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OMICS公司。2011年3月;15(3): 173–182.
数字对象标识:2008年10月10日/omi.2010.0088
预防性维修识别码:PMC3125551型
PMID:21329461

肿瘤研究中的稳定同位素分解代谢组学(SIRM)及其在非小细胞肺癌中的临床应用

摘要

代谢组学提供了细胞或组织代谢状态及其对外界扰动的反应的读数。因此,该方法在临床诊断方面具有巨大潜力。使用稳定同位素解析代谢组学(SIRM)进行通路追踪的临床代谢组学是获取人类癌症受试者代谢参数的重要新方法就地在这里,我们概述了从培养细胞和小鼠模型中标记细胞的技术发展。通过癌症生物学中的应用实例,描述了用于分析产生的代谢物同位素和同位素的高通量分析方法NMR和质谱,特别是傅里叶变换离子回旋共振。描述了使用稳定同位素示踪剂的代谢组学临床应用的特殊技术考虑。我们正在进行的非小细胞肺癌(NSCLC)代谢组学研究将证明从概念到分析的整个过程。这种强大的新方法已经为肺癌细胞的代谢适应提供了重要的新见解,包括通过NSCLC中丙酮酸羧基化上调无补体。

介绍

肺癌

L(左)ung癌症残留这是西方所有癌症中男性和女性的最大杀手,给健康和经济带来了巨大负担。仅在美国每年就有大约17万人死于所有肺癌(ACS,2008). 对于许多其他癌症来说,疾病的种子很早就播下了,但临床表现却推迟了很多年(男性和女性的中位年龄约为63岁)。因此,尽管吸烟发病率在过去20至30年中有所下降,但病例数量仍然很高。在早期阶段,该病基本上无症状,大多数患者表现为晚期和不治之症。5年生存率总体上只有17%,在过去40年里变化不大。不幸的是,包括痰分析、胸片或胸部计算机断层扫描在内的筛查方法尚未证明研究人群的总体生存率有所提高(http://www.cancer.gov/cancertopics/factsheet/detection/spiral-ct-lung). 然而,对于那些早期发现疾病(1期)且适合手术切除的受试者,其5年生存率要高得多(约70-80%),尽管在此期间后复发仍然很严重(ACS,2008). 因此,降低肺癌死亡率的一个关键而紧迫的挑战是开发不仅能够早期检测的常规方法(Boyer等人。,1998)也能区分恶性肿瘤和良性肿瘤。这是实现早期检测对提高肺癌和其他癌症患者生存率的益处的主要障碍(编辑,2009).

因此,迫切需要改进肺癌早期检测的诊断工具,以及治疗晚期或复发疾病的更好的治疗策略。为了更深入地了解肺癌的基本生物化学,我们一直在应用稳定同位素示踪方法来发现正常肺组织和肺癌在不同阶段的功能差异。

癌症生长的代谢需求

不受控制的生长是肿瘤细胞的一个普遍特征,它要求细胞代谢发生深刻变化,以维持增殖所需的额外能量和生物合成前体。加速有氧糖酵解是恶性转化的相关因素之一,80多年前Warburg首次描述了这一点(1956). 尽管许多癌细胞糖酵解显著上调(DeBerardinis等人。,2007; Fan等人。,2005,2008; Thornburg等人。,2008; Wong等人。,2004)这一过程本身不足以为合成代谢提供必要的前体;它们必须由额外的代谢过程提供。几种Krebs循环代谢产物,柠檬酸盐、草酰乙酸盐/天冬氨酸盐和α-酮戊二酸盐/谷氨酸盐,分别是脂肪酸、核酸和蛋白质生物合成的前体(Nelson和Cox,2005)所有这些都是增长所必需的。由于其中一些代谢物(例如草酰乙酸和α-酮戊二酸)保持在低细胞浓度,因此必须通过回补来补充,以维持克雷布斯循环和生物合成活动。两条主要的回复途径涉及丙酮酸羧基化(Fan等人。,2008)和谷氨酰胺分解(DeBerardinis等人。,2008; Mazurek和Eigenbrodt,2003; Mazurek等人。,2000,2005; Wong等人。,2004). 这两种途径的相对重要性似乎是组织特异性的(DeBerardinis等人。,2007; 风扇和车道,2008; Fan等人。,2009; Portais等人。,1993).

