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自由基生物医药。作者手稿;PMC 2012年6月1日提供。
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预防性维修识别码:项目经理3097427
NIHMSID公司:美国国立卫生研究院290962
PMID:21439370

活性氧依赖性RhoA激活介导高氧肺纤维化胶原合成

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补充资料

摘要

肺纤维化是人类和动物模型中肺氧毒性的最终结果。细胞外基质蛋白如胶原蛋白I的过度生成和沉积是高氧肺损伤肺纤维化的最重要特征。在本研究中,我们研究了RhoA和活性氧物种(ROS)在高氧肺成纤维细胞和小鼠氧毒性模型中胶原蛋白I合成中的作用。人肺成纤维细胞暴露于高氧环境下导致RhoA活化,胶原蛋白I合成和细胞增殖增加。C3转移酶CT-04、显性阴性RhoA突变体T19N或RhoA siRNA对RhoA的抑制阻止了高氧诱导的胶原蛋白I合成。组成活性RhoA突变体Q63L模拟了高氧对胶原蛋白I表达的影响。此外,Rho激酶(ROCK)抑制剂Y27632抑制了高氧肺成纤维细胞中胶原蛋白I的合成和小鼠肺氧中毒后的纤维化。此外,ROS清除剂tiron可减轻氧中毒后高氧诱导的肺成纤维细胞和小鼠肺中RhoA活化和胶原蛋白I合成的增加。更重要的是,我们发现高氧诱导了肺成纤维细胞和小鼠肺中鸟嘌呤核苷酸解离抑制剂(GDI)与RhoA的分离。此外,替龙可以阻止高氧肺成纤维细胞和具有氧毒性的小鼠肺中GDI和RhoA的分离。总之,这些结果表明,ROS诱导的GDI与RhoA的分离导致RhoA活化并产生氧毒性。ROS依赖性RhoA激活是高氧肺成纤维细胞和小鼠肺胶原蛋白I合成增加的原因。

关键词:氧毒性、肺、成纤维细胞、胶原蛋白、RhoA、活性氧

引言

氧气治疗是治疗各种疾病的重要因素,如新生儿或成人呼吸窘迫综合征、原发性和继发性肺动脉高压、循环性休克、感染和多器官衰竭综合征。然而,长期暴露于高水平氧气下会导致肺损伤,导致弥漫性肺泡损伤、强烈的细胞浸润和间质胶原纤维沉积[12]. 肺纤维化是人类和动物模型中肺氧中毒的致命后果[4]. 细胞外基质蛋白的过度产生和沉积是高氧诱导的肺损伤中发生肺纤维化的关键过程[5]. 胶原蛋白是肺的主要细胞外基质(ECM)成分,对维持正常的肺结构至关重要。肺泡间质成纤维细胞胶原合成的增加与粘弹性行为的改变相关,并在高氧诱导的肺损伤中损害肺功能[6]. 肺成纤维细胞暴露于高氧刺激成纤维细胞增殖并增加胶原蛋白[78]. 在本研究中,我们还发现高氧会增加胶原蛋白I mRNA和蛋白质的水平。这些数据表明,高氧直接影响肺成纤维细胞合成胶原蛋白I的功能。

高氧诱导胶原合成的分子机制尚未阐明。在高氧暴露期间,线粒体电子传递产生大量活性氧(ROS)[9]或NADPH氧化酶催化反应[1012]. ROS会对包括上皮细胞、内皮细胞和巨噬细胞在内的肺细胞造成损伤,从而导致广泛的炎症反应,包括白细胞浸润、肺细胞损伤和死亡[13]. 新的证据表明,活性氧参与特发性肺纤维化(IPF)的发病机制和博莱霉素诱导的肺纤维化动物模型[1418]. 然而,目前尚不清楚活性氧是否以及如何与高氧诱导的肺纤维化和肺成纤维细胞合成胶原有关。在这项研究中,我们发现活性氧清除剂替龙可以阻止小鼠高氧肺成纤维细胞合成胶原蛋白I和高氧诱导的肺纤维化。这些数据表明,活性氧在肺氧中毒的纤维化形成中起着重要作用。

包括RhoA、Rac和CDC42在内的小GTP酶在调节各种细胞功能中是必不可少的,包括F-肌动蛋白应激纤维和局灶性粘附复合物的形成以及含有血清反应元件的基因的转录[19]. 这些GTP酶以活性GTP结合态和非活性GDP结合态存在。Rho GTPase活性由鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF)和鸟嘌呤·核苷酸解离抑制剂(GDI)调节。全球环境基金通过促进GDP与全球技术伙伴关系的交换,促进了受全球技术伙伴(GTP)约束的活跃RhoA状态,而GDI与RhoA的关联则促进了受GDP约束的非活跃状态[20]. Rho激活的下游事件包括Rho激酶(ROCK)的激活和肌动蛋白应激纤维的增加。最近,Hemnes和同事们[21]据报道,RhoA激活参与肺纤维化病变的形成。辛伐他汀或西地那非抑制RhoA预防博莱霉素诱导的肺纤维化[2122]. 然而,目前尚不清楚RhoA在氧毒性诱导的肺纤维化中是否被激活。有趣的是,Knock等人[23]和Chi等人[24]最近有报道称,ROS通过一种未知的机制导致血管平滑肌细胞和内皮细胞中RhoA的激活。在本研究中,我们检测了RhoA激活在高氧诱导的肺成纤维细胞和小鼠肺胶原蛋白I合成中的作用。我们首次证明,RhoA与GDI结合中ROS依赖性的减少导致RhoA在氧毒性下活化。ROS依赖性RhoA激活在高氧肺成纤维细胞和小鼠肺胶原蛋白I合成增加中起着关键作用。

