跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
神经科学杂志。2009年9月9日;29(36): 11339–11346.
预防性维修识别码:项目经理3148946
美国国立卫生研究院:NIHMS148300标准
PMID:19741140

成年早期视网膜自发胶质钙波的形成

摘要

细胞间胶质钙2+波构成胶质细胞之间的信号通路。人工刺激以前曾被用来激发这些波,其生理意义受到质疑。我们在这里报告,Ca2+波在大鼠视网膜胶质细胞中自发发生,无论是在隔离的视网膜还是体内这些自发波通过ATP释放传播。在分离的视网膜中,苏拉明(P2受体拮抗剂)可将自发波产生的频率降低53%,而apyrase(ATP-水解酶)可将频率降低95-100%。荧光素-荧光素酶化学发光显示ATP波与自发钙相匹配2+波,表明ATP释放是以自发钙的形式发生的2+产生波浪。波浪的产生也取决于年龄。自发波频率从每分钟每毫米0.27上升到1.02随着大鼠年龄从20日龄增加到120日龄,胶质细胞对ATP的敏感性并不随年龄增加而增加,但120日龄大鼠诱发波释放的ATP比20日龄大鼠大31%,这表明年长动物ATP释放增加可能是波产生频率较高的原因。胶质细胞钙的同步成像2+孤立视网膜中的小动脉表明,自发波改变血管直径,这意味着自发波可能对视网膜生理学有重大影响。自发细胞间胶质细胞钙2+视网膜也会出现波动体内频率、速度和直径与隔离视网膜相似。随着年龄的增长,自发波的发生率增加,这表明自发波的产生可能与视网膜病理学有关。

介绍

胶质细胞显示胞内钙2+神经元和其他神经胶质细胞信号引起的兴奋。神经递质激活胶质细胞上的代谢受体引起钙释放2+从内部存储到胞浆(Fellin和Carmignoto,2004年). 这个Ca2+升高会导致谷氨酸、ATP和d日-丝氨酸,改变突触效能(Araque等人,1998年;Kang等人,1998年;Yang等人,2003年;Pascual等人,2005年)和神经元兴奋性(Parpura等人,1994年;纽曼,2003;Fellin等人,2004年). 胶质钙2+海拔升高还触发花生四烯酸代谢产物的释放,调节血管直径(Zonta等人,2003年;Mulligan和MacVicar,2004年;Metea和Newman,2006年;Gordon等人,2008年).

胶质细胞内钙也自发增加2+.自生钙2+首次报道单个星形胶质细胞的瞬变在体外(Cornell-Bell等人,1990年)也可以观察到就地(Aguado等人,2002年;Nett等人,2002年),在那里它们可以诱导神经元NMDAR电流(Parri等人,2001年). 自然钙2+瞬态也会发生体内并可能调节神经突起生长,导致血管扩张(Takano等人,2006年;Kanemaru等人,2007年). 尽管它们可能在空间上相互协调,但这些自发瞬变仍局限于单个细胞(Hirase等人,2004年).

当受到外部刺激时,钙升高可以以传播波的形式在胶质细胞之间传播(Scemes和Giaume,2006年)协调数十或数百微米以上的胶质细胞活动。这些细胞间胶质细胞钙2+波可以由电、化学和机械刺激引起,在星形胶质细胞培养中已经观察到(Cornell-Bell等人,1990年),分离的视网膜(纽曼和扎斯,1997年),大脑切片(Kang等人,1998年;Schipke等人,2002年;Haas等人,2006年)、和体内在大脑皮层(Tian等人,2006年;丁等人,2007). 根据制剂的不同,诱发波可能通过释放ATP进入细胞外空间,通过细胞内信使通过胶质细胞之间的缝隙连接扩散,或两者兼而有之而传播(Scemes和Giaume,2006年). 诱发波可以调节神经元的活动(Nedergaard,1994年;纽曼和扎斯,1998年)和血液流动(Mulligan和MacVicar,2004年;Metea和Newman,2006年).

最近,细胞间胶质细胞钙2+人们观察到波是自发产生的体内(Hoogland等人,2009年;Kuchibhotla等人,2009年),回答了在没有人工刺激的生理条件下,这些波是否会发生的重要问题。我们在这里报告自发胶质细胞钙2+视网膜中也会出现波动,既有孤立的视网膜,也有体内像诱发波一样,视网膜中的自发波通过ATP的释放传播,并可以调节血管直径。我们还发现,随着动物年龄的增长,自发波的频率增加。结果表明,胶质细胞能够独立调节血流,提示胶质细胞钙2+波可能参与了老化过程。

材料和方法

动物。

所有实验均使用雄性Long–Evans大鼠。供应商(哈兰实验室)送来的大鼠年龄为20–100 d。有些动物在明尼苏达大学动物资源研究所的设施中再维持9个月。在深度异氟醚麻醉后,通过切断膈膜杀死大鼠。本研究中使用的动物按照明尼苏达大学动物护理和使用委员会的指导方针进行治疗。

分离视网膜制备。

分离的视网膜制剂已在前面描述过(纽曼,2001). 简单地说,从半切眼球上剥离视网膜并取出玻璃体。视网膜被切成两块,平放在灌注室中,玻璃体表面朝上。在22−23°C条件下,以2–3 ml/min的速度将分离的视网膜与碳酸氢盐缓冲林格液混合。除中所述外的所有实验图7在分离的视网膜上进行。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220007.jpg

自然钙2+视网膜中出现波动体内.这些假色Δ前/后比率图像显示单个自发Ca的时间序列(从左到右,从上到下)2+波动体内每一帧代表1s。焦平面位于视网膜表面下几微米处,在神经节细胞层中,最亮的Müller细胞位于2+观察到信号。

