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临床投资杂志。2010年4月1日;120(4): 995–1003.
2010年4月1日在线发布。 数字对象标识:10.1172/JCI41229
预防性维修识别码:项目经理2846056
PMID:20364097

制造胚泡:老鼠的经验教训

摘要

哺乳动物的植入前发育是从受精到植入的一段时间,导致形成具有三种不同细胞系的胚泡。这些谱系中只有一个,即外胚层,对胚胎本身起作用,而另外两个谱系,即滋养层和原始内胚层,则成为胚外组织。我们对小鼠着床前发育的主要事件的理解取得了重大进展,最近的发现为建立三个胚泡谱系提供了新的线索。然而,尚不清楚的是,人类植入前发育与小鼠植入前发育的相似程度。进一步了解小鼠和人类植入前发育之间的相似性和差异,对于改进辅助生殖技术和获得人类胚胎干细胞具有重要意义。

介绍

哺乳动物着床前发育期,从卵子受精到胚泡植入子宫,是胚胎前三大细胞系及其胚外膜被保留下来的关键阶段。这三个谱系在后期发育中有助于形成不同的组织:表皮母细胞(EPI)产生胎儿本身;滋养层(TE)继续构成胎儿对胎盘的主要贡献;原始内胚层(PE)成为壁内胚层和内脏内胚层,后者构成卵黄囊。了解这些血统在植入前阶段的发展,对于提高辅助生殖策略(ART)的成功率,如体外受精(IVF)和植入前基因诊断(PGD),预防人类早期妊娠丢失的高比率,以及改进人类胚胎干细胞系的衍生。

我们对植入前发育的了解大多来自对小鼠的研究,40多年来,小鼠一直被用作早期人类胚胎的模型。在这里,我们回顾了从小鼠那里学到的关于哺乳动物植入前发育的主要事件的知识,并讨论了最近的工作,这些工作为三个胚泡谱系的建立提供了新的见解。尽管已经取得了重大进展,但我们仍然不知道小鼠植入前发育事件与人类状况的关系有多密切。在可能的情况下,我们比较了老鼠和人类的发展,并指出对早期人类发展进行更多研究可能特别值得。

植入前发展:综述

早期分裂和合子基因组激活。

受精卵首先经历一系列早期分裂,产生越来越多的逐渐变小的细胞,称为卵裂球,而不改变胚胎的整体大小(图(图1)。1). 与其他类型的生物体一样,哺乳动物合子中的蛋白质合成最初依赖于母体负载的mRNA的沉积(1). 合子基因组编码的mRNA转录开始于最初的几次分裂,这种从母体转录到合子转录的转变被称为合子基因组激活(ZGA)。ZGA在小鼠体内发生得很早:在单细胞期结束时,合子转录发生了一次初始突变,然后在双细胞期发生了第二次更大的突变(2,). 第二次爆发伴随着母体转录物的降解(4,5). 在人类中,ZGA发生的时间比老鼠晚,在四到八世纪的阶段(6). 这是人类和小鼠植入前发育中事件发生时间可能不同的几个迹象中的第一个。虽然母体mRNAs可能被降解,但在卵子发生期间从这些转录物合成的蛋白质可以持续到以后的发育。在小鼠研究中,这种“母体”蛋白的存在可能会混淆植入前发育期间的基因功能分析,通常需要产生母体和合子功能丧失突变体(7,8). 鉴于小鼠和人类之间ZGA的时间差异,母体和合子转录物在小鼠和人类胚胎中的相对作用可能有所不同。

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小鼠和人类植入前发育的阶段。

(A类)在小鼠体内,受精卵经历了三轮卵裂,产生了一个八个细胞的胚胎,然后进行致密化。从八世纪开始,细胞分裂产生两种细胞群,分别位于胚胎内部和外部。囊胚腔从32细胞期开始在胚胎内部形成,并随着胚胎的生长和成熟而继续扩大,直至囊胚晚期。Cdx2从32细胞期开始,在外部和未来的TE细胞中上调,而10月4日在囊胚早期,ICM的表达受到限制。在囊胚晚期,当继续表达10月4日无所不在,ICM包含纳克-阳性EPI细胞和一群加塔6-阳性PE细胞。(B类)早期人类胚胎的发育是相似的,尽管致密化发生在16细胞阶段,并且细胞的表达模式相互排斥CDX2型华侨城4号直到囊胚晚期才建立。的表达模式NANOG公司GATA6型人类植入前胚胎的特征尚未确定。