终末分化细胞维持基本代谢,主要用于细胞内稳态、修复以及营养物质和废物进出细胞的运输。运输利用离子梯度,最终由ATP水解驱动。一个细胞要分裂,它的生物量必须加倍,即大约65%的蛋白质、19%的脂质、13%的碳水化合物和3%的核酸。生物聚合物的组装具有高度的变性;能量代谢上调;1毫克生物量相当于来自蛋白质的大约33μmol碳、来自脂质的11μmol、来自碳水化合物的4μmol和来自核酸的0.9μmol的碳。在哺乳动物细胞中,约1 mg生物量包含30–35μmol碳,例如可从葡萄糖(即5–6μmol)或合成代谢氨基酸中获得。使用教科书中合成生物聚合物所需ATP当量的数量(Nelson和Cox,2005)尽管1μmol葡萄糖完全氧化为CO,但生成1 mg生物质需要来自生物合成途径的至少30μmol碳和至少30μmo ATP来驱动合成代谢反应2可生成高达32μmol的ATP(对于NADH和FADH2,P:O分别为2.5和1.5),其中两个来自糖酵解,五个来自糖水解生成的NADH。事实上,肿瘤细胞通常会将三分之一或更多的葡萄糖转化为排泄的乳酸(DeBerardinis等人。,2007; Fan等人。,2008)它不仅清除了线粒体可能氧化的碳,还清除了糖酵解产生的NADH。在实践中,这意味着葡萄糖的氧化产生的ATP比32摩尔/摩尔葡萄糖的理论最大值要少得多。如果线粒体有功能,氨基酸和脂肪酸也会被氧化。脂肪酸氧化可以提供大量的ATP,但碳不能用于合成代谢目的。谷氨酰胺通过谷氨酰胺水解是合成代谢碳的重要来源(Mazurek和Eigenbrodt,2003),并且取决于它是如何被氧化的细节,可能会提供适量的ATP。请注意,即使在低氧张力下,这种氧化也绝对需要有功能的线粒体。幸运的是,对于癌细胞来说,末端氧受体cytc(c)氧化酶对氧有很高的亲和力(Gnaiger等人。1998).

为什么是稳定同位素?

细胞内代谢物浓度随条件变化的变化通常相对较小(“代谢稳态”),这主要是由反馈和前馈调节循环耦合的广泛相互作用的反应网络造成的(Gunawardena,2010; 纳尔逊和考克斯,2005). 此外,由于真核细胞中的分隔,不同隔间中代谢物的实际池大小既不知道也没有常规测量。通常只测量代谢物的总量,并将其归一化为与组织量成比例的某种标准。

图1显示了一个简化的代谢方案,它代表了一种截短形式的糖酵解,其中有两个输入(葡萄糖或G和B)和多个输出(a、C和乳酸或Lac)。这个简单的方案立即说明了为什么单靠浓度测量是不够的,因为它们无法提供有关流量的信息,并且由于相同的代谢物用于多个“途径”,因此无法确定代谢物的来源。在稳定状态下,对于这种代谢方案,产品的生产速率如下:

方程式M1
(1A)

方程式M2
(1B)

方程式M3
(1C)

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为fig-1.jpg

简单的代谢方案。G代表细胞外葡萄糖,在细胞内被己糖激酶立即磷酸化为G6P。拉克o个和Lac分别代表细胞外(排泄)和细胞内乳酸。表观速率常数,k个因为代谢转化是酶浓度的函数。在迈克利斯·蒙顿动力学的极限下,k个 = (k个/K(K))e(电子)[1−第页/瑞典克朗等式],其中e(电子)是游离酶浓度,第页酶催化的产物和底物浓度K(K)等式是反应的平衡常数(Roberts等人。,1985).

