跳到主要内容
访问密钥 NCBI主页 MyNCBI主页 主要内容 主导航
EMBO J。2003年11月3日;22(21): 5769–5779.
数字对象标识:10.1093年12月10日至cdg548
预防性维修识别码:PMC275405型
PMID:14592975

乱涂突变体与致癌Ras或Notch合作,导致肿瘤过度生长果蝇属

摘要

癌症是一个多步骤的过程,涉及致癌或抑癌突变之间的合作以及肿瘤和周围正常组织之间的相互作用。在这里,我们首次描述了在果蝇属通过使用模拟哺乳动物肿瘤发展的系统。我们使用MARCM系统生成了顶端-基底细胞极性肿瘤抑制基因的突变克隆,乱涂在正常组织的情况下。我们展示了这一点乱涂眼盘中的突变克隆显示cyclin E和异位细胞周期的异位表达,但由于JNK通路和周围野生型组织介导的细胞死亡增加,不会过度生长。相反,当致癌Ras或Notch在乱涂突变克隆,防止细胞死亡,发展肿瘤。这表明,在果蝇属Ras和Notch激活的等位基因在上皮性肿瘤的发生发展中起协同致癌基因的作用,并强调了上皮极性调节因子在抑制致癌基因和防止肿瘤形成中的重要性。

关键词:细胞周期/细胞死亡/细胞极性/协同肿瘤发生/果蝇属

介绍

果蝇属长期以来,人们一直认为这是理解癌症生物学许多方面的一个有价值的工具,主要是因为果蝇属和哺乳动物,以及在苍蝇中进行遗传分析的容易程度。三人一组的研究果蝇属基因,大型光盘(数据链接组),致命的巨型幼虫(lgl公司)和乱涂(划线器),现在开始强调上皮细胞极性丧失与肿瘤发展之间的关键关系。纯合子突变体数据链接组,lgl公司划线器它们都表现出非常相似的表型。幼虫发育正常;然而,当这些蛋白质的母体供应耗尽时,正常单层上皮成像盘内的细胞失去结构和极性,无法分化和过度增殖,成为与邻近组织融合的多层无定形细胞团(由沃达兹,2000). 幼虫无法开始蛹的发育,最终以过度生长的巨大幼虫的形式死亡。突变体组织表现出的三维侵袭性过度生长,未能正确分化且缺乏形态学,导致这三个基因被分类为果蝇属肿瘤抑制药(盖特夫,1994年). 详细分析表明数据链接组,lgl公司划线器参与共同的基因途径,参与细胞极性和增殖的调节(Bilder等人,2000年). Scrib是一种LAP4蛋白(16个富含亮氨酸的重复序列,具有四个PDZ结构域;Bilder和Perrimon,2000年)Dlg是一种含有三个PDZ结构域的MAGUK(膜相关鸟苷酸激酶)(伍兹和布莱恩特,1991年). 在上皮细胞中,这两种蛋白通常定位于细胞膜的一个侧域,刚好位于粘连连接处的基底,称为隔膜连接,这是一种溶质屏障,被认为类似于哺乳动物细胞的紧密连接。Lgl是一种具有WD40重复序列的细胞质和皮质定位蛋白。在缺乏Scrib的上皮细胞中,顶部定位的蛋白质在基底外侧表面上重新分布,斑点粘附连接保持分散,而不是合并到粘附带的规定侧带中(Bilder和Perrimon,2000年). 据认为,这种对细胞结构的破坏扰乱了信号通路,导致增殖失控。

目前,尚不清楚Scrib(hScrib或Vartul)、Dlg(四种蛋白家族;hDlg/SAP97、PSD-93、NE-Dlg/SAP102和PSD-95/SAP90)和Lgl(Hugl)的人类同源物是否是哺乳动物细胞中的肿瘤抑制因子;然而,hScrib和hDlg都是高风险人乳头瘤病毒E6癌蛋白降解的靶点(加迪奥尔., 1999;Nakagawa和Huibregtse,2000年)并且,至少在MDCK细胞中,E6表达伴随着紧密连接完整性的丧失(Nakagawa和Huibregtse,2000年). 这表明这些蛋白的丢失可能对细胞极性产生重要的功能后果,因此可能有助于E6癌蛋白的肿瘤进展。

在本研究中,我们使用体内果蝇该模型更接近哺乳动物癌症的克隆特性,以研究细胞极性,尤其是Scrib在肿瘤发展中的作用。在哺乳动物中,肿瘤发生涉及抑癌基因和癌基因之间的协同作用(由哈纳汉和温伯格,2000年)以及过度增殖肿瘤本身与周围基质之间的复杂相互作用(Bissell和Radisky,2001年;Liotta和Kohn,2001年). 因此,苍蝇肿瘤发展的模型必须尝试模拟这些增加的复杂性水平。使用FLP/FRT公司-介导的克隆分析表明划线器野生型动物体内的组织失去极性并过度增殖;然而,周围的野生型组织确保了这种增殖优势被Jun N末端激酶(JNK)途径介导的突变组织的凋亡所补偿。如果激活癌基因的二次突变,特别是Ras和Notch,被引入划线器克隆,避免了这种命运,导致组织过度生长。激活Ras或Notch对划线器组织不能仅仅用这些致癌基因促进细胞生存或细胞周期进展的能力来解释,这表明它们的致瘤作用需要其他下游靶点。因此,这项研究首次证明了在果蝇属,并展示了细胞极性缺陷如何与癌基因在癌症发展中相互配合。