压实和极化。

早期的卵裂分裂产生了一个八细胞胚胎,随后细胞间的粘附增加,称为致密化,导致所有细胞的形态更加扁平(图(图1)。1). 这种压实过程对于后来的形态发生事件和三个胚胎谱系的适当分离至关重要。在小鼠中,致密化与粘附物的形成有关,随后与细胞之间的紧密连接有关。E-cadherin是粘附连接的主要成分,在八细胞期局限于细胞与细胞接触的区域(9)以及通过清除钙来破坏E-cadherin介导的细胞粘附2+离子或向胚胎培养基中添加E-cadherin特异性抗体,抑制压实(1012). E-钙粘蛋白-敲除胚胎在八细胞期正常压实,因为存在从卵子遗传的E-钙粘蛋白,但它们无法保持适当的细胞粘附到胚泡期(7,8). 相反,缺乏E-cadherin母体供应的胚胎在八细胞期不能致密化,但它们可以通过父系等位基因的合子表达挽救,并在16细胞期致密化(13).

目前尚不清楚压实过程是如何启动的。E-cadherin或其胞内结合伙伴α-和β-连环蛋白表达水平的简单增加不能解释这种变化,因为从受精开始,所有这些都存在于小鼠胚胎中(9,14). 事实上,即使mRNA合成从早期的四细胞期开始受阻,也会发生致密化(15)实际上是通过在蛋白质合成抑制剂存在下培养四细胞期胚胎而过早诱导的(16). 这表明,在胚胎达到早期四细胞阶段时,压实所需的所有成分都已合成。值得注意的是,用激活PKC的小分子培养胚胎也会导致过早致密化(17,18). 这表明翻译后机制在诱导致密化中起着重要作用,可能是通过保持E-cadherin复合体处于非活性状态,尽管这可能是如何发生的尚待阐明。为了支持这一理论,E-cadherin和β-catenin在压实时都被磷酸化(19,20). Rho家族GTPases也在这一过程中发挥作用(21,22). 在培养细胞中,含有IQ基序的GTPase激活蛋白1(IQGAP1)可以通过阻止α-连环蛋白与β-连环素和E-cadherin的结合,破坏钙粘蛋白/连环蛋白复合物,直到其被Rho家族GTPases Rac1和Cdc42结合并失活(23). 紧实前后IQGAP1和Rac1蛋白亚细胞分布的变化表明,植入前小鼠胚胎中也存在类似的关系(22). 这导致了这样一种假设,即IQGAP1可以防止过早压实,直到激活Rac1和Cdc42的八世纪阶段,尽管这还没有经过实验测试(24).

在致密化之前,胚泡没有显示出任何细胞内极性的迹象,但在这一阶段,随着细胞粘附力的增加,所有细胞沿着垂直于细胞接触的轴迅速极化,使得外向(顶端)区域与内向(基底外侧)区域不同(图(图2)。2). 细胞质重组:细胞核基外侧移动(25)而先前随机分布的内体则位于顶端(26). 肌动蛋白像大多数微管一样在顶部聚集,尽管少数更稳定的乙酰化微管在基底外侧局限(27,28). 压实前均匀分布在细胞表面的微绒毛在顶端堆积,并几乎完全被基底侧消除(29). 与其他极化细胞类型一样,膜蛋白ezrin(30)、极性蛋白Par3和Par6(31,32)和非典型PKC(aPKC)(33)所有这些都定位于顶端结构域,而极性蛋白Par1和致死性巨幼虫同源物(Lgl)则在基外侧积累(32).

