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美国国家科学院程序。2010年6月8日;107(23): 10371–10376.
2010年5月19日在线发布。 数字对象标识:10.1073/第909374107页
预防性维修识别码:PMC2890786型
PMID:20484673

预测和验证沿微血管排列的细胞作为肝再生中恢复组织结构的顺序原则

关联数据

补充资料

摘要

对于细胞如何在再生过程中协调行为以建立功能性组织结构和恢复微结构,我们知之甚少。由于缺乏量化组织结构及其发展的技术,这一领域的研究受到阻碍。为了弥补这一差距,我们建立了一种基于共焦激光扫描、图像处理、三维组织重建以及定量数学模型的程序。作为原理证明,我们重建并模拟了CCl损伤后小鼠的肝脏再生4是中心周围肝损伤的典型诱导物。我们选择再生肝脏为例,因为肝脏结构和功能之间存在紧密联系:肝细胞和微血管形成的复杂微结构,即肝窦,确保血液和肝细胞之间的代谢物最佳交换。我们的模型在16天的再生过程中捕获了肝小叶的所有肝细胞和血窦。该模型明确预测了一种未被认识到的so-far机制对肝脏再生至关重要,即子代肝细胞沿着最近的窦状体方向排列,这一过程我们称之为“肝细胞-类胞体排列”(HSA)。当HSA被纳入模型时,模拟的组织结构仅与实验获得的数据一致,而且没有其他可能的机制可以替代它。为了实验验证HSA预测模型,我们分析了子代肝细胞相对于肝窦的三维方向。该分析结果明确证实了模型预测。我们相信我们的程序在组织的系统生物学中广泛适用。

关键词:基于agent的模型、图像处理和分析、数学组织建模、系统生物学、形态发生

肝脏是清除血液中药物和毒素的主要代谢器官。肝脏的一个显著特征是它能够在相对较短的时间内再生肝细胞,肝细胞重量损失高达70%(1). 肝实质组织在称为肝小叶的重复功能单元中,肝小叶除了其主要成分肝细胞外,还包括窦状内皮细胞、库普弗细胞、星状细胞和胆管细胞。肝动脉和门静脉的分支将血液引导至小叶的门脉周围区域(图1). 从那里,它流经微血管、窦状体,沿着排列着内皮细胞(通常称为窦状细胞)的肝细胞柱流入中央静脉。这种复杂的小叶结构确保了健康肝脏中血液和肝细胞之间的最大交换面积。在肝脏疾病中,如肝细胞癌,肝细胞和肝窦细胞之间的接触面减少,导致肝功能受损(图1F类). 最近对肝脏再生的研究集中在分子途径和相关机制上(2). 对于细胞如何协调行为以恢复复杂的功能性小叶结构,我们知之甚少。这一复杂再生过程的基本机制是什么?在本研究中,我们分析了CCl中毒小鼠的肝脏再生4.CCl公司4导致靠近中央静脉的肝细胞死亡(图2B类)因为只有这些细胞表达CYP2E1,后者代谢激活CCl4对有毒实体(). 这种毒性模式与过量服用对乙酰氨基酚对人体造成的毒性相似。然而,大约10天后,这个中央坏死病灶闭合,小叶结构完全恢复(图2D类). 为了阐明潜在的过程,我们建立了一个基于共焦激光扫描可视化肝细胞和正弦细胞的三步程序(图1B类)、图像处理和三维组织重建(图1 C类E类)和定量数学建模(图3电影S1,S2系列,第3章,S4系列,第5章、和S6系列). 我们的程序使用三种参数类型:(小叶)结构参数量化静态肝小叶,(再生)过程参数量化再生过程,以及(数学)建模参数表征数学模拟模型。我们结合结构和过程参数建立了一个详细的毒性损伤后肝小叶再生的数学计算机模型。为了确定工艺参数,我们用处理和分析实验获得的3D共焦图像的技术来补充传统技术,如BrdU合并。这使我们能够提取无法获取的定量信息,例如肝细胞的三维时空增殖模式以及再生过程中肝细胞和正弦细胞之间的接触面积(图3F类). 我们通过分析在合理的生理模型参数范围内的各种数学模型变体,然后将模拟结果与实验观察结果进行定量比较,确定了观察到的再生过程的可能机制,在实验和模拟中使用相同的工艺参数。最后,我们使用数学模型通过预测信息最丰富的实验来指导进一步的实验,以选择最合适的再生机制。使用这种策略,我们确定了一种机制,即“肝细胞-类胞体排列”(HSA),即肝细胞分裂的子细胞沿着最近的窦状体排列。模型模拟和实验表明,HSA是肝小叶功能结构再生所必需的关键机制,是其他机制无法替代的。组织组织的定量时空数学模型代表了一种通用的方法,可以合并来自不同来源的信息,以协同获得组织组织过程的定量和定性见解。