孤立视网膜的钙和ATP成像。

我们的加州2+和ATP成像方法已在前面描述(纽曼,2001). 对于共焦Ca2+图像显示,视网膜在Ca中孵化2+显像前,指示染料Fluo-4 AM(25μg/ml)和普鲁尼酸(1.75 mg/ml)持续25分钟。Fluo-4 AM选择性地加载到胶质细胞而不是神经元中,这与以前的报道一致(波特和麦卡锡,1996年;Stosiek等人,2003年;Hirase等人,2004年). 荧光图像用共焦扫描仪(Odyssey,Noran)捕获,图像平均为1秒。

荧光素-荧光素酶化学发光分析用于ATP成像。荧光素酶催化荧光素与ATP的反应发光,使ATP释放到细胞外空间可视化。停止超融合,将荧光素和荧光素酶的溶液轻轻移到培养箱中,当成像诱发ATP波时,最终浓度为0.68 mg/ml荧光素和0.61 mg/ml荧光素酶。当成像自发波时,荧光素酶的浓度降低了三分之二,因为我们发现荧光素酶本身可能通过其胞外ATP酶活性,起到了抑制自发波的作用。化学发光由KS-1381图像增强器(VideoScope)与CoolSnap ES相机(Photometrics)耦合拍摄,积分时间为1s,像素为2×2。为了在ATP成像过程中保持pH值和氧合,在物镜和灌注室周围安装了一个项圈,并使用95%的氧气2,5%一氧化碳2轻轻吹过腔室表面。所有图像采集均在MetaMorph(分子器件)中进行。如前所述,校准荧光素-荧光素酶化学发光图像(纽曼,2001)计算视网膜表面的绝对ATP浓度。

钙波成像和分析。

使用一个10×水浸物镜(Olympus)对隔离视网膜中的波进行计数,覆盖面积约为0.5 mm2。根据每帧中开始的波数计算波数。波与其他时变荧光信号的区别在于其同心扩张模式和网状外观(神经节细胞形成网状暗室,几乎没有荧光信号)。编写了一个自定义图像分析程序,用于自动检测和计数波形。

同时监测血管直径和胶质细胞钙2+动物死亡前,通过颈静脉注射,用右旋糖酐结合荧光素(2000000 MW;以类似于Fluo-4的波长激发和发射)填充血管,以可视化血管腔。在这些实验中,视网膜被孵育并用100 nU-46619(血栓素的类似物)增加基底血管张力(Metea和Newman,2006年).

在apyrase实验中,停止灌注,用吸管轻轻地将apyrase移到记录室中。在apyrase的对照实验中,同样停止灌注,并将等量的Ringer’s移液管注入小室。如所述,使用气体项圈进行荧光素酶实验。

强光照射。

在动物护理设施中,大鼠通常暴露在-30勒克斯的环境光下。(光线测量是在大鼠蜷缩的笼子中最黑暗的部分进行的。)对于强光照射实验,大鼠从20天开始,被安置在1000勒克斯的环境光照下。将大鼠暴露在这些强光条件下1-4个月。正常和强光照射大鼠均处于12小时光照/12小时暗周期。

机械刺激。

人工激发Ca2+波,一个玻璃吸管被放置在它的尖端接触星形胶质细胞的位置。吸管在压电致动器(PZ-150 M,Burleigh)的控制下,在100 ms内向前移动并缩回3-4μM。此机械步骤始终会触发较大的Ca2+波浪。在1-2分钟的不应期后,可以在单个位置重复诱发波,这表明机械刺激不会损伤受刺激的星形胶质细胞。

开放式叶栅体内准备。

通过IP注射氨基甲酸乙酯麻醉大鼠(最初为1.3 g/kg,根据需要增加0.2 g/kg以达到深度麻醉)。监测核心体温并将其维持在37度,通过皮下注射生理盐水维持水合作用。将动物放置在带有三点头枕的改良立体定向支架中。右眼通过八条穿过全球结缔组织的缝合线固定在一个金属环上。用微型虹膜剪刀做一个“X”形切口,然后围绕角膜周边进行切割,取出角膜。在晶状体前囊周围切开后,通过皮下注射针进行抽吸,取出晶状体。用镊子撕裂后囊,用虹膜剪刀切割后囊。用镊子撕裂玻璃体腔,并用吸管吸除。

胶质细胞被钙标记2+指示染料俄勒冈绿488 BAPTA-1(OGB-1)。OGB-1而非Fluo-4被用于标记胶质细胞体内由于钙含量较高2+亲和力,产生具有更高信噪比的图像。OGB-1溶液(140μg/ml俄勒冈州绿、7 mg/ml普鲁尼酸和8μg/ml生理盐水中的eserine)在玻璃体切除后用移液管移到开放的球体中。Eserine(酯酶抑制剂)增强胶质细胞OGB-1标记。在70分钟的孵育期后,用盐水冲洗开放式球体,然后用粘性盐水溶液填充。将立体定向支架和大鼠固定在直立共焦显微镜(扫描视野共焦,Prairie Technologies)的活动台上,开放式球体朝上。通过20×长工作距离的水浸物镜(Olympus)观察视网膜。为了计算自发波,对视网膜上标记最好的区域进行25至110分钟的成像。只有当(1)荧光信号的形状近似圆形,(2)它们在至少两帧上同心扩张,(3)它们的峰值直径在30至100μm之间时,荧光信号才被计算为波。