材料和方法

试剂和材料

从Santa Cruz Biotechnology(加州圣克鲁斯)获得小鼠抗抗原I抗体和GDI多克隆抗体。抗RhoA抗体和细胞渗透性Rho抑制剂C-3转移酶(CT-04)来自Cytosketon(Denver,CO)。针对GAPDH的抗体来自Cell Signaling(马萨诸塞州贝弗利)。二氢乙硫胺(DHE)来自Invitrogen(Carlsbad,CA)。哺乳动物表达质粒pcDNA3-EGFP包含野生型RhoA的cDNA,组成活性Rho-A用L(Q63L)取代Q63,显性阴性RhoA用含N的GFP cDNA取代T19(T19N)。Masson三色试剂盒来自Richard-Alan Scientific(密歇根州卡拉马祖)。其他试剂从西格玛(密苏里州圣路易斯)购买。

细胞培养和高氧暴露

人肺成纤维细胞HFL-1来自ATCC。将第三代至第八代细胞维持在含有10%胎牛血清和抗生素(10μg/ml青霉素、100μg/ml链霉素、20μg/ml庆大霉素和2μg/ml真菌素)的F12K培养基中,并在融合后2或3天使用。对于高氧暴露,将融合的HFL-1成纤维细胞培养至95%O2和5%CO237°C时。正常氧是空气和5%CO2在一些实验中,融合的HFL-1成纤维细胞暴露于80%的O2和5%CO2持续12小时,然后50%O2和5%CO2在37°C下保持12小时。

RhoA活性的测定

根据制造商协议,使用Millipore的Rho活化试验检测RhoA GTPase的活性。简言之,将HFL-1成纤维细胞暴露于高氧下1-24小时,并在含有25mM HEPES、150mM NaCl、1%Igepal CA-630、1mM Mg Cl2、1mM EDTA和10%甘油的MLB缓冲液中裂解细胞。将裂解产物与与谷胱甘肽-糖结合的重组Rhotekin在4°下孵育45分钟。通过离心收集免疫沉淀物,并用MLB缓冲液洗涤三次。通过在30μl SDS免疫印迹样品缓冲液中煮沸样品,从琼脂糖珠中洗脱蛋白质。琼脂糖珠在10000 g下离心造粒,上清液通过Western blot分析RhoA含量。

RhoA蛋白的敲除

使用针对RhoA mRNA的siRNA敲除RhoA蛋白。siRNA来自Santa Cruz Biotechnology(#sc-29471)。使用阴性对照siRNA(#AM4611,Applied Biosystems)作为对照。这些公司没有披露这些siRNA的序列。根据制造商的方案,在含有4%FBS的F12K培养基中,使用RNAiFest转染试剂(加利福尼亚州巴伦西亚Qiagen),用1μg抗RhoA mRNA的siRNA或对照siRNA转染HFL-1成纤维细胞。siRNA与转染试剂的比例为1:3。转染后48 h,HFL-1细胞暴露于高氧或常氧环境中。然后分析RhoA活性以及RhoA和胶原蛋白I的蛋白水平。

RNA分离和实时PCR

根据制造商的方案,使用RNAesy试剂盒(加利福尼亚州巴伦西亚的齐亚根)从肺成纤维细胞和肺组织匀浆中分离出总RNA。测量COL1A1公司mRNA和COL1A2公司mRNA,定量实时RT-PCR通过使用来自Applied Biosystems(加利福尼亚州福斯特市)的TaqMan®基因表达分析进行。小鼠的分析ID为Mm01302043_g1COL1A1公司,Mm01165187_m1用于鼠标COL1A2,Hs00164004_m1人体用COL1A1、,Hs00164099_m1人体用COL1A2公司和Hs03003631_g1用于18s rRNA。该公司未披露引物序列。ABI 7500序列检测器(加利福尼亚州福斯特市Perkin-Elmer Applied Biosystem)编程用于PCR条件:95°C 10分钟,40个95°C循环15秒,60°C 1分钟COL1A1公司COL1A2公司mRNA含量,比较阈值周期(CT型)方法。C类T型显示了PCR周期,在该周期中,可以首先检测到报告荧光高于背景信号的增加。C类T型首先从C中减去内源性对照(18s rRNA)的值T型得出ΔC的胶原蛋白基因值T型值。亲戚COL1A1公司COL1A2公司然后使用表达2计算mRNA含量-ΔΔCT型式中,ΔΔC的值T型减去ΔC得到T型ΔC的治疗组T型对照组。

用编码野生型RhoA、组成型活性RhoA突变体或显性阴性RhoA突变体的质粒转染成纤维细胞

根据制造商协议,使用Lipofectamine LTX和PLUS试剂(Invitrogen,Carlsbad,CA)将含有野生型RhoA cDNA或组成活性RhoA(Q63L)或显性阴性RhoA突变体cDNA(T19N)(Addgene,Cambridge,MA)的哺乳动物表达载体转染到HFL-1细胞中。转染后48 h,细胞暴露于高氧或常氧,然后分析RhoA、胶原蛋白I和RhoA活性的水平。

RhoA和GDI的联合免疫沉淀

成纤维细胞HFL-1裂解物或肺匀浆与抗RhoA抗体在4℃孵育过夜。加入30μl蛋白A琼脂糖凝胶,并将样品在4°C下进一步孵育2小时。通过离心收集免疫沉淀物,并在含有50 mM Tris-HCl pH 7.5、150 mM NaCl和0.1%Triton X-100的缓冲液中洗涤三次。通过在30μl SDS免疫印迹样品缓冲液中煮沸样品,从sepharose珠中洗脱蛋白质。用10000 g离心法造粒Sepharose珠,用Western blot分析上清液中的RhoA和GDI。

蛋白质印迹分析

从细胞或肺匀浆(20至40μg)中提取的裂解蛋白在4-20%三甘醇SDS-PAGE上分离,并电泳转移到硝化纤维素膜上。将膜在室温下的封闭溶液中培养1-2小时,然后在4°C下与抗胶原蛋白I、RhoA、GDI和GAPDH的一级抗体杂交过夜。用免疫化学发光法检测条带。密度通过Bio-Read Quantity One软件进行量化。

超氧化物自由基的测定

用10μM DHE负载HFL-1成纤维细胞和小鼠肺冰冻切片30 min。清洗后,使用激光共聚焦扫描显微镜LSM 510获取荧光图像。激发和发射波长分别为510 nm和590 nm。

