跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
美国生理学杂志心脏循环生理学。2011年1月;300(1):H397–H407。
2010年10月22日在线发布。 数字对象标识:10.1152/ajpheart.00679.2010年
预防性维修识别码:项目经理3023263
PMID:20971763

缓慢加压剂量的血管紧张素II诱发的脑血管功能障碍先于高血压的发生

关联数据

补充材料

摘要

高血压改变脑血管调节,增加大脑对中风和痴呆的易感性。我们研究了“慢加压”血管紧张素II(ANG II)输注诱导的动脉压(AP)升高与脑血管功能障碍之间的时间关系,血管紧张素Ⅱ(ANGⅡ)输注概括了人类高血压的主要特征。在C57BL/6小鼠皮下植入输送盐水或ANG II 14天的微型泵(n个=5/组)。在装有颅窗的麻醉小鼠中,通过激光多普勒血流计评估脑血流。含ANG II(600 ng·kg−1·最小值−1),AP在9天后开始上升(P(P)<0.05 vs.生理盐水),11–17天时保持升高,21天时恢复到基线水平(P(P)> 0.05). ANG II可减弱神经活动(触须刺激)或内皮依赖性血管扩张剂引起的脑血流量增加,这是在AP升高前(7天)以及高血压缓解后(21天)观察到的效果。ANG II的非加压剂量(200 ng·kg−1·最小值−1)诱导脑血管功能障碍和氧化应激而不升高AP(P(P)>0.05 vs.生理盐水),而苯肾上腺素升高AP而不诱发脑血管效应。ANG II(600 ng·kg−1·最小值−1)增加了新皮质活性氧(ROS),其时间过程类似于脑血管功能障碍。新皮质应用活性氧清除剂锰(I-II)中四(4-苯甲酸)卟啉或NADPH氧化酶肽抑制剂gp91ds-tat可减弱活性氧和脑血管功能障碍。我们的结论是,慢升压型血管紧张素Ⅱ(ANGⅡ)诱导的神经血管调节改变在高血压之前发生,并持续到AP正常化之后,但不是永久性的。该发现揭示了脑血管功能对ANG II有害影响的显著敏感性,并增加了在ANG II依赖性高血压患者中,脑血管失调先于AP升高的可能性。

关键词:烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶减少、氧化应激、功能性充血、乙酰胆碱、场电位

大脑是主要目标与血压升高相关的末端器官损伤,以及主要是中风和痴呆症的脑部疾病,在很大程度上增加了高血压的公共健康负担(15,24). 高血压导致62%的脑血管疾病(23)中年高血压是老年痴呆症的危险因素,老年痴呆症是老年人认知功能障碍的最常见原因(9). 虽然众所周知,脑血管是高血压对大脑影响的主要靶点(16)导致脑功能障碍和中风和痴呆风险增加的机制尚未阐明。

大脑严重依赖于持续且调节良好的血液供应,以支持其对氧气和葡萄糖的动态需求,并清除大脑活动的代谢副产物(17,26). 复杂的调节机制确保大脑接受足够的脑血流量(CBF),以维持大脑微环境的稳态。因此,活跃的神经元引起CBF的强烈增加,以使底物递送与活化的代谢需求相匹配(功能性充血),而内皮细胞释放出调节微血管流量分布的强有力的血管活性物质(1,17). 高血压破坏了这些控制机制,增加了大脑对血管功能不全的敏感性(16). 然而,脑血管功能障碍与高血压发展之间的时间关系仍有待确定。这个问题令人感兴趣,因为根据血压升高的幅度,脑血管损伤的证据可能存在于尚不符合高血压标准(高血压前期)的患者中(5,31,36). 因此,确定脑血管改变是在血压升高之前还是之后,对于预防来说是很重要的。

血管紧张素II(ANG II)已成为原发性高血压的一个关键因素,在实验动物中使用它会再现高血压的主要特征,包括脑血管功能障碍(16). 全身注射降压剂量的ANG II 2周,即所谓的高血压“慢升压”模型,会导致血压延迟升高(40). 由于ANG II输注与高血压发病之间存在时滞,该模型提供了检查脑血管功能障碍与血压升高之间时间关系的机会。因此,我们使用该模型来研究血压升高和脑血管功能障碍的时间分布。我们发现,脑血管功能障碍先于高血压发病,并持续超过2周输液结束时血压正常化。新皮质活性氧(ROS)与脑血管病变平行增加,并导致损伤。这些发现为脑循环对ANG II有害影响的显著敏感性提供了证据,并增加了脑血管功能障碍也是人类高血压早期事件的可能性。

方法

在以前的出版物中详细描述了小鼠的手术准备、药物局部应用、记录场电位、血压测量和使用激光多普勒血流计监测CBF的方法(,12,19,21,22,29)并在这里进行简要总结。

一般外科手术

所有程序均经威尔康奈尔医学院机构动物护理和使用委员会批准。所有研究均在来自Jackson Laboratories(ME Bar Harbor)的雄性C57BL/6J小鼠(年龄2至3个月;体重20至30克)中进行。

