跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
内分泌学。2009年12月;150(12): 5539–5548.
2009年10月16日在线发布。 数字对象标识:2009年10月21日至0640日
预防性维修识别码:项目经理2795716
PMID:19837873

雄激素通过Caspase-3依赖性激活蛋白激酶Cδ诱导多巴胺能神经毒性

摘要

老年男性帕金森病(PD)的发病率高于女性。PD是一种与黑质纹状体通路中多巴胺神经元丢失相关的神经退行性疾病。本研究检测了多巴胺能细胞系(N27细胞)中雄激素的神经毒性作用以及雄激素激活的下游信号通路。用睾酮和二氢睾酮诱导的线粒体功能障碍、蛋白激酶C(PKC)-δ断裂和多巴胺能神经元细胞凋亡来治疗N27细胞。抑制caspase-3可阻止PKCδ从全长元件裂解为催化片段,并阻止N27细胞凋亡,这表明雄激素诱导的凋亡是通过caspase-3-依赖性激活PKCδ介导的。雄激素诱导的凋亡可能是多巴胺神经元特有的,GnRH神经元中缺乏睾酮诱导的凋亡证明了这一点。这些结果支持睾酮对多巴胺能神经元的神经毒性作用,并可能提供对PD中发现的性别偏见的见解。

雄激素通过胱天蛋白酶-3依赖性激活PKCδ诱导多巴胺能细胞系凋亡。

最近的研究报告了某些神经退行性疾病患病率的性别差异(1,2)例如帕金森氏病(PD)。老年男性帕金森病的发病率高于老年女性(,4,5,6,7). PD的临床特征包括运动障碍,如震颤僵硬和运动迟缓(8,9,10,11). PD的主要病理特征是中脑黑质致密部多巴胺神经元的丢失(8,9,11,12,13).

氧化应激参与介导PD中多巴胺神经元的这种丢失(6,7,11,14,15). 此外,PD的动物模型表明,氧化应激导致凋亡途径的启动(16,17,18,19). 两种PD动物模型都发现中脑多巴胺受体缺失(20)和用雄激素治疗的动物(21). 因此,睾酮可能在PD的进展中发挥作用。以前的报道表明,睾酮可以增加细胞凋亡(22,23,24). 然而,睾酮在帕金森病多巴胺神经元死亡中的作用尚未得到研究。

细胞凋亡是一种受控制的细胞死亡(25,26)以细胞收缩、DNA断裂和染色质浓缩为特征(27,28,29). 细胞凋亡与半胱氨酸蛋白酶caspase家族的细胞激活有关(25,26). Caspase-3介导细胞凋亡周期的执行阶段(28,30,31,32,33). caspase-3激活后,蛋白激酶C(PKC)-δ被蛋白质水解裂解,导致其在胞浆内激活,随后细胞死亡(32,34,35). 一些研究报告称,PKCδ对caspase-3的激活产生正反馈,从而诱导进一步的细胞凋亡(36,37,38). PKCδ在PD动物模型中也被证明是细胞凋亡的介体(36,39). 一些研究报告称PKCδ对氧化应激和睾酮都有反应(37,38,40,41). 据报道,多巴胺能N27细胞系中存在通过激活caspase-3对过氧化氢等氧化应激反应而增加的凋亡(7). LNCaP前列腺细胞中睾酮水平与PKCδ水平呈正相关(41). 睾酮直接调节PKCδ表达的可能性进一步得到了睾酮激素反应元件的支持,该元件位于PKCδ启动子区转录起始位点上游4.7 kb(41).

值得注意的是,尚未在多巴胺能细胞系中研究雄激素及其对氧化应激的影响。因此,本研究的目的是研究雄激素在PD中的作用,以N27细胞为模型,测试这些激素对多巴胺神经元的神经毒性作用。此外,为了确定雄激素诱导神经毒性的特异性,纳入了非多巴胺能细胞系GT1-7。

材料和方法

试剂

RPMI 1640培养基购自Life Technologies,Inc.(马里兰州盖瑟斯堡),胎牛血清购自American Type Culture Collection(弗吉尼亚州马纳萨斯)。丙酸睾酮、二氢睾酮(DHT)、雌二醇和氟他胺来自西格玛(密苏里州圣路易斯)。Caspase-3/CPP32抑制剂(Z-DEVD-FMK)来自BioVision Inc.(加州山景城)。Vybrant凋亡检测试剂盒来自Invitrogen(Eugene,OR),荧光硫醇检测试剂盒来源于Cell Technology(加州山景城),QuantiChrom过氧化物检测试剂盒则来自Bioassay Systems(加州海沃德)。N个-乙酰半胱氨酸(NAC;A9165)来自Sigma。兔多克隆PKCδ(sc-213)、兔多克隆雄激素受体(sc-815;C19)、辣根过氧化物酶偶联抗鼠IgG二级抗体和抗兔IgG二级抗体来自圣克鲁斯生物技术公司(加州圣克鲁斯)。单克隆小鼠β-肌动蛋白(A5441)抗体来自Sigma-Aldrich。多克隆兔过氧化物酶原-3抗血清(ab16830)来自Abcam Inc.(马萨诸塞州剑桥)。

细胞培养

本研究中使用了两种细胞系:N27和GT1-7。GT1-7(42,43,44,45)和N27细胞系(图1A1A))表达雄激素受体。N27细胞系(科罗拉多州丹佛市科罗拉多大学健康科学中心Curt Freed博士捐赠)由来自12天大鼠胎儿中脑组织的酪氨酸羟化酶永生化细胞组成,这些细胞产生多巴胺及其代谢物。这些细胞表达多巴胺转运体、PKC亚型和肾上腺素受体(46). 然而,它们不表达多巴胺D1受体(46)与成熟的黑质多巴胺神经元相一致(47,48). 此外,在单侧6-羟基多巴胺损伤大鼠中,移植的N27细胞已被证明能显著降低甲基苯丙胺诱导的旋转速率(46). 这种细胞系以前曾被用作研究神经毒性的模型(36,49,50). 细胞保存在添加10%胎牛血清、青霉素(100 U/ml)和链霉素(100μg/ml)的RPMI 1640培养基中;在37℃、5%CO中生长2孵化器;每周传代一次。所有实验在第12代和第19代之间进行,在RPMI 1640无血清培养基中以大约80%的融合度进行,以避免混淆变量(血清中的激素含量)。由于培养基富含葡萄糖、氨基酸和必要的营养素,血清的去除不会导致禁食或剥夺状态(51). 使用碘化丙啶荧光(一种细胞死亡的测量方法),在无血清培养基中暴露1小时和48小时之间,死亡细胞的百分比没有发现显著差异(分别为0.163±0.083和0.121±0.113%)。这些细胞在无血清环境中继续增殖(坎宁安,R.L.,未发表的观察结果)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zee0120950910001.jpg