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小鼠植入前胚胎的极性。

(A类)在八世纪阶段,所有卵裂球沿细胞接触轴极化,形成外向、顶端结构域和向内的基底外侧结构域。(B类)当胚胎从8个细胞生长到16个细胞时,平行于内外轴分裂的卵裂球产生两个外侧极性细胞。垂直于内外轴分裂的胚泡产生一个外极子细胞和一个内非极子细胞。这会产生两种细胞群:极性细胞外群和非极性细胞内群。当胚胎从16个细胞生长到32个细胞时,这两种类型的细胞分裂也会发生。

目前尚不清楚极化是如何在八世纪阶段从头开始的。基于致密化和极化之间紧密的时间联系,一种假设是细胞接触对建立顶端和基底外侧结构域具有某种重要意义。多项研究表明,细胞间的相互作用与极性方向的确定有关,因为极点往往形成在尽可能远离细胞接触位置的位置(34,35). 然而,在与细胞接触隔离或不能紧密结合的卵裂球中可能发生极化,尽管其频率比平时低(36,37). 因此,细胞接触似乎是极性形成的部分原因,但还涉及其他机制,其中之一依赖于核-微管-皮层的相互作用(32,36). 无论极性是如何建立的,它很可能像在其他系统中一样,通过包含各种PAR蛋白、aPKC和Lgl的顶端和基底蛋白复合物的相互拮抗而维持(38).

对称细胞分裂与非对称细胞分裂直至32细胞期。

一旦八个细胞的胚胎压实并极化,它将经历两轮进一步的分裂,从八个细胞生长到16个,从16个细胞生长至32个。在这些分裂过程中,极化状态的遗传受到卵裂球卵裂平面方向的影响(图(图2)。2). 如果一个细胞以垂直于其极性轴(即平行于其内外轴)的角度进行有丝分裂,则其两个子细胞都将是极性的,并将保持在胚胎的外部。然而,细胞也可以平行于其极性轴分裂,产生一个极化的外部子细胞和一个位于胚胎内部的非极性细胞(39,40). 通过这种方式,先前由均匀细胞群组成的植入前胚胎现在产生了两组独立的细胞:无极细胞内的细胞和极性细胞外的细胞。细胞极性和细胞位置在定义这两个种群时都很重要,因为通过实验操纵胚胎中细胞的位置可以改变其极性(4143)而改变电池的极性反过来又会影响其位置(31). 从32细胞期开始,这两个细胞群体具有不同的发育命运:胚胎外部的细胞有助于TE谱系,而内部细胞则有助于内细胞团(ICM),这组细胞进一步分化为EPI和PE谱系(见下文)。

除小鼠外,哺乳动物物种的致密化、极化和不对称分裂过程尚未得到很好的研究。对体外发育的人类植入前胚胎的研究表明,它们的发育在大体形态上与小鼠胚胎的发育非常相似。一个值得注意的例外是观察到,在人类胚胎中,致密化通常发生在比小鼠晚的16细胞阶段(4446)尽管也有报道称,在一些胚胎的4至8世纪阶段,它开始得更早(47). 目前尚不清楚压实的不同时间如何影响人类胚胎中的极化和不对称细胞分裂。

囊胚形成。

从32细胞阶段开始,胚胎的外部细胞完全融入TE谱系(48,49)一个被称为胚泡腔的充满液体的腔开始形成(图(图1)。1). 囊胚腔的存在对ICM的正常发育至关重要(49). 在囊胚腔形成期间,由于钠的作用,水可能通过渗透梯度进入胚胎+/K(K)+产生钠积累的ATP酶+位于TE的基底外侧(50). 水通道蛋白也可促进水分运动,水通道蛋白存在于TE中,在32细胞期起作用(51). 一旦开始形成,囊胚腔的维持取决于TE的上皮特性。压实后一小时内,继续压实一整天,紧密连接部件,如闭塞物(52)、闭塞带1(ZO-1)和ZO-2(53,54),和扣带蛋白(55,56)开始在外部细胞内组装,直到32细胞期完全形成功能性紧密连接(52,54). 这些紧密连接形成密封,防止漏水。随着E3.5囊胚腔的形成,小鼠胚胎现在被视为胚泡。它会继续成熟24小时,并准备在E4.5时植入子宫壁。尽管尚未进行广泛研究,但人类胚胎中的囊胚腔形成似乎发生在大约E4.5(44).