细胞增殖试验

使用罗氏试剂盒(美国印第安纳波利斯)检测HFL-1肺成纤维细胞的增殖,该试剂盒监测溴脱氧尿苷(BrdU)并入新合成DNA的情况。根据制造商的说明,使用抗BrdU过氧化物酶结合物检测BrdU。停止反应后,使用SpectraMax M2测量A450e(电子)微孔板阅读器。

动物和高氧暴露

年龄在8至10周的雄性C57BL/6小鼠购自Jackson Laboratory(ME Bar Harbor)。所有实验均按照《实验动物护理和使用指南》的指导原则进行,并经佐治亚州卫生科学大学动物护理与使用委员会(IACUC)批准。对于高氧暴露,小鼠被随意放置在一个透明的聚丙烯塑料室(30“×20”×20“)中,可以自由获取食物和水。使用Proox氧气控制器(BioSpherix,Lacona,NY)将试验箱中的氧气浓度维持在80%,持续5天,然后再改变为50%,持续10天(总共15天)。氧气混合物加湿,CO浓度2在试验箱中的含量低于0.3%。从换成50%氧气的时候开始,高氧小鼠被给予ROCK抑制剂Y27632(5 mg/kg,每天IP注射)或ROS清除剂替龙(1.5 g/kg,每天IP注入)或相同体积的PBS。正常小鼠被保存在室内空气中,并且每天IP注射相同数量的替龙或Y27632,或与高氧小鼠同时使用PBS。

小鼠肺部实验

麻醉小鼠(戊巴比妥,90 mg/kg,i.p.)并插管气管。然后通过开胸手术对小鼠实施安乐死。通过肺动脉注入PBS冲洗肺循环中的血液,并取出心肺。分离右肺并将其在液氮中冷冻以制备匀浆,左肺在25 cm H处填充4%多聚甲醛(PFA)溶液2在4%PFA中固定24 hCOL1A1公司COL1A2公司在肺匀浆中测定。

肺形态分析

固定后,左肺在吞咽中段切片,并用石蜡包埋。将20张7μm厚的载玻片切片,然后进行Masson三色染色,以进行胶原蛋白和形态学分析。每个肺随机选择10片载玻片,并用奥林巴斯BX41显微镜进行检查。使用奥林巴斯DP72数码相机和DP2-BSW软件记录图像。每个载玻片至少检查10个显微镜视野。胶原染色强度通过ImageJ软件的颜色直方图模式测量,并如前所述表示为蓝色与绿色的比率[25].

统计分析

在每个实验中,实验细胞和对照细胞在细胞系、年龄、播种密度、传代次数和汇合后的天数方面进行匹配,以避免组织培养因素的变化,这些因素可能会影响RhoA和胶原蛋白I的测量。结果显示为n个实验的平均值±SE。采用单因素方差分析和后t检验分析确定不同组平均值之间差异的显著性。P(P)<0.05被认为具有统计学意义。

结果

肺成纤维细胞暴露于高氧环境下导致胶原蛋白I表达增加

研究了高氧对人肺成纤维细胞产生胶原蛋白I的影响。我们发现HFL-1人肺成纤维细胞暴露于高氧(95%氧气)导致胶原蛋白I蛋白的时间依赖性增加(图1A和1B). 胶原蛋白I蛋白在6 h时明显增加,12 h时达到最大水平。同时,高氧(95%氧气)也增加了COL1A1公司COL1A2公司在HFL-1细胞中(图1C). 变更COL1A1公司COL1A2公司mRNA与胶原蛋白I处于同一时间进程,表明胶原蛋白I合成增加是由于胶原蛋白mRNA表达增加COL1A1公司COL1A2公司胶原蛋白I的蛋白质含量和mRNA的增加并不是由于增殖增加引起的细胞数量增加,因为这些结果已被标准化为GAPDH和18S RNA的内部控制水平。

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高氧增加肺成纤维细胞中胶原蛋白I的合成。将人肺HFL-1成纤维细胞暴露于95%氧气中3–24 h,然后胶原蛋白I(A和B)的蛋白质含量和mRNA水平COL1A1公司COL1A2公司(C) 按照材料和方法中的说明进行测定。(A) 是4个独立实验的代表性斑点。(B) 是一个描述胶原蛋白I增加的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与0时间点相比,P<0.05。

高氧诱导HFL-1肺成纤维细胞RhoA活化

为了确定高氧是否激活RhoA,HFL-1人肺成纤维细胞暴露于高氧(95%氧气)中3–24小时,然后使用下拉法测量RhoA的激活。如所示图2成纤维细胞暴露于95%的氧气中,导致活性RhoA的蛋白质含量随时间而增加,而总RhoA蛋白没有变化。活性RhoA在高氧暴露6 h时明显增加,12 h时达到最大值。这些数据表明,高氧诱导HFL-1肺成纤维细胞中RhoA活化。

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高氧诱导肺成纤维细胞RhoA活化。将HFL-1细胞暴露于95%氧气中3–24 h,然后按照材料和方法中的描述测定细胞裂解液中的活性RhoA和总RhoA。(A) 是4个独立实验的代表性斑点。(B) 是描述活性RhoA蛋白增加的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与0时间点相比,P<0.05。

RhoA和ROCK抑制剂可防止高氧诱导的胶原合成和细胞增殖增加

为了研究RhoA激活是否参与高氧诱导的胶原合成,在存在和不存在细胞可渗透的Rho抑制剂C-3转移酶(CT-04,1μg/ml)或ROCK抑制剂Y27632(10μM)的情况下,将HFL-1肺成纤维细胞暴露于高氧(95%氧气)24小时。我们发现CT-04和Y27632都能阻止高氧诱导的胶原蛋白I含量增加(图3A和3B). 此外,CT-04和Y27632阻断了COL1A1公司COL1A2公司在高氧HFL-1细胞中(图3C). 此外,如中所示补充图1肺成纤维细胞暴露于80%的氧气中12h,然后再暴露于50%的氧气中12 h,细胞增殖增加。C-3转移酶(CT-04,1μg/ml)减弱了高氧诱导的细胞增殖增加。这些结果表明,RhoA激活与高氧诱导的胶原mRNA表达有关COL1A1公司COL1A2公司胶原蛋白I合成和细胞增殖。