在G和B的恒定供应下,产品的时间历程是线性的。然而,在这些条件下的通量控制可能是分布式和复杂的,并且会随着条件的变化而变化。如果葡萄糖以指数形式消耗,(t吨) = (0)经验(−k个1t吨),然后是中的术语也会随着时间呈指数下降,而b条保持不变;这可能导致新陈代谢模式的改变。此外,产品浓度现在随时间非线性变化。

在组织内细胞之间以及不同器官之间存在通信的生物体中,这个问题更加复杂。然而,如果通过使用示踪剂,系统的化学扰动最小,那么不仅可以从同位素富集的变化中测量通量,还可以直接利用网络的哪些部分。原则上,示踪剂可以是可独立测量的天然代谢物的任何适当版本;传统上,这是使用放射性同位素实现的。稳定同位素具有几个优点,不仅因为其生物相容性和无害性,还因为稳定同位素如13C或15氮很容易与它们更丰富的天然同位素区分开来(12C和14N) 核磁共振和质谱。这两种技术具有敏感性和选择性,可以提供大量关于特定前体原子富集程度和富集程度的信息,即使是在复杂混合物中(Fan和Lane,2008; Fan等人。,1986; 车道和风扇,2007; Lane等人。,2008年a,2009年a). 通过使用具有同位素编辑(NMR)或超高质量分辨率的多维技术,无需从细胞提取物或生物流体中存在的丰富化合物混合物中分离成分。分辨率由分析工具本身提供,因此避免了色谱分离的许多复杂性(Fan等人。,2008; Lane等人。,2008年a).

应用

细胞

在培养细胞的研究中,最简单的假设是输入是恒定的(即不消耗),细胞数量没有变化。实际上,人们通常测量代谢物X的总量,因此,如果实验期间细胞质量增加,那么酶分子的数量也会增加。在指数增长阶段,速率常数也是时间的指数函数。此外,在实验过程中,对葡萄糖有高需求的快速增殖的癌细胞会显著消耗葡萄糖。Chemostats(Wick等人。,2002; Zhong等人。,2004)尚未开发用于哺乳动物细胞。

图2显示了13C葡萄糖均匀混合13C-标记乳酸(13C类-乳酸),每个细胞接受四种不同的处理条件,对照组为5μM甲基亚硒酸(MSA)、6.25μM亚硒酸盐(SeO3)和500μM硒代蛋氨酸(SeM)。与对照组相比,所有三种硒化合物都抑制了细胞内13C类-治疗24小时后乳酸,MSA治疗效果最显著。因为13C类-乳酸主要来源于13这些结果表明,硒化合物在不同程度上抑制了糖酵解。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为图2.jpg

乳酸生产13不同硒处理改变了C葡萄糖和释放到培养基中的量。A549细胞在含有0.2%[U-13C] -在不存在或存在5μM甲基亚硒酸(MSA)、6.25μM亚硒酸盐(SeO3)或500μM硒代蛋氨酸(SeM)的情况下,葡萄糖持续24小时。通过1D测定培养基代谢物1核磁共振氢谱。显示中央共振的甲基区域1H连接到12C和两个13乳酸C卫星。的拆分模式13C卫星表明13C-标记乳酸同位素(13C类-乳酸)。MSA治疗导致13C类-与对照组相比,其他两种硒处理组的乳酸水平更高。

图3显示了13C葡萄糖和13在三倍以上的细胞倍增期内,从培养的癌细胞中提取乳酸C。在此期间,葡萄糖浓度下降约80%(图3A). 培养基中葡萄糖浓度的时间依赖性可近似为:

方程式M4
(2)

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为fig-3.jpg

葡萄糖消耗和乳酸分泌到培养基中的时间过程。MDAMB231细胞在含有0.2%[U的RPMI中生长-13C] -葡萄糖。通过1D测量培养基代谢物1核磁共振氢谱。() •13葡萄糖;13C乳酸;12C乳酸;缬氨酸。连续线是对文本中描述的等式的回归拟合,具体增长率(λ)为0.07 h−1.R(右)2葡萄糖和13乳酸C分别为0.996和0.998。缬氨酸的变化率与零无显著差异13乳酸C生成量为0.01 mM h−1. (B类)的分数13培养基中C标记的乳酸(○)和13消耗的C葡萄糖转化为排泄物13乳酸C(•)。

这里λ与细胞的(指数)增长率相关,使得葡萄糖的摄取/利用率为指数常数。解决方案等式(2)简单来说就是:

方程式M5
(3)

此外13乳酸C不是线性的,而是随着时间的推移而增加(时间过程是向上凹的)(图2B). 源的这种时间依赖性与体内实验中,不可能始终保持源浓度恒定(例如,在丸剂给药中)。