雄激素通过经典雄激素受体诱导N27细胞凋亡。N27细胞表达雄激素受体。睾丸匀浆用作阳性对照(A)。使用Hoechst 33342检测细胞凋亡。N27细胞用溶媒对照(n=5)、睾酮(100n)处理,n=4),氟他胺(500 n,n=3),氟他胺+睾酮(n=3,n=4)或T-BSA(100 n; n=3)。用荧光显微镜观察细胞核染色。凋亡细胞通过存在亮蓝色核(B) 。从每个独立实验的每个室10个随机场中对凋亡细胞核进行量化。数据表示为凋亡细胞的平均百分比±扫描电镜(C) ●●●●。与对照组相比,睾酮和DHT均显著增加N27细胞的凋亡,P(P)< 0.05. T-BSA不增加细胞凋亡。雄激素受体拮抗剂氟他胺抑制睾酮诱导的细胞凋亡。方差分析之后是学生的PLSD事后(post-hoc)测试。比例尺, 200 μ.箭头表示凋亡细胞。

下丘脑GnRH GT1-7细胞系是Lu Xin-Yun博士(德克萨斯州圣安东尼奥市德克萨斯大学健康科学中心)赠送的礼物。该细胞系保存在补充有10%胎牛血清、青霉素(100 U/ml)和链霉素(100μg/ml)的DMEM/F12培养基中,在37℃、5%的CO中生长2培养箱和每周传代培养。实验在无血清培养基中进行。

治疗

N27细胞暴露于生理相关浓度的雄激素(10或100 n)代表人类男性正常范围的低端和高端(52,53,54,55,56). 在雄激素暴露48小时后分析细胞。使用的雄激素为芳香化雄激素、丙酸睾酮、非芳香化雄酮、DHT和非膜渗透雄激素,即与BSA结合的睾酮(T-BSA)。雄激素可以单独使用,也可以与雄激素受体拮抗剂氟他胺(500 n)联合使用),caspase-3/CPP32抑制剂Z-DEVD-FMK(4μ)或抗氧化剂NAC(1 m). 类固醇激素、睾酮和二氢睾酮以及氟他胺均来自乙醇制备的储备溶液(乙醇的最终浓度<0.01%)。将T-BSA和Z-DEVD-FMK溶解在培养基中。在这项研究中,我们主要使用睾酮,因为这种激素是在人类男性血清中测量的最具临床相关性的雄激素(57). 此外,衰老已被证明会影响男性的睾酮水平(58),不会显著影响DHT水平(59,60). 下丘脑细胞系GT1-7采用相同的治疗模式,以确定雄激素在非多巴胺能神经元中是否具有类似的作用。

细胞凋亡测定

根据制造商的说明,使用5号Vybrant凋亡检测试剂盒(Invitrogen)定量细胞凋亡。简单地说,将等量的Hoechst 33342溶液和碘化丙啶(1:1000)添加到四室载玻片中培养的细胞中,并将混合物在冰上培养30分钟。在荧光显微镜下,使用4′,6′-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI)和得克萨斯红染料滤光片,用×20物镜测量荧光。蓝色荧光染料Hoechst 33342比非凋亡细胞核对凋亡细胞核的染色质染色更生动,而红色荧光染料碘化丙啶仅对失去质膜完整性的死亡细胞的细胞核具有渗透性。在至少三个独立的实验中,从每个腔室的10个随机场对凋亡细胞和死亡细胞进行定量。结果表示为凋亡细胞(100×Hoechst阳性细胞/每个场的细胞数)和死亡细胞(100 x碘化丙啶阳性细胞/每场的细胞数量)的百分比。

检测还原硫醇

细胞裂解液中还原硫醇的水平(1×105根据制造商在五个独立实验中的说明,使用荧光硫醇检测试剂盒(细胞技术)进行测定。本试验使用2,4-二硝基苯磺酰基荧光素(染料)作为一般还原硫醇的荧光探针。荧光在405 nm处激发,在525 nm处发射。

细胞裂解物

细胞在裂解缓冲液中进行裂解三重HCL(pH 7.5),100 m氯化钠,0.1%Triton X-100,0.1%十二烷基硫酸钠,1 m含有蛋白酶和磷酸酶抑制剂的EDTA]混合物[1:100(P8340);Sigma]放在冰上,通过在4 C下以13000 rpm(16000×)在冷冻微型离心机中。根据制造商的说明,使用微量BCA分析法(皮尔斯,罗克福德伊利诺伊州)测定蛋白质浓度。

过氧化物测定

根据制造商的说明,使用过氧化定量分析试剂盒DIOX-250(生物分析系统)测定过氧化浓度。在室温下,将等量(45μg)的蛋白质与100μl的工作试剂(硫酸铁铵/硫酸和二甲酚橙)或对照试剂(硫酸和二甲酚橙)在96 well板中孵育30 min。在至少三个独立的实验中,使用微型板阅读器在585nm处测量OD。

蛋白质印迹分析

在4–20%的聚丙烯酰胺凝胶中分离等量(20μg)的蛋白质,转移到硝化纤维素膜(0.2μg)中孔径),并在室温下用含有0.05%吐温20[TBST(pH 7.4)]和5%脱脂奶粉的Tris缓冲盐水封闭1小时。用TBST清洗后,用1:500浓度的特异性抗体在4℃下培养过夜。然后用TBST再次清洗膜,并在室温下用1:2000浓度的辣根过氧化物酶结合二级抗体培养1小时。根据制造商的说明,使用增强化学发光检测试剂盒(新泽西州皮斯卡塔韦市GE Healthcare)对蛋白质带进行可视化。在三个独立的实验中,使用美国国立卫生研究院图像J程序(Bethesda,MD)通过密度测定法对条带的强度进行量化。

统计分析

统计分析通过StatView 5.0软件(北卡罗来纳州卡里SAS研究所)进行计算。所有数据均表示为平均值±扫描电镜并由一名学生的未婚者进行分析t吨对两组以上的研究进行测试或方差分析,然后采用费希尔保护最小显著性差异(PLSD)事后(post-hoc)测试。P(P)≤0.05为显著。