微型泵植入。

将含有载体(生理盐水)、ANG II或苯肾上腺素(PE)的渗透微型泵植入小鼠皮下(n个=5/组)。ANG II的浓度和输送速率(600 ng·kg−1·最小值−1)和PE(3μg·kg−1·最小值−1)被调整以产生可比较的血压升高水平。在一些实验中,不增加血压的ANG II浓度(200 ng·kg−1·最小值−1)已使用。如前所述,每天使用尾剪断容积描记法监测清醒小鼠的收缩压(4,21,22). 在泵植入后的不同时间(3天、7天、14天、16天、18天、21天和28天),对小鼠进行麻醉,并用激光多普勒血流仪评估脑血管反应性,如监控CBF.

无线电遥测。

在一些小鼠中,使用经左颈总动脉植入胸主动脉的导管,通过无线电遥测(国际数据科学)监测动脉压力(). 由于颈动脉插管,这些小鼠没有用于CBF监测的实验。这些遥测实验用于选择评估CBF反应性的时间点。在CBF实验期间,通过尾剪断容积描记法和通过股动脉导管测量平均动脉压(MAP)证实了测量CBF的小鼠的血压变化。

CBF实验的手术。

在N的混合物中用异氟醚麻醉小鼠2和O2(诱导,5%;维护,2%)。气管插管,并用氧氮混合物对小鼠进行人工通气。O型密封圈2调整混合物中的浓度以提供动脉Po(o)2120–130毫米汞柱(4)(见补充表S1;注:补充材料可以在本文的在线版本中找到)。对其中一条股动脉进行插管,以记录MAP并采集血样。使用连接至加热垫的恒温控制直肠探头将直肠温度维持在37°C。期末CO2,由CO监控2分析仪(Capstar-100,CWE)保持在2.6-2.7%,以提供P有限公司233–36毫米汞柱(4)(见补充表S1)。手术后,停止使用异氟醚,并用氨基甲酸乙酯(750 mg/kg ip)和氯醛糖(50 mg/kg ip)维持麻醉。在整个实验过程中,通过测试角膜反射和对夹尾的运动反应来监测麻醉水平。为了将麻醉对血管反应性的混杂影响降至最低,在所研究的不同组小鼠中,乌拉坦-氯胺给药与CBF反应测试之间的时间间隔保持一致。

监控CBF

通过小开颅术(2×2mm)暴露顶骨区域,取出硬脑膜,并用改良的林格溶液(37°C;pH 7.3–7.4)覆盖该部位。用立体定位在皮层表面的激光多普勒探头(Perimed)在超灌注部位连续监测CBF。流量计和血压传感器的输出连接到数据采集系统(PowerLab),并保存在计算机上进行离线分析。CBF值表示为相对于休息水平的增加百分比。实验结束时过量服用异氟醚使心脏停止跳动后,CBF值为零。虽然激光多普勒流速仪不是定量的,但它可以非常准确地监测CBF的相对变化(参见参考文献。14查看)。

活性氧检测与免疫细胞化学

如前所述,通过二氢乙硫酸氢钠(DHE)微荧光法评估活性氧的生成(4,11,12). 尽管有许多方法来评估活性氧,每种方法都各有优缺点,但DHE荧光显微照相法特别适用于具有细胞分辨率的原位活性氧检测(4,11,13,29,37). DHE(2μmol/l;Molecular Probes)在体感皮层上局部超敏60分钟(见实验协议). 大脑被移除并冷冻,冠状切片(厚度为20μm)通过颅骨窗下的皮层用低温恒温器切割。使用尼康Eclipse E800荧光显微镜对切片进行分析,该荧光显微镜配备有一个用于检测DHE氧化产物的定制过滤器(4,11,12,29). 如前所述,使用数码相机(Coolsnap、Roper Scientific)采集图像,并使用IPLab软件(Scanalytics)进行盲法分析(4). 添加所有切片(每只动物20个)的荧光强度,除以分析的像素总数,并以相对荧光单位表示。在建立ROS信号的细胞位点的实验中,将DHE(10mg/kg)注射到颈静脉中,60分钟后,将小鼠(n个=4–6/组)经心灌注PBS,然后在PBS中灌注4%多聚甲醛。我们使用这种方法,因为它不需要开颅手术,并且可以更好地保存和固定体感皮层。然而,一个潜在的缺点是,在免疫细胞化学的组织处理过程中,一些荧光可能会丢失。为了最大限度地减少荧光损失的混淆效应,在相同条件下并行处理生理盐水和血管紧张素II治疗小鼠的脑切片。使用低温恒温器切割体感皮层的冠状脑切片(厚度为20μm)。用一级抗体培养切片(胶质纤维酸性蛋白,1:200,Sigma-Aldrich;神经元细胞核,1:200(Chemicon International);CD31,1:200和BD Biosciences)。然后用Cy5结合二级抗体(1:200;Jackson ImmunoResearch)孵育切片,将其安装在载玻片上,并使用徕卡共焦显微镜进行检查(4). 所有图像的采集均采用相同的共焦设置。为了半定量评估ANG II输注在神经元、星形胶质细胞和内皮细胞中诱导的ROS增加,使用ImageJ对免疫阳性细胞中不同标记物的荧光进行定量。数据以任意荧光单位表示。