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()通过图像处理链从实验数据推断出的具体肝小叶(B类)–(E类)和连续图像分析。重建的小叶作为数学模型的初始状态。(B类)自适应直方图均衡滤波后通过共焦显微镜获得的典型图像。蓝色:DAPI(肝细胞核);黄色:ICAM+DPPIV(正弦);红色:ICAM;绿色:DPPIV。(C类)广义侵蚀过滤的效果(将删除所有红色像素)。(D类)广义扩张滤波的效果(添加所有绿色像素)。(E类)三维图像处理链的结果。蓝色:肝细胞核;白色:正弦曲线。请注意连接门脉周围区和小叶中部中央静脉的复杂结构。(F类)正常肝组织和肝癌中与窦状细胞(橙色)和其他肝细胞(灰色)接触的肝细胞表面积的分数。中的详细信息SI附录.

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在光学显微镜下观察小鼠肝小叶的典型示例。()控制(B类)2天(C类)4天,和(D类)服用CCl后8天4,说明中央死细胞区的出现和再生。中显示的示例()–(D类)使用次优的过氧化物酶块,可以在苍白的中央死细胞区域之间进行自动分化(地下二层(绿色条纹区域)和存活的较深肝细胞,而在更大的放大倍数下,仍能清楚区分BrdU阳性和BrdU阴性细胞。手动绘制线条()–(D类), (A2类)和(地下二层)显示肝小叶的大致延伸。(A2级)通过GS免疫染色鉴定中央静脉。用于量化再生过程的工艺参数为(E类)肝小叶中BrdU阳性细胞的分布。每个时间点使用三只小鼠,即给药CCl后0、1、2、3、4、8和16天4。每只小鼠至少分析两个肝小叶:(F类)平均肝细胞密度(G公司)中央坏死区,以及(H(H))肝细胞-类固醇接触面积随时间变化。

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模拟模型中的再生,从具有代表性的肝小叶开始。()–(C类)部分显示横截面(与图1)模型仿真:()模型1 10天后的模拟结果(B类)模型2在10天后的模拟结果,以及(C类)再生过程示意图(之后t吨=0、1、2、4和10 d),使用模型3(电影S1第3章). (D类)–(F类)各模型实验数据的定量比较:(D类)平均肝细胞密度(E类)中央坏死区,以及(F类)肝细胞-类固醇接触区。

结果

肝小叶的三维重建。

为了建立再生肝小叶的定量时空模型,我们首先对其结构进行了重建和定量描述。为此,我们使用共焦激光扫描大约150µm厚的肝组织切片。窦状细胞经ICAM(细胞间黏附分子)抗体染色后呈红色;而用DPPIV(二肽基肽酶IV)抗体染色后,肝细胞顶端呈绿色(图1B类). 基于共焦激光扫描(SI附录),使用滤波、分割和形态学恢复步骤重建正弦网络的完整三维结构(图1 C类E类SI附录). 用DAPI染色后,用相同的共焦激光扫描确定肝细胞核的位置(图1E类). 通过图像处理和分析步骤,我们获得了建筑参数的统计分布。这些是肝细胞的平均血管直径和密度(包括量化正弦网络和位置的分支长度)、体积、密度和形状(SI附录). 为了捕捉不同肝小叶之间的差异,我们研究了不同小鼠的26个肝小叶。此外,在白蛋白/α-脂肪蛋白(Alfp)启动子的控制下,肝细胞和窦状细胞之间的分化基于EGFP的表达,通过CD31免疫染色观察窦状细胞,用转基因小鼠验证了上述结果(SI附录). 根据获得的结构参数分布,我们生成了一个具有代表性的肝小叶作为数学模型的初始配置(图3C类).