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RhoA抑制剂CT-04和ROCK抑制剂Y27632可减轻高氧诱导的肺成纤维细胞胶原蛋白I合成增加。HFL-1细胞暴露于95%的氧气中,在有或无细胞渗透性Rho抑制剂C-3转移酶(CT-04,1μg/ml)或ROCK抑制剂Y27632(10μM)的情况下24 h,然后胶原蛋白I(A和B)的蛋白质含量和mRNA水平COL1A1公司COL1A2公司(C) 按照材料和方法中的说明进行测定。(A) 是4个独立实验的代表性斑点。(B) 是描述胶原蛋白I蛋白变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与常氧组相比,P<0.05。

组成活性RhoA突变体Q63L的过度表达增加胶原蛋白-1的蛋白质含量

为了检测活性RhoA水平是否与胶原合成呈正相关,用含有野生型RhoA和组成活性Rho-A突变体Q63L的质粒转染HFL-1肺成纤维细胞[26]. 如所示图4A和4B,在具有组成活性Rho-A突变体Q63L的HFL-1细胞中,胶原蛋白I的蛋白含量要高得多,这表明组成活性Rhos-A突变型的过度表达增加了胶原蛋白I合成。这一结果进一步证明了活性RhoA与胶原蛋白合成呈正相关。

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RhoA激活是高氧诱导肺成纤维细胞胶原蛋白I合成增加的原因。(A) 和(B):HFL-1成纤维细胞转染含有或不含有野生型RhoA基因和组成活性RhoA突变Q63L的质粒。转染后48小时,测定胶原-I和GFP(质粒中的标签)的蛋白质含量。(A) 是4个独立实验的代表性斑点。(B) 是描述胶原蛋白I和GFP蛋白变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与野生型质粒组(WT质粒)相比,P<0.05。(C) 和(D):用含有野生型RhoA基因和显性阴性RhoA突变T19N基因的质粒转染HFL-1成纤维细胞。转染后48h,细胞暴露于常氧或高氧(95%氧气)下24h。测定胶原蛋白I的蛋白质含量。(C) 是4个独立实验的代表性斑点。(D) 是描述胶原-I蛋白变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与常氧组相比,P<0.05。(E) 和(F):用对照siRNA或RhoA siRNA转染HFL-1成纤维细胞。转染后48 h,细胞暴露于常氧或高氧(95%氧气)下24 h。测定胶原蛋白I和总RhoA的蛋白含量。(E) 是4个独立实验的代表性印迹。(F) 是描述胶原蛋白I蛋白变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与常氧组相比,P<0.05。

显性负性RhoA突变体T19N和RhoA siRNA的过度表达可防止高氧诱导的胶原合成增加

为了进一步研究RhoA激活是否与高氧诱导的胶原合成有关,我们测定了转染含有野生型RhoA和显性阴性RhoA突变体T19N的质粒的HFL-1肺成纤维细胞中胶原蛋白I的合成[26]以及在正常和高氧条件下控制siRNA和RhoA siRNA。如所示图4C和4D高氧增加了转染含有野生型RhoA质粒的HFL-1细胞中胶原蛋白I的含量。然而,在转染含有显性阴性RhoA突变体T19N的质粒的HFL-1细胞中,高氧诱导的胶原蛋白I蛋白升高被阻止。此外,使用RhoA siRNA敲低RhoA表达可阻止高氧肺成纤维细胞中胶原蛋白I蛋白的增加(图4E和4F). 总之,这些结果表明RhoA激活介导高氧诱导的胶原蛋白I合成。

活性氧清除剂泰隆预防高氧诱导的RhoA活化和胶原合成

为了研究活性氧(ROS)在高氧诱导的RhoA活化和胶原合成中的作用,将肺成纤维细胞暴露于高氧(95%氧气)中24小时,并在存在或不存在活性氧清除剂蒂龙的情况下。如所示补充图4高氧可显著增加活性氧的产生,而替龙(5 mM)可阻止高氧HFL-1细胞中活性氧的增加。重要的是,我们发现高氧诱导HFL-1细胞活性RhoA和胶原蛋白I含量增加(图5). 此外,用替龙(5 mM)处理的高氧HFL-1细胞中活性RhoA和胶原蛋白I的增加被阻止(图5)表明肺成纤维细胞中RhoA活化和RhoA介导的胶原蛋白I合成是ROS依赖性的。

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活性氧清除剂替龙可防止高氧诱导的RhoA活化和成纤维细胞中胶原蛋白I的表达。将HFL-1细胞暴露于95%氧气或常压氧气中,在有或无膜透性ROS清除剂tiron(5 mM)的情况下暴露24 h,然后按照材料和方法中的描述测量RhoA活性和胶原蛋白I含量。(A) 是4个独立实验的代表性印迹。(B) 是描述活性RhoA蛋白变化的条形图。(C) 是描述胶原蛋白I蛋白变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=4个实验。*与常氧组相比,P<0.05。

活性氧清除剂替龙预防高氧HFL-1成纤维细胞中RhoA和GDI联合减少

为了研究高氧诱导RhoA活化的机制,我们使用免疫共沉淀法分析了RhoA和GDI的相关性。如所示图6HFL-1成纤维细胞暴露于高氧(95%氧气)下6 h,导致使用抗RhoA抗体的免疫沉淀法降低GDI的量。此外,替龙还阻止了RhoA抗体降低GDI量的减少(图6). 这些数据表明,高氧抑制了RhoA和GDI之间的联系。高氧肺成纤维细胞ROS生成增加导致RhoA从GDI中分离,导致Rho A活化。

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高氧和替龙对肺成纤维细胞RhoA-GDI相关性的影响。将HFL-1成纤维细胞在存在和不存在膜可渗透ROS清除剂替隆(5mM)的情况下暴露于95%的氧气或常氧下24小时,之后通过使用抗RhoA抗体的共免疫沉淀测定RhoA-GDI结合。(A) 是5个单独实验的代表性斑点。(B) 是描绘通过使用抗RhoA抗体而降低的GDI蛋白的量的变化的条形图。结果表示为平均值±SE;n=5个实验。*与常氧组相比,P<0.05。

替龙和高氧(80%和50%氧气)对肺成纤维细胞细胞增殖、胶原蛋白I蛋白、RhoA活化和RhoA-GDI相关性的影响

我们测定了暴露于80%氧气中12小时,然后在有无活性氧清除剂替龙的情况下暴露于50%氧气中再暴露12小时的肺成纤维细胞的细胞增殖、胶原蛋白I和RhoA活化。如所示补充图2和3肺成纤维细胞暴露于80%氧气中12小时,然后再暴露于50%氧气中12 h,导致胶原蛋白I和RhoA活化增加,RhoA-GDI相关性降低。Tiron(5 mM)减弱了细胞增殖的增加(补充图1)、胶原蛋白-I蛋白、RhoA活化和RhoA-GDI相关性降低(补充图2和3).