结果

眼盘scrib突变组织的体细胞克隆失去极性并过度增殖

纯合型中Scrib的缺失粗布幼虫会导致细胞极性的丧失和幼虫翅膀影像盘和脑叶的细胞过度增殖,从而导致肿瘤的形成(Bilder等人,2000年). 我们希望研究在野生型组织环境中去除组织体细胞克隆中Scrib的效果,这种情况更类似于哺乳动物肿瘤的克隆发展。为了进行这项分析,我们使用了幼虫的眼成像盘,即柱状单层神经上皮。在幼虫晚期和蛹早期发育阶段,形态发生沟(MF)穿过眼盘(从后到前),诱导细胞分化为感光细胞和辅助细胞,这些细胞构成了成年眼的成熟小眼。使用FRT公司-介导重组和FLPase表达无眼的()发起人(Newsome等人,2000年),有丝分裂克隆划线器在眼发育早期诱导组织,在幼虫三龄后期进行检测。在的克隆中划线器组织[划线器1划线器2; 图中以绿色荧光蛋白(GFP)缺失为标志的两个空等位基因1但在随后的图中GFP表达阳性],细胞失去单层和柱状形状,变成圆形和多层(图1A) ●●●●。感光细胞分化的标志物Elav表明划线器但并非所有的细胞都有启动分化的能力缺陷(图1B) ●●●●。这些效应并不是严格意义上的细胞自主效应,因为小眼畸形在紧邻周围的野生型组织中的规则间距划线器克隆也经常被破坏。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为cdg548f1.jpg

图1。体细胞眼克隆划线器突变组织变得多层和过度增殖。(A) 右侧前方的横切面和(B–H)平面切面,穿过三龄幼虫眼盘的单层上皮。ey-FLP划线器1划线器2突变克隆(有时用虚线勾勒)以无GFP标记,但BrdU检测(E和F)除外,其中突变克隆以无LacZ染色标记。两种方法都获得了类似的结果划线器1划线器2等位基因。在三龄幼虫的眼盘中,形态发生沟(MF;用条形表示)从眼盘的后缘开始,已经发展到一半,诱导细胞在其后面分化(后部)。(A类)F-actin(A2和3)的磷灰石染色显示野生型眼盘组织(GFP阳性)的柱状上皮,以及划线器组织(GFP阴性)。(B类)发育中的感光细胞,以Elav染色(B2和3)为标志,仍然能够在划线器克隆(箭头);然而,一些划线器细胞保持未分化状态(箭头)。小粒簇的规则间距也受到破坏,小粒簇延伸至野生型组织。(C–H)在野生型眼盘中,细胞周期蛋白E在MF后面的一条细胞带中表达(C)经历同步S相(E类; BrdU掺入),然后是有丝分裂(G公司; 磷酸-鸟嘌呤H3染色)。划线器克隆和紧邻的野生型细胞中,细胞周期蛋白E水平升高,特别是在MF内部和之前(D类)导致异位DNA复制(F类)和有丝分裂(H(H)).

接下来我们确定细胞增殖控制是否有缺陷划线器克隆。正常情况下,细胞增殖在三龄幼虫眼睛发育期间受到严格调控。眼盘前部未分化的细胞不同步地循环,直到在G区停止1细胞亚群在MF内开始分化,其余细胞表达周期蛋白E的脉冲(图1C) 并经历同步S相(图1E) 就在犁沟的后面。这些G中的大多数2细胞也将进入有丝分裂状态(图1G) ,由此产生的细胞池被招募到发育中的小蜂中。细胞周期蛋白E水平在划线器克隆(以缺乏GFP为标志),以及紧邻克隆的野生型细胞中,这在细胞周期蛋白E通常在MF后面表达的区域内最为明显,并通过MF进一步向前延伸,在MF中细胞通常在G1(图1D) ●●●●。溴脱氧尿苷(BrdU)染色显示,这伴随着异位S期(图1F) 以及异位有丝分裂(图1H) ●●●●。

我们的结论是,在眼睛发育过程中粗布组织失去了规则的单层柱状,变成多层和圆形,并发生异位细胞增殖。在紧邻周围的野生型组织中也观察到感光细胞分化和异位cyclin E表达的非细胞自主缺陷划线器克隆。

JNK通路介导的凋亡消除了scrib突变组织的克隆

尽管划线器在三龄幼虫发育过程中,这种组织最终必须通过细胞死亡来清除,因为当幼虫化蛹后羽化时划线器成人眼睛中残留的组织(标记为w个组织缺乏红色色素),并且有坏死迹象,尤其是在眼睛中部(图2B、 与图中的野生型眼睛马赛克相比2A) ●●●●。事实上,即使在三龄幼虫眼盘发育期间,也会有相当大的细胞凋亡(图2D与图中的野生型光盘进行比较2C) 、和划线器组织(GFP阳性)应占眼触角盘的50%,比野生型组织的代表性低得多,尤其是MF后面发生分化的组织(图2F与对照马赛克眼盘进行比较,图2E) ●●●●。