结果

睾酮通过经典的细胞内雄激素受体促进细胞凋亡

为了确定雄激素暴露是否诱导多巴胺能N27神经元凋亡,这些细胞被睾酮、非芳香化雄激素DHT、雄激素受体拮抗剂氟他胺、氟他胺+睾酮、无膜渗透雄激素T-BSA或载体(对照)长期(48小时)处理。雄激素治疗后,使用染料Hoechst 33342作为细胞凋亡标志物进行细胞凋亡测定(图1B1B)。). 睾酮和DHT(100 n)诱导凋亡,与对照组相比,亮蓝色荧光标记细胞的增加证明了这一点(图1B1B),)而睾酮在10n时没有影响(数据未显示)。另一方面,T-BSA是一种只与膜雄激素受体结合的雄激素(61,62)在相同浓度(100n)下使用,对细胞凋亡无影响)睾酮(图11,,B和C),以及10 n或1μ(未显示数据)。雄激素诱导的凋亡被氟他胺阻断(图11,、B和C)。与对照组(0.986±0.461%)相比,睾酮或DHT显著增加了细胞死亡(以每场总细胞数中的碘化丙啶阳性细胞数表示)(分别为7.502±0.668和8.238±1.490%)。氟他胺(1.083±0.142%)可逆转睾酮诱导的细胞死亡,而氟他胺单独给药时对细胞死亡无影响(1.084±0.308%)。T-BSA也无影响(0.473±0.031%)。

睾酮增加N27细胞线粒体功能障碍

以前的研究表明线粒体功能障碍促进多巴胺细胞的神经毒性(63,64,65). 通过测量还原巯基水平和过氧化物水平来检查线粒体功能障碍。睾酮暴露显著增加过氧化物水平(图2A2安))并显著减少了还原硫醇的数量(图2B2B))多巴胺能神经元与载体对照组比较。过氧化物酶原-3(一种针对过氧化物的线粒体抗氧化剂)的蛋白质表达也因睾酮暴露而显著增加(图2C2C)。). 雄激素受体拮抗剂氟他胺和抗氧化剂NAC阻断雄激素诱导的氧化应激(图2B2B型).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zee0120950910002.jpg

睾酮诱导的线粒体功能障碍。在五个独立的实验中,使用普通还原硫醇的荧光探针分析还原硫醇水平,并使用比色试剂盒分析过氧化物。用睾酮或载体对照物处理N27细胞48 h。睾酮(100 n))过氧化物浓度显著增加(*,P(P)<0.05),而10 n睾酮没有影响(A)。睾酮(100 n)与对照组相比,还原性硫醇显著减少(*,P(P)< 0.05). 抗氧化剂NAC和雄激素受体拮抗剂氟他胺(B)都能显著阻断睾酮对还原巯基的作用。为了定位增加的过氧化物自由基,在三个独立的实验中分析了蛋白质过氧化物酶体脱氧素-3(PRDX3)的蛋白质印迹分析,PRDX3是一种对过氧化物自由基具有特异性的线粒体抗氧化剂,以定位增加的过氧化物自由基。睾酮显著增加了PRDX3的表达(*,P(P)<0.05)(C)。方差分析之后是学生的PLSD事后(post-hoc)测试。

睾酮激活PKCδ凋亡信号通路

为了确定雄激素诱导N27细胞凋亡的机制,在睾酮暴露后12、24和48小时测定PKCδ的蛋白水解活性。睾酮治疗后48小时诱导全长PKCδ(72–74 kDa)裂解为活性催化片段(42和38 kDa3A)。). 因为先前的研究表明多巴胺能细胞凋亡是caspase-3依赖性的(36,38)细胞与睾酮和caspase-3特异性抑制剂Z-DEVD-FMK(4μ). Z-DEVD-FMK显著抑制雄激素诱导的PKCδ裂解(图3B3B)。). 如图4所示4,caspase-3的抑制也能阻断雄激素诱导的多巴胺神经元凋亡。与睾酮组相比,抑制剂+睾酮组的亮蓝色荧光阳性细胞明显较少,而对照组和仅抑制剂组的蓝色荧光标记细胞水平相似。根据碘化丙啶荧光测定,Z-DEVD-FMK(0.897±0.227%)抑制了雄激素诱导的细胞死亡,而对照组为0.986±0.461%。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zee0120950910003.jpg

睾酮通过caspase-3途径诱导PKCδ的蛋白水解裂解。在睾酮处理12、24和48小时后,检测N27细胞中PKCδ的激活。采用Western blot分析确定PKCδ催化片段。治疗后48小时睾酮诱导PKCδ断裂(A)。Z-DEVD-FMK(4μ)显著阻断睾酮诱导的PKCδ蛋白水解(#,P(P)<0.05)(B)。方差分析之后是学生的PLSD事后(post-hoc)测试。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zee0120950910004.jpg

通过抑制N27细胞中caspase-3抑制睾酮诱导的凋亡。使用Hoechst 33342评估细胞凋亡。N27细胞用载体对照(n=5)、睾酮(100n,n=4),caspase-3抑制剂Z-DEVD-FMK(4μ或Z-DEVD-FMK+睾酮(n=3)。用荧光显微镜观察细胞核染色。凋亡细胞通过亮蓝色标记细胞的存在进行鉴定。与对照组相比,睾酮显著增加了细胞凋亡(*,P(P)<0.05)(A)。抑制caspase-3阻断睾酮诱导的凋亡(B)。方差分析之后是学生的PLSD事后(post-hoc)测试。比例尺, 200 μ.箭头表示凋亡细胞。

雄激素诱导的细胞凋亡不是一种普遍的神经元反应

为了确定雄激素是否诱导其他神经元细胞类型的凋亡,使用与N27细胞所述的相同的模式,将非多巴胺能细胞系GT1-7暴露于慢性(48小时)雄激素治疗。图5A5A级图示了Hoechst-33342标记的GT1-7神经元的荧光显微照片。睾酮组和对照组的亮蓝色荧光标记细胞水平相似(图5B5B),)在细胞死亡方面没有发现差异(睾酮,1.738±0.141%;对照,2.176±0.107%)。通过过氧化物测定,GT1-7细胞(2.111±0.782)的氧化应激基础水平低于N27细胞(5.447±0.240)。然而,睾酮并没有增加氧化应激(图5C第5页).

保存图片、插图等的外部文件。对象名为zee0120950910005.jpg

睾酮不会诱导GT1-7细胞系的凋亡。在四个独立实验中,使用Hoechst 33342在非多巴胺能细胞系(GT1-7)中检测雄激素诱导的凋亡。GT1-7细胞用溶媒对照或睾酮(100 n)处理). 睾酮组和对照组(A组和B组)中亮蓝色荧光标记的凋亡细胞没有发现差异。睾酮不会增加GT1-7细胞(C)中的过氧化物水平。学生的未婚t吨测试。比例尺, 200 μ.箭头表示凋亡细胞。

讨论

这项研究表明,生理相关水平的雄激素诱导多巴胺能神经元的神经毒性。主要发现包括:1)睾酮通过经典的细胞内雄激素受体增加N27细胞的凋亡和细胞死亡,2)雄激素增加氧化应激诱导的线粒体功能障碍,3)睾酮诱导依赖caspase-3的PKCδ蛋白水解激活,雄激素诱导的细胞凋亡不是一种普遍的神经元事件。这些发现表明,雄激素可能导致PD发病率的性别差异(1,2).