解决方案和药物。

用于分离视网膜实验的碳酸氢盐缓冲林格溶液(单位:m):111氯化钠,3氯化钾,2氯化钙2,1 MgSO4,0.5 NaH2人事军官4,15葡萄糖,32氯化钠溶液用95%的O鼓泡2,5%一氧化碳2.用于体内包含的实验(m):132.5氯化钠,3氯化钾,2氯化钙2,1 MgSO4,0.5 NaH2人事军官4,10个HEPES;pH值7.4。将透明质酸、钠盐(15 mg/ml)添加到盐水溶液中,制成粘性盐水。除U-46619(Cayman)、TTX(Alomone Labs)、NMDA和DL-AP7(Tocris Bioscience)以及Fluo-4、OGB-1和pluronic acid(Invitrogen)外,所有试剂均购自Sigma。

统计。

数值表示为平均值±SEM,图中的误差条表示SEMt吨在比较两组的平均值时使用了测试。在比较线性模型的斜率为零时,使用线性回归模型的方差分析。

结果

哺乳动物视网膜中存在两种类型的大胶质细胞:星形胶质细胞和米勒细胞。星形胶质细胞体位于视网膜的玻璃体表面,延伸与血管最内层接触的突起。Müller细胞是放射状胶质细胞,其胞体位于内核层。Müller细胞突起横跨视网膜的整个厚度,并与血管和突触广泛接触(纽曼和赖森巴赫,1996年). 米勒细胞端足排列在视网膜的玻璃体表面。星形胶质细胞通过缝隙连接彼此耦合并与Müller细胞耦合(Zahs和Newman,1997年). 机械、电或化学刺激视网膜内部可诱发钙波2+两种胶质细胞之间增殖的升高(纽曼和扎斯,1997年;纽曼,2001).

自发性胶质细胞钙2+视网膜中出现波动

胶质钙2+用共焦显微镜在隔离视网膜的内表面进行监测,其中Ca2+信号在Müller细胞终末和星形胶质细胞体和突起中成像。胶质细胞表现出钙的自发(即非刺激)波2+在单元格之间传播的提升(图1A类; 补充电影S1,网址为网址:www.jneurosci.org作为补充材料)。这些波遵循类似于诱发波的同心扩展模式,从起始点开始扩展4-8秒,然后在接下来的5-10秒内收缩。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220001.jpg

自发性细胞间胶质细胞钙2+孤立视网膜中的波从Müller细胞开始传播。A类,自发波是从视网膜上的多个点发起的。这个假彩色比图像将60秒的视频压缩了最大ΔF类/F类投影。在60 s期间产生了15个自发波。B–D类,一个Ca2+放大倍率较高时显示的波形。像我们观察到的所有波一样,该波在Müller细胞中启动并传播,但不是星形胶质细胞。B类,波开始前的钙荧光图像(平均5帧)。区域1-4是参与波的Müller细胞。红色区域是星形胶质细胞。C,亮度增加(ΔF类/F类)在随时间绘制的每个区域中。虽然波在星形胶质细胞的胞体中传播2+]在牢房里没有上升。D类,A最大ΔF类/F类波浪期间框架的投影(与B类),显示细胞中含有[Ca2+]增加。

自然钙2+波只通过Müller细胞传播,未观察到向星形胶质细胞传播。在高倍镜下记录的15个波中,这些波总是在Müller细胞中产生,并在没有Ca的情况下通过星形胶质细胞传播2+星形胶质细胞升高(n个=8波)(图1B–D类). 然而,我们不能排除星形胶质细胞偶尔也经历钙离子的可能性2+增加。波以24.3±1.7μm/s的速度传播,最大直径为68.4±2.2μm(n个=4只动物的18波)。

自发波随年龄增长而增加

自发波的产生频率取决于动物的年龄(图2A类). 频率等于每分钟1.0毫米2在120日龄的动物中,每毫米每分钟0.27倍220日龄动物的价值。这些波频率的测量是在视网膜在灌注室中放置20–70分钟后进行的。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220002.jpg

自发钙的频率2+波浪的产生随着年龄的增长而增加。A类在不同年龄的动物中自发波的平均频率(从成像开始后20到70分钟计数)。频率随年龄增长而增加(第页< 0.05).B类,每个年龄段出现高初始波频率(定义为成像前6分钟内出现3个或更多波)的动物比例。条形图上方的数字表示每个箱子中的动物总数。C,在大鼠中观察到的最高波动率随大鼠年龄增加而增加(第页< 0.005;R(右)2= 0.33). 每个点代表一只动物。D类,暴露在高光照下1-4个月并没有增加大鼠显示高初始波频率的比例。

老年动物的一些视网膜区域在视网膜置于灌注室后立即显示出非常高的自发波生成频率。这种高频波产生在~15分钟内衰减(参见图4A类). 15分钟后达到稳定的基线波生成速率,并且与在视网膜中没有发生高频波生成的区域中看到的速率相似。视网膜显示初始高波生成率的概率随着动物年龄的增长而增加(图2B类). 记录第一分钟测得的最大波速也随着动物年龄的增加而增加(图2C). 在12个月大的动物视网膜中,频率为每分钟56±24波/mm2.