从这个实验中获得的其他信息,仅涉及葡萄糖输入和乳酸排泄,是13C增加排泄的乳酸,并将消耗的葡萄糖部分转化为乳酸(图3B). 在本实验中,乳酸的富集达到约92%的平台值,这意味着这些细胞产生的大多数乳酸直接来自葡萄糖,而不是来自其他未标记来源(总共只有8%)。消耗的葡萄糖转化为乳酸的比例达到约38%(图2B)在MDA-MB-231细胞中,这与我们研究的其他癌症细胞系相当(Fan等人。,2008; Lane等人。,2009年a,2009年b). 如果没有标签,则无法获取此信息。

仅测量输入和输出不足以描述特定的细胞内网络动力学。细胞可以在标记后的不同时间点采集,并且在13C可以用同样的方法在许多代谢物中测定。为了提高识别和定量位置同位素的可靠性,我们开发了一套基于碳质子检测的定量工具(Fan和Lane,2008; 车道和风扇,2007; Lane等人。,2008年a,2009年b).

图4显示了一个2D TOCSY实验,其中13C-标记代谢物是根据光谱中的交叉峰模式确定的,特定原子的富集程度可以通过“卫星”峰的体积来计算,这是由于存在13C、。13葡萄糖导致产生标记的乳酸、丙氨酸、谷氨酸、还原型谷胱甘肽的谷氨酸以及腺嘌呤(5′AXP)和尿嘧啶核苷酸(5′UXP)的核糖部分(图4A). Glu/GSH的卫星交叉峰的模式是典型的通过Krebs循环的扰乱(Fan等人。,2008; 车道和风扇,2007; Lane等人。,2008年a,2008年b)这意味着这些癌细胞中有功能性线粒体。什么时候?13C Gln是来源(图4B)细胞内Lac标记不显著,AXP和UXP的Ala和核糖部分根本没有标记,Glu/GSH标记非常强烈。这与13以C-葡萄糖为来源。此外,与13C葡萄糖实验(数据未显示)。Glu峰中的混乱是轻微的,表明Gln是Glu和GSH的优选碳源,但葡萄糖是Lac和Ala以及核糖的优选碳源。因此,葡萄糖对从头开始核苷酸核糖部分的生物合成以及糖异生在这些细胞中不起作用。相反,尽管13葡萄糖为嘧啶环的生物合成提供了一些碳,13C-Gln标记的尿嘧啶环5,6位置更重,表明Gln的主要合成代谢作用。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为fig-4.jpg

TOCSY光谱:影响13C源。A549细胞在含有10 mM[U-13C] -葡萄糖+2 mM12C Gln或10 mM12C葡萄糖+2 mM[U-13C] -甘氨酸。收集细胞并提取极性代谢物。使用50 ms的各向同性混合时间,在14.1 T和293 K下记录TOCSY光谱()13葡萄糖;(B类)13C Gln.公司。绿色方框连接13C卫星峰值和红色方框追踪1各种代谢物的H共价键。

小鼠模型中的SIRM

细胞对于在受控条件下开发技术和发现特定细胞类型可用的生化反应库非常有价值。然而,在活组织中,细胞与邻近的细胞接触,这些细胞可能属于同一类型(例如,在上皮层中),也可能属于根本不同的类型,例如支持性成纤维细胞、免疫细胞、血液或淋巴管内皮细胞等。细胞相互沟通;神经元和星形胶质细胞之间的代谢合作已经确立(Fan等人。,2010). 因此,也有必要在更真实的组织背景下研究细胞,其中严重联合免疫缺陷(SCID)小鼠中的异种移植人类肿瘤就是一个很好的例子。人类肿瘤或细胞系可以在SCID小鼠体内体外繁殖(例如皮下肿瘤),也可以更好地在原位环境中繁殖。我们在小鼠肺中移植了人肺肿瘤细胞。尽管异种移植物的环境与人体不同,但肿瘤是三维的,有完整的细胞类型,比周围组织血管较少,并且依赖血液提供营养。小鼠模型的实验控制程度低于细胞培养,但大大高于人类受试者。因此,小鼠模型可以被视为人类肿瘤微环境的替代物,它可以将细胞培养细节转化为对微环境中肿瘤代谢的理解。我们的观点是,除非了解细胞的生物化学行为,否则对肿瘤的测量无法得到明确的解释。