保存图片、插图等的外部文件。对象名为cdg548f2.jpg

图2。的克隆划线器JNK通路介导的凋亡可消除突变眼组织。(A和B)通过使用w个+标记成人眼睛野生型组织的基因ey飞行计划控制眼包含等量的w个+w个组织(A类). ey-FLP划线器1马赛克眼睛几乎没有划线器组织(w个)在成人中,眼睛尺寸缩小,并且经常在眼睛中央发现坏死点(B类). (C和D)三龄幼虫眼盘的吖啶橙染色显示野生型眼/触角盘中几乎没有凋亡细胞(C),但在ey-FLP划线器1马赛克眼/天线盘(D类)检测到许多凋亡细胞。(E–J)MARCM系统用于生成ey-FLP公司在两个野生型对照克隆中表达不同转基因的克隆,其中GFP为阳性克隆标记(E类,G公司)或划线器1克隆(F类,H(H)J). Elav染色显示三龄幼虫眼盘中发育的感光细胞。在野生型克隆中,仅表达GFP作为克隆标记,克隆组织占组织的约50%(E2和3),成人眼睛正常(E4)。划线器1克隆、突变组织的代表性明显低于野生型组织(F2和3),并且成年眼睛通常缩小且无组织(F4)。通过表达JNKK(Hep)活化等位基因对JNK途径的异位激活ACT公司)在对照组中,野生型克隆(G1-3)几乎消除了所有克隆组织,导致成人眼睛轻微粗糙(G4)。通过表达显性负性JNK(Bsk)阻断JNK通路DN(公称直径)),英寸划线器1克隆(H1–3)导致划线器眼盘组织(H2;与划线器1克隆,F2)和完全蛹致死。Bsk的表达DN(公称直径)在对照克隆(I1-3)中,结果是成年苍蝇的眼睛只有轻微的紊乱(I4)。泛型蛋白酶抑制剂p35的表达划线器1突变克隆(J1-3)导致划线器克隆组织与无性系的比较划线器1单独(F2),与之相比,成年苍蝇的眼睛更加杂乱和坏死(J4)划线器1仅克隆(F4)。

在哺乳动物和果蝇属,JNK可诱导应激反应,导致细胞凋亡(综述Davis,2000年). 因此,我们希望测试JNK通路的异位激活是否在划线器眼睛克隆可以解释划线器组织。为了做到这一点,我们使用了MARCM系统,这是一种体外和组成性表达任何GAL4依赖性的方法(无人机-)转基因,就在组织的有丝分裂克隆中(标记为无人机–GFP表达),而不是在周围的野生型组织中(Lee和Lou,1999年; 有关系统的更详细描述,请参见材料和方法)。使用此技术ey-FLP公司为了生成克隆,我们观察到一种激活形式的JNKK(半翅目)在其他野生型组织的GFP表达克隆中的异位表达导致了非常小的克隆,这与JNK通路在眼盘中的促凋亡作用一致(图2G;Hep公司ACT公司). 测试JNK通路的激活是否导致划线器组织中,我们通过表达JNK通路活性的显性阴性版本果蝇属JNK同源物,Basket(BskDN(公称直径)),特别是在划线器眼睛克隆。这导致了粗布克隆组织(GFP阳性细胞,图2H) ,与相比划线器控制克隆(图2F) 与Bsk的概念一致DN(公称直径)拯救细胞死亡划线器组织。此外,当Bsk的表达DN(公称直径)在对照中,眼睛克隆导致成年苍蝇只有轻微的眼睛紊乱(图2I) ,Bsk的表达DN(公称直径)在里面划线器细胞导致蛹死亡。相反,使用MARCM系统下调划线器克隆具有相反的效果,包括用显性负性EGFR阻断表皮生长因子受体(EGFR)/Ras信号,用显性负型TCF阻断Wingless(Wg)信号,或用异位表达Dad阻断Decapentaplastic(Dpp)信号,显著降低突变组织的生存能力(数据未显示)。因此,阻断JNK通路,特别是导致划线器组织。事实上,下调JNK通路的效果甚至比用杆状病毒泛酶抑制剂p35阻断细胞凋亡的效果更有效。尽管p35表达于划线器克隆眼也增加了突变组织的大小,一些苍蝇能够隐匿,眼睛显示出明显的坏死迹象(图2J) ●●●●。