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220004.jpg

自然钙2+波的产生依赖于P2受体和细胞外ATP。A类、苏拉明(100μ; P2R拮抗剂)降低自发波的频率。控制值(ctrl)和苏拉明值之间的差异叠加在高初始波发生率的衰减上。自然钙2+波数以1分钟为间隔进行分类,每次试验均按试验第一分钟内的波数进行标准化。B类、苏拉明(100μ)和apyrase(100 U/ml;ATP降解酶),但不是TTX(200 n)DL-AP7(100μ; NMDAR拮抗剂)、卡宾诺酮(100μ; 缝隙连接阻滞剂)或腺苷受体拮抗剂混合物(100nDPCPX,1μMRS 1191,1μMRS 1706,1μZM 241385)降低了自发波的产生频率。自成像开始后3至6分钟,对自发波计数进行平均,并将其归一化为第一分钟内的波计数。开始成像后1分钟添加药物*第页< 0.05.

因为胶质细胞钙的比率2+波浪的产生随着年龄的增长而增加,我们推测波浪的出现可能是累积损伤的结果,可能是由于暴露于光照所致。为了测试这一点,我们将大鼠暴露在1000勒克斯的环境光(约为正常光照水平的30倍)下1-4个月,假设这会加速波浪的发展。然而,我们发现光处理对波的入射没有影响,这表明自发Ca的产生2+波浪不是由于光照射引起的视网膜损伤所致(图2D类). 事实上,在光照动物中有减少波生成的趋势,但通过双向方差分析,光照与年龄之间的交互作用并不显著(第页= 0.07).

自发波通过ATP的释放传播

人工诱发胶质细胞钙2+视网膜中的波通过两种机制在细胞间传播。星形胶质细胞向星形胶质细胞的增殖是由小分子扩散介导的(可能是IP;Venance等人,1997年)通过缝隙连接,而星形胶质细胞到Müller细胞和Müler细胞到Möller的增殖是通过ATP的释放及其对P2嘌呤能受体的作用介导的(纽曼,2001).

我们询问自发波通过米勒细胞的传播是否也由ATP释放介导。荧光素-萤光素酶-ATP化学发光法用于监测自发钙离子交换过程中ATP向细胞外空间的释放2+波浪生成。钙成像首次用于定位一只年龄较大的大鼠(175–325天)的分离视网膜的富含波的区域。然后在同一个波幅丰富的视网膜区域进行几分钟的ATP化学发光成像。我们观察到多个向外扩散的自发化学发光信号,表明ATP释放的自发波(图3). 自发ATP波的传播速度(22.0±2.1μm/s;n个=4波)与自发Ca的传播速度密切匹配2+波浪。ATP波的最大直径(85.3±3.1μm)略大于Ca波2+波浪。校准荧光素-荧光素酶化学发光图像,以确定视网膜表面ATP的绝对浓度。细胞外ATP峰值浓度等于2μ在ATP释放自发波的中心。这比机械诱发波产生的ATP峰值水平小一个数量级(纽曼,2001). 这是合理的,因为机械诱发波的幅度大得多,直径也大得多。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220003.jpg

孤立视网膜中ATP释放的自发波。用荧光素-荧光素酶化学发光法观察视网膜自发钙高频率区域的ATP释放2+波浪。A类,中的化学发光图像x个,坐标,显示其峰值处的自发ATP波。这张图片描绘了相同的自发波,如B类.B类,C,化学发光的线性扫描图像表示为亮度与时间的等高线图,显示在纵轴上。在这两个示例中,线条扫描(如中的红线所示A类)位于每个波的中间。像自发钙2+波,ATP波从一个中心点(在每个图形的中心/顶部)开始膨胀,然后收缩,总时间为8-15秒。

荧光素-萤光素酶化学发光结果表明,ATP以与自发Ca相匹配的空间模式释放2+波浪。为了测试ATP是否在波传播中起因果作用,我们阻断了ATP对胶质嘌呤能受体的作用。在老年大鼠(116-327天)的高初始波频率期间进行药理学实验。苏拉明(P2受体拮抗剂;100μ)将自发波产生频率降低52±7%(n个=7视网膜)(图4A类,B类). 苏拉明具有非选择性作用,可能会阻断钙2+通过拮抗P2受体以外的机制产生波动。因此,我们用apyrase(一种选择性水解细胞外空间ATP的酶)阻断了ATP的作用。Apyrase(100 U/ml)将自发波的频率降低了95±4%(n个=4视网膜)(图4B类). 与苏拉明相比,安吡酶的更大作用可能反映了苏拉明对P2受体的不完全阻断。

我们还通过应用缝隙连接阻断剂卡雷诺酮来测试缝隙连接是否参与自发波的传播。卡宾诺酮(100μ)不影响产生的自发波数量(n个=3视网膜)(图4B类)或者波的平均速度或直径(数据未显示),这表明缝隙连接在自发波的传播中没有发挥重要作用。这与自发波中缺乏星形胶质细胞的参与是一致的,因为视网膜星形胶质细胞之间的波传播是由缝隙连接介导的,而Müller细胞之间的传播则不是(纽曼,2001). 我们还应用TTX来确定神经元尖峰是否有助于自发波的产生。TTX(200 n)不影响产生的自发波数量(n个=4视网膜)(图4B类). 此外,DL-AP7和(n个=5视网膜)(100μ; NMDA受体拮抗剂)或腺苷受体拮抗剂混合物(n个=4视网膜)(100 nA1的DPCPX,1μA2用ZM 241385A类, 1 μA2的MRS 1706B类、和1μA3受体的MRS 1191)对产生的自发波数量有任何影响(图4B类).