破坏和再生过程的量化。

接下来,我们定义了过程参数来量化再生过程。这些数据包括:(i)肝小叶内BrdU的空间掺入模式,作为细胞增殖的衡量标准;(ii)小叶切片中的细胞数量,作为小叶质量的衡量标准,(iii)中央坏死的面积,以及(iv)肝细胞-类核细胞接触面积,定义为肝细胞表面与相邻窦接触的百分比,作为小叶结构的测量。这些过程参数由CCl中毒后0、1、2、3、4、8和16天的光学显微镜图像和共焦激光扫描确定4(1.6克/千克体重)。在我们的数学模型中,BrdU掺入模式被用作确定增殖模式的输入参数。中央坏死区与存活的肝细胞明显区分,CCl后1-2天最大4管理(图2G公司),此时小叶内的平均肝细胞密度最小(图2F类). CCl后2–3天,肝细胞中BrdU掺入达到峰值4管理(图2E类). 增殖肝细胞在小叶上的分布不均匀,优先发生在死亡细胞区附近的肝细胞层(图2E类). 细胞层的顺序在图2地下二层(有关详细信息,请参阅SI附录). 中心周围肝细胞标志物谷氨酰胺合成酶(GS)短暂下降;mRNA表达、免疫染色和酶活性分析检测的影响(图S1–S3). 这表明中央周围肝细胞的破坏和再生动力学与先前报道的观察结果一致(1,4). 坏死区的巨噬细胞数量增加,并伴随CD68 mRNA的增加(图S4). 这可能解释了死亡细胞团迅速消失的原因。一些观察结果与破坏和再生过程相一致。其中包括ATP含量的短暂下降(图S5)以及白蛋白、CYP3A11和BSEP(ATP结合盒,B亚家族,成员11)mRNA表达(导致肝功能分化的因素);甲胎蛋白和泛素mRNA表达的短暂增加(图S1); 以及所分析肝脏的宏观外观(图S6). 在8天内,中央坏死区被封闭(图2 D类G公司)平均肝小叶肝细胞密度恢复(图2F类). 一旦中央死细胞区再生,就很难在组织学上识别中央静脉,而相邻切片的GS免疫染色可以看到中央静脉(图2A2类). 值得注意的是,正弦网络的结构基本上不受CCl的影响4(图4F类). 为了量化肝小叶的微结构,我们测量了肝细胞-类脂质体和肝细胞-肝细胞接触面积。通过比较健康肝脏和肝癌组织,验证了该测量值(图1F类). 在正常肝脏中,35.8±2.3%(平均值±标准差)的肝细胞表面与其他肝细胞接触,48.5±2.5%与肝窦接触。在肝癌中,接触面积分别为48.1±3.6%(与肝细胞)和39.1±2.3%(与血窦),表明肝肿瘤中肝细胞与血窦的接触显著减少(非配对t检验:p=0.0015),肝细胞与肝细胞的接触相应增加。由于这两种测量方法是互补的,我们只考虑了血液和肝细胞之间发生代谢物交换的肝细胞-类脂质接触区。此外,在CCl后的再生过程中4损伤后,肝细胞-类脂质接触暂时减少,第2天最低,随后恢复到第16天(图2H(H)).

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CCl后窦状细胞存活于肝小叶中央死细胞区4中毒并激活tie-2启动子。()三重转基因tie-2报告小鼠的构建。(B类)未经治疗的tie-2报告小鼠的肝组织。绿色荧光(EGFP)表明静脉内皮细胞中的tie-2启动子活性为阳性(右上图中的白色箭头)。CD31免疫染色显示窦状细胞(左下方图像为淡红色),DAPI显示细胞核(右下方图像为蓝色)。合并后的图片(左上角图像)显示静脉内皮细胞而非窦细胞表达EGFP(黄色)。(C类)和(D类)CCl后两天4给药后,一些正弦细胞开始表达EGFP。(C类)EGFP绿色荧光和(D类)绿色、红色和蓝色融合了荧光。中央死细胞区的特征是细胞核丢失和红色背景荧光增强。中心死肝细胞区内的大部分正弦细胞存活并开始表达EGFP,作为tie-2启动子活性的报告者。三维重建小叶(E类)在和之前(F类)CCl后4行政管理。随着肝细胞(蓝色)死亡,窦状细胞(灰色)基本上保持完整。