因此,我们得出结论,尽管Scrib的丢失与异位细胞增殖有关,但JNK介导的凋亡反应可确保突变组织不会过度生长。

周围的野生型组织对限制scrib突变克隆的过度生长很重要

移除划线器JNK介导的组织凋亡可能是对细胞极性普遍丧失和基底膜脱离的纯细胞内在反应,或者,它可能受到周围野生型组织环境的调节,从而限制异常细胞的过度生长。为了区分这两种可能性,我们使用了两种不同的基因技术来去除围绕在眼球周围的野生型眼盘组织划线器克隆。首先,我们从眼盘驱动器中表达了细胞死亡诱导物Hid(GMR公司)特别是在MF后分化的野生型组织中。引人注目的是,去除野生型组织大大提高了划线器MF后面的克隆(GFP阳性细胞)(图A与图相比2F) ●●●●。这导致组织过度生长和死亡。在第二个更极端的实验选项中,我们不仅去除了MF后面的野生型组织,还通过使用纯合细胞致命突变去除了眼睛/触角盘中的几乎所有野生型组织[l(3)cl-R31;Newsome等人,2000年]. 同样,在这种情况下划线器组织(GFP阳性)并没有因凋亡而消失,而是过度增殖,失去了可识别的结构(图B、 以及未显示的数据),导致死亡。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为cdg548f3.jpg

图3。周围的野生型组织限制了粗布突变组织。(A类划线器1马赛克眼盘形成,MF后面剩余的野生型组织通过表达细胞死亡诱导剂Hid而被清除GMR公司发起人。这个划线器1以GFP表达为标志的克隆组织并没有在MF后消失。Elav染色标志着感光细胞的发育。(B类划线器1产生了马赛克眼盘,周围的野生型组织被纯合子细胞致死突变消除。这个划线器1以GFP表达为标志的克隆组织在三维上过度生长,根据发育中感光细胞的Elav染色判断分化有限。

综上所述,这些数据表明,周围的野生型组织负责防止划线器组织通过JNK介导的细胞死亡诱导。

癌基因形式的Ras和Notch与scrib突变克隆相结合,导致显著的过度生长

的克隆划线器组织具有哺乳动物肿瘤的许多特征,包括细胞极性丧失、分化能力缺陷和异位细胞增殖;然而,划线器组织过度生长通过JNK途径介导的凋亡倾向来控制。因此,我们想知道使用MARCM系统表达肿瘤细胞的继发癌基因突变会产生什么后果划线器背景。

最引人注目的是Ras(RasACT公司)或槽口(N行为)英寸划线器克隆(图4B和D)。这两种致癌基因都能显著诱导肿瘤细胞的过度生长划线器组织(GFP阳性);野生型组织被击败,突变组织无法分化,并继续在三维空间生长到眼睛/触角盘正常大小的许多倍,与脑叶和其他影像组织融合。许多幼虫没有化蛹,长得像纯合子的巨大幼虫划线器幼虫。重要的是,尽管Ras的异位表达行为或NACT公司在其他情况下,组织的野生型克隆产生了过度增殖效应并导致蛹死亡,在没有Scrib的情况下,这两个基因都没有导致大规模协同组织过度生长(图4A和C)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为cdg548f4.jpg

图4。Ras和Notch信号通路的异位激活,但Wg、Dpp、Hh或PI3激酶途径的异位激活划线器突变眼克隆诱导大规模合作过度生长。(A–L)体外使用MARCM系统激活EGFR/Ras途径(RasACT公司;A类B类); 缺口路径(NACT公司;CD类); Wg通路(手臂ACT公司;E类F类); Dpp通路(TkvACT公司;G公司H(H)); Hh途径(Ci-155;J); 或PI3激酶途径(PI3K;K(K)L(左))野生型对照眼克隆(A、C、E、G、I和K)或划线器1克隆(B、D、F、H、J和L)。所有克隆均以GFP的表达为标志。Elav染色显示发育中的感光细胞(A1–L1;与A2–L2中的GFP合并)。在适用的情况下,显示了从蛹壳(C3)上解剖出的成人眼睛(A3–L3)或法利特成人。Ras的表达ACT公司在对照克隆中(A)在MF(箭头)之前诱导早熟的光感受器分化。划线器1克隆(B),RasACT公司未能启动分化,反而导致大量三维组织过度生长,导致眼/触角盘以及脑叶(箭头)相互融合。插页(B1)显示了野生型脑叶(箭头)和眼触角盘(箭头)在相同放大倍数下(放大倍数是图中其他面板的一半)进行比较。N的表达ACT公司对照组克隆(C)干扰感光细胞分化(箭头),成年苍蝇在羽化前死亡,眼睛过度生长。划线器克隆(D),N行为诱导类似程度的三维过度生长和缺乏分化,如RasACT公司(图中显示的是一个平面截面,但过度生长是三维的)。Wg通路信号的异位激活有效地阻止了对照克隆(E;箭头)的感光细胞分化,这种情况在划线器1克隆(F)。Dpp或Hh信号的异位激活在两个对照克隆(G和I)以及划线器1克隆(H和J)。异位PI3激酶信号转导划线器1克隆(L)的作用不大。