ROCK抑制剂Y27632抑制小鼠肺部高氧诱导的胶原合成

为了确认我们的在体外观察高氧肺成纤维细胞激活的RhoA/ROCK通路介导的胶原合成,我们利用高氧诱导肺纤维化的动物模型。雄性C57BL/6小鼠暴露于80%氧气中5天,然后再暴露于50%氧气中10天。从改变到50%氧气的时间开始,高氧小鼠每天注射ROCK抑制剂Y27632(5 mg/kg,每天IP注射)或等量PBS。正常小鼠保存在室内空气中,同时每天IP注射等量Y27631或PBS。我们发现,用马森三色染色法,高氧肺显示出显著的纤维化(图7A和7B). Y27632在高氧肺中减弱胶原染色(图7A和7B). 肺匀浆的Western blotting分析进一步证实了胶原蛋白的合成。如所示图7C、7D和7E,高氧小鼠肺匀浆中含有更高水平的胶原蛋白I和COL1A1公司COL1A2公司mRNA。Y27632抑制胶原蛋白I蛋白和COL1A1公司COL1A2公司高氧小鼠肺中mRNA的表达(图7C、7D和7E). 这些结果表明,ROCK激活与高氧诱导的胶原蛋白I合成和肺纤维化有关。

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ROCK抑制剂Y27632可减弱氧毒性小鼠肺中胶原I的合成。雄性C57BL/6小鼠暴露于80%氧气中5天,然后再暴露于50%氧气中10天。从改变到50%氧气的时间开始,高氧小鼠每天注射ROCK抑制剂Y27632(5 mg/kg,每天IP注射)或相同体积的PBS。正常小鼠置于室内空气中,同时每天IP注射相同剂量的泰隆或PBS。(A) 是Masson三色染色肺切片的代表性图像。(B) 是一个条形图,描绘了肺组织中胶原染色强度的变化,用bue与绿色的比率表示。(C) 是8个实验的代表性印迹。(D) 是描述肺组织中胶原蛋白I蛋白变化的条形图。(E) 是一个描述变化的条形图COL1A1公司COL1A2公司肺组织中的mRNA水平。结果表示为平均值±SE;n=8个实验。*与常氧组相比P<0.05;**与常氧+Y27632组相比P<0.05;#与高氧组相比,P<0.05。

活性氧清除剂替龙预防小鼠肺中高氧诱导的RhoA活化和RhoA和GDI的分离

雄性C57BL/6小鼠暴露于80%氧气中5天,然后再暴露于50%氧气中10天(共15天)。每天给高氧小鼠注射活性氧清除剂泰隆(1.5 g/kg,每天通过IP注射)或在改变为50%氧气时开始等量PBS。将正常小鼠置于室内空气中,同时每天注射相同剂量的替龙或PBS。我们发现,小鼠暴露于80%氧气中5天(第5天)会导致肺部RhoA活性增加(图8A和8B). RhoA活性在变为50%氧气10天后(第15天)继续增加(图8A和8B). 与正常肺组织相比,高氧肺组织匀浆中使用RhoA抗体进行免疫沉淀可降低GDI蛋白的含量(图8E和8F). 更重要的是,替龙阻止了高氧肺中ROS生成的增加(补充图5). 用替龙清除活性氧阻止了高氧肺中RhoA活化的增加和RhoA与GDI结合的减少(图8C、8D、8E和8E). 这些数据表明,RhoA的激活以及RhoA和GDI的分离归因于高氧诱导的肺纤维化中ROS生成的增加。

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高氧和替龙对小鼠肺氧中毒中RhoA激活和RhoA-GDI关联的影响。雄性C57BL/6小鼠暴露于80%氧气中5天,然后再暴露于50%氧气中10天(共15天)。从改变到50%氧气的时间开始,高氧小鼠每天注射ROS清除剂替龙(1.5 g/kg,每天IP注射)或相同体积的PBS。正常小鼠保存在室内空气中,同时每天IP注射相同剂量的替龙或PBS。(A) 是5个实验的代表性斑点。(B) 是显示RhoA活动随时间变化的条形图。(C) 是8个实验的代表性斑点。(D) 是描述肺组织中胶原蛋白I蛋白变化的条形图(第15天)。(E) 是8种表达的RhoA和GDI的共同免疫沉淀的代表性印迹。(F) 是一个条形图,描绘了使用抗RhoA抗体在肺匀浆中拉下的GDI蛋白量的变化(第15天)。结果表示为平均值±SE;n=8个实验。#与第0天相比P<0.05;*与常氧组相比P<0.05。

泰隆预防小鼠肺部高氧诱导的胶原合成

为了确认我们的在体外观察到活化的RhoA介导的胶原合成依赖于高氧肺成纤维细胞中ROS的生成,我们按照与上述实验相同的时间表,对正常和高氧小鼠的肺切片进行了Masson三色染色。如所示图9A和9B高氧肺纤维化明显。高氧肺中Tiron减弱的胶原染色(图9A和9B). 此外,替龙抑制了胶原蛋白I的增加COL1A1公司COL1A2公司高氧小鼠肺中mRNA的表达(图9C、9D和9E). 总之,这些结果表明,活化RhoA介导的胶原蛋白I合成和肺纤维化是由于高氧肺中ROS生成增加所致。