雄激素诱导多巴胺能神经元凋亡的模型如图6所示6该模型提出雄激素可能通过级联作用促进多巴胺能细胞损伤,级联作用涉及线粒体功能受损和氧化应激增加,导致PKCδ的caspase-3依赖性裂解(从而激活)。PKCδ断裂后,会导致DNA断裂和凋亡(66). 该模型表明雄激素受体拮抗剂可以逆转雄激素引发的凋亡事件。另一方面,药物抑制caspase-3活性可以阻断PKCδ激活的凋亡作用。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为zee0120955090106.jpg

雄激素诱导N27细胞凋亡的假定模型。雄激素进入细胞,与经典的细胞内雄激素受体(AR)结合,诱导氧化应激,导致线粒体功能障碍。线粒体释放细胞色素c激活凋亡caspase级联反应,促进PKCδ活化。氟他胺对雄激素受体的药理抑制或Z-DEVD-FMK对caspase-3活性的药理抑制可阻断雄激素诱导的凋亡。

氧化应激被描述为PD发病机制的一个组成部分(67,68,69). 在这项研究中,我们通过测量N27细胞中还原巯基和过氧化物自由基的水平,来研究长期接触雄激素对氧化应激的影响。还原巯基可用作活性氧物种(ROS)的间接测量(或传感器)。事实上,对抗活性氧增加的一种细胞机制是产生巯基还原谷胱甘肽和硫氧还蛋白,它们维持细胞的还原-氧化平衡(70,71). 因此,还原巯基的减少表明细胞中的ROS增加。我们的数据表明,睾酮降低了N27细胞中降低的硫醇水平,表明睾酮诱导的活性氧增加。抗氧化剂NAC阻断了这种作用。此外,睾酮增加了过氧化物自由基物种(图22),)表明线粒体氧化应激增加。这些结果形成了我们的工作模型(图66),)这表明长期接触睾酮会促进线粒体功能障碍,从而进一步增加多巴胺神经元的氧化应激负荷。这种连锁反应与先前关于氧化应激在PD发病机制中的研究一致(67,72).

生理水平的雄激素对多巴胺神经元凋亡的影响尚未在超过24小时的时间段内进行检测,只有使用超生理水平睾酮的数据可用(22). 以前的研究表明,在10和100 n时24小时暴露于睾酮对多巴胺能SH-SY5Y细胞活力无影响(22). 这些结果与我们的研究一致,表明24小时雄激素暴露对N27细胞没有影响。然而,较长时间(48小时)的孵育可诱导细胞凋亡,这表明细胞存活率取决于雄激素暴露的时间长短。

雄激素已被证明具有两种神经保护作用(73,74,75)和毒性影响(41),取决于正在研究的雄激素系统和浓度(73,74). 此外,雄激素可以激活不同的细胞内途径,例如与神经保护有关的ERK/MAPK途径(73,75). 另一方面,雄激素的生理水平已被证明会增加前列腺细胞的凋亡(41)在芳香化酶抑制剂存在下混合皮层细胞(76). 不同的雄激素代谢产物或假定膜或经典细胞内雄激素受体的激活可能解释了这些差异效应。睾酮可以通过芳香化酶转化为雌二醇,或通过5α-还原酶还原为DHT(77,78,79). 雌激素一直被证明具有神经保护作用(80,81,82)芳香化酶敲除小鼠多巴胺能细胞凋亡增加(83). 这些研究表明,雄激素机制有助于多巴胺能细胞凋亡,雌激素机制介导多巴胺能神经保护。

最近一项对初级皮质星形胶质细胞的研究表明,雄激素暴露导致的细胞凋亡可能与膜雄激素受体的激活有关(23). 有趣的是,不渗透质膜的T-BSA的凋亡作用已被证明可降低初级皮质星形胶质细胞中的Akt磷酸化(参与细胞保护的信号通路)并增加caspase的激活(23). 因此,子类型或位置可能(薄膜与。细胞核)在确定睾酮的保护性或毒性特性方面是至关重要的。

由于膜雄激素受体介导胶质细胞的凋亡,我们研究了这些受体对N27细胞凋亡的影响。有趣的是,睾酮促进细胞凋亡,而T-BSA则没有,即使在等摩尔浓度下使用。另一方面,非芳香化雄激素DHT也增加了细胞凋亡,支持雄激素介导的机制。最后,雄激素受体拮抗剂氟他胺阻断了睾酮和DHT的作用。氟他胺被证明优先阻断经典的细胞内雄激素受体而不是膜雄激素受体,并进一步区分了这两种受体机制(23). 因此,这些结果首次表明,雄激素诱导多巴胺能神经元细胞凋亡是通过经典的细胞内雄激素受体发生的,而不是通过药理学上不同的假定膜雄激素受体。

在PD动物模型中,PKCδ被证明是细胞凋亡的介体(36,39). 以前的研究表明,PKCδ在大脑纹状体和黑质(SN)中高度表达(32,84). 纹状体和SN的多巴胺神经元丢失是PD的特征之一(6,7,11,14,15,20). 此外,PKCδ的表达随着年龄的增长而增加(85),这是帕金森病的一个风险因素(,4,5). 蛋白水解激活PKCδ参与细胞凋亡中基因转录的调控(66). 与这些发现一致,我们观察到在睾酮暴露48小时后,N27细胞中PKCδ裂解增加,表明观察到的凋亡是PKCδ介导的。

PKCδ激活可能通过三种不同的机制发生:1)PKCδ的膜移位,2)酪氨酸磷酸化,3)caspase-3依赖性蛋白水解酶激活(32). 自由基导致的线粒体功能障碍、ROS生成增加以及随后的细胞色素c释放,可以激活caspase-3途径(86,87,88). 在这项研究中,我们发现睾酮增加了氧化应激和自由基生成,并证实了caspase-3信号通路参与了这些反应。Z-DEVD-FMK对caspase-3的抑制阻断了睾酮诱导的N27细胞PKCδ断裂和凋亡,表明雄激素诱导的这些神经元凋亡是通过caspase-3-依赖性蛋白水解酶激活PKCδ而发生的。这些结果与之前关于PKCδ介导的PD动物模型凋亡的报道一致(36,39).