图5显示了SCID小鼠尾静脉注射[U后15分钟不同组织提取物的核磁共振谱-13C] -葡萄糖。这些光谱是13C编辑,因此只检测附着在其上的质子13C源自13葡萄糖:因此,它代表了15分钟内组织特异性代谢的快照。正如预期的那样13不同组织的C代谢谱是不同的,因此反映了这些组织中不同细胞类型的非常不同的代谢活动。

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鼠标U-13C葡萄糖。SCID小鼠注射[U-13C] -葡萄糖经尾静脉,15分钟后采集组织。1H(H)-{13C} 在14.1 T 20°C下记录HSQC光谱。光谱显示了15分钟内葡萄糖衍生代谢物的不同相对标记模式。1分钟和30分钟的左血浆主要显示葡萄糖(1分钟)和葡萄糖加乳酸(30分钟)。右:如图所示的组织。

人类非小细胞肺癌的SIRM分析

我们已经扩展了此类13人类肺癌患者的C-示踪剂和同位素方法(Fan等人。,2009; Lane等人。,2008年a,2009年b). 稳定同位素示踪剂[U-13C] -在手术切除原发肿瘤和周围非癌组织之前,招募患者静脉注射葡萄糖。这个13C示踪剂与人体实验完全兼容——重同位素的生物效应不易检测,注射的葡萄糖量约为葡萄糖耐量试验中使用量的20%。表1总结了路易斯维尔非小细胞肺癌SIRM研究中受试者的统计数据。

表1。

路易斯维尔代谢组学收集的非小细胞肺癌样本统计

因子数量或%
总N(外科)73
N个(13C)43
N(否13C)30
性别54%M,46%F
平均年龄中位数(岁)62; 63 ± 9
种族70%白人,25%非裔美国人,5%其他
阶段67%I、19%II、14%III+IV
子类型29%腺癌、42%鳞癌、4%BAC、25%大细胞+腺鳞癌
健康对照组血浆24

在我们历时4年制定的方案中,一名经同意患有可手术NSCLC的受试者输注[U-13C] -手术前大约3小时切除前的葡萄糖。在葡萄糖输注之前和之后立即采集血样(需要5-6分钟,包括盐水冲洗)。血样立即放在冰上,然后离心分离血浆中的红细胞。全血和血浆样本的等分样品用1N速冻2静脉穿刺后30分钟内保存。图6显示了手术室组织采集的各个阶段。为了最大限度地减少缺血,只要符合患者护理要求,肿瘤组织就会被楔形切除。肿瘤暴露在外,对于非小细胞肺癌,外科医生可以肉眼识别肿瘤边缘。将肿瘤的两到三小片进行吸墨汁染色,然后冷冻夹在lN中2(图6). 来自同一肺叶的非肿瘤肺切片,距离肿瘤边缘至少2厘米,也进行了类似的治疗。将多余的组织块吸墨汁,放入福尔马林、OPT或新鲜冷冻中进行后续病理检查。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为fig-6.jpg

切除非小细胞肺癌。左上:缝合血管;右上角:收集到一个内袋中;左中取切除肺的肿瘤组织(白色)和非肿瘤肺组织;右中:切取肿瘤病理标本并冷冻;左下:液氮冷冻夹持肿瘤切片;右下:病理样本的吸墨纸组织。切除和冷冻之间的时间<5分钟。

切除和组织冷冻之间的时间少于5分钟,这可以保持组织的代谢状态。冷冻组织基本上可以无限期地储存在lN2温度。术后采集血液和尿液样本,并将其作为术前血液进行处理,以提供葡萄糖摄取和利用的概述13血浆和13C尿液中的葡萄糖排泄。

利用核磁共振和质谱分析配对的非癌肺组织和癌组织之间代谢途径的差异。这种方法能够分析癌组织的不同代谢特征,而不受内在(如遗传)或外部环境因素(如饮食)的干扰因为患者自身的非癌组织起到了内部控制的作用。图7总结了13C原子来自13葡萄糖通过糖酵解进入克雷布斯循环,以及前体物质并入可观察代谢物后的去向。与非癌肺组织相比,肺肿瘤表现出更强的糖酵解能力,同时表现出其他意料之外或未知的独特代谢活动。特别是,肺肿瘤组织表现出改变但完整的Krebs循环活性和增强的丙酮酸羧基化,这可能在补充肿瘤生长所需的合成代谢前体中发挥关键作用(Fan等人。,2009). 这种合成代谢特性也可能是其他人类癌症的基础(Fan等人。,2008).