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泰隆可减弱小鼠肺中胶原蛋白I合成的氧毒性。雄性C57BL/6小鼠暴露于80%氧气中5天,然后再暴露于50%氧气中10天。每天给高氧小鼠注射活性氧清除剂泰隆(1.5 g/kg,每天通过IP注射)或在改变为50%氧气时开始等量PBS。将正常小鼠置于室内空气中,同时每天注射相同剂量的替龙或PBS。(A) 是Masson三色染色肺切片的代表性图像。(B) 是一个条形图,描绘了肺组织中胶原染色强度的变化,用bue与绿色的比率表示。(C) 是8个实验的代表性斑点。(D) 是描述肺组织中胶原蛋白I蛋白变化的条形图。(E) 是一个描述变化的条形图COL1A1公司COL1A2公司肺组织中的mRNA水平。结果表示为平均值±SE;n=8个实验。*与常氧组相比P<0.05;**与常氧+替龙组相比P<0.05;#与高氧组相比P<0.05。

讨论

本研究的目的是确定导致肺纤维化损伤和细胞外基质沉积的氧中毒信号转导机制。为此,我们使用了两种模型:一种是暴露于95%氧气中的人肺成纤维细胞细胞模型,另一种是小鼠暴露于80%高氧5天,然后暴露于50%氧气中10天的动物模型。我们发现高氧可诱导肺成纤维细胞和小鼠肺中胶原蛋白I的合成和RhoA的激活。使用RhoA抑制剂CT04、ROCK抑制剂Y27632、RhoA-siRNA或显性阴性突变体T19N抑制RhoA活化可减弱高氧诱导的肺成纤维细胞胶原I合成。此外,组成活性RhoA突变体Q63L的表达增加了肺成纤维细胞中胶原蛋白I的合成。更重要的是,我们还发现,ROCK抑制剂Y27632可减轻暴露于高氧环境下的小鼠肺部胶原合成和纤维化。这些结果表明,RhoA激活介导高氧诱导的胶原蛋白I合成和肺纤维化。

培养的肺成纤维细胞暴露于高浓度氧气中导致活性氧的形成增加[27]. 在动物模型中,暴露于高浓度氧气的肺部含有大量ROS[28]. 高氧诱导活性氧产生的来源可能是线粒体电子传递[9]或NADPH氧化酶催化反应[1011]. 据报道,ROS参与特发性肺纤维化(IPF)的发病机制和博莱霉素诱导的肺纤维化动物模型[1418]. 为了研究活性氧(ROS)是否与氧毒性诱导的肺纤维化有关,我们测定了活性氧清除剂泰隆(tiron)对高氧暴露小鼠肺成纤维细胞胶原合成和细胞增殖以及胶原沉积的影响。我们的数据表明,使用替龙清除活性氧可阻止高氧肺成纤维细胞胶原合成和细胞增殖的增加,并减轻氧毒性小鼠肺部胶原沉积,表明活性氧负责氧毒性诱导的胶原合成和肺纤维化。

ROS诱导高氧肺成纤维细胞胶原合成可能涉及多种机制。首先,ROS可能诱导肺成纤维细胞活化并释放TGF-β1。已有大量文献证明,TGF-β1可诱导肺成纤维细胞合成胶原,而胶原在纤维增生性肺损伤的形成中起关键作用[2930]. 然而,我们的数据表明,在正常和高氧的成纤维细胞培养基中,活性和总TGF-β1的水平是相当的(补充图6)表明TGF-β1与ROS诱导的高氧肺成纤维细胞胶原蛋白I合成无关。其次,在本研究中证明了RhoA激活介导高氧诱导的胶原蛋白I合成和肺纤维化,我们评估了ROS诱导的高氧肺成纤维细胞胶原蛋白I的合成是否通过RhoA途径发生。我们发现,使用替龙清除ROS可以阻止高氧肺成纤维细胞和小鼠肺氧毒性中RhoA活化的增加,这表明RhoA激活是ROS诱导高氧肺纤维细胞合成胶原蛋白I所必需的。这些数据与Knock等人的报告一致[23]和Chi等人[24]活性氧导致血管平滑肌细胞和内皮细胞中RhoA活化。

RhoA活性由鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF)和鸟嘌呤·核苷酸解离抑制剂(GDI)调节。全球环境基金通过促进GDP与全球技术伙伴关系的交换,促进了受全球技术伙伴(GTP)约束的活跃RhoA状态,而GDI与RhoA的关联则促进了受GDP约束的非活跃状态[20]. 我们发现,暴露于肺成纤维细胞和小鼠肺中的高氧导致GDI与RhoA的相关性降低。此外,替龙可防止高氧肺成纤维细胞和肺氧毒性中GDI与RhoA的相关性降低。这些数据首次证明GDI与RhoA的分离有助于ROS诱导的高氧诱导的肺纤维化中RhoA活化。

高氧肺成纤维细胞中RhoA介导的胶原蛋白I合成的确切机制尚不完全清楚。RhoA和Rho激酶的激活导致F-actin组装增加。由此产生的G-肌动蛋白的缺失触发了转录因子血清反应因子(SRF)的激活,该因子启动了涉及运动、分化和增殖的基因的表达[3133]. 然而,没有直接证据表明胶原蛋白I是SRF的直接转录靶点。在我们的实验中,用F-actin干扰物swinholide A治疗肺成纤维细胞,可以阻止高氧诱导的胶原蛋白I合成(补充图7)表明肌动蛋白细胞骨架参与RhoA介导的胶原蛋白I合成,胶原蛋白I可能是SRF的直接转录靶点。需要进一步研究来证实这一推测。

高氧暴露是公认的肺损伤原因[3435]. 然而,在新生儿或成人呼吸窘迫综合征患者中,高水平氧气通常通过机械通气进行管理。高潮气量通气引起的肺外伤或气压伤会导致肺损伤并诱发急性和慢性炎症反应[36]. 低氧血症会加重呼吸机引起的肺损伤[3739]. 此外,在高潮气量通气的小鼠中,预先暴露于高氧导致肺损伤和上皮细胞凋亡增加[40]. 因此,高氧和机械拉伸之间的相互作用协调了急性肺损伤的发病机制[41].