早期胚胎:全能且发育灵活

植入前哺乳动物发育的一个独特特征是具有高度调节性。早期哺乳动物的胚胎在前三轮卵裂期间具有很强的适应性,能够承受卵裂球的移除、添加和重排等变化(5759). 此外,植入前胚胎能够在人工培养基中发育数天,在移植回子宫后不会出现明显问题。这种显著的灵活性已用于ART的开发。胚胎培养对IVF过程至关重要,因为受精卵通常在受精后培养三天,以选择形态最正常的胚胎用于子宫移植(60). 在某些情况下,为了提高胚胎成功植入的机会,胚胎在培养基中保存长达五天(61). 对培养时间较长的胚胎的检查为形态学正常特征评分提供了更多的机会(62). 然而,最近的研究表明,胚胎培养可能会破坏某些基因的表观遗传控制机制,从而导致某些基因的异常表达。这可能与ART导致出生的儿童中与表观遗传缺陷相关的综合征频率增加有关,如过度生长障碍Beckwith-Wiedmann综合征(63,64)尽管这种情况在这些人中的发生率仍然极低(65,66). 显然,仍有必要改善胚胎培养条件,并开发更好的方法来鉴定无需扩大培养的高质量胚胎。

PGD技术,即在子宫移植前对胚胎进行遗传条件筛查,也依赖于发育灵活性,因为它需要从分裂期胚胎或胚泡中取出卵裂球,以用于遗传分析(67). 剩下的活检胚胎被转移到子宫,在大多数情况下发育正常。虽然一些四细胞期胚胎的胚泡球在发育特性上可能有所不同,但这一阶段的所有细胞仍然能够为后期胚胎的所有组织做出贡献(68)因此,PGD期间一个卵裂球的丢失可以由胚胎的剩余细胞补偿,而不会造成永久性损伤。

尽管单个卵裂球可能表现出较小的发育偏差,但仍然清楚的是,分裂期胚胎的细胞具有发育可塑性,并且受到细胞间相互作用的高度影响。然而,随着囊胚的三个谱系(首先是TE,然后是EPI和PE)的建立,这种早期的灵活性大大减弱。正确形成这三个谱系对胚胎的生存和正常发育至关重要。例如,功能性TE的存在对于胚胎和子宫在着床期间发生的复杂分子相互作用至关重要(69). 虽然影响大约1%试图怀孕的夫妇的反复自然流产的原因基本上仍不清楚,但早期(围植入期)妊娠失败往往可归因于胚胎本身的问题,而不是子宫壁的问题(70). 这表明更好地了解TE的形成方式将有助于我们了解植入失败和早孕损失的一些潜在原因。

第一个血统决定:TE和ICM的分离

植入前胚胎中指定的第一个细胞谱系是TE。在小鼠中,细胞在32细胞期(E3.5左右)完全归属于TE或ICM谱系。植入前发育领域的一个主要问题是如何做出这种谱系决定。基于TE和ICM细胞在小鼠胚胎中的位置以及改变细胞位置可以改变其命运的发现,早期研究人员开发了内外侧模型(59). 根据这个模型,胚胎内外的细胞暴露于不同数量的细胞接触和不同的微环境中,这些差异转化为细胞命运(图(图3)。). 后来,卵裂球极化的发现,以及卵裂球不对称分裂产生极性和非极性子细胞的能力,导致了细胞极性模型的建立(39). 根据这个模型,极性的继承转化为TE命运(图(图3),)尽管极性和细胞命运之间的确切分子联系尚不清楚。一种可能性是,在有丝分裂过程中,一些细胞命运决定因素可能被特异性地分离到极化细胞中或从极化细胞中分离出来。其中一个决定因素可能是TE-特异性转录因子尾型同源盒2(Cdx2)(见下文),如下所示Cdx2mRNA在八细胞期似乎定位于卵裂球的顶端区域(71). 重要的是要确定这种顶端定位实际上是否会导致优先继承Cdx2信使核糖核酸在八个细胞阶段后转移到外部细胞,以及这种遗传是否在蛋白质水平上得到反映,然后才能得出关于Cdx2mRNA定位和TE规范。无论TE规范是由细胞位置、细胞极性还是两者共同作用的结果,下游转录因子都是将这些细胞水平上的差异转化为细胞命运差异所必需的。研究这些转录因子可以帮助我们深入了解其上游的细胞机制。