实验协议

ANG II或PE对CBF对触须刺激、内皮依赖性血管扩张剂或腺苷的反应的影响。

在植入含有ANG II、PE或载体的渗透性微型泵后的不同时间点,对小鼠进行CBF测量的手术准备(参见CBF实验手术). MAP和血气稳定后(见补充表S1),通过抚摸对侧面部胡须激活体感皮层的胡须相关区域60秒(4)记录CBF的诱发变化。CBF对乙酰胆碱(ACh;10μM)、缓激肽(50μM)和钙的反应2+还测试了离子载体A-23187(3μM)和腺苷(400μM)(4). 之所以选择这些药物,是因为它们通过不同的机制产生血管舒张作用。ACh通过内皮一氧化氮(NO)和毒蕈碱受体介导诱导CBF增加(38)缓激肽和A-23187分别通过受体依赖和独立机制通过内皮环氧合酶-1产物发挥作用(27). 腺苷是一种平滑肌松弛剂,其作用与内皮细胞无关(30). 按先前确定的非超高浓度使用药物(19). 在使用ROS清除剂锰酸(I-II)meso-四(4-苯甲酸)卟啉(MnTBAP;100μM)、NADPH氧化酶肽抑制剂gp91ds-tat(1μM)或扰乱的对照肽(1μM)的实验中(33),在局部灌注这些药物30分钟前后测试反应(11,12). 我们之前已经确定,所使用的MnTBAP和gp91ds-tat浓度可有效阻止ANG II诱导的ROS生成(11,12).

血管紧张素Ⅱ对触须刺激诱发的体感场电位的影响。

按照CBF实验手术用双极记录电极记录皮层电图,电极由涂有特氟隆的银线组成(ID 0.005英寸;Stoelting)。电极立体定位于左侧躯体感觉皮层(外侧3 mm,尾侧1.5 mm至角;深度0.6 mm)(22,29). 插入枕骨的金属螺钉用作参考电极。皮层电图记录了五个时期,每个时期持续5分钟,间隔20分钟。为了避免麻醉对皮层电活动产生混淆效应,所有动物的记录时间与麻醉剂给药时间相同。信号被放大、数字化并存储在计算机上进行离线分析(PowerLab、AD Instruments)。使用嵌入PowerLab中的软件模块对皮层电图进行频谱分析。使用放置在激活触须对侧的体感皮层中的电极记录场电位。通过电刺激触须垫(2 V;0.5 Hz;脉冲持续时间1 ms)激活体感皮层。使用数据采集系统平均十次刺激试验,并将其存储在硬盘上进行离线分析(22,29).

ROS测量。

这些实验的方案与CBF研究的方案相同。MAP和血气稳定后,在颅窗上过量注射DHE或静脉注射DHE。60分钟后取下大脑,按照活性氧检测与免疫细胞化学.

数据分析

文本和图表中的数据表示为平均值±SE。两组比较由双尾学生的t吨-测试。通过方差分析和Tukey检验评估多重比较。概率值<0.05被认为具有统计学意义。

结果

缓慢加压血管紧张素II输注升高血压并诱发脑血管功能障碍

通过遥测血压测量,我们发现缓慢加压ANG II输注(600 ng·kg−1·最小值−1)持续14天导致MAP延迟增加,开始于第9天到达了一个高原第11天17(图1A类). 随着渗透微型泵排空,MAP开始下降,并于年恢复正常第21天,直到研究结束(第28天) (图1A类). 在研究脑血管反应性的单独小鼠中,ANG II输注可升高MAP(图1B类)并减弱由触须刺激和内皮依赖性血管扩张剂ACh、缓激肽和A-23187诱导的CBF增加(图1,C–F类). 相反,平滑肌松弛剂腺苷诱导的CBF增加不受影响(图1G公司). 首次观察到脑血管功能障碍发生在MAP升高前7天,并在MAP恢复到基线后21天持续存在(图1,C–F类). 在植入输送盐水的微型泵的小鼠中,CBF增加的稳定性在第3、7和14天进行了测试,并且反应在时间上是稳定的(图2,A–D). 为了确定血压的持续升高是否足以导致脑血管功能障碍,我们使用PE将MAP升高14天。PE将MAP升高到与ANG II诱导的水平相似的水平(图3,A类B类)但没有改变功能性充血、内皮依赖性反应或腺苷产生的CBF增加(图3,C–E类).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690001.jpg