时空仿真模型的建立。

在测量了肝损伤期间和之后肝脏结构的三维变化后,我们建立了一个单肝小叶的数学模型,模拟CCl治疗后16天的过程4模型的基本单位是单个肝细胞和窦。我们将每个肝细胞建模为单个均匀、各向同性的弹性和粘附物体,能够迁移、生长、分裂和死亡。肝细胞之间、肝细胞和窦状细胞之间、以及肝细胞和细胞外基质之间的相互作用采用先前验证的力模型进行建模(5). 它包括细胞表面受体粘附产生的细胞间中心力和细胞压缩和变形产生的排斥力。肝细胞运动由每个肝细胞位置的随机运动方程建模。该方程包括在每个时间点施加在肝细胞上的所有力以及模拟肝细胞微运动的随机项。正弦网络的每个正弦曲线都被建模为一系列以其可扩展性为特征的链接球体。正弦网络的末端固定在中央静脉和门周野处。它的运动模式与肝细胞相似,但没有微动性。我们的数学模型由可测量的生物物理和细胞生物学参数参数化(有关详细信息,请参阅SI附录). 此外,我们还考虑了形态发生基因通过血液进入肝小叶或由靠近中央静脉的坏死细胞分泌的可能影响。我们迭代开发了我们的最终模型,该模型是由与中的工艺参数的直接比较驱动的图3 D类F类。有关时空仿真模型、所用变量和模型参数的详细描述,请参见SI附录我们考虑了两种初始配置:(i)通过平均26个肝小叶的结构参数生成的代表性肝小叶,以及(ii)根据特定共焦数据集重建的具体肝小叶以避免平均可能产生的伪影。对于中所示的代表性初始配置图3C类肝细胞-类固醇接触面积为肝细胞表面的51±1.2%,接近48.5±2.5%的实验值。请注意,这些参数不能直接调整,因为它们完全由架构参数决定。

最初的分析是从一个模型变量(模型1)开始的,该变量在以前的研究中被成功用于定量模拟体外生长细胞群的生长动力学(6). 在模型1中,我们假设细胞分裂的随机方向,缺乏影响细胞运动方向的形态原,以及肝细胞与其他肝细胞的非特异性均匀各向同性粘附(图3电影S1). 尽管该模型与平均肝细胞密度的实验结果一致(图3D类),这并不能解释实验观察到的再生过程的动力学,因为中央坏死病灶的闭合太慢(图3E类). 此外,肝细胞-类固醇接触面积与实验数据不一致(图3F类). 我们通过在一系列生理参数上运行模拟来验证这一发现,这些生理参数改变了细胞的微动性、肝细胞-肝细胞和肝细胞-淀粉样黏附、肝细胞与肝细胞以及肝细胞-基质摩擦,并改变了肝细胞和窦状体的生物物理特性。例如,微动性的强烈增加导致肝细胞脱离,个别迁移至坏死病灶(SI附录). 然而,在我们的实验中没有观察到单个细胞从再生前沿脱落。因此,微动性不得超过肝细胞分离并单独迁移到损伤部位的阈值。我们的结论是,在缺乏引导肝细胞迁移到坏死区的机制的情况下,如果不导致单个肝细胞分离,就无法以必要的速度关闭病变。我们测试了形态原和机械力梯度引导肝细胞向坏死区迁移的能力。

此外,我们引入了各向异性的细胞间粘附效应,因为肝细胞是极性的,顶端或胆管侧朝向邻近肝细胞,基底外侧血侧朝向窦状细胞。我们改进了模型中的细胞间粘附,使相邻的极性肝细胞仅在其顶端形成粘附键(SI附录). 最佳数据拟合是通过模型(模型2)获得的,该模型将极性肝细胞与微运动性结合在一起,微运动性偏向坏死区域的方向,从而引导细胞迁移。模型2(图3B类电影S2)与肝细胞密度的实验观察结果一致(图3D类)并成功模拟了再生动力学(图3E类). 只要局部机械梯度或形态梯度都只影响坏死病灶边缘2-5个细胞的层厚,则可能会导致微运动的偏差。我们发现,如果一个小叶中的所有肝细胞都受到影响,小叶的结构就会扭曲。我们模拟了中央坏死区死亡或濒临死亡的肝细胞分泌细胞因子或通过血液运输细胞因子引起的梯度影响。然而,这些模型变化都无法成功恢复小叶微结构(图3F类). 16天后,代表性模型2显示肝细胞-类固醇接触面积仅为37.1±1.1%,显著低于实验情况(48.5±2.5%)。