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小鼠胚胎中TE规格的模型。

(A类)根据内外侧模型,胚胎内外的细胞接受不同数量的细胞接触,这转化为转录因子表达的差异。(B类)根据细胞极性模型,顶端结构域的存在或缺失被转化为转录因子表达的差异。(C类)八细胞期后,活性Lats1/2激酶在细胞内磷酸化Yap,阻止其进入细胞核。没有Yap,Tead4不能诱导Cdx2在外部细胞中,Lat1和Lat2处于非活性状态,Yap可以自由移动到细胞核中,激活Cdx2胚胎内部细胞间接触增加可能通过Hippo信号通路激活Lat1和Lat2,而顶端结构域的某些成分可能抑制Hippo的信号传导以及外部细胞中的Lat1与Lat2活性。

转录因子控制TE/ICM分离。

TE和ICM谱系分离受少数转录因子控制。具体来说,TE发育需要Cdx2,而多能性标记八聚体3/4(Oct4)、Nanog和含有基因2的SRY-box(Sox2)参与了ICM命运的确定。在鼠标中,Cdx2从八细胞期开始,在所有胚泡中都有不同程度的表达,但在胚泡形成之前,它仅限于外部的、未来的TE细胞(图(图1)1) (72,73). 八细胞期单个卵裂球之间Cdx2水平的这种差异可能是导致这一阶段卵裂分裂的顺序和方向不同的结果(71). 胚胎缺失Cdx2最初确实会形成囊胚,但这些胚胎中的TE失去其上皮完整性,无法进一步分化,导致植入时死亡(74).10月4日,纳克、和Sox2系统表达模式与Cdx2-它们最初也无处不在,但在胚泡形成后局限于内部未来的ICM细胞(7578).Cdx2之前受到空间限制10月4日,纳克、和Sox2系统这表明可能需要下调外部细胞中的这三种转录因子。为了支持这一观点,10月4日纳克未能被适当限制Cdx2–/–胚胎,在胚泡期外周细胞中表达(74). 在它们建立后,这些表达模式被后来的相互抑制所加强Cdx210月4日,Nanog和Sox2(79,80),伴随着10月4日Cdx2(81,82).

因此,TE和ICM血统的建立始于对Cdx2在细胞外,随后它下调10月4日,纳克、和Sox2系统在这些相同的细胞中。是什么导致了Cdx2? 答案似乎在于最近发现的与TE规范有关的另外两个转录因子,即TEA结构域家族成员4(Tead4)(83,84)和Yes相关蛋白1(Yap1;本文称为Yap)(85).Tead4公司–/–胚胎表现出比Cdx2–/–胚胎不能形成任何囊胚腔,并且不表达Cdx2。这表明Tead4公司作用于的上游Cdx2在TE规范中。然而,Tead4不能单独行动;它需要作为转录激活物的Yap的额外存在来诱导Cdx2表达式(85). 尽管Tead4蛋白在胚胎的所有细胞中分布相似(83),Yap仅定位于外细胞的细胞核;它被磷酸化,从八世纪后开始被排除在细胞内的细胞核之外(85). 因此,在外部细胞中,Yap和Tead4可以协同激活Cdx2表达,但在细胞核中不存在Yap的内部细胞中,Tead4是不活跃的Cdx2表达式被静默。

河马信号和TE规范的新模型。

现在的问题是,是什么导致了Yap沿着胚胎内外轴的差异定位?Yap是哺乳动物Hippo信号级联的一个已知下游靶点,其磷酸化状态和亚细胞定位由Hippo通路成员大肿瘤抑制同源物1(Lats1)和Lats2调节,这两种密切相关的丝氨酸-三氢嘌呤激酶具有冗余作用(86,87). 最近的一项研究表明,活化的Lats1/2可以磷酸化NIH-3T3细胞中的Yap,阻止其进入细胞核(87). Lats1/2和Yap之间的这种关系在植入前小鼠胚胎中似乎是保守的,因为这两种基因的小鼠胚胎都发生了突变车床1车床2未能将Yap限制在内部细胞的细胞质内(85). 正如预期的那样车床1–/–车床2–/–胚胎异位表达Cdx2(85).