ANG II输液效果的时间进程(600 ng·kg−1·最小值−1)平均动脉压(MAP)和脑血流(CBF)反应。A类:通过无线电遥测在植入渗透微型泵的小鼠体内记录MAP,该泵设置为输送ANG II或载体14天。MAP在第9天显著增加,第11天达到稳定,第19天开始下降。MAP在第21天返回基线*P(P)与基线和车辆相比<0.05(方差分析和Tukey检验;n个=5/组)。B类:在监测CBF的麻醉小鼠中,ANG II输注诱导的MAP增加。通过留置股动脉导管测量MAP。仅在第14天观察到显著增加。C–G:在接受ANG II的小鼠中,胡须刺激、ACh(10μM)、缓激肽(50μM),A-23187(3μM)或腺苷(400μM)诱导的CBF增加。当MAP尚未增加时,对触须刺激、ACh、缓激肽和A-23187(而非腺苷)的反应在7天时减弱。反应持续减少至21天,并在28天恢复到基线水平*P(P)<0.05(方差分析和Tukey检验;n个=5/组)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690002.jpg

在植入装有盐水的渗透微型泵的小鼠中,MAP的稳定性和CBF随时间的增加。A类:在CBF实验期间通过股骨导管测量MAP。B–D类:刺激胡须或局部应用ACh或腺苷导致CBF增加。P(P)>0.05(方差分析和Tukey检验;n个=5/组)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690003.jpg

用苯肾上腺素(PE)升高MAP不会减弱CBF反应。A类:输注PE(3μg·kg)诱导尾剪断容积描记法测定收缩压升高的时间进程−1·最小值−1)持续14天。SAP,收缩压*P(P)生理盐水<0.05;n个=5/组。B类:PE在监测CBF的麻醉小鼠中诱导的MAP增加。C–E类:尽管MAP增加,PE并没有减弱由触须刺激、ACh或腺苷引起的CBF增加。P(P)>车辆0.05;n个=5/组。

非加压剂量ANGⅡ诱发脑血管功能障碍

前一节中的数据表明,ANG II可能独立于MAP升高而诱发脑血管功能障碍。因此,我们研究了不升高MAP的ANG II剂量是否能够诱发脑血管功能障碍。ANG II的非加压剂量(200 ng·kg−1·最小值−1)未提升MAP(图4,A类B类)但诱发的脑血管功能障碍与缓慢加压ANG II剂量(600 ng·kg−1·最小值−1) (图4,C–G).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690004.jpg

ANG II的非加压剂量减弱CBF反应。A类:输注非加压剂量的ANG II(200 ng·kg−1·最小值−1;n个=5/组)。B类:在输注ANG II(200或600 ng·kg−1·最小值−1)持续14天。C–G类:ANG II输液(200和600 ng·kg−1·最小值−1)减弱CBF对触须刺激、ACh、缓激肽A-23197的反应,但不减弱腺苷的反应*P(P)<0.05来自车辆#P(P)ANG II-200和车辆(ANOVA和Tukey试验;n个=5/组)。

慢升压型ANG II高血压期间自发或诱发的新皮质神经活动没有改变

神经活动是脑血管反应性的有力决定因素(7). 为了确定脑血管功能的改变是否与神经活动的改变有关,我们检测了缓慢加压剂量的ANG II对皮层电图和触须刺激体感皮层诱发的场电位的影响。如所示图5静脉滴注ANG II 14天,MAP升高(溶媒,79±2;ANG II,88±1 mmHg;P(P)< 0.05;n个=4/组),但不影响场电位的振幅或皮层电图的频率分布。相反,麻醉剂异氟醚在所有频率下都会减弱场电位和皮层电图(图5,A类B类),为监测系统的灵敏度提供了积极的控制。因此,ANG II诱导的脑血管功能障碍与测量CBF的新皮质自发或诱发神经活动的改变无关。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690005.jpg

14天输注ANG II(600 ng·kg)的效果−1·最小值−1)体感皮层的自发和诱发神经活动(n个=4/组)。A类:ANG II不影响胡须激活引起的场电位(2V;0.5Hz;1ms脉冲)。相反,麻醉剂异氟醚(5%)显著减弱了反应。箭头表示刺激的应用*场电位的负波,其振幅(单位:mV)如所示插入.B类:ANG II不影响皮层电图的频率分布,而异氟醚能有效衰减所有频率下的信号振幅。

血管紧张素Ⅱ诱导体感皮层氧化应激

众所周知,ANG II可诱导ROS生成(10). 然而,尚不清楚缓慢加压的ANG II输注是否会增加大脑皮层中的ROS,如果是,这种增加是否与血压升高平行。使用缓慢加压剂量的ANG II(600 ng·kg−1·最小值−1),ROS在第7天开始增加(P(P)<0.05),在第14天达到最大值(P(P)<0.05),在第21天仍然增加(P(P)<0.05),并在第28天恢复到基线水平(图6A类). 非加压剂量的ANG II(200 ng·kg−1·最小值−1)第14天时ROS也升高,但升高幅度小于ANG II剂量较高时的观察值(图6B类). 在急性ANG II给药的实验中,我们观察到ROS主要在脑血管中增加(11). 为了确定持续服用ANG II是否也会出现这种情况,我们将DHE微荧光成像与免疫细胞化学相结合,以获得选定的细胞标记物(11,29). 通过肉眼观察,ANG II给药14天,不仅增加了表达内皮标记物CD31的细胞中的ROS信号,而且增加了表达神经元标记物神经元核或星形胶质细胞标记物胶质纤维酸性蛋白的细胞中ROS信号(图7). 神经元、星形胶质细胞和内皮细胞ROS信号的量化表明内皮细胞和神经元ROS信号增加(图7;P(P)< 0.05). 星形胶质细胞也有增加的趋势,但变化没有达到统计学意义(图7;P(P)> 0.05).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690006.jpg