肝细胞沿着窦状细胞排列是恢复肝脏微结构的关键机制。

因为模型1和模型2都不能完全解释实验观测数据,所以我们在模型中加入了另一种机制,即HSA。如前所述,在HSA过程中,来自细胞分裂的子代肝细胞沿着最近的正弦排列,这样连接两个子代细胞中心的线与最近正弦的局部方向平行。窦状体可能有助于再生肝细胞定向的第一个实验证据来自我们的tie-2报告小鼠。给予CCl后窦状细胞存活4,甚至在几乎所有肝细胞死亡的小叶中心区域。然而,由于窦状细胞非常薄,因此在制备石蜡切片并用常规技术染色时,中央死细胞团中的窦状细胞很容易被忽略(图S7). 我们首先在tie-2启动子控制下EGFP表达的tie-2报告小鼠的中央死细胞团中发现了它们的存在(图4SI附录). 相对较高比例的正弦细胞,尤其是在死细胞区,表达EGFP(图4 C类D类图S8). 这一结果表明,死肝细胞区的正弦细胞存活,但可能受到应激,并开始显示tie-2启动子活性,已知其参与血管重塑(7). 为了可视化正弦网络的状态,我们用ICAM抗体对正弦细胞进行免疫染色,并在CCl后2天在健康肝脏中重建网络4管理。虽然正弦网络显示出一定程度的破坏,但基本网络结构仍然完好无损(图4 E类F类). 对肝细胞和肝窦细胞数量的分析表明,大多数肝窦细胞存活下来,即使在几乎所有肝细胞都被CCl破坏的中心区域也是如此4(图S9). 这促使我们研究正弦细胞在再生过程中可能发挥作用的假设,并将HSA机制纳入我们的模型。因此,我们找到了模型3(图3C类电影S3)与包括肝细胞密度在内的所有实验观察结果非常一致(图3D类)和再生动力学(图3E类). 此外,16d后小叶结构恢复,肝细胞-类固醇接触面积为50.4%,与实验情况相符(48.5±2.5%)(图3F类).图3C类示出了具有模型3的典型计算机模拟。总之,我们的模型模拟强烈表明HSA可能是肝脏结构再生的关键机制。根据敏感性分析,我们的模型预测,子细胞沿最近的窦状细胞排列必须在细胞分裂后最长2小时内发生。

肝细胞-类正弦排列的实验验证。

为了进一步增强我们的模型,我们通过测定肝细胞沿窦状细胞分裂后的排列程度,实验测试了数学模型的预测。为此,我们使用共焦激光扫描重建了静息肝细胞(BrdU阴性)和细胞分裂后肝细胞(溴化铀阳性)的三维正弦网络(图5D类). BrdU阳性核呈绿色荧光;然而,由于卵磷脂染色,细胞边界呈红色。我们采用了一种实验设计,即在CCl后48小时注射BrdU4给药时,肝细胞增殖接近最大值。在BrdU注射后8小时至14天的时间间隔制备肝脏(详细设计见图S10). 石蜡切片的二维分析表明,子细胞沿窦方向排列(图5 C类). 然而,在二维分析中,结果可能会因选择切割平面而受到影响。因此,我们重建并分析了小叶的全3D结构,并鉴定了所有对BrdU阳性的相邻肝细胞。对于每一对,我们计算了连接细胞中心的线,并确定了该线与相邻正弦曲线切线之间的角度。此角度越接近零,对齐效果越好。注射BrdU后8小时(最早的分析时间段),大多数子细胞与邻近的窦状细胞排列良好(图5E类图S11). 模型3的模拟结果与实验观察到的角度分布非常吻合,而在模型1和模型2中,方向角均匀分布在[0,π/2] (图5E类).