体外激活刺猬(Hh)、Dpp和Wg的主要生长和模式途径的后果划线器克隆(GFP阳性)与Ras的效果有很大不同ACT公司和NACT公司.一种致癌的激活型β-连环蛋白(ArmACT公司)它模拟了异位Wg通路信号,有效地阻止了对照克隆中的感光细胞分化,并使组织保持在增殖状态(图4E) ,但在划线器克隆,尽管感光细胞分化仍然被Arm的表达所阻断ACT公司,的划线器组织没有表现出无限制的过度生长,偶尔成虫会隐匿,尽管眼睛严重紊乱(图4F) ●●●●。激活任一Dpp(TkvACT公司; 4G和H)或Hh(Ci-155;图4I和J)信号也会导致图案缺陷,但在划线器导致蛹死亡的克隆没有诱导与划线器用Ras观察ACT公司或NACT公司此外,Wg、Dpp或Hh信号通路的异位激活粗布克隆通常会增加克隆组织的大小,这与阻断JNK途径诱导的一致性和程度不同。

总之,这些数据表明,广泛的肿瘤过度生长可以在果蝇属通过肿瘤抑制因子丢失之间的协同作用,划线器尤其是Ras或Notch的致癌形式。

活化Ras对scrib突变组织过度生长的影响不仅仅是阻止凋亡和促进细胞周期进展的结果

我们选择关注Ras的影响ACT公司划线器更详细的组织,以确定Ras的哪些效应器可能与缺乏Scrib的情况下观察到的协同过度生长有关。在哺乳动物中,致癌Ras被认为通过许多不同的效应器发挥其作用,包括Raf和典型的有丝分裂原活化蛋白激酶(MAPK)途径,生长调节剂磷脂酰肌醇3-激酶(PI3激酶)和细胞结构调节剂,如Ral和Rho家族成员(由Shields等人,2000年). 然而,在果蝇属眼盘,PI3激酶异位表达划线器克隆并没有模拟激活Ras的效果(图4五十) 细胞骨架调节因子Ral、Rho、Rac和Cdc42的激活等位基因也不能激活(数据未显示)。因此,MAPK通路的下游靶点可能是Ras的作用的原因ACT公司事实上,Raf(Raf)获得功能等位基因的表达ACT公司)英寸划线器克隆(GFP阳性)完全复制了Ras的过度生长效应ACT公司在里面划线器组织(图5A和B)。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为cdg548f5.jpg

图5。Ras的影响ACT公司在里面划线器突变眼克隆是通过MAPK级联介导的,但不能通过促进细胞周期进展和防止凋亡来模仿。(A类B类)Raf的表达ACT公司在里面划线器1克隆眼模仿Ras的效果ACT公司Elav染色显示三龄幼虫眼盘(A1)光感受器分化受阻粗布以GFP表达为标志的组织大大过度增殖(A2)。因此,许多幼虫不能化蛹并像纯合子一样过度生长(左边是B型野生型幼虫)划线器突变体。(C)表达RasACT公司在对照组中,以GFP表达(C2和3)为标志的野生型克隆眼诱导细胞周期蛋白E(C1和3),并具有蛹致死性。MF的位置由一个条指示。(D–F型)通过在Ras中表达Dacapo(Dap)阻断细胞周期蛋白E活性ACT公司-表达对照克隆可以挽救与Ras组成性表达相关的蛹致死率ACT公司,尽管由此产生的成人眼睛严重紊乱(E)。在Ras中表达DapACT公司-表达划线器1克隆也可以挽救过度增殖表型,尽管Elav染色(D)显示RasACT公司仍然不能有效诱导划线器组织,发育中的成虫不能羽化,眼睛严重紊乱(F)。(G公司H(H))突变E2F1(e2f1型91)以Ras为单位ACT公司-表达对照眼克隆可挽救与Ras组成性表达相关的蛹致死率ACT公司在野生型克隆(G)中,突变的E2F1也是如此(e2f1型91)以Ras为单位ACT公司-表达划线器1突变克隆(H)。(I和J)细胞周期蛋白E与凋亡抑制因子p35的共表达划线器1眼睛克隆()导致过度生长,但无法重现Ras的效果ACT公司在里面粗布1克隆。E2F1、DP和p35在划线器1眼睛克隆(J)导致过度生长;然而,这种过度生长仍然没有Ras所生产的那么严重ACT公司或RafACT公司在里面划线器1克隆。

Ras和MAPK通路被牵涉到许多不同的发育过程中果蝇属眼盘,包括分化(Halfar等人,2001年;Yang和Baker,2001年),防止细胞死亡(Bergmann等人,1998年,2002;Kurada和White,1998年;Sawamoto等人,1998年)以及增加细胞增殖(卡里姆和鲁宾,1998年). 我们已经证明阻断细胞凋亡划线器克隆增强了突变组织的过度生长(图2)但是,因为这与Ras的程度不同ACT公司,我们认为参与细胞增殖的Ras下游效应物可能也很重要。事实上,Ras的下游效应器之一ACT公司是细胞周期蛋白E,因为Ras的异位表达ACT公司在其他野生型克隆眼(GFP阳性)中,细胞周期蛋白E蛋白水平增加(图5C) ●●●●。尽管划线器克隆也在体外表达细胞周期蛋白E、RasACT公司可能会进一步增加细胞周期蛋白E的水平,从而促进划线器组织。