ANG II增加体感皮层中的活性氧(ROS),而ROS清除剂锰(I-II)中四氢(4-苯甲酸)卟啉(MnTBAP)可逆转脑血管功能障碍。A类:ANG II的缓慢加压剂量(600 ng·kg−1·最小值−1)在第7、14和21天增加ROS生成。ROS在第28天恢复到基线水平。B类:ANG II的非加压剂量(200 ng·kg−1·最小值−1)在14天时也会增加ROS,但幅度较小*P(P)生理盐水<0.05(方差分析和Tukey检验;n个=5/组)。C–F类:局部新皮质应用ROS清除剂MnTBAP(100μM)可逆转ANG II对CBF对触须刺激、ACh、缓激肽和A-23187的反应的影响。G公司:CBF对腺苷的反应不受影响*P(P)生理盐水和MnTBAP<0.05;n个=5/组。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690007.jpg

ANG II输注14天增加内皮细胞中ROS依赖性荧光(顶部,左边),神经元(顶部,正确的)和星形胶质细胞(底部,左边)与溶媒输注相比。显微照片描绘了从软脑膜表面到深层皮层的体感皮层。采用二氢乙硫酸氢钠(DHE)法(静脉注射)检测ROS,CD31、神经元核(NeuN)或胶质纤维酸性蛋白(GFAP)免疫反应分别用作内皮、神经元和星形细胞标记物。箭头表示ROS信号(DHE)与细胞标记物的共定位。钢筋尺寸=50μm。荧光信号的量化(底部,正确的)显示内皮细胞和神经元中ROS显著增加。星形胶质细胞ROS的增加没有达到统计学意义*P(P)< 0.05;n个=4-6/组。

ROS清除剂MnTBAP或NADPH氧化酶抑制剂gp91ds-tat逆转ANGⅡ诱导的脑血管功能障碍

为了确定ANG II产生的ROS增加是否与脑血管功能障碍有关,我们使用了ROS清除剂MnTBAP(4). 体感皮层与MnTBAP(100μM)的过度融合逆转了ANG II给药14天引起的脑血管功能障碍(图6,B–E类). 正如预期的那样,MnTBAP不会影响对腺苷的反应(图6F类). 因为NADPH氧化酶是ANG II产生ROS的主要来源(10),我们检测了肽抑制剂gp91ds-tat对脑血管功能障碍的影响(11,12,33). 新皮质灌注肽(1μM),但不加控制,可逆转脑血管功能障碍(图8,A–D)不影响对腺苷的反应(图8E类). 这些发现表明NADPH氧化酶衍生的ROS参与了慢升压ANGⅡ诱导的脑血管功能障碍。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zh40011196690008.jpg

NADPH氧化酶的肽抑制剂可对抗ANG II诱导的脑血管功能障碍。A–D:gp91ds-tat(gp91;1μM),但不是其加扰控制(s-gp91;lμM)逆转了ANG II对CBF对触须刺激、A-23187和缓激肽反应的影响。E类:CBF对腺苷的反应不受影响*P(P)生理盐水和gp91均<0.05;n个=5/组。

讨论

我们已经证明,缓慢加压剂量的ANG II可显著破坏主要脑血管调节机制,导致神经活动和内皮依赖性血管扩张剂诱导的CBF增加减弱。脑血管功能障碍先于ANG II诱导的MAP升高,在输注结束时MAP恢复到基线后仍存在。我们还发现,非加压剂量的ANG II产生的脑血管改变与缓慢加压剂量的相比,而PE升高MAP不能改变脑血管反应性。这些观察结果表明,MAP的升高不一定或不足以改变脑血管调节。脑血管功能障碍与ROS增加相平行,ROS也先于慢升压性高血压发作,并持续超过MAP正常化。有趣的是,用细胞标记物进行免疫标记表明,ROS的增加不仅发生在脑血管中,也发生在新皮质神经元中,可能还有星形胶质细胞,这与循环ANG II的血管外效应一致。总的来说,这些数据表明,缓慢加压的ANG II输注对脑循环的调节具有深远的影响,脑循环在高血压发病之前,在高血压消退后持续存在,并由氧化应激介导。