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HSA的实验验证。()光镜下免疫组织化学染色。BrdU阳性核为深棕色。(B类)共聚焦显微镜图像,绿色:BrdU阳性细胞;蓝色:不增殖肝细胞;红色:凝集素(细胞边界;窦状体)。请注意,白色箭头所示的一对BrdU-阳性细胞与黄色箭头所示相邻正弦平行。(C类)两个子细胞的三维重建,其方向与相邻的窦状体方向一致。(D类)BrdU阳性细胞和窦的三维分布。插图显示了子肝细胞的连接线(红色)及其相对于最近窦状细胞的方向(角度α)(蓝色线)。(E类)实验和模型1-3中α的密度分布。

讨论

组织的发育、结构和功能取决于细胞之间的相互作用,这些细胞在时间和空间上可能会发生变化(8). 这种相互作用主要通过可溶性因子的直接接触或分泌而发生。特别是,肝功能和功能障碍取决于其微结构。血液流经窦,从而在流出中央静脉之前与肝细胞接触(图1). 肝小叶微结构的定量分析表明,在进化过程中,形成了最佳的正弦结构,以确保血液和肝细胞之间的有效交换。如果肝细胞-类固醇接触面积减少,则肝功能受损。显然,肝细胞和肝窦细胞这两种最丰富的细胞类型对维持肝脏微结构至关重要。然而,分析肝细胞-类固醇相互作用及其对肝脏微结构的影响在实验上具有挑战性。传统技术在描述三维时空过程方面存在不足;因此,目前还没有可用于量化肝脏微结构的技术。作为替代方案,我们建立了一个过程链,该过程链利用了综合实验分析、图像分析和直接时空建模的协同作用。作为建模的起点,我们通过共聚焦激光扫描重建了肝小叶,从而正确捕获了所有单个肝细胞和正弦细胞的位置,以及关于小叶结构的所有进一步相关信息。我们引入了结构参数来量化小叶质量和结构。架构参数用于定义数学模型的初始状态。为了量化CCl后的再生过程4诱导靠近中心静脉的肝细胞坏死,为了与我们的数学模型的模拟结果进行定量比较,我们引入了一些过程参数。这些参数是在用CCl治疗后0.5–16天的小鼠肝脏再生过程中通过实验确定的4,包括测量(i)细胞增殖的时空模式,(ii)平均肝小叶肝细胞密度,(iii)坏死病灶的面积,以及(iv)肝小叶微结构,即反映肝功能的肝细胞-类固醇接触面积。通过模型模拟,我们已经证明,如果没有考虑这些参数中的任何一个,我们将无法正确识别CCl后肝脏再生的关键机制4中毒。第一个参数(i)用作输入参数,并与我们对细胞的抽象但仍然真实的描述相结合,以确保平均小叶肝细胞密度得到恢复[参数(ii)]。然而,如果细胞迁移完全由物理相互作用力控制,细胞就会聚集在门脉周围区,病变不会闭合(电影S1). 只有当肝细胞积极向坏死区迁移时,病变才会闭合[参数(iii)]。事实上,一些证据表明,死亡或濒临死亡的肝细胞会导致存活的肝细胞向其方向迁移:(I)培养的小鼠肝细胞的时间推移视频表明,存活肝细胞被死亡肝细胞吸引(电影S1S2系列),(II)死细胞区边缘肝细胞前的丝状伪足延伸数微米(SI附录)和(III)一些肝细胞显示应力纤维形成,如指骨苷染色所示,与体外肝细胞相似,显示出高散射活性(图S12). 我们还通过假设极性肝细胞-肝细胞粘附,将已知的肝细胞极性纳入模型中,并考虑与窦状细胞无粘附,因为发现粘附会减缓再生。然而,这些机制都没有导致正确的肝细胞排列。通过推开相邻的窦状体,它们形成了局部双细胞而非单细胞柱,从而增加了肝细胞-肝细胞接触面积,但牺牲了肝细胞与类单细胞的接触面积。

只有当我们引入了一种独特的机制,即子肝细胞在最近的窦状细胞(HSA)方向上的排列,这是一个so-far未识别的过程时,模拟的组织结构才与实验获得的数据一致。重要的是,通过在所有模型变量中使用模型参数敏感性分析,我们可以表明HSA不能通过在模型中包含任何其他可能的机制来替代。因此,该模型明确预测,HSA必须发生,没有HSA,完全再生是不可能的。为了实验验证HSA的模型预测,我们重建并分析了子代肝细胞相对于肝窦的三维方向。该分析的结果(图5E类)验证了模型预测。