睾酮未诱导非多巴胺能GT1-7细胞系凋亡的观察表明,多巴胺能N27细胞对雄激素的神经毒性作用更敏感。多巴胺细胞的一个固有特性是由于多巴胺本身的分解代谢而产生高度的活性氧形成和氧化应激(89,90,91). 雄激素诱导的N27细胞凋亡可能是由于睾酮的加性效应进一步增加了氧化应激和自由基物种,而该系统已经具有高氧化应激负荷。

临床研究表明,老年男性帕金森病的发病率较高(1,2). 帕金森病的临床症状发生在致密部(SNc)约60%的多巴胺神经元缺失后(8). 在大鼠SN中,雄激素受体主要表达于SNc的多巴胺能神经元,而不表达于SN网状部区域(92)这表明雄激素可能在使这些细胞比其他多巴胺神经元亚群(例如腹侧被盖区的神经元)更脆弱方面发挥作用。在老年大脑(皮层、下丘脑和海马体)中发现雄激素受体水平的变化以及睾酮水平的相互变化(93,94,95)尽管没有研究系统地研究年龄和激素水平对SNc内多巴胺神经元雄激素受体表达的影响。然而,年龄和性别已被证明改变雄激素受体磷酸化,从而影响其功能(96). 事实上,老年雄性小鼠皮质雄激素受体对睾酮的磷酸化水平高于年轻雄性和老年或年轻雌性(96). 如果其他脑区发生类似变化,如SNc,雄激素受体的磷酸化(激活)可能会导致多巴胺神经元进一步氧化应激。相反,睾酮水平随着年龄的增长而下降(95,97,98,99,100)和PD(101,102)但老年男性的睾酮水平仍然高于女性(103). 因此,睾酮水平的持续差异也可能导致多巴胺神经元的氧化应激增加,随着时间的推移,这可能会增加男性患帕金森病的风险。需要进一步的研究来证实这一假设,并确定雄激素受体功能和睾酮水平之间的关系是否有助于PD的发病机制。

总之,这些结果表明,雄激素通过增加自由基种类的产生和氧化应激,诱导线粒体功能障碍,导致PKCδ活化,从而增加多巴胺能神经元的凋亡。

致谢

我们感谢Meharvan Singh博士对手稿的深刻评论和技术建议。

脚注

这项工作得到了美国国立卫生研究院(NIH)拨款AG-08538和美国帕金森病协会(APDA)拨款Roger Duvoisin Award(J.L.R.)、NIH拨款NS050401-05A1(A.G.)和NIH拨款F32NS061417-01(R.L.C.)的支持。

披露摘要:A.G.和J.L.R.无需声明。2008年至2011年,R.L.C.获得了美国国立卫生研究院(National Institutes of Health)的资助。

2009年10月16日首次在线发布

缩写:DHT,二氢甾酮;NAC、,N个-乙酰半胱氨酸;帕金森病;蛋白激酶C;PLSD,保护最小显著差异;活性氧;SN,黑质;SNc,SN致密部分;T-BSA,与BSA缀合的睾酮;TBST,含有Tween 20的Tris缓冲盐水。