检测细胞周期蛋白E在Ras中的重要性ACT公司-诱导的过度生长划线器组织,我们通过过度表达果蝇属Ras中p21 cyclin E–Cdk抑制剂同源物Dacapo(Dap)ACT公司-表达划线器眼睛克隆,这有效地挽救了致瘤性过度生长表型(图5D和F)。同样,我们还测试了另一种重要的细胞周期调控因子E2F1在Ras中的参与ACT公司-诱导过度生长。Ras中E2F1活性减弱ACT公司-表达划线器克隆,通过使用e2f1型无效等位基因(e2f1型91;Duronio等人,1995年;Royzman等人,1997年),同样挽救了过度增长效应(图5H) ●●●●。

因此,通过细胞周期蛋白E和E2F1介导的增殖增加在介导Ras的致瘤效应方面显然很重要ACT公司在里面粗布克隆,我们接下来测试是否可以重现Ras的协同过度生长效应ACT公司在里面划线器克隆通过促进细胞增殖,同时异位表达细胞周期蛋白E或E2F1,同时阻断凋亡。然而,无论是细胞周期蛋白E与凋亡抑制剂p35的共同表达,还是E2F1/DP与p35的联合表达都不能模拟Ras的作用ACT公司划线器(GFP阳性)组织(图5I和J)。尽管在这两种情况下都会导致蛹死亡,但对幼虫眼盘的分析表明,Ras诱导的过度生长和缺乏分化行为在里面粗布克隆没有发生(图5I和J)。由于阻断JNK通路活性对划线器与p35的使用相比,我们在Bsk中也表达了细胞周期蛋白E或E2F1/DPDN(公称直径)-表达划线器克隆,但这也未能模拟Ras的显著过度生长效应ACT公司(未显示数据)。

这些结果表明,尽管细胞凋亡的保护和细胞周期进程的增强是介导Ras的重要因素ACT公司-诱导的过度生长划线器组织,Ras的其他效应器ACT公司信号传递在调节合作过度增长方面也可能很重要。Ras异位表达诱导的全身组织破坏ACT公司在野生型克隆中,当Dacapo的表达将增殖效应降至最低时(图5E) 或者没有E2F1(图5G) 也暗示了除参与细胞增殖和防止凋亡的效应器之外的其他效应器。

讨论

在本研究中果蝇属肿瘤抑制物,乱涂,我们采用克隆方法,更接近于哺乳动物癌症的克隆性质,来分析去除Scrib功能对肿瘤形成的影响。我们的分析表明果蝇涂片肿瘤:(i)失去组织结构,包括根尖-基底细胞极性;(ii)未能正确区分;(iii)对周围野生型组织施加非细胞自主效应;(iv)上调细胞周期蛋白E并进行过度细胞增殖;(v) 周围野生型组织通过JNK依赖性凋亡反应抑制其过度生长;和(vi)与Ras和Notch的致癌等位基因紧密合作,产生大型无定形肿瘤。这些结论总结在一个肿瘤发展模型中果蝇属在图中6我们认为上皮细胞极性调节器在抑制癌基因中的作用可能在哺乳动物肿瘤发生中具有普遍意义。

保存图片、插图等的外部文件。对象名称为cdg548f6.jpg

图6。合作肿瘤发生模型果蝇属野生型幼虫眼盘是单层柱状上皮,细胞增殖受到严格调控。细胞结构通过粘附连接(黑箱)的形成、Scribble的顶端定位(灰色阴影)和基底膜的粘附来维持。的突变划线器结果导致顶端-基底极性丢失,导致细胞多层化和圆形化。划线器组织也显示分化受损,异位cyclin E表达(通过未知机制)导致异位细胞增殖。非限制性过度生长和肿瘤形成划线器细胞受到代偿性JNK介导的凋亡(黑星)的抑制,这取决于周围野生型细胞的存在。为了避免这种凋亡命运,需要进行二次突变。如果JNK活动在中被阻止划线器通过表达JNK的显性负性形式,细胞凋亡被阻止,导致组织过度生长和死亡。更具侵略性的过度生长是由于Ras或Notch的激活致癌等位基因的增加。除了促进细胞存活外,这些致癌基因还必须促进肿瘤细胞增殖;然而,我们认为这些癌基因的其他下游效应器也可能很重要,因为我们无法模拟Ras的协同过度生长效应ACT公司或NACT公司划线器通过简单的阻断细胞凋亡和促进细胞增殖。

