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细胞死亡不同。作者手稿;PMC 2010年9月20日提供。
以最终编辑形式发布为:
细胞死亡不同。2007年3月;14(3): 453–461.
2006年9月29日在线发布。 数字对象标识:10.1038/sj.cdd.4402043

图3

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FasL诱导内膜的整体运动。()ERGIC53免疫标记后,使用Alexa Fluor488-HPA(绿色)进行双重高尔基染色,与图2b,使用红色荧光二级抗体证明。用60倍物镜采集31个z断面的投影图像,并用Deltavision RT软件进行10个周期的去卷积。HPA染色是在没有凝集素预吸收的情况下进行的,以清晰地定义细胞轮廓。注意这种表面染色在FasL处理的细胞中的扩散。(b条)德克萨斯州红结合HPA(HPA外部,20μg/ml)与FasL(0.5μg/ml)转移到活细胞中,并在37°C的RB中孵育40分钟。清洗后,将细胞固定、渗透,然后用GM130(左)和ERGIC53(仅右合并图像)进行免疫染色,如图2c。获得了34个z截面的投影图像,如下所示(). (c(c))Jurkat细胞首先加载50 nM MTR(参见。图2)然后离心并附在盖玻片上,用未标记的HPA(52)进行固定和淬火μg/ml),渗透,然后用2μg/ml Alexa Fluor488-HPA(绿色)显示细胞内膜,优先于表面染色(与). 获得了56个z截面的投影图像,如下所示(). (d日)用从处理过的小鼠肝脏分离的线粒体定量测量HPA与膜的结合体外带FasL(参见。38)在与淋巴瘤细胞诱导细胞死亡相同的条件下。得克萨斯州红色共轭HPA(50μg/ml)与40μg/ml线粒体蛋白和8μg/ml高尔基蛋白(黑色直方图,从大鼠肝脏中纯化的高尔基是曼彻斯特大学M Lowe博士赠送的礼物)在37°C的分析缓冲液中放置30分钟。然后通过离心分离和清洗膜,在分析缓冲液中重新悬浮,并转移到四个孔中,以便在平板读取器中进行荧光测量(544 nm激发,590 nm发射)

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