中所示的药理学实验图4在解剖后高频波产生的初始阶段进行。我们还对Ca进行了表征2+在解剖后20–70分钟,在稳定基线生成期间产生波,以确定这些波是否也通过ATP释放传播。在老年动物(265-294天)的对照实验中,Ca2+波的产生速率为0.74±0.43波/分钟/mm2(n个=3只动物)。添加apyrase(100 U/ml)完全消除了波的产生(n个=3只动物);在总共35分钟的观察中,未发现任何波动。

ATP敏感性不随年龄增长而增加

我们推测,随着年龄的增长,胶质细胞ATP敏感性的增加可能是老年动物波发生频率增加的原因。为了验证这个假设,我们使用了3μ不同年龄动物视网膜的ATP。ATP的应用总是产生Ca2+Müller细胞和星形胶质细胞增加,但我们发现这种增加的幅度与动物的年龄无关(n个=24只动物)(图5A类). 为了确保ATP反应不饱和,我们还在1μ和0.3μ.而Ca2+反应较小,在这些浓度下,我们没有发现年龄对反应幅度的影响(数据未显示)。结果表明,胶质细胞ATP敏感性的改变并不是老年动物自发波生成率增加的基础。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220005.jpg

ATP释放量(而非ATP敏感性)随年龄增长而增加。A类胶质细胞的ATP敏感性与年龄无关。3μ的浴缸应用ATP产生Ca2+Müller细胞和星形胶质细胞的增加与动物的年龄无关。B–E类、机械刺激星形胶质细胞体细胞触发钙波2+和ATP。老年动物在诱发波期间释放的ATP量更大。B类,诱发Ca2+wave(最大亮度投影)。C,诱发ATP波(峰值直径处的单帧)。D类、Ca峰值2+老年大鼠诱发波的增加与青年大鼠无差异。E类老年大鼠诱发波ATP峰值浓度高于青年大鼠。差异显著(第页<0.05)从23秒到34秒。英寸D类E类,钙的亮度测量2+荧光和ATP化学发光是整个微观场的平均值。F类,自生钙2+老年动物的波浪最大直径较大。每个时间点显示的直径是该时间达到的最大直径。每波分析时,年轻和老年大鼠之间的差异显著(第页<0.001)或每只动物(第页< 0.005).

老年动物的胶质细胞释放出更多的ATP

钙波传播涉及ATP释放和钙离子2+根据释放的ATP进行提升。自从加州2+ATP引起的升高不随年龄增长而增加(图5A类),我们推测在Ca2+波传播可能随年龄增长而增加。我们通过唤起Ca来测试这一点2+在来自20日龄或320日龄动物的视网膜中具有机械刺激的波。我们交替进行胶质细胞钙显像试验2+使用Fluo-4(图5B类)用荧光素酶成像ATP释放(图5C). 虽然Ca峰值2+诱发波的增加在20至320天内没有变化(图5D类),诱发波产生的ATP峰值浓度在老年动物中显著高于年轻动物(图5E类). 细胞间胶质细胞钙2+波,ATP以再生方式释放(纽曼,2001). 年长和年幼动物之间ATP信号的差异可能代表再生ATP释放的增加,因为这种差异在刺激后的5到20秒之间增长(图5E类). 与老年动物体内ATP释放量增加相一致,我们还发现老年动物的自发波达到最大直径(137-158天;n个=18波),比幼年动物(40–63天;n个=21波)(图5F类).

自发波导致血管收缩

人工诱发胶质细胞钙2+波浪和Ca2+笼状化合物光解在单个胶质细胞中诱发的增加,可以扩张和收缩视网膜中的血管(Metea和Newman,2006年). 我们研究了自发生成的钙2+波浪对视网膜血管也有类似的影响。血管和胶质细胞钙2+同时在老年动物(139–224天)的视网膜中监测钙的高频率2+波浪生成。在三个实验中的三个实验(每个实验来自不同的动物),自发波从小动脉的一侧传播到另一侧,血管显示出与波同步的收缩(图6,补充电影S2,在线阅读网址:www.jneurosci.org作为补充材料)。在每种情况下,Ca2+波从距离血管至少20μm处开始,在收缩开始前至少两秒。收缩总是从Ca所在的同一视频帧开始2+波浪越过了船。血管收缩了基线直径的24%、11%和9%。这些收缩发生在自发波区域内的一小段血管上,持续时间仅为胶质细胞钙2+高程。接近小动脉但未传播过血管的钙波不会引起血管收缩(n个=7只动物的41波)。没有观察到血管扩张,正如预期的那样,因为我们的林格氏管充满了95%的氧气,这有利于血管收缩而不是扩张(Gordon等人,2008年;Mishra等人,2008年).

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zns9990970220006.jpg

自然钙2+波浪引起小动脉收缩。A类,共聚焦荧光图像显示自发Ca2+wave(最大投影图像)。胶质细胞被Fluo-4标记,小动脉被右旋糖酐-荧光素填充,以显示管腔。B类,小动脉与自发钙同步收缩2+波浪。大Ca2+红色和绿色区域的上升代表着一个自发波在血管中传播。加利福尼亚州2+信号是在A类以及在蓝线处测量的血管直径A类.