总之,我们的数据首次证明,ROS依赖性RhoA与GDI结合的减少导致高氧肺成纤维细胞和具有氧毒性的小鼠肺中RhoA活化。我们的整体动物和细胞研究表明,RhoA/ROCK通路的激活有助于增加高氧性肺纤维化中胶原蛋白I的合成(图10). 因此,ROS清除剂和RhoA/ROCK抑制剂在预防和治疗由氧毒性引起的肺纤维化方面具有治疗潜力。

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说明ROS依赖性RhoA激活在胶原合成和肺纤维化中的作用的示意性途径。高氧诱导ROS的形成,导致RhoA-GDI解离和RhoA活化。RhoA激活导致肺成纤维细胞胶原合成增加,以及氧中毒引起的肺纤维化。

补充材料

01

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致谢

我们感谢William R.Caldwell博士对手稿的批判性阅读。

这项工作得到了NIH拨款R01HL088261(给YS)、空乘医学研究所拨款072104(给YS)和美国心脏协会大东南附属机构拨款0855338E(给YS.)的支持。

脚注

出版商免责声明:这是一份未经编辑的手稿的PDF文件,已被接受出版。作为对客户的服务,我们正在提供这份早期版本的手稿。手稿在以最终可引用的形式出版之前,将经过编辑、排版和校对结果证明。请注意,在制作过程中可能会发现可能影响内容的错误,适用于该期刊的所有法律免责声明均适用。