本研究的发现不能归因于小鼠生理参数的改变,因为MAP被监测,体温和血气被仔细控制。此外,功能障碍不能归因于高血压诱导的血管平滑肌结构或功能改变,因为ANG II不影响平滑肌松弛剂腺苷诱导的CBF增加。虽然神经活动对脑血管有深刻影响,但观察到ANG II不影响皮层电图的频率分布或体感诱发电位的大小,表明功能性充血的减轻不是由于神经活动受到抑制。此外,ANG II也会减弱非神经介导的反应,例如内皮依赖性血管舒张,这一事实反对神经活动在这种作用机制中的作用。本研究的一个局限性是,由于颅窗,CBF实验必须在麻醉下进行,这可能会对MAP和CBF反应性产生深远影响(18,20,35). 然而,通过遥测确定的清醒小鼠MAP增加的时间进程与麻醉小鼠的MAP增加时间进程相当,即ANG II输注14天而非7天时MAP增加,这一事实缓解了这种担忧。至于CBF反应,在生理盐水和ANG II处理的小鼠中使用相同的麻醉条件,将观察到的CBF反应差异归因于麻醉的可能性降至最低。

本研究的一项新发现是,血管紧张素Ⅱ(ANGⅡ)诱导的脑血管功能障碍和脑氧化应激先于高血压的发展,即使MAP升高已消退,也会持续存在。这一观察表明,脑血管功能极易受到循环血管紧张素II的影响。因此,CBF调节的改变可能是介导ANG II外周血管效应的神经体液失调的早期表现之一。一项研究也表明,非加压剂量的ANG II减弱了孤立基底动脉对ACh的反应(6). 我们的发现是,ANG II的剂量不足以升高血压,从而导致明显的脑血管破裂,这也突显了脑循环对ANG II诱导的失调的敏感性。由于我们没有评估其他动脉区域的血管功能,我们无法确定脑血管的调节是否比全身血管更容易受到ANG II的影响。然而,脑血管比全身血管更有能力产生NADPH氧化酶衍生的ROS(25)这可以解释他们脆弱性的增加。因此,假设全身阻力血管有助于ANG II高血压的发生,研究结果表明,在驱动高血压的神经血管和体液变化表达之前,脑血管受到影响。

我们还发现,缓慢递质剂量的ANG II输注不仅会在脑血管中诱导氧化应激,也会在神经元和可能的星形胶质细胞中诱导氧化胁迫。这与急性输注加压剂量的血管紧张素II(ANG II)的作用形成对比,后者主要在脑血管中诱导氧化应激(11,12). 除了DHE的数据外,我们的观察结果还提供了ROS参与ANG II作用的进一步证据,即ROS清除剂MnTBAP和NADPH肽抑制剂gp91ds-tat消除了脑血管功能障碍。虽然我们对gp91ds-tat的发现表明NADPH氧化酶参与ROS的生成,但循环ANG II激活神经元和星形胶质细胞中该酶的机制仍有待确定。循环中的ANG II不会穿过血脑屏障,其对血管ROS生成的影响被认为是通过激活与NADPH氧化酶相关的血管ANG II受体介导的(21). 一种可能性是,当长期输注ANG II时,其作用于血脑屏障外的脑部位,即室周器官。穹窿下器官(SFO)是室周器官之一,与缓慢升压型ANGⅡ高血压的机制密切相关(40)可以想象,皮层ROS的增加是由SFO触发的神经体液机制介导的。特别是,SFO大量投射到下丘脑室旁核,它可以释放血管活性激素,如血管加压素,并激活神经投射,从而多突触到达大脑皮层(2,34). 另一种可能性是,可能通过SFO循环ANG II,在大脑中诱导内源性ANG II生成,导致ROS的全球增加。这些问题需要在额外的实验中解决,在这些实验中,SFO在ANG II诱导的脑血管功能障碍中的作用被研究。

ANG II给药减弱了神经活动、ACh、缓激肽和A-23187产生的CBF增加,这些反应由不同的介质介导。神经活动引起的CBF增加在一定程度上由神经元NO合成酶产生的NO介导,而内皮NOS衍生NO介导对ACh的反应(12,38,39). 另一方面,在小鼠微循环中,CBF对缓激肽和A-23187的反应由环氧合酶-1途径介导(27). 因此,涉及单一血管扩张机制的改变不能解释ANG II脑血管效应的多样性。急性ANG II给药的研究表明,ANG II的脑血管效应是由过氧亚硝酸盐介导的,过氧亚硝基盐可以通过硝化对血管功能至关重要的蛋白质来改变血管反应(8,12,28). 对于慢性ANG II给药的影响,是否存在类似机制尚待确定。

通过ANG II输注观察到的血管和神经元氧化应激对ANG II诱导的高血压以及可能的原发性高血压的中枢神经系统影响具有重要意义。高血压增加大脑对缺血的敏感性,并促进认知功能障碍(15). 虽然脑血管的改变和相关的血管储备减少可能起作用,但神经元和胶质细胞的氧化应激也可能参与其中。由于ANG II慢递质模型概括了原发性高血压的一些特征(32),我们的数据支持在高血压前期也应实施预防性治疗的观点(31),MAP升高低于高血压阈值的情况(5). 事实上,饮食调整和运动可能有助于高血压前期患者的认知效应(36)证明了脑功能障碍的可逆性。