工具书类

  • Gillies GE、Murray HE、Dexter D、McArthur S2004年帕金森氏病动物模型中雌激素神经保护作用的性别差异。药物生物化学行为78:513–522[公共医学][谷歌学者]
  • Schrag A、Ben-Shlomo Y、Quinn NP2000年伦敦特发性帕金森病和帕金森综合征横断面流行率调查。英国医学杂志321:21–22[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Mayeux R、Marder K、Cote LJ、Denaro J、Hemenegildo N、Mejia H、Tang MX、Lantigua R、Wilder D、Gurland B等1995年曼哈顿北部地区1988-1993年按年龄、种族和性别分列的特发性帕金森病发病率。《美国流行病学杂志》142:820–827[公共医学][谷歌学者]
  • Hofman A、Collette HJ、Bartelds AI1989年荷兰帕金森病的发病率和危险因素。神经流行病学8:296–299[公共医学][谷歌学者]
  • Van Den Eeden SK、Tanner CM、Bernstein AL、Fross RD、Leimpeter A、Bloch DA、Nelson LM2003年帕金森氏病发病率:年龄、性别和种族/民族差异。美国流行病学杂志157:1015–1022[公共医学][谷歌学者]
  • Hanrott K、Gudmunson L、O'Neill MJ、Wonnacott S2006 6-羟基多巴胺诱导的细胞凋亡是通过细胞外自氧化和蛋白激酶CΔ的caspase 3依赖性激活介导的。生物化学杂志281:5373–5382[公共医学][谷歌学者]
  • Lotharius J、Brundin P2002年帕金森病发病机制:多巴胺、小泡和α-突触核蛋白。Nat Rev Neurosci自然评论3:932–942[公共医学][谷歌学者]
  • Dauer W,Przedborski S公司2003年帕金森氏病:机制和模型。神经元39:889–909[公共医学][谷歌学者]
  • 对于无LS1996年帕金森病的神经病理学。神经病理学实验神经学杂志55:259–272[公共医学][谷歌学者]
  • 穆拉迪MM2002年帕金森病遗传学和发病机制的最新进展。神经病学58:179–185[公共医学][谷歌学者]
  • 道森TM,道森VL2003年帕金森病神经退行性变的分子途径。科学302:819–822[公共医学][谷歌学者]
  • Dietz V、Quintern J、Berger W1981年痉挛和僵硬状态下步态的电生理研究。肌肉机械特性改变导致张力增高的证据。大脑104:431–449[公共医学][谷歌学者]
  • Shastry理学学士2003年蛋白质聚集的神经退行性疾病。神经化学国际43:1–7[公共医学][谷歌学者]
  • Greenamire JT、Hastings TG2004年生物医学。帕金森氏症的病因、收敛机制。科学304:1120–1122[公共医学][谷歌学者]
  • Hirsch EC、Faucheux B、Damier P、Mouatt-Prigent A、Agid Y1997年帕金森氏病的神经脆弱性。神经转导杂志增刊50:79–88[公共医学][谷歌学者]
  • 海基拉·R、科恩·G1971年过氧化氢抑制生物胺吸收:6-羟基多巴胺毒性作用的机制。科学172:1257–1258[公共医学][谷歌学者]
  • Kumar R、Agarwal AK、Seth PK1995年6-羟基多巴胺的自由基产生的神经毒性。神经化学杂志64:1703–1707[公共医学][谷歌学者]
  • Oishi T、长谷川E、村井Y1993年巯基药物降低1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶(MPTP)对小鼠的神经毒性。神经传输公园疾病杂志6:45–52[公共医学][谷歌学者]
  • Przedborski S、Kostic V、Jackson-Lewis V、Naini AB、Simonetti S、Fahn S、Carlson E、Epstein CJ、Cadet JL1992年Cu/Zn-超氧化物歧化酶活性增加的转基因小鼠对N个-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氢吡啶诱导的神经毒性。神经科学杂志12:1658–1667[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Gerfen CR、Engber TM、Mahan LC、Susel Z、Chase TN、Monsma Jr FJ、Sibley DR1990年D1和D2多巴胺受体调节纹状体和纹状体前脑神经元的基因表达。科学250:1429–1432[公共医学][谷歌学者]
  • Kindlundh AM、Lindblom J、Bergström L、Wikberg JE、Nyberg F2001年合成代谢雄激素类固醇癸酸南卓龙影响雄性大鼠大脑中多巴胺受体的密度。《欧洲神经科学杂志》13:291–296[公共医学][谷歌学者]
  • Estrada M、Varshney A、Ehrlich BE2006年睾酮升高导致神经元细胞凋亡。生物化学杂志281:25492–25501[公共医学][谷歌学者]
  • Gatson JW、Singh M2007年膜相关雄激素受体的激活促进初级皮质星形胶质细胞的细胞死亡。内分泌148:2458–2464[公共医学][谷歌学者]
  • Hatzoglou A、Kampa M、Kogia C、Charalampopoulos I、TheodoropoulosPA、Anezinis P、Dambaki C、Papakonstanti EA、Stathopoulos EN、Stournaras C、Gravanis A、Castanas E2005膜雄激素受体激活诱导前列腺癌细胞凋亡逆转在体外体内临床内分泌学代谢杂志90:893–903[公共医学][谷歌学者]
  • Heidenreich KA公司2003年神经细胞死亡的分子机制。Ann NY科学院991:237–250[公共医学][谷歌学者]
  • Martin SJ,Green博士1995年凋亡过程中蛋白酶激活:死亡一千次?手机82:349–352[公共医学][谷歌学者]
  • Choi WS、Canzoniero LM、Sensi SL、O'Malley KL、Gwag BJ、Sohn S、Kim JE、Oh TH、Lee EB、Oh YJ1999年多巴胺能神经元细胞系中MPP(+)诱导细胞死亡的特征:大分子合成、胞浆钙、半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶和Bcl-2相关蛋白的作用。实验神经159:274–282[公共医学][谷歌学者]
  • 科恩总经理1997年半胱氨酸蛋白酶:细胞凋亡的执行者。生物化学杂志326(第1部分):1–16[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • 日沃托夫斯基B2004年凋亡、坏死之间。细胞周期3:64–66[公共医学][谷歌学者]
  • 江X、王X2004细胞色素C介导的细胞凋亡。生物化学年鉴73:87–106[公共医学][谷歌学者]
  • Schulz JB、Lindenau J、Seyfried J、Dichgans J2000谷胱甘肽、氧化应激和神经变性。欧洲生物化学杂志267:4904–4911[公共医学][谷歌学者]
  • Kanthasamy AG、Kitazawa M、Kanthasany A、Anantharam V2003年蛋白激酶CΔ蛋白水解激活在氧化应激诱导的凋亡中的作用。抗氧化剂氧化还原信号5:609–620[公共医学][谷歌学者]
  • 施Y2004年半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶激活:重新审视诱导邻近模型。手机117:855–858[公共医学][谷歌学者]
  • Brodie C,布隆伯格PM2003年蛋白激酶CΔ对细胞凋亡的调节。细胞凋亡8:19–27[公共医学][谷歌学者]
  • Kikkawa U、Matsuzaki H、Yamamoto T2002年蛋白激酶CΔ(PKCΔ):激活机制和功能。生物化学杂志(东京)132:831–839[公共医学][谷歌学者]
  • Kaul S、Kanthasamy A、Kitazawa M、Anantharam V、Kantha samy AG2003年蛋白激酶CΔ的Caspase-3依赖性蛋白水解激活介导和调节1-甲基-4-苯基吡啶(MPP+)诱导的多巴胺能细胞凋亡:与多巴胺能变性中的氧化应激相关。《欧洲神经科学杂志》18:1387–1401[公共医学][谷歌学者]