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的流量13来自[U的C原子-13C] -葡萄糖转化为可检测的代谢物。13来自葡萄糖(红色)的C原子通过糖酵解进入丙酮酸和丙氨酸,然后通过丙酮酸脱氢酶或丙酮酸羧化酶反应进入克雷布斯循环制造器,最终进入大分子。

非小细胞肺癌患者的血脂

除极性代谢物外,脂质种类也可以通过NR和MS进行检测。甲醇或氯仿/甲醇混合物分别提取极性和非极性脂质,可通过NMR和FT-ICR-MS作为混合物进行分析(Lane等人。,2009年b),同样没有色谱分离。通过直接注入FT-ICR-MS分析结合适当的软件(预计算精确质量同位素搜索引擎或“PREMISE”)进行质量同位素分析,以识别数千种物种,从而可以同时确定PL的酰基链和主干的合成和周转(Lane等人。,2008年a,2009年b). 与健康人相比,癌症患者体内各种类型的脂质小泡的浓度更高(Rabinowits等人。,2009; Taylor等人。,2008).图8显示了从患有或不患有肺癌的成年人血浆中的脂质泡中提取的脂质的FT-ICR MS光谱(图8B),与三名非小细胞肺癌患者的肺癌和非肿瘤肺组织(配对)的脂质提取物进行比较(图8A). 超高分辨率可以区分质量非常相似的脂质(例如图8A)同一患者的癌组织和非癌组织中的脂质1和脂质2明显不同。血浆微泡分数中相同的脂质在非小细胞肺癌和健康人之间显示出更大的差异(图8B).

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FT-ICR MS光谱。脂质是从血浆和肺组织的微泡中提取的溶剂,冷冻干燥,并在甲醇中再溶解。通过直接输注,在7T的Thermo-LTQ-FT-MS光谱仪上记录FT-ICR-MS光谱。()从三名患者的正常和非小细胞肺癌组织中提取的磷脂的扩大区域。(B类)从同一肺癌患者和三名对照受试者的血浆中提取的微泡中提取的脂质(无癌症史)。

结论和未来方向

关于稳定同位素解析代谢组学(SIRM)的价值以及临床代谢分析的未来,可以提出以下几点。(1) 稳定同位素分辨代谢组学(SIRM)是追踪细胞、动物和人类中的途径和通量的关键,就地(2)与正常肺相比,培养的肺癌细胞和非小细胞肺癌中的能量和合成代谢均增加。(3) 基于SIRM的代谢差异与基因表达数据、酶活性交叉验证结果的相关性。非小细胞肺癌(NSCLC)中PC激活的新发现证明了这一点,NSCLC是一种重要的补体酶(Fan等人。,2009)我们随后用大量样品进行了验证。(4) 进一步的SIRM机制研究正在携带人类肺癌细胞或原发性人类肿瘤的原位SCID小鼠模型中进行。这种方法将有助于弥合细胞培养和就地人类研究。

与临床结果和病理学的相关性应导致诊断工具(例如早期生物标记物)和药物反应预测的改进,以及新分子靶点的发现。

致谢

该研究的部分支持来自国家研究资源中心的NIH拨款编号P20RR018733,1R01CA118434-01A2,3R01CA18434-02S1,国家科学基金会EPSCoR拨款编号EPS-0447479,家庭基金会的Robert W.Rounsavall Jr,肯塔基州卓越挑战,以及路易斯维尔驱除癌症运动。我们感谢金莲·谭(Jin Lian Tan)、梅利萨·巴罗西(Melissa Barousse)提供的专家技术援助,以及帕维尔·洛基维茨(Pawel Lorkiewicz)博士和S.阿鲁穆加姆(S.Arumugam)博士提供的质谱和核磁共振(NMR)。

作者披露声明

提交人声明,不存在利益冲突。

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文章来自OMICS:综合生物学杂志由以下人员提供玛丽·安·利伯特公司。