如前所述,正弦细胞是触发肝细胞增殖的核心(912). CCl的一个重要机制4毒性是它导致肝窦细胞中肝细胞生长因子(HGF)增加5倍以上,导致肝细胞增殖增加(10). 除了HGF,IL-6和TNF-α也由正弦细胞分泌,并有助于增殖刺激(12). 这些细胞还分泌有丝分裂抑制因子转化生长因子-beta1,在肝细胞增殖的壮观阶段后,该因子终止肝脏再生(1). 由于正弦细胞对肝细胞增殖的影响,我们推测正弦细胞分泌的细胞因子是否也可以解释HSA。一些探索性实验确实支持了这一假设。当肝细胞和肝窦细胞在延时显微镜下共同培养时,肝细胞被肝窦细胞吸引,并趋向于最大化肝细胞-类核接触面积(电影S3,S4系列,第5章、和S6系列图S13). 这是合理的,因为HGF不仅可以诱导增殖,而且可以作为肝细胞的化学吸引剂(1)因此,可能提供一种机制,有助于拟定的HSA。在这种情况下,肝细胞沿窦排列不应发生在细胞分裂期间,而是在细胞分裂之后。为了验证这一假设,我们进行了初步实验,通过对与子细胞定向分析相同的肝脏样本2D切片中的微管蛋白染色来研究有丝分裂纺锤体的定向。与上述BrdU阳性子细胞相比,有丝分裂纺锤体在窦的方向上没有系统地排列(图S14). 这一数据表明,尽管肝细胞有丝分裂纺锤体的方向可能是随机的,但子细胞在短时间内仍沿最近的窦状体方向重新排列。有丝分裂纺锤体3D定向分析具有挑战性,目前正在研究中。然而,我们能够在计算机模拟中模拟该机制,方法是将模型3中沿着最近的正弦曲线分裂细胞的排列替换为以下两个子机制:(1)细胞在随机方向分裂,对应于有丝分裂纺锤体的随机方向,和(2)肝窦分泌的短程形态原对肝细胞的吸引力。我们发现,如果另外假设肝细胞极性的重建发生在细胞分裂后,则肝窦对肝细胞的形态诱导吸引力可以解释HSA。在不重建极性的情况下,肝细胞在局部能量极小值的诱导下,在窦状体内形成至少两层细胞的柱状结构。

总之,我们已经证明HSA代表了一种尚未被认识的机制,它对肝脏微结构的恢复至关重要。研究HSA在肝硬化和肝细胞癌等肝脏疾病中的作用很有意思,因为这些疾病的微结构也受到损害。

材料和方法

实验。

应用的实验技术的详细描述见SI附录.带有CCl的标准协议4用于诱导雄性C57BL/6N小鼠肝损伤。Tie-1和Alfp-Cre转基因报告小鼠分别用于观察正弦细胞和肝细胞。根据公布的技术进行免疫染色和共焦激光扫描显微镜检查(SI附录).

图像处理和分析。

为了从共焦图像中重建和分析正弦网络,应用了复杂的图像处理链。我们使用自适应直方图均衡化(AHE)、形态学算子和中轴变换类过程将正弦网络几何表示为3D中的无向图,这使我们能够研究正弦网络的特性。类似的图像处理链包括AHE、中值滤波、,基于Voronoi空间分解的细胞形状重建为研究肝细胞特性奠定了坚实的基础。有关详细信息,请参阅SI附录.

数学建模。

我们的模型包括肝细胞、窦状细胞、中央静脉和门脉周围三联体,但没有考虑单个肝细胞、非实质细胞类型(如星状细胞、库普弗细胞和胆管细胞)之间的大小和形态变化。细胞分裂分为G1、S和G2-期,在此期间细胞生长并使其体积加倍,有丝分裂期间细胞以恒定体积变形,直到出现两个子细胞。对于形态发生子的扩散、分泌和解离,使用了反应扩散方程。有关详细信息,请参阅SI附录.

补充材料

支持信息:

致谢。

我们感谢G.Schütz博士和U.Deutsch教授分别提供Alfp小鼠和tie-2驱动小鼠。本研究得到了BMBF(联邦教育和研究部)网络HepatoSys(项目0313081A和0313081F)以及(欧盟)项目CancerSys(HEALTH-F4-2008-23188)和Passport(编号:223894)的支持。我们将这项工作献给我们的合著者亚历山大·鲍尔,他在博士答辩前不久去世,以纪念他的宝贵贡献。

脚注

作者声明没有利益冲突。

*这篇直接提交的文章有一个预先安排的编辑。

本文包含在线支持信息,网址为www.pnas.org/lookup/supl/doi:10.1073/pnas.0909374107/-/DC补充/.

工具书类

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