  • Kanthasamy AG公司Anantharam V Kitazawa M2003年Dieldrin通过促进多巴胺能细胞中蛋白激酶CΔ的caspase-3依赖性蛋白水解裂解诱导凋亡:与氧化应激和多巴胺能变性的相关性。神经科学119:945–964[公共医学][谷歌学者]
  • Anantharam V、Kitazawa M、Wagner J、Kaul S、Kanthasamy AG公司2002年,蛋白激酶CΔ的Caspase-3依赖性蛋白水解裂解对于暴露于甲基环戊二烯基锰三羰基后氧化应激介导的多巴胺能细胞死亡至关重要。神经科学杂志22:1738–1751[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Yang Y、Kaul S、Zhang D、Anantharam V、Kanthasamy AG2004年通过小干扰RNA抑制蛋白激酶CΔ的caspase-3依赖性蛋白水解激活,防止MPP+诱导的多巴胺能变性。分子细胞神经科学25:406–421[公共医学][谷歌学者]
  • Kaul S、Anantharam V、Kanthasamy A、Kanthamasmy AG2005野生型α-突触核蛋白与促凋亡蛋白PKCΔ和BAD相互作用,保护多巴胺能神经元细胞免受MPP+诱导的凋亡细胞死亡。大脑研究摩尔大脑研究139:137–152[公共医学][谷歌学者]
  • Gavrielides MV,Gonzalez-Guerrico AM,Riobo NA,Kazanietz MG公司2006年雄激素调节蛋白激酶CΔ转录并调节其在前列腺癌细胞中的凋亡功能。癌症研究66:11792–11801[公共医学][谷歌学者]
  • 莫Q、卢SF、胡S、西蒙NG2004年DHEA和DHEA硫酸盐对神经雄激素受体及其转录活性进行差异调节。大脑研究摩尔大脑研究126:165–172[公共医学][谷歌学者]
  • 卢SF、莫Q、胡S、Garippa C、Simon NG2003年脱氢表雄酮上调神经雄激素受体水平和转录活性。神经生物学杂志57:163–171[公共医学][谷歌学者]
  • Shakil T、Hoque AN、Husain M、Belsham DD2002年雄激素对促性腺激素释放激素分泌和基因表达的差异调节:膜与核受体激活。摩尔内分泌16:2592–2602[公共医学][谷歌学者]
  • Belsham DD、Evangelou A、Roy D、Duc VL、Brown TJ1998年5α-二氢睾酮对促性腺激素释放激素(GnRH)分泌的GT1-7下丘脑神经元中促性腺素释放激素基因表达的调节。内分泌139:1108–1114[公共医学][谷歌学者]
  • Adams FS、La Rosa FG、Kumar S、Edwards-Prasad J、Kentroti S、Vernadakis A、Freed CR、Prasad KN1996年两种具有多巴胺能特性的神经细胞系的鉴定和移植。神经化学研究21:619–627[公共医学][谷歌学者]
  • Rao PA、Molinoff PB、Joyce JN1991年大鼠基底神经节多巴胺D1和D2受体亚型的个体发生:一项定量放射自显影研究。大脑研究开发大脑研究60:161–177[公共医学][谷歌学者]
  • Meador-Woodruff JH、Mansour A、Healy DJ、Kuehn R、Zhou QY、Bunzow JR、Akil H、Civelli O、Watson JR SJ1991年大鼠脑内D1和D2多巴胺受体mRNA分布的比较。神经精神药理学5:231–242[公共医学][谷歌学者]
  • Sun F、Anantharam V、Zhang D、Latchoumycandane C、Kanthasamy A、Kantha samy AG2006蛋白酶体抑制剂MG-132在细胞培养和动物模型中诱导多巴胺能退化。神经毒理学27:807–815[公共医学][谷歌学者]
  • Kaul S、Anantharam V、Yang Y、Choi CJ、Kanthasamy A、Kanthamasmy AG2005酪氨酸磷酸化调节多巴胺能神经元细胞中蛋白激酶CΔ的蛋白水解激活。生物化学杂志280:28721–28730[公共医学][谷歌学者]
  • 弗雷什尼RI2005年无血清培养基。In:动物细胞培养:基本技术手册。第5版,第10章。纽约:威利-莱斯[谷歌学者]
  • 组织WH、Nieschlag E、Wang C、Handelsman D、Swerdloff R、Wu F、Einer-Jensen N、Waites G1992年雄激素使用指南。海德堡:施普林格[谷歌学者]
  • Smith KW、Feldman HA、McKinlay JB2000年老年男性睾酮缺乏症(性腺机能减退症)自我管理筛查仪的构建和现场验证。临床内分泌(Oxf)53:703–711[公共医学][谷歌学者]
  • Zitzmann M、Brune M、Nieschlag E2002年性腺机能减退男性的血管反应性因雄激素替代而降低。临床内分泌代谢杂志87:5030–5037[公共医学][谷歌学者]
  • Kelly SJ、Ostrowski NL、Wilson MA1999年大脑和行为的性别差异:激素和神经基础。《药物生物化学行为》64:655–664[公共医学][谷歌学者]
  • Mooradi AD、Morley JE、Korenman SG1987雄激素的生物作用。Endocr版本8:1–28[公共医学][谷歌学者]
  • 需要EF、O'Loughlin PD、Armstrong DT、Haren MT、Martin SA、Tilley WD、Wittert GA、Buchanan G2009年3月3日,在一个大型男性队列中进行血清睾酮生物测定评估。临床内分泌(Oxf)10.1111/j.1365-2265.2009.03595.x[公共医学][谷歌学者]
  • Kaufman JM、Vermeulen A2005年老年男性雄激素水平下降及其临床和治疗意义。内分泌学修订版26:833–876[公共医学][谷歌学者]
  • Vermeulen A、Kaufman JM、Giagulli VA1996年某些生物学指标对老年或肥胖男性性激素结合球蛋白和雄激素水平的影响。临床内分泌代谢杂志81:1821–1826[公共医学][谷歌学者]
  • Gray A、Feldman HA、McKinlay JB、Longcope C1991年中年男性的年龄、疾病和性激素水平变化:马萨诸塞州男性衰老研究的结果。临床内分泌代谢杂志73:1016–1025[公共医学][谷歌学者]
  • Papadopoulou N、Charalampopoulos I、Anagostopoulou V、Konstantinidis G、Föller M、Gravanis A、Alevizopoulos K、Lang F、Stournaras C2008年膜雄激素受体激活触发PI-3K/Akt/NF-κB活性的下调,并通过Bad、FasL和caspase-3诱导DU145前列腺癌细胞的凋亡反应。摩尔癌症7:88[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Alexaki VI、Dermitzaki E、Charalampopoulos I、Kampa M、Nifli AP、Gravanis A、Margioris AN、Castanas E2006 PC12细胞的神经元分化消除了膜雄激素受体的表达。实验细胞研究312:2745–2756[公共医学][谷歌学者]
  • Blum D、Torch S、Lambeng N、Nissou M、Benabid AL、Sadoul R、Verna JM2001年6-OHDA、多巴胺和MPTP神经毒性的分子途径:对帕金森病凋亡理论的贡献。神经生物学进展65:135–172[公共医学][谷歌学者]
  • Jha N、Jurma O、Lalli G、Liu Y、Pettus EH、Greenamire JT、Liu RM、Forman HJ、Andersen JK2000年PC12中谷胱甘肽耗竭导致线粒体复合物I活性选择性抑制。帕金森氏病的影响。生物化学杂志275:26096–26101[公共医学][谷歌学者]
  • Merad-Boudia M、Nicole A、Santiard-Baron D、SailléC、Ceballos-Picot I1998年线粒体损伤是神经元细胞谷胱甘肽耗竭诱导凋亡过程中的早期事件:与帕金森病的相关性。生物化学药理学56:645–655[公共医学][谷歌学者]
  • Ren J、Datta R、Shioya H、Li Y、Oki E、Biedermann V、Bharti A、Kufe D2002年p73β由DNA损伤的凋亡反应中产生的蛋白激酶CΔ催化片段调节。生物化学杂志277:33758–33765[公共医学][谷歌学者]
  • 詹纳·P2003年帕金森病的氧化应激。神经年鉴53(增刊3):S26–S36;讨论S36–S38[公共医学][谷歌学者]
