型 | 否定 | 基线 | .023 |
| 积极的 | 1.43 (1.0-2.05) | |
CCL3,微微克/毫升 | 低(<10) | 基线 | < .0001 |
| 高(≥10) | 2.33 (1.56-3.46) | |
CCL3和CCL4血浆水平和CCL3系列样品的分布
我们的351名患者队列中CCL3血浆浓度的分布如图所示A.共有177份样本(50.4%)的CCL3水平低于10 pg/mL的中位数。对7名不同患者在多个时间点采集的系列血浆样本中的CLL3水平的测量表明,随着时间的推移,7名患者中有一名患者超过了中位数10-pg/mL阈值(B) ●●●●。CCL4的结果类似(补充图2)。
CLL中CCL3血浆水平:分布和序列样本,以及CCL3免疫组织化学。(A) 351例慢性淋巴细胞白血病患者血浆CCL3水平的分布。(B) 在CLL患者的系列样本中检测到CCL3的连续血浆水平。这些线连接单个患者的符号,表示任何一名患者随时间变化的CCL3浓度(y轴)(x轴)。(C) 典型病例CLL淋巴结切片中CCL3的常规(左)和免疫荧光(右)免疫检测(原始放大倍数×400)。使用奥林巴斯BX50显微镜和ColorView数码相机拍摄图像,并使用cellSens成像软件(全部为奥林巴斯)进行处理。CCL3型+细胞(左侧为棕色染色)倾向于在增殖中心区域积聚(左侧)。CD79a(红色)和CCL3(绿色)免疫荧光双重染色显示CD79a的共定位+和CCL3+CLL单元格,如箭头所示。(插图)在另一个病例中CCL3和CD79a的共表达。更多免疫组化数据见补充图2。
需要治疗的CLL患者血浆样本中CCL3和CCL4水平
作为验证集,我们分析了FCR一线治疗开始前患者的一系列血浆样本中CCL3和CCL4的水平。该分析的目的是进一步研究测试集中产生的假设(我们的前351个样本),以证明我们的初始假设的有效性,这是无偏见方法中至关重要的一步。31如果我们的假设是正确的,需要治疗的患者的CCL3和CCL4血浆水平将高于CCL3与CCL4的中位血浆水平,因此高于区分低风险与高风险患者的临界水平(分别为10 pg/mL和60 pg/mL)。我们发现接受FCR治疗的患者的平均CCL3水平为48.2±5.1 pg/mL(±SEM,n=53),平均CCL4水平为280±50.8 pg/mL。因此,这些水平高于第一组样本中定义的CCL3和CCL4的中位数和截止值;因此,这些数据支持并验证了我们的第一组数据。
酶联免疫吸附法检测血浆样品和免疫组织化学法检测淋巴结中CCL3
对38个浸润CLL细胞的淋巴结进行CCL3免疫染色。免疫组化显示,38例患者中有13例(34%)有CLL3表达,其中增殖中心的少数前淋巴细胞和副免疫母细胞呈阳性染色(C) ●●●●。在免疫荧光双重染色的初步评估中,我们检测到CD79a和CCL3共定位的单细胞(C类;补充图2),表明确实有一部分CLL细胞表达CCL3。
讨论
BCR信号越来越被认为是B细胞恶性肿瘤(包括CLL)的中心病理机制1,10和DLBCL。9干扰BCR信号传导的新靶向药物,如脾酪氨酸激酶和Bruton酪氨酸激酶抑制剂,正在进入临床阶段,并在CLL和其他B细胞恶性肿瘤患者的首次临床试验中显示出良好的结果。32,33由于这些新出现的治疗方案,确定哪些患者可能受益于这些新方法和/或成为疾病早期治疗的候选者非常重要。
在这里,我们将CCL3描述为一种新的、可靠的CLL预后标记物,可以通过酶联免疫吸附试验在血浆样本中轻松可靠地进行测量。与本病的其他预后标志物相比,这些技术方面有利于CCL3。CLL中一些已确定的预后标志物的测量是劳动密集型和成本密集型的(突变状态、细胞遗传学),而其他(ZAP-70)难以标准化用于常规评估。根据我们队列中CCL3水平的中位数,低CCL3和高CCL3的患者可以在10 pg/mL的临界点进行区分,这说明了低风险患者与高风险患者的区别。与CCL3相比,CCL4的预测性相对较差,并且在不一致的病例中没有添加额外的预后信息。CCL3由CLL细胞(和正常B细胞)分泌,以响应BCR信号,主要发生在淋巴组织中。