细胞周期蛋白E的上调和scr突变克隆的过度增殖

划线器克隆体外表达细胞周期蛋白E并经历异位S期和有丝分裂。因为cyclin E是发育中眼睛细胞周期进展的速率限制(Richardson等人,1995年),很可能细胞周期蛋白E在划线器克隆是异位细胞增殖的关键。事实上,我们最初分离了划线器lgl公司作为低形态的主要抑制物细胞周期蛋白E等位基因,DmcycE公司日元(A.M.Brumby、J.Secombe、J.Horsfield、M.Coombe、N.Amin、D.Coates、R.Saint和H.E.Richardson正在准备中),这表明这些细胞极性基因通常在限制cyclin E表达方面起着关键作用。我们目前正在研究哪些信号通路在划线,dlglgl公司可能导致细胞周期蛋白E上调。最近对人类肺上皮细胞的一项研究表明,破坏细胞极性可以使heregulin-α配体和erbB2-4受体混合,这两种配体通常是物理分离的,从而激活通路和细胞增殖(Vermeer等人,2003年). 需要进一步研究,以确定在没有Scrib的情况下观察到的细胞周期蛋白E的异位表达是否仅仅是由于破坏细胞极性导致的组织结构紊乱的结果,或者Scrib是否在限制细胞增殖方面发挥直接作用,而不受细胞极性的影响。有趣的是,在没有Scrib的情况下,细胞的聚集似乎主要是一种细胞自主效应,但很明显,非细胞自主缺陷也很明显,包括细胞周期蛋白E的上调。这表明野生型和突变型细胞之间细胞-细胞相互作用的改变也可以改变野生型细胞内的信号通路,顶端-基底极性的丧失和柱状上皮的塌陷并不是细胞周期蛋白E表达失控的内在原因。深入了解上皮细胞极化和细胞增殖之间的关系对于理解癌症的发展显然很重要,因为细胞极性的丧失往往伴随着肿瘤的进展和转移。

补偿性JNK介导的scrib突变组织的消除

过度增殖划线器JNK介导的细胞凋亡补偿了眼盘中的克隆。阻断JNK通路活性划线器眼克隆大大增加了克隆组织的比例,导致对宿主的致死。由于下调其他野生型组织克隆中的JNK通路活性并没有诱导细胞增殖增加(A.M.Brumby和H.E.Richardson,未发表的数据),我们认为JNK途径活性在划线器克隆诱导细胞凋亡。这与之前关于JNK通路在细胞内促凋亡作用的报道一致果蝇属眼睛(Takatsu等人,2000年)以及我们自己的观察结果(图2G) ●●●●。最近对哺乳动物的研究也表明,JNK通路的激活可以限制肿瘤的生长就地可能是通过增加细胞凋亡(Kennedy等人,2003年).

JNK介导的细胞凋亡是如何在划线器克隆未知。虽然Scrib可以在抑制JNK通路活性方面发挥直接作用,但JNK途径也可能间接激活,以应对其他细胞缺陷。在翼盘中,通过JNK介导的凋亡去除细胞与细胞对形态原梯度反应的不连续性有关,最显著的是前后模式调节因子Dpp,这一过程可能与细胞竞争有关,目的是消除异常或生长缓慢的细胞(Adachi-Yamada等人,1999年;Adachi-Yamada和O'Connor,2002年;Moreno等人,2002a). 虽然这种形式的补偿性JNK介导的细胞凋亡尚未在眼盘内得到证实,但观察到周围的野生型组织环境在限制视网膜过度生长方面起着重要作用划线器组织反对一种简单的细胞内凋亡反应粗布细胞对细胞极性丧失的反应,并且更符合由肿瘤细胞和周围野生型细胞介导的整合反应,如细胞竞争所示。这是否取决于划线器转导Dpp信号的细胞尚不清楚;然而,其他有趣的可能性也值得进一步调查。值得注意的是,最近发现一种肿瘤坏死因子诱导的凋亡信号通路涉及JNK通路(Igaki等人,2002年;Moreno等人,2002b). 我们还注意到JNK通路参与协调背部和胸部闭合形态发生运动期间的细胞形状变化(由Kockel等人,2001年)和伤口愈合(Ramet等人,2002年). 我们注意到划线器组织表达BskDN(公称直径)(JNK公司DN(公称直径))与表达凋亡抑制剂p35的细胞形态不同;最值得注意的是,克隆通常比那些表达p35的克隆更大,更不圆(图2H、 和数据未显示)。这意味着p35没有Bsk有效DN(公称直径)或JNK通路的其他效应器在抑制划线器肿瘤过度生长。我们目前正在研究JNK激活可能在消除划线器上皮组织在一个让人联想到伤口愈合的过程中。

此前有报道称数据链接组lgl公司突变克隆也显示出很差的生存能力(伍兹和布莱恩特,1991年;Agrawal等人,1995年)这表明JNK介导的凋亡可能是对缺乏这些肿瘤抑制因子导致的细胞极性丧失和过度增殖的共同反应。事实上,虽然其他上皮细胞极性调节因子,如Crumbs和E-cadherin,在果蝇属当细胞死亡被阻断时,这些突变对细胞增殖的影响值得进一步研究。有趣的是,在哺乳动物系统中,上皮细胞的极化性质在保护细胞免受凋亡反应方面也很重要,当极性被破坏时,这对肿瘤的发展起到了制动作用(综述Jacks和Weinberg,2002年).