  • Gille G、Hung ST、Reichmann H、Rausch WD2004年多巴胺能神经元氧化应激作为帕金森病模型。纽约州科学院安1018:533–540[公共医学][谷歌学者]
  • Kanthasamy AG、Kitazawa M、Kaul S、Yang Y、Lahiri DK、Anantharam V、Kanthassamy A2003年促凋亡激酶PKCΔ的蛋白水解激活受Bcl-2过度表达的调节:帕金森病中氧化应激和环境因素的影响。纽约科学院年鉴1010:683–686[公共医学][谷歌学者]
  • 加马利IA,Klyubin IV1999年活性氧物种的作用:细胞功能的信号传递和调节。Int Rev细胞仪188:203–255[公共医学][谷歌学者]
  • Nakamura H、Nakamula K、Yodoi J1997年细胞激活的氧化还原调节。《免疫学年鉴》15:351–369[公共医学][谷歌学者]
  • 安达信JK2004年神经退行性变中的氧化应激:原因还是后果?Nat Med 10(补充):S18–S25[公共医学][谷歌学者]
  • Ramsden M、Shin TM、Pike CJ2003年雄激素调节神经元对红藻氨酸损伤的脆弱性。神经科学122:573–578[公共医学][谷歌学者]
  • Hammond J、Le Q、Goodyer C、Gelfand M、Trifiro M、LeBlanc A2001睾酮通过人类初级神经元中的雄激素受体介导的神经保护作用。神经化学杂志77:1319–1326[公共医学][谷歌学者]
  • Nguyen TV、Yao M、Pike CJ2005年雄激素激活有丝分裂原激活的蛋白激酶信号:在神经保护中的作用。神经化学杂志94:1639–1651[公共医学][谷歌学者]
  • 奥兰多R、卡鲁索A、莫里纳罗G、莫托莱斯M、马特里西亚诺F、托加纳G、梅尔基奥里D、尼科莱蒂F、布鲁诺V2007年合成代谢雄激素类固醇的纳米摩尔浓度放大了混合小鼠皮层培养物中的兴奋毒性神经元死亡。大脑研究1165:21–29[公共医学][谷歌学者]
  • 加利福尼亚州弗莱市爱丁格尔KL2005年睾酮的抗焦虑和镇痛作用可能部分归因于其海马体内5α-减少的代谢物的作用。心理神经内分泌学30:418–430[公共医学][谷歌学者]
  • 卢特格·W1979年哺乳动物性行为的内分泌控制:睾酮代谢物的潜在作用分析。摘自:Beyer C,ed.性行为的综合内分泌内分泌控制。纽约:Raven出版社;341–364[谷歌学者]
  • Roselli CE,Resko JA公司1993年大鼠大脑中的芳香化酶活性:激素调节和性别差异。类固醇生物化学分子生物学杂志44:499–508[公共医学][谷歌学者]
  • Bains M、Cousins JC、Roberts JL2007年雌激素对MPP+诱导的多巴胺神经元死亡的神经保护作用由小鼠中脑原代培养物中的ERα介导。实验神经204:767–776[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • D'Astous M、Morissette M、Di Paolo T2004年雌激素受体激动剂治疗MPTP小鼠的效果:ERα激动剂的神经保护证据。神经药理学47:1180–1188[公共医学][谷歌学者]
  • Morissette M、Jourdain S、Al Sweidi S、Menniti FS、Ramirez AD、Di Paolo T2007年雌激素受体在雌二醇对MPTP毒性的神经保护中的作用。神经药理学52:1509–1520[公共医学][谷歌学者]
  • Hill RA、Pompolo S、Jones ME、Simpson ER、Boon WC2004雌激素缺乏导致雄性小鼠内侧视前区和弓状核多巴胺能神经元凋亡。分子细胞神经科学27:466–476[公共医学][谷歌学者]
  • Leibersperger H、Gschwendt M、Gernold M、Marks F1991年不同物种和小鼠组织中δ型钙无反应蛋白激酶C的免疫学证明。表皮优势。生物化学杂志266:14778–14784[公共医学][谷歌学者]
  • Goldberg M,Steinberg旧金山1996年蛋白激酶C亚型的组织特异性发育调节。生物化学药理学51:1089–1093[公共医学][谷歌学者]
  • Lotharius J、Dugan LL、O'Malley吉隆坡1999培养的多巴胺能神经元中神经毒素介导的细胞死亡的不同机制。神经科学杂志19:1284–1293[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kohda Y、Gemba M2005年,脑啡肽诱导蛋白激酶CΔ移位至线粒体,并增强大鼠肾皮质自由基的线粒体生成,导致肾功能障碍。药理学杂志98:49–57[公共医学][谷歌学者]
  • 山川H、伊藤Y、长川T、巴诺Y、中岛S、吉村S、泽田M、西村Y、野泽Y、坂井N2000年H2O2诱导PC12细胞凋亡过程中caspase-9和-3的激活不依赖神经酰胺的形成。神经研究22:556–564[公共医学][谷歌学者]
  • 学员JL,Brannock C1998自由基与脑多巴胺系统的病理生物学。神经化学国际32:117–131[公共医学][谷歌学者]
  • Choi HJ、Kim SW、Lee SY、Hwang O2003年四氢生物蝶呤的多巴胺依赖性细胞毒性:帕金森病选择性神经变性的可能机制。神经化学杂志86:143–152[公共医学][谷歌学者]
  • Guillot TS、Shepherd KR、Richardson JR、Wang MZ、Li Y、Emson PC、Miller GW2008年,多巴胺囊泡储存减少加剧了甲基苯丙胺诱导的神经变性和星形胶质细胞增生症。神经化学杂志106:2205–2217[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kritzer MF公司1997年大鼠腹侧被盖区、黑质和红后区细胞内性腺激素受体和酪氨酸羟化酶免疫反应选择性共定位。《计算机神经学杂志》379:247–260[公共医学][谷歌学者]
  • Kumar RC,Thakur MK公司2004雄激素受体mRNA在成年小鼠大脑中被睾酮和雌二醇反向调节。神经生物老化25:925–933[公共医学][谷歌学者]
  • Kerr JE、Allore RJ、Beck SG、Handa RJ1995大鼠海马雄激素受体(AR)和AR信使核糖核酸的分布和激素调节。内分泌136:3213–3221[公共医学][谷歌学者]
  • 吴D、林G、戈尔AC2009年雄性大鼠下丘脑雄激素受体和雌激素受体α的年龄相关变化。《计算机神经学杂志》512:688–701[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Thakur MK、Asaithambi A、Mukherjee S2000年小鼠大脑皮层雄激素受体的合成和磷酸化及其在衰老过程中的性类固醇调节。分子细胞生物化学203:95–101[公共医学][谷歌学者]
  • Harman SM、Metter EJ、Tobin JD、Pearson J、Blackman MR2001年老龄化对健康男性血清总睾酮和游离睾酮水平的纵向影响。巴尔的摩老龄化纵向研究。临床内分泌代谢杂志86:724–731[公共医学][谷歌学者]
  • Downs JL、Urbanski HF2006年恒河猴中与衰老相关的24小时循环瘦素节律的性别依赖性丧失。《内分泌学杂志》190:117–127[公共医学][谷歌学者]
  • Roselli CE、Kaler LW、Resko JA1986年年轻和老年雄性大鼠的下丘脑芳香化酶活性。神经生物老化7:121-125[公共医学][谷歌学者]
  • Luine VN、Beck KD、Bowman RE、Frankfurt M、新泽西州Maclusky2007年慢性应激与神经功能:性别和年龄因素。神经内分泌杂志19:743–751[公共医学][谷歌学者]
  • Okun MS、McDonald WM、DeLong MR2002年男性帕金森病患者因睾酮缺乏而出现顽固性非运动症状:一种常见的未被认识的共病。神经系统科学档案59:807–811[公共医学][谷歌学者]
  • Ready RE、Friedman J、Grace J、Fernandez H2004年帕金森病患者睾酮缺乏和冷漠:一项初步研究。神经外科精神病学杂志75:1323–1326[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Gavrilova N,Lindau ST公司2009年,在一项以人口为基础的全国老年人研究中进行唾液性激素测量。老年医学杂志B心理科学与社会科学10.1093/geromb/gbn028[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]

文章来自内分泌学由以下人员提供美国内分泌学会