河马信号可以控制Cdx2该表达式对我们理解TE规范具有令人兴奋的含义。值得注意的是,细胞接触可导致培养细胞中的Hippo途径激活(85,87,88). 植入前胚胎也可能发生同样的情况,其中内部细胞之间增加的细胞间接触可以激活Hippo信号,导致Yap磷酸化和胚胎内部的核排斥。事实上,当E-钙粘蛋白特异性抗体被用于破坏培养胚胎中的细胞粘附时,Yap并没有被排除在内部细胞的细胞核之外(85)这表明需要细胞间的接触来调节其定位。这个假设与TE规范的原始内外模型一致,其中细胞位置和细胞间接触是细胞命运背后的驱动力。

值得注意的是,小区位置和Yap定位之间的关系并不排除极化在TE规范中的作用。极化状态可能在某种程度上抑制了河马信号级联。为了支持这一点,从八细胞胚胎中分离出来并去极化的单个卵裂球并不显示核定位的Yap,如果细胞接触是调节Hippo信号的唯一因素,情况就会如此(85). 如果极化也参与其中,则可以解释这一点,极化通过一条平行的途径沉默外部细胞中的河马信号。因此,最近对Hippo信号和Yap定位的研究产生了一种新的TE规范模型,其中需要细胞位置和细胞极化来指导细胞命运(图(图3)。). 这种类型的模型将允许胚胎利用内外细胞之间的两个不同点,即极性和位置,从而在TE和ICM谱系之间形成清晰明确的分离。

第二个谱系决定:PE和EPI的分离

在指定TE后,ICM分为两个谱系,PE和EPI。与第一个决定相比,对第二个血统决定的了解要少得多。PE沿着面向胚泡腔的EPI表面形成单层细胞,而EPI仍然是PE和TE之间的大量细胞(图(图1)。1). 在小鼠中,通过E4.5,这两组细胞在形态上是可以区分的,并且每组细胞都决定了它们的命运(8991). 早期的PE/EPI规范模型在概念上与TE规范的内外模型相似,并认为这种谱系决定是基于细胞位置的。由于细胞接触或微环境的差异,ICM外部的细胞将呈现PE命运,而ICM内部的细胞将成为EPI。该模型基于以下观察结果:在分离的小鼠ICM和小鼠胚胎体(类似EPI细胞的ES细胞的聚集物)中,PE细胞作为外层发育(9294). 该理论的一个重要假设是,在EPI/PE分离之前,ICM是一个均匀的双电位细胞群。也就是说,任何细胞都应该同样能够为PE或EPI做出贡献,其最终命运应该取决于它在ICM中的位置。然而,最近的数据表明,这一假设并不完全正确。使用E3.5鼠标ICM进行的血统追踪表明,这个阶段的大多数细胞都有助于PE或EPI(95)尽管一些细胞仍然保留对两个谱系都有贡献的能力(95,96). 此外,细胞在ICM中的位置并不总是与其后期的发育命运相关(95). 如果细胞位置不能调节PE/EPI谱系分离,那又是什么呢?为了考虑可能的替代模型,我们有必要再次研究这个过程中涉及的转录因子。

PE/EPI规范的转录因子控制。

两种转录因子,紧密相关的Gata家族成员Gata4和Gata6,已被证明对小鼠PE谱系的规范化很重要。在小鼠胚胎中,任何一种的突变Gata4型Gata6公司,PE确实形成,但后来的PE衍生物,内脏内胚层,却没有形成(97,98). 这些胚胎形成PE的能力可能是由于Gata4和Gata6之间的某些功能冗余或母体Gata蛋白的持久性。在由任何一种材料制成的胚状体中Gata4公司–/–Gata6公司–/–ES细胞、PE-like细胞无法在外表面形成(98,99). 最后,当ICM的细胞被注入一种显性负性形式的Gata6时,与野生型情况相比,它们对PE的贡献要小得多(96). 相反,任何一种基因的过表达都足以将ES细胞转化为PE细胞(100)和过度表达Gata6公司使ICM细胞在以下情况下对PE做出更大贡献Wnt9A(重量9A)在相同的细胞中也过度表达(96). 在EPI谱系中,一个重要的转录因子是多能促进蛋白Nanog。最初认为纳克–/–小鼠胚胎缺乏EPI,但能够形成PE(77). 最近的研究表明,这些突变体实际上缺乏EPI和PE,但观察到它们含有少量Gata4阳性细胞,这导致了这样一种假设,即PE最初确实形成,但如果没有相邻EPI的支持,PE就无法生存,而相邻EPI根本就不会形成(101). 因此,看起来Gata4公司Gata6公司要求促进PE命运并抑制EPI命运,而相反纳克.