总之,我们已经证明,缓慢升压的ANG II输注诱导MAP的延迟升高和脑循环的关键调节机制的改变。在高血压发病之前,也可以观察到脑血管功能障碍,这种情况在服用不升高MAP的ANG II剂量时也会出现,并且会持续到MAP恢复到基线水平之后,但不是永久性的。相反,动脉压升高伴PE不能改变脑血管调节。慢升压因子ANG II诱导的脑血管功能障碍由氧化应激介导,氧化应激不仅涉及脑微血管,还涉及神经元,可能还涉及星形胶质细胞。研究结果表明,在诱发高血压之前,缓慢加压的ANG II输注以脑血管功能为靶点,突出了脑血管对ANG II损伤作用的脆弱性。尽管这些实验数据与人类高血压的相关性仍不确定,但数据支持对高血压前期患者,尤其是具有其他心血管危险因素的高危人群进行早期预防干预。

赠款

这项研究得到了国家心脏、肺和血液研究所HL-96571的支持。

披露

作者未声明任何利益冲突,无论是财务还是其他方面。

补充材料

补充表:

参考文献

1安德烈森J、沙菲NI、小布莱恩RM内皮细胞对脑血管紧张的影响.应用物理学杂志 100:318–327, 2006. [公共医学][谷歌学者]
2Benarroch EE公司。室旁核、应激反应与心血管疾病.临床自动研究 15:254–263, 2005. [公共医学][谷歌学者]
三。Butz总经理,Davisson RL。清醒小鼠心血管参数的长期遥测测量:一种生理基因组学工具.基因组学杂志 5:89–97, 2001. [公共医学][谷歌学者]
4Capone C、Faraco G、Anchore J、Zhou P、Iadecola C。环氧合酶1衍生的前列腺素E2和EP1受体是血管紧张素II诱导的脑血管功能障碍所必需的.高血压 55:911–917, 2010.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
5Chobanian A、Bakris G、Black H、Cushman W、Green L、Izzo J、Jones D、Materson B、Oparil S、Wright J、Roccella E。全国高血压预防、检测、评估和治疗联合委员会第七次报告:JNC7报告.日本汽车制造商协会 289:2560–2572, 2003. [公共医学][谷歌学者]
6克里斯索波利斯S,法拉奇FM。脑循环中锰超氧化物歧化酶对血管紧张素Ⅱ诱导的内皮功能障碍保护作用的性别差异.高血压 55:905–910, 2010.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
7Donegan JH、Traystman RJ、Koehler RC、Jones MD Jr、Rogers MC。脑代谢减少期间的脑血管缺氧和自身调节反应.美国生理学杂志心脏循环生理学 249:H421–H4291985年。[公共医学][谷歌学者]
8法拉奇FM。活性氧对脑血管张力的影响.应用物理学杂志 100:739–743, 2006. [公共医学][谷歌学者]
9Fotuhi M、Hachinski V、Whitehouse PJ。改变对晚年痴呆症的看法.Nat Rev Neurol公司 5:649–658, 2009. [公共医学][谷歌学者]
10.Garrido AM,Griendling KK公司。NADPH氧化酶和血管紧张素II受体信号传导.分子细胞内分泌 302:148–158, 2009.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
11Girouard H、Park L、Anchore J、Zhou P、Iadecola C。血管紧张素II通过nox-2衍生自由基减弱脑微循环中的内皮依赖性反应.动脉硬化血栓血管生物 26:826–832, 2006. [公共医学][谷歌学者]
12Girouard H、Park L、Anchore J、Zhou P、Iadecola C。脑血管亚硝化应激介导血管紧张素II诱导的神经血管和内皮功能障碍.动脉硬化血栓血管生物 27:303–309, 2007. [公共医学][谷歌学者]
13哈里维尔B,怀特曼M。测量体内和细胞培养中的反应物种和氧化损伤:你应该如何做,结果意味着什么?杂志 142:231–255, 2004.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
14伊德科拉C。脑血流量测量的原理和方法:实验方法. 在:脑血管疾病入门, 编辑人威尔士KM、Caplan LR、Reis DJ、Sïesjo BK、Weir B。加州圣地亚哥:学术出版社,1997年,第34-37页。[谷歌学者]
15伊德科拉C。神经退行性和血管因素在痴呆发病机制中的重叠.神经病理学学报 120:287–296, 2010.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
16Iadecola C,戴维森RL。高血压和脑血管功能障碍.单元格元 7:476–484, 2008.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
17Iadecola C,Nedergaard M。脑微血管的胶质调节.自然神经科学 10:1369–1376, 2007. [公共医学][谷歌学者]
18Iadecola C、Springston ME、Reis DJ。氯醛糖分离小脑顶核诱发的脑血管和心血管反应.大脑血流代谢杂志 10:375–382, 1990. [公共医学][谷歌学者]
19Iadecola C、Zhang F、Niwa K、Eckman C、Turner SK、Fischer E、Younkin S、Borchelt DR、Xiao KK、Carlson GA。SOD1对淀粉样前体蛋白过度表达小鼠脑内皮功能障碍的保护作用.自然神经科学 2:157–161, 1999. [公共医学][谷歌学者]