因此,CCL3血浆水平可能反映了BCR衍生的CLL克隆激活状态。从不同组织隔室(血液、骨髓、淋巴组织)分离的CLL细胞的比较基因表达谱支持这一点,这表明CCL3和CCL4是淋巴组织CLL细胞中上调的淋巴组织“特征”基因,如基因表达谱所示。20在大多数最初CCL3和CCL4水平较低的患者中,CCL3与CCL4的水平稳定(B类;补充图1)表明,随着时间的推移,低风险患者的CCL3和CCL4水平相对稳定。然而,需要对大量与临床和其他预后因素相关的连续样本进行详细分析,以更好地了解CCL3和CCL4水平与疾病活动性之间的关系。
先前的体外和体内研究结果强调,CCL3是正常和肿瘤B细胞对BCR信号的响应中上调的关键反应基因。21,24,25
SCYA3号机组CCL3的基因编码是激活的B细胞特征的一部分34在DLBCL中,并作为DLBCL患者生存率低的预测因子。35Lossos等人35建议的测量SCYA3号机组,以及低分子氧化合物,2006年,FN1型,CCND公司、和BCL2级DLBCL危险分层的基因表达。从功能角度来看,有趣的是,低BCL6号机组和高SCYA3号机组在该模型中,表达是不良预后的指标,35考虑到这一点BCL6号机组绑定到中的顺元素CCL3型启动子,在这里它起关键阻遏作用CCL3型表达式。26
CCL3在淋巴瘤中的确切功能尚不清楚。基于B细胞衍生CCL3在正常免疫应答中的假定功能,我们假设CLL细胞增加CCL3分泌可能导致辅助细胞向组织微环境中的恶性B细胞迁移和归巢。21众所周知,增殖室中的CLL细胞散布着T细胞17,36单核细胞/巨噬细胞谱系的细胞,称为NLC。15可以想象,CLL细胞衍生的CCL3可能会吸引这些辅助细胞,从而创造一个有利的微环境,使CLL细胞能够与T细胞和NLC相互作用,接收生存和增殖信号。这得到了体外试验的支持24和体内37,38研究表明,CCL3和CCL4在淋巴组织中具有特殊功能。这些研究表明,淋巴组织中的B细胞激活导致CCL3和CCL4分泌,导致CCR5的募集+调节性T细胞与B细胞和抗原呈递细胞的同源相互作用。37,38
总之,我们的研究结果以及DLBCL中的基因表达数据表明,CCL3在选定的B细胞瘤中起着稳健的预后标记物的作用,其中BCR信号和CCL3表达增加是一个共同的主题。我们的研究证明了测定CCL3血浆水平预测慢性淋巴细胞白血病的可行性和有效性。检测的简单性、预后信息的重要性、与BCR信号的关系以及与该通路相关的新疗法表明,CCL3将成为CLL和其他潜在B细胞恶性肿瘤的一个非常有用的预后标记物。
致谢
作者感谢Theodora Nedeva和Sabine Roth提供的专家技术援助。
这项工作得到了CLL全球研究基金会拨款(W.W.、A.R.和J.B.)、ASCO职业发展奖(J.B.)和国立卫生研究院CLL研究联盟(PO1-CA81534)的支持。
脚注
本文的在线版本包含数据补充。
这篇文章的出版费用部分由页面费支付。因此,仅为了表明这一事实,根据《美国法典》第18卷第1734节的规定,本文特此标记为“广告”。
作者身份
贡献:M.S.进行了CCL3/4血清分析和数据分析,并设计了图表;E.H.对CCL3进行了免疫组化,并审查了数据和手稿;T.J.K.和L.R.提供了样本,分析了数据,并审阅了手稿;D.K.、S.L.和R.L.收集并整理数据;L.X.、X.H.和L.W.分析并解释了数据;D.N.、H.K.、S.O.、W.G.W.和M.J.K.提供了样本,帮助解释数据,并审阅了手稿;A.R.进行了免疫组化并审查了数据和手稿;J.A.B.设计了研究,监督了研究,分析了数据,并撰写了论文。
利益冲突披露:作者声明没有相互竞争的财务利益。
通信:Jan A.Burger,白血病系,德克萨斯大学安德森癌症中心428单元,邮政信箱301402,休斯顿,德克萨斯州77230-1402;电子邮件:gro.nosrednadm@再生.
工具书类
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