在E3.5的小鼠ICM中,大约对应于32细胞期Gata6公司纳克表达是互斥的,因此大多数细胞表达Gata6公司纳克但很少表达两者(图(图4)4) (95,102). 这与大多数细胞在这个阶段致力于一个或另一个谱系的想法是一致的。值得注意的是,这两个转录因子以随机的“盐和胡椒”模式表达,似乎与细胞位置无关,这表明细胞可能倾向于EPI或PE命运,然后将其分类到适当的位置。

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小鼠胚胎EPI/PE分离模型。

(A类)在位置依赖模型中,E3.5处的小鼠ICM由均匀的双电位细胞群组成,并且那些位于ICM外表面的细胞由于某种形式的位置信息而变成PE。(B类)在Fgf/MAPK依赖模型中,ICM细胞最初是双电位的,但Fgf信号的差异导致它们成为纳克-或Gata6公司-E3.5为阳性。这些细胞在ICM中随机分布,细胞分选与凋亡相结合导致E4.5形成有组织的PE和EPI层。

最近的工作为我们理解PE/EPI分离提供了更多细节。首先,在小鼠中E3.5之前,ICM的许多细胞似乎同时表达纳克Gata6公司随着ICM的成熟,逐渐将其表达限制在一种或另一种转录因子上(102). 转录因子表达的这种变化可能反映了ICM细胞对PE或EPI命运的承诺。表达第二个PE标记Pdgfrα的细胞的时间推移成像表明,在囊胚早期开始于ICM内部的PE细胞经历了大量运动,到囊胚晚期结束于PE细胞的外单层(102). 此外,在囊胚晚期未正确分类到PE单层的Pdgfrα表达细胞发生凋亡(102). 另一组研究表明,除了将内部细胞移动到外部位置外,细胞还可以从ICM的外表面移动到内部位置(96). 这种细胞分类可能依赖于PE和EPI细胞粘附特性的差异,尽管相关分子尚未确定。最后,虽然预先提交细胞的分类可能在PE和EPI的分离中起主要作用,但ICM发育的计算机模型表明,正如最初假设的那样,位置诱导也可能在这一过程中起作用(96).

Fgf信号传导和PE和EPI分离的新模型。

由于Fgf家族成员突变而缺乏Fgf信号传导能力的胚胎Fgf4型受体酪氨酸激酶(RTK)第二层或RTK适配器蛋白组2不形成PE(103106). 此外,组2–/–囊胚不表达Gata6公司(95). 总之,这些数据表明了一种模型,其中需要Fgf信号来激活PE细胞的命运。但考虑到所有ICM细胞最初都表达EPI和PE标记物,为什么有些细胞对Fgf信号产生反应并成为PE,而另一些细胞则没有?一种可能性是,正如之前所建议的那样,由8细胞至16细胞或16细胞至32细胞卵裂轮产生的ICM细胞在其Fgf反应性上存在差异(107). 这两种细胞群在至少一种已知特性上存在差异,即细胞角蛋白丝的拥有(108),因此可能在其他方面有所不同。仔细追踪谱系,以确定每一轮卵裂产生的细胞是否更有可能参与PE或EPI,这将有助于解决这个假设。另一种可能性是,ICM细胞对Fgf的反应水平波动的一系列更随机的事件可能解释了ICM的异质性(102). Fgf信号转导和转录因子表达的微小初始差异可能会被相互拮抗的Gata6公司纳克(109,110)导致PE和EPI前体的最终盐和胡椒分布。