20Iadecola C、Zhang F、Xu X。在深氟烷麻醉下,小脑顶刺激引起的脑血管扩张得以保留.美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol 265:R187–R1941993年。[公共医学][谷歌学者]
21Kazama K、Anchore J、Zhou P、Girouard H、Frys K、Milner TA、Iadecola C。血管紧张素II通过NADPH氧化酶衍生的自由基破坏新皮层的神经血管耦合.循环研究 95:1019–1026, 2004. [公共医学][谷歌学者]
22Kazama K、Wang G、Frys K、Anchore J、Iadecola C。血管紧张素II减轻小鼠体感皮层功能性充血.美国生理学杂志心脏循环生理学 285:H1890–H18992003年。[公共医学][谷歌学者]
23.Lawes CM、Vander Hoorn S、Law MR、Elliott P、MacMahon S、Rodgers A。2000年血压与全球疾病负担。第二部分:可归因负担估计数.J高血压 24:423–430, 2006. [公共医学][谷歌学者]
24Lawes CM、Vander Hoorn S、Rodgers A;国际高血压学会。2001年全球血压相关疾病负担.柳叶刀 371:1513–1518, 2008. [公共医学][谷歌学者]
25.Miller AA、Drummond GR、Schmidt HH、Sobey CG。脑动脉和体动脉中NADPH氧化酶的活性和功能明显高于体动脉.循环研究 97:1055–1062, 2005. [公共医学][谷歌学者]
26Moskowitz MA、Lo EH、Iadecola C。中风科学:寻求治疗的机制.神经元 67:181–198, 2010.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
27Niwa K、Haensel C、Ross ME、Iadecola C。环氧合酶-1参与脑循环的选择性血管扩张反应.循环研究 88:600–608, 2001. [公共医学][谷歌学者]
28Pacher P、Beckman JS、Liaudet L。一氧化氮和过氧亚硝酸盐在健康和疾病中的作用.生理学评论 87:315–424, 2007.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
29Park L、Zhou P、Pitstick R、Capone C、Anchore J、Norris EH、Younkin L、Younkins S、Carlson G、McEwen BS、Iadecola C。Nox2衍生自由基导致淀粉样前体蛋白过度表达小鼠的神经血管和行为功能障碍.《美国科学院院刊》 105:1347–1352, 2008.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
30Phillis JW公司。腺苷对脑循环的控制.脑血管脑Metab Rev 1:26–54, 1989. [公共医学][谷歌学者]
31Pimenta E、Oparil S、Medscape高血压前期:流行病学、后果和治疗.自然综述肾脏病学 6:21–30, 2010. [公共医学][谷歌学者]
32Reckelhoff JF,罗梅罗JC。氧化应激在血管紧张素诱导的高血压中的作用.美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol 284:R893–r9122003。[公共医学][谷歌学者]
33Rey FE、Cifuentes ME、Kiarash A、Quinn MT、Pagano PJ。新型NAD(P)H氧化酶组竞争性抑制剂抑制血管O2小鼠的收缩压.循环研究 89:408–414, 2001. [公共医学][谷歌学者]
34里纳曼L。内分泌下丘脑的内脏感觉输入.前神经内分泌 28:50–60, 2007.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
35斯隆结核病。麻醉剂和大脑.北美麻醉学临床 20:265–292, 2002. [公共医学][谷歌学者]
36.Smith PJ、Blumenthal JA、Babyak MA、Craighead L、Welsh-Bohmer KA、Browndyke JN、Strauman TA、Sherwood A。停止高血压饮食、运动和热量限制的饮食方法对超重高血压成人神经认知的影响.高血压 55:1331–1338, 2010.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
37吴聪,刘玉斌,卢力士,林CW。活体细胞和组织中活性氧动力学成像.Front Biosci(学校教育) 1:39–44, 2009. [公共医学][谷歌学者]
38Yamada M、Lamping KG、Duttaroy A、Zhang W、Cui Y、Bymaster FP、McKinzie DL、Felder CC、Deng CX、Faraci FM、Wess J。M(5)毒蕈碱型乙酰胆碱受体敲除小鼠脑血管的胆碱能扩张被消除.《美国科学院院刊》 98:14096–14101, 2001.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
39Yang G,Iadecola C。NO在小脑平行纤维诱发的谷氨酸依赖性充血中的强制性作用.美国生理学杂志Regul Integr Comp Physiol 272:R1155–r1161997。[公共医学][谷歌学者]
40Zimmerman MC、Lazartigues E、Sharma RV、Davisson RL。血管紧张素II输注引起的高血压涉及中枢神经系统中超氧物生成的增加.循环研究 95:210–216, 2004. [公共医学][谷歌学者]

文章来自美国生理学杂志-心脏和循环生理学由以下人员提供美国生理学会