出现自发波体内

自然钙2+波可能是分离视网膜准备过程中的伪影,可能不会出现体内。我们通过在视网膜中寻找自发波来对此进行测试体内.我们使用了一个开放式地球仪体内胶质钙制剂2+可通过共焦显微镜在Müller细胞和星形胶质细胞中进行监测。在没有刺激的情况下,我们观察到钙波2+胶质细胞从起始点向外增殖的升高(图7,补充电影S3,可在网址:www.jneurosci.org作为补充材料)。波浪体内与孤立视网膜相比,它们在大小和扩张速度上表现出更多的变异性。然而,平均而言,波的扩展速度为22.1±5.0μm/s,最大直径为67.7±9.3μm(n个=3波),与在隔离视网膜中测得的值非常相似。

24-53日龄大鼠(n个=3只动物),我们观察到平均每分钟0.6个自发波/mm2在84–270天大鼠中(n个=4只动物),我们观察到平均每分钟每毫米6.5个自发波2因此,自发钙的频率有增加的趋势2+随年龄变化的波浪生成体内视网膜,尽管这种影响没有达到显著性。在这些值之间进行插值,120天大鼠的波浪产生率为~1.8波/分钟/mm2,类似于1.0每分钟/mm的基线波浪产生率2在120日龄大鼠的离体视网膜中进行了测量。

讨论

细胞间胶质钙2+波在胶质细胞之间构成协调的信号机制,并可能调节神经元的兴奋性和血流。最近,观察到了自发波体内在小脑中(Hoogland等人,2009年)和大脑皮层(Kuchibhotla等人,2009年)表明胶质细胞Ca2+波是一种生理相关现象,而不仅仅是人工刺激的产物。我们在此报告,通过ATP释放传播的自发波,在隔离的视网膜和视网膜中都会发生体内.

自发视网膜钙2+波类似于报道的自发波体内在小脑和皮层(Hoogland等人,2009年;Kuchibhotla等人,2009年)在某些方面有所不同。阿尔茨海默病小鼠的大脑皮层中的波仅出现在淀粉样斑块附近(野生型动物中没有出现),而视网膜和小脑中的波则出现在没有明显病理变化的情况下。皮层中的波虽然以与视网膜中的波相似的速度膨胀,但其最大直径为~200μm,与培养物中的波类似,但远大于小脑和视网膜中观察到的自发波。小脑或皮层的自发波发生率未见报道。

就像人工诱发的钙2+孤立视网膜中的波(纽曼和扎斯,1997年)在大脑切片中(Dani等人,1992年),视网膜中的自发波是由ATP的释放和神经胶质嘌呤能受体的激活介导的。ATP成像显示ATP释放的自发波与自发Ca相匹配2+波浪(图3). 嘌呤能拮抗剂苏拉明和ATP降解酶apyrase都能降低视网膜自发波的频率。神经胶质细胞之间的缝隙连接耦合和神经元活动在自发波的产生和传播中均不起重要作用。自然钙2+观测到的波浪体内在小脑中也通过嘌呤能受体的激活介导(Hoogland等人,2009年).

自然钙2+视网膜中的波在Müller细胞中启动并传播,似乎并不涉及星形胶质细胞。尽管诱发了胶质细胞Ca2+视网膜中的波通过星形胶质细胞传播,如果它们是在星形胶质细胞中启动的,那么在Müller细胞中启动的诱发波很少传播到星形胶质细胞中(纽曼,2001). 这种差异可能是由于星形胶质细胞具有较高的钙阈值2+嘌呤能受体比Müller细胞激活。

一些视网膜,特别是老年动物的视网膜,显示出较高的自发波初始频率,在15分钟内衰减到稳定的基线。我们推测,较高的初始波频率可能是解剖过程中遭受机械创伤的结果。然而,在初始高频周期内出现的波很可能是由与低频波产生稳定周期内观察到的波相同的机制产生的,因为它们具有类似的特性,包括传播速度、大小和对apyrase的敏感性。

自发钙的频率2+随着动物年龄的增长,波浪产生量显著增加。在隔离的视网膜中,稳定的基础波发生率从每毫米每分钟0.27波增加到1.0波2随着动物年龄从20天增加到120天,视网膜中的自发波发生率也会增加体内增加可能与衰老相关的病理学有关。然而,这并不是由于光照造成的损伤,因为动物在高环境光照下暴露1到4个月后,不会表现出更多的波产生(图2D类). ATP诱发Ca2+视网膜神经胶质细胞的增加并没有随着年龄的增长而增加,这表明波频率的增加并不是由于神经胶质细胞中P2受体或下游信号分子的上调。然而,诱发Ca时释放的ATP2+波确实随着年龄的增长而增加,这表明神经胶质ATP释放的增加可以解释自发波生成的年龄相关性增加。在分离的视网膜中,单个Müller细胞而非星形胶质细胞经常显示短暂的非传播性钙2+增加(纽曼,2005年). 如果自发波以单细胞钙开始2+在短暂的时间内,老年动物对钙的反应可能会释放更多的ATP2+增加允许更多的瞬态以波的形式传播。这可能解释了在老年动物中观察到的较高的波生成频率。与神经胶质ATP释放的年龄依赖性增加相一致,自发Ca2+年长动物的波峰直径较大(图5F类).

自发性胶质细胞钙2+波可能有助于中枢神经系统的病理学。在皮层缺血条件下体内,不仅是自发的胶质细胞钙2+与健康大脑相比,瞬态增加,但它们也在空间上协调,并导致神经元死亡(丁等人,2009). 在阿尔茨海默病小鼠中,自发钙2+淀粉样斑块附近出现波动(Kuchibhotla等人,2009年)这表明波形的产生可能由病理学触发。

相反,自发Ca2+波浪可以保护视网膜细胞。星形胶质细胞上P2Y受体的激活增强了星形胶质细胞和附近神经元对氧化应激的抵抗力(Wu等人,2007年). 自发波可以作为细胞外ATP的来源来刺激这种保护作用,随着氧化应激的增加,这种保护作用在老年动物中变得越来越重要(Sohal和Weindruch,1996年;Kregel和Zhang,2007年).