工具书类

1Meyrick B.成人呼吸窘迫综合征的病理学。Crit Care诊所。1986;2:405–428.[公共医学][谷歌学者]
2Davis WB、Rennard SI、Bitterman PB、Crystal RG。肺氧毒性。高氧诱导的人类肺泡结构的早期可逆变化。N英格兰医学杂志。1983;309:878–883。[公共医学][谷歌学者]
三。Riley DJ,Kerr JS,Yu SY.脯氨酸类似物对大鼠氧中毒诱导的肺纤维化的影响。毒理学应用药理学。1984;75:554–560.[公共医学][谷歌学者]
4温伯格B、拉斯金DL、赫克DE、拉斯金JD。早产儿的氧毒性。毒理学应用药理学。2002;181:60–67.[公共医学][谷歌学者]
5陈恩,李俊杰,薛西东。氯沙坦对高氧诱导慢性肺病新生大鼠肺纤维化的影响。《中国党代尔克孜》。2007年;9:591–594.[公共医学][谷歌学者]
6Ekekezie II、Thibeault DW、Rezaeikhaligh MH、Mabry SM、Norberg M、Reddy GK、Youssef J、Truog WE。高剂量吸入一氧化氮和高氧会增加仔猪肺胶原蛋白的积累。生物新生儿。2000;78:198–206。[公共医学][谷歌学者]
7Chen CM、Wang LF、Chou HC、Lang YD、Lai YP。高氧诱导肺纤维化中结缔组织生长因子的上调。儿科研究。2007年;62:128–133.[公共医学][谷歌学者]
8郎义德,洪CL,吴天勇,王立峰,陈春明。肾素-血管紧张素系统介导高氧诱导的人肺成纤维细胞胶原生成。自由基生物医药。2010;49:88–95.[公共医学][谷歌学者]
9李杰,高X,钱M,伊顿JW。线粒体代谢是高氧细胞损伤的基础。自由基生物医药。2004;36:1460–1470.[公共医学][谷歌学者]
10Parinandi NL、Kleinberg MA、Usatyuk PV、Cummings RJ、Pennathur A、Cardounel AJ、Zweier JL、Garcia JG、Natarajan V.高氧血症诱导人肺内皮细胞中NAD(P)H氧化酶的激活和MAP激酶的调节。美国生理学杂志肺细胞分子生理学。2003;284:L26–L38。[公共医学][谷歌学者]
11Usatyuk PV、Romer LH、He D、Parinandi NL、Kleinberg ME、Zhan S、Jacobson JR、Dudek SM、Pendyala S、Garcia JG、Natarajan V。肌动蛋白细胞骨架和皮质素对高氧诱导的人肺内皮细胞NADPH氧化酶激活的调节。生物化学杂志。2007年;282:23284–23295.[公共医学][谷歌学者]
12Brueckl C、Kaestle S、Kerem A、Habazettl H、Krombach F、Kuppe H、Kuebler WM。高氧诱导肺毛细血管内皮细胞原位形成活性氧。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2006;34:453–463.[公共医学][谷歌学者]
13Gore A、Muralidhar M、Espey MG、Degenhardt K、Mantell LL。高氧感测:从分子机制到疾病意义。免疫毒理学杂志。2010[公共医学][谷歌学者]
14Lu Y,Azad N,Wang L,Iyer AK,Castranova V,Jiang BH,Rojanasakul Y.磷脂酰肌醇-3-激酶/akt调节博莱霉素诱导的成纤维细胞增殖和胶原生成。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2010;42:432–441. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
15Cho HY,Kleeberger SR.小鼠氧化性肺损伤易感性的遗传机制。自由基生物医药。2007年;42:433–445.[公共医学][谷歌学者]
16Manoury B、Nenan S、Leclerc O、Guenon I、Boichot E、Planquois JM、Bertrand CP、Lagente V。缺乏活性氧生成可保护小鼠免受博莱霉素诱导的肺纤维化。Respir Res公司。2005;6:11. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Teixeira KC、Soares FS、Rocha LG、Silveira PC、Silva LA、Valenca SS、Dal PF、Streck EL、Pinho RA。N-乙酰半胱氨酸加去铁胺减轻博莱霉素诱导的肺损伤和氧化应激。肺药理学治疗。2008;21:309–316.[公共医学][谷歌学者]
18Yen HC、Chang HM、Majima HJ、Chen FY、Li SH。在使用薄荷霉素治疗后,WI38与转化的WI38细胞中的活性氧物种和主要抗氧化酶水平。自由基生物医药。2005;38:950–959.[公共医学][谷歌学者]
19Raptopoulou M,Hall A.细胞迁移:Rho GTPases起主导作用。开发生物学。2004;265:23–32.[公共医学][谷歌学者]
20Faure J,Dagher MC。Rho GTPases和Rho GDP解离抑制剂(Rho-GDI)之间的相互作用生物化学。2001;83:409–414.[公共医学][谷歌学者]
21Hemnes AR,Zaiman A,冠军HC。PDE5A抑制通过抑制ROS的产生和RhoA/Rho激酶的激活来减轻博来霉素诱导的肺纤维化和肺动脉高压。美国生理学杂志肺细胞分子生理学。2008;294:L24–L33。[公共医学][谷歌学者]
22Ou XM,Feng YL,Wen FQ,Huang XY,Xiao J,Wang K,Wang T.辛伐他汀减轻博莱霉素诱导的小鼠肺纤维化。Chin Med J(英语)2008;121:1821–1829.[公共医学][谷歌学者]
23Knock GA、Snetkov VA、Shaifta Y、Connolly M、Drndarski S、Noah A、Pourmahram GE、Becker S、Aaronson PI、Ward JP。超氧化物通过Rho-kinase介导的Ca(2+)敏化作用收缩大鼠肺动脉。自由基生物医药。2009;46:633–642. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
24Chi AY、Waypa GB、Mungai PT、Schumaker PT。长期缺氧增加肺动脉平滑肌和内皮细胞的ROS信号和RhoA激活。抗氧化剂氧化还原信号。2010;12:603–610. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
25Ukang S,Ampawong S,Kengkoom K.胶原蛋白测量和伤口愈合的染色模式与固定和染色的比较。泰国显微镜学会杂志。2008;22:37–41. [谷歌学者]
26Subaust MC、Von HM、Benard V、Chamberlain CE、Chuang TH、Chu K、Bokoch GM、Hahn KM。Rho家族蛋白调节细胞毒性T淋巴细胞和Fas诱导的快速凋亡。生物化学杂志。2000;275:9725–9733。[公共医学][谷歌学者]
27Conconi MT、Baiguera S、Guidolin D、Furlan C、Menti AM、Vigolo S、Belloni AS、Parnigotto PP、Nussdorfer GG。高压氧对小鼠成纤维细胞3T3/J2细胞系增殖和凋亡活性及活性氧生成的影响。《投资医学杂志》。2003;51:227–232.[公共医学][谷歌学者]
28Singleton PA、Pendyala S、Gorshkova IA、Mambetsariev N、Moitra J、Garcia JG、Natarajan V.Dynamin 2和c-Abl是内皮小窝蛋白富集微区中高氧介导NADPH氧化酶激活和活性氧生成的新调节物。生物化学杂志。2009;284:34964–34975. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
29Salazar KD、Lankford SM、Brody AR。间充质干细胞产生Wnt亚型和TGF-β1,通过肺成纤维细胞介导增殖和前胶原表达。美国生理学杂志肺细胞分子生理学。2009;297:L1002–L1011。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
30Nonaka M、Pawankar R、Fukumoto A、Yagi T。鼻和肺成纤维细胞对转化生长因子-beta 1的异质性反应。临床实验过敏。2008;38:812–821.[公共医学][谷歌学者]
31Morita T,Mayanagi T,Sobue K。通过心肌相关转录因子(MRTFs/MAL/MKL)对细胞骨架/局部粘附基因的转录调节,重组肌动蛋白细胞骨架实验细胞研究。2007年;313:3432–3445.[公共医学][谷歌学者]
32Mulder J、Ariaens A、van Horck FP、Moolenaar WH。p116Rip抑制RhoA介导的SRF激活。FEBS信函。2005;579:6121–6127.[公共医学][谷歌学者]
33Saka M、Obata K、Ichihara S、Cheng XW、Kimata H、Noda A、Izawa H、Nagata K、Yokota M。匹伐他汀对大鼠心室肥厚和纤维化的减轻作用:RhoA-细胞外信号调节激酶反应因子信号通路的潜在作用。临床实验药理学。2006;33:1164–1171.[公共医学][谷歌学者]
34Otterbein LE、Kolls JK、Mantell LL、Cook JL、Alam J、Choi AM。通过基因转移外源性给予血红素氧化酶-1可保护机体免受高氧诱导的肺损伤。临床投资杂志。1999;103:1047–1054. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
35Nash G,Blennerhassett JB,Pontoppidan H.与氧气治疗和人工通气相关的肺部病变。N英格兰医学杂志。1967;276:368–374。[公共医学][谷歌学者]
36Kaynar AM、Houghton AM、Lum EH、Pitt BR、Shapiro SD。中性粒细胞弹性蛋白酶是呼吸机所致肺损伤中性粒细胞迁移到肺部所必需的。美国呼吸细胞分子生物学杂志。2008;39:53–60. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
37Li LF,Liao SK,Ko YS,Lee CH,Quinn DA。高氧通过有丝分裂原活化蛋白激酶增加呼吸机诱导的肺损伤:一项前瞻性对照动物实验。关键护理。2007年;11:R25。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
38Dos Santos CC。高氧急性肺损伤和呼吸机诱导/相关肺损伤:细胞内信号通路的新见解。关键护理。2007年;11:126. [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
39加利福尼亚州埃勒特、特鲁戈WE、蒂博尔特DW、加格U、诺伯格M、雷扎伊卡利格M、马布里S、埃科齐II。高氧和潮气量:对新生儿肺部炎症的独立和联合影响。生物新生儿。2006;90:89–97。[公共医学][谷歌学者]
40Makena PS、Luellen CL、Balazs L、Ghosh MC、Parthasarathi K、Waters CM、Sinclair SE。预先暴露于高氧环境会导致高潮气量通气小鼠的肺损伤和上皮细胞凋亡增加。美国生理学杂志肺细胞分子生理学。2010;299:L711–L719。 [PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
41Sinclair SE、Altemier WA、Matute-Bello G、Chi EY。高氧和机械通气相互作用导致的肺损伤加重。关键护理医学。2004;32:2496–2501.[公共医学][谷歌学者]