人胚泡谱系发育与干细胞衍生

由于早期人类胚胎实验的可用性和伦理问题受到限制,人们对早期人类胚胎谱系发育的机制方面知之甚少。然而,据推测,导致谱系分离的切割、压实和上皮形成过程在小鼠和人类之间是相似的,尽管这些事件的发生时间可能不同。人类胚胎中关键谱系特异性基因的详细表达研究仍然有限,尽管从mRNA表达研究中可以清楚地看出,大多数主要谱系调控因子,包括华侨城4号,SOX2标准,NANOG公司、和CDX2型存在于人类胚泡中(111,112). 然而,只有对蛋白质定位进行详细的时间和空间分析,才能真正为谱系限制的分子事件的保守性提供线索。研究表明,OCT4蛋白在整个人类胚胎中都有表达,甚至超过了胚泡形成的起始阶段(113),并且在受精后六天之前不限于ICM(114). 此外,CDX2型直到E5.0才开始表达,此时胚泡的外上皮已经形成(114). 这与CDX2在抑制华侨城4号在TE中表达,但也表明人类胚泡形成起始的谱系限制时间可能晚于小鼠。这与人类合子基因转录较晚发生有关吗?假设的上游调节器(如心尖极性和Hippo信号)的作用有何含义?所有这些问题仍然没有答案。值得注意的是CDX2型表达似乎也仅限于囊胚期猪和牛胚胎的外细胞华侨城4号在看起来完全扩张的猪胚泡中,表达并不局限于ICM(115). 这表明,与小鼠相比,其他哺乳动物物种中的TE/ICM分离也可能发生得较晚。

关于人类胚胎中EPI与PE分离的事件,人们知之甚少。一些关于NANOG在人类胚泡中定位于ICM的报告顺便提到,并非所有细胞都表达此标记(113,116). 这种表达是PE标记表达的补充吗?EPI和PE标记物限制的确切时间是什么?FGF信号在建立血统中重要吗?这些问题很重要,因为了解这种谱系限制的时间和途径与从人类囊胚中衍生ES细胞有关。对小鼠的研究表明,ICM内的EPI祖细胞可产生ES细胞,阻断Fgf信号可增强EPI的形成并促进ES的衍生(117). Eggan和他的同事们已经证明,在受精六天后获得人类ES细胞的效率最高(114),恰逢华侨城4号仅限于ICM,大概是在血统限制开始时。这也是NANOG表达EPI细胞比例最高的阶段吗?

奇怪的是,尽管人类ES细胞与EPI细胞具有OCT4和NANOG的表达以及多能性,但它们的所有特性都与小鼠ES细胞不同。有趣的是,人类ES细胞需要FGF信号来维持培养中的自我更新,而小鼠胚胎中的FGF信号可以促进PE分化,并且在小鼠ES细胞中可以促进生殖层分化(118). 这一根本性差异表明,人类ES细胞与植入后早期小鼠胚胎的EPI细胞更为相似(119121). 然而,目前尚不清楚为什么孤立的人类ICMs会在培养中沿着这条途径发展。对人类植入前发育过程中信号通路和转录因子网络之间的相互作用进行更详细的研究将有助于解决这个问题。一项研究检测了生长因子IGF-1、白血病抑制因子(LIF)和肝素结合EGF-样生长因子治疗人类植入前胚胎后几种关键转录因子的诱导(116)但在这一领域还需要进行更多的研究,以更好地了解人类ES细胞的谱系状态,提高其衍生效率,并与新衍生的诱导多能干细胞进行合理比较。它还将为培养人类胚胎用于抗逆转录病毒治疗提供更好的方法。不同司法管辖区的道德限制可能会限制一些可使用的方法,但现在可以有力地证明理解小鼠和人类胚胎之间的相似性和差异的重要性。

致谢

我们感谢Peter Rugg-Gunn对手稿的批判性阅读。罗桑特实验室的工作得到了加拿大卫生研究院的支持。

脚注

利益冲突:提交人声明,不存在利益冲突。

本文引文:临床投资杂志。2010;120(4):995–1003. doi:10.1172/JCI41229。

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文章来自临床研究杂志由以下人员提供美国临床研究学会