除了在病理学中可能的作用外,自发胶质细胞钙2+波包含一个功能性信号通路,可能对血管和神经元产生重要的下游效应。人工诱发钙2+波通过释放花生四烯酸代谢物调节视网膜小动脉的直径(Mulligan和MacVicar,2004年;Metea和Newman,2006年). 我们在这里证明了自发生成的钙2+波也可以调节小动脉直径,这意味着自发波有助于调节血流。正如预期的那样,观察到了小动脉收缩,因为视网膜上充满了充满95%氧气的林格氏液。当氧浓度降低到生理水平时,很可能自发的钙2+波浪会引起血管舒张,而不是血管收缩(Gordon等人,2008年;Mishra等人,2008年).

自发波也可能影响神经元的活动。诱发胶质细胞Ca增加2+导致神经递质释放,从而调节神经元兴奋性和突触传递(纽曼,2004;Agulhon等人,2008年). 胶质细胞释放ATP导致培养海马神经元突触传递抑制(小泉等人,2003年)和大脑切片(Pascual等人,2005年). 自然钙2+单个神经胶质细胞的瞬变导致神经元中NMDA受体介导的电流(Parri等人,2001年;Angulo等人,2004年;Fellin等人,2004年). 在视网膜中,刺激钙2+胶质细胞增多导致ATP释放介导的神经元超极化(纽曼,2003),而诱发波可以促进或抑制光诱发神经元放电(纽曼和扎斯,1997年). 鉴于胶质细胞钙的这些功能后果2+在成年早期,波形生成的增加和变化可能代表视网膜信息处理的年龄依赖性变化。

脚注

这项工作得到了美国国立卫生研究院EY004077拨款和美国国立卫生研究院视力训练拨款的支持。我们感谢Janet Dubinsky、Benjamin Clark和Anja Srienc对本手稿的有益讨论和评论,以及Michael Burian的技术援助。

工具书类

  • Aguado F、Espinosa-Parrilla JF、Carmona MA、Soriano E。神经活性调节星形胶质细胞自发钙瞬变的相关网络特性就地.神经科学杂志。2002;22:9430–9444. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Agulhon C、Petravicz J、McMullen AB、Sweger EJ、Minton SK、Taves SR、Casper KB、Fiacco TA、McCarthy KD。星形胶质细胞钙在神经生理学中的作用是什么?神经元。2008;59:932–946. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Angulo MC、Kozlov AS、Charpak S、Audinat E.神经胶质细胞释放的谷氨酸能同步海马中的神经元活动。神经科学杂志。2004;24:6920–6927. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Araque A、Sanzgiri RP、Parpura V、Haydon PG。星形胶质细胞中的钙升高导致培养海马神经元中NMDA受体依赖性的微突触电流频率增加。神经科学杂志。1998;18:6822–6829. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Cornell-Bell AH,Finkbeiner SM,Cooper MS,Smith SJ。谷氨酸诱导培养星形胶质细胞中的钙波:长程胶质细胞信号。科学。1990;247:470–473.[公共医学][谷歌学者]
  • Dani JW,Chernjavsky A,Smith SJ。神经元活动触发海马星形胶质细胞网络中的钙波。神经元。1992;8:429–440.[公共医学][谷歌学者]
  • Ding S,Fellin T,Zhu Y,Lee SY,Auberson YP,Meaney DF,Coulter DA,Carmignoto G,Haydon PG.增强星形细胞Ca2+癫痫持续状态后的信号有助于神经元兴奋性毒性。神经科学杂志。2007;27:10674–10684. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 丁S,王T,崔伟,Haydon PG.光血栓缺血刺激持续的星形胶质细胞钙2+信号体内.格利亚。2009;57:767–776. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Fellin T,Carmignoto G.大脑中的神经元-星形胶质细胞信号传递代表一个独特的多功能单元。生理学杂志。2004;559:3–15. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Fellin T、Pascual O、Gobbo S、Pozzan T、Haydon PG、Carmignoto G。星形细胞谷氨酸通过激活突触外NMDA受体介导的神经元同步性。神经元。2004;43:729–743.[公共医学][谷歌学者]
  • Gordon GR、Choi HB、Rungta RL、Ellis-Davies GC、MacVicar BA。脑代谢决定了星形胶质细胞控制小动脉的极性。自然。2008;456:745–749. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Haas B、Schipke CG、Peters O、Söhl G、Willecke K、Kettenmann H。小鼠新皮质中活性依赖性ATP波独立于星形细胞钙波。大脑皮层。2006;16:237–246.[公共医学][谷歌学者]
  • Hirase H,Qian L,Bartho P,Buzsaki G.皮层星形细胞网络的钙动力学体内.《公共科学图书馆·生物》。2004;2:494–499. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Hoogland TM、Kuhn B、Göbel W、Huang W、Nakai J、Helmchen F、Flint J、Wang SS。完整小脑中径向扩张的跨胶质细胞钙波。美国国家科学院院刊。2009;106:3496–3501. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kanemaru K,Okubo Y,Hirose K,Iino M.自发钙离子对神经突起生长的调节2+星形胶质细胞的振荡。神经科学杂志。2007;27:8957–8966. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kang J,Jiang L,Goldman SA,Nedergaard M.Astrocyte介导的抑制性突触传递增强。自然神经科学。1998;1:683–692.[公共医学][谷歌学者]
  • 小泉S、藤下康夫、津田M、Shigemoto-Mogami Y、井上K。海马培养物中星形胶质细胞衍生ATP对兴奋性突触传递的动态抑制。美国国家科学院院刊。2003;100:11023–11028. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kregel KC、Zhang HJ。衰老中氧化应激的综合观点:基本机制、功能效应和病理因素。美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol。2007;292:R18–R36。[公共医学][谷歌学者]
  • Kuchibhotla KV,Lattarulo CR,Hyman BT,Bacskai BJ。阿尔茨海默病小鼠星形胶质细胞同步多动和细胞间钙波。科学。2009;323:1211–1215. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Metea MR,纽曼EA。神经胶质细胞扩张和收缩血管:神经血管耦合机制。神经科学杂志。2006;26:2862–2870. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Mishra A、Hu M、Newman EA。一氧化氮和氧气调节神经胶质介导的神经血管偶联。收录人:Barres B,Stevens B,编辑。健康和疾病中的胶质细胞。纽约州冷泉港:冷泉港实验室;2008.[谷歌学者]
  • Mulligan SJ,MacVicar BA。星形胶质细胞终末钙瞬变导致脑血管收缩。自然。2004;431:195–199.[公共医学][谷歌学者]
  • Nedergaard M.哺乳动物脑细胞培养物中星形胶质细胞向神经元发出的直接信号。科学。1994;263:1768–1771.[公共医学][谷歌学者]
  • Nett WJ、Oloff SH、McCarthy KD。海马星形胶质细胞就地表现出独立于神经元活动的钙振荡。神经生理学杂志。2002;87:528–537.[公共医学][谷歌学者]
  • 纽曼EA。视网膜星形胶质细胞和Müller细胞中细胞间钙波的传播。神经科学杂志。2001;21:2215–2223. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 纽曼EA。通过释放ATP抑制神经胶质细胞。神经科学杂志。2003;23:1659–1666. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 纽曼EA。视网膜中突触传递的神经胶质调节。格利亚。2004;47:268–274. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 纽曼EA。光诱导的神经元活动引起视网膜神经胶质细胞中钙的增加。神经科学杂志。2005;25:5502–5510. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Newman E,Reichenbach A.Muller细胞:视网膜的功能元件。《神经科学趋势》。1996;19:307–312.[公共医学][谷歌学者]
  • Newman EA,Zahs KR。视网膜胶质细胞中的钙波。科学。1997;275:844–847. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Newman EA,Zahs KR。视网膜中胶质细胞对神经元活动的调节。神经科学杂志。1998;18:4022–4028. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Parpura V、Basarsky TA、Liu F、Jeftinija K、Jeftinoja S、Haydon PG。谷氨酸介导的星形胶质细胞-神经元信号传导。自然。1994;369:744–747.[公共医学][谷歌学者]
  • Parri HR、Gould TM、Crunelli V.自发性星形细胞钙2+振荡就地驱动NMDAR介导的神经元兴奋。自然神经科学。2001;4:803–812.[公共医学][谷歌学者]
  • Pascual O、Casper KB、Kubera C、Zhang J、Revilla-Sanchez R、Sul JY、Takano H、Moss SJ、McCarthy K、Haydon PG。星形细胞嘌呤能信号协调突触网络。科学。2005;310:113–116.[公共医学][谷歌学者]
  • 波特·JT,麦卡锡·KD。海马星形胶质细胞就地对突触末端释放的谷氨酸作出反应。神经科学杂志。1996;16:5073–5081. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Scemes E,Giaume C.星形胶质细胞钙波:它们是什么和它们做什么。格利亚。2006;54:716–725. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Schipke CG、Boucsein C、Ohlemeyer C、Kirchhoff F、Kettenmann H、星形胶质细胞Ca2+脑切片中的小胶质细胞中的波触发反应。美国财务会计准则委员会J。2002;16:255–257.[公共医学][谷歌学者]
  • Sohal RS、Weindruch R.氧化应激、热量限制和衰老。科学。1996;273:59–63. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Stosiek C,Garaschuk O,Holthoff K,Konnerth A.神经元网络的体内双光子钙成像。美国国家科学院院刊。2003;100:7319–7324. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Takano T,Tian GF,Peng W,Lou N,Libionka W,Han X,Nedergaard M.星形胶质细胞介导的脑血流控制。自然神经科学。2006;9:260–267.[公共医学][谷歌学者]
  • Tian GF,Takano T,Lin JH,Wang X,Bekar L,Nedergaard M.使用双光子激光扫描显微镜在完整小鼠大脑中对皮质星形胶质细胞进行成像。高级药物交付版本。2006;58:773–787.[公共医学][谷歌学者]
  • Venance L,Stella N,Glowinski J,Giaume C。在培养的大鼠星形胶质细胞中,受体诱导的细胞间钙信号传导的启动和引导机制。神经科学杂志。1997;17:1981–1992. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Wu J、Holstein JD、Upadhyay G、Lin DT、Conway S、Muller E、Lechleiter JD。嘌呤能受体刺激的IP3-介导的钙2+释放通过增加老化过程中星形胶质细胞线粒体代谢来增强神经保护。神经科学杂志。2007;27:6510–6520. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Yang Y,Ge W,Chen Y,Zhang Z,Shen W,Wu C,Poo M,Duan S.星形胶质细胞通过释放D-丝氨酸对海马长期增强的贡献。美国国家科学院院刊。2003;100:15194–15199. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Zahs KR,纽曼EA。大鼠视网膜胶质细胞间的不对称缝隙连接耦合。格利亚。1997;20:10–22.[公共医学][谷歌学者]
  • Zonta M、Angulo MC、Gobbo S、Rosengarten B、Hossmann KA、Pozzan T、Carmignoto G。神经元对星形胶质细胞的信号传导对大脑微循环的动态控制至关重要。自然神经科学。2003;6:43–50.[公共医学][谷歌学者]

文章来自神经科学杂志由以下人员提供神经科学学会