致癌Ras和Notch诱导的协同肿瘤发生

果蝇属,激活的Ras通过Raf和MAPK途径发挥其致癌作用(图5A和B)。先前研究表明,眼盘MAPK的下游靶点可以促进分化、细胞存活和细胞增殖。我们的研究还表明,Ras可以增加眼盘中的cyclin E蛋白水平。结合使用划线器,Ras的微分输出ACT公司信号似乎减弱,增殖和抗凋亡反应盛行。

激活的Notch还与划线器导致肿瘤过度生长,尽管之前没有描述过Notch信号在眼睛中的抗凋亡作用,但NACT公司对苍蝇产生超增殖效应(Go等人,1998年;Baonza和Garcia-Bellido,2000年)和Notch信号是眼盘细胞增殖所必需的(Cho和Choi,1998年;Dominguez和de Celis,1998年). 虽然我们不知道NACT公司诱导与Ras相同的关键下游目标ACT公司使…过度生长划线器组织,移除拉斯中的函数划线器过度表达N的细胞ACT公司拯救了过度生长表型,表明NACT公司至少部分依赖于Ras(A.M.Brumby和H.E.Richardson,未公开数据)。

起初,Ras的合作效应似乎ACT公司或NACT公司粗布组织可以通过这些致癌基因在阻断细胞凋亡的同时促进细胞增殖的能力来解释。然而,与凋亡抑制剂p35(或与JNK通路活性抑制剂BskDN(公称直径)),能够复制Ras的作用ACT公司或NACT公司在里面划线器克隆。因此,我们认为,除抗凋亡和细胞周期调节因子外,其他下游效应器在介导Ras的致癌作用中也必须发挥重要作用ACT公司或NACT公司事实上,在果蝇属Ras也被证明是细胞生长的有效诱导剂(Prober和Edgar,2000年)而cyclin E和E2F1主要促进细胞周期进展(Neufeld等人,1998年). 是否为NACT公司也促进细胞生长果蝇属尚未详细检查。如果增长促进目标是Ras下游ACT公司或NACT公司对促进划线器肿瘤,这些可能独立于PI3激酶途径,因为异位PI3激酶信号在粗布克隆没有诱导协同过度生长,RafACT公司能够诱导与Ras同样广泛的过度生长ACT公司.

最后,我们注意到,在哺乳动物系统中,有证据表明Ras信号在调节细胞连接复合体和增强上皮-间充质转化(例如。Chen等人,2000年;Janda等人,2002年)中的、和果蝇属此外,构成RasACT公司克隆中的信号传导改变了细胞亲和力并改变了E-钙粘蛋白和β-连环蛋白的水平(Prober和Edgar,2002年). 是否RasACT公司或NACT公司信号转导破坏粘附连接果蝇属这增强了划线器肿瘤的过度生长,或者由于缺乏Scrib而导致的粘附连接结构的改变是否改变了细胞对这些癌基因组成性激活的反应,这些都是未来重要的问题。

结束语

在这项研究中,我们描述了一种新的肿瘤发生的多命中模型果蝇属(图6). 此外,尽管人们怀疑细胞极性的破坏可能会加剧肿瘤的进展和转移,但我们在果蝇属首次证明了激活的Ras和Notch在缺乏上皮极性调节因子的情况下如何发挥致癌作用。我们预测,在哺乳动物中,顶-底极性缺陷也可能在肿瘤发展过程中与癌基因协同作用。我们的方法果蝇属现在可以用来筛选新的癌基因,当在划线器克隆能够诱导协同肿瘤发生,也可以扩展到识别其他抑癌基因和癌基因在整个动物环境中的协同作用。

材料和方法

飞行股票

使用的突变体为划线器1,划线器2e2f1型91。在生成眼睛马赛克时,我们使用wy-FLP1型,FRT82B型,FRT82B P【Ubi-nlsGFP】,FRT82B P[mini-w]P[arm-lacZ],FRT82B粗布1,FRT82B划线器2,FRT82B P[Ubi-nlsGFP]标记1,FRT82B e2f191FRT82B e2f191 划线器1.

对于去除野生型组织的眼嵌合体的生成,所使用的原料为ey-GAL4,UAS-FLP1;;FRT82B GMR隐藏ey-FLP2;;FRT82B l(3)cl-R3型1以及对于MARCM眼睛马赛克的生成,w-ey-FLP1、UAS-mCD8-GFP;;管-GAL4 FRT82B管-GAL80.

用于表达:Ras的转基因ACT公司,UAS-Ras1型V12版本; 拉夫ACT公司,UAS草稿政府; 表皮生长因子受体DN(公称直径),UAS-Egfr公司DN(公称直径); N个ACT公司,无人机-N内部; 手臂ACT公司,UAS臂第10节; 数字TCFDN(公称直径),无人机-dTCFΔN3号机组; Tkv(千伏)ACT公司,UAS-tkv公司Q253D问题; 爸爸,UAS-dad公司; Ci-155中,UAS-ci公司; PI3K、,无人机-Dp110; PI3K系列DN(公称直径),无人机-Dp110D945A型; Hep公司ACT公司,UAS-hep公司ACT公司; Bsk公司直径,UAS-bsk公司DN(公称直径); 细胞周期蛋白E,UAS-DmcycEII公司; 第35页,UAS第35页; E2F1/DP,UAS-dE2F1、UAS-dDP; 达普,UAS-dap; 拉尔ACT公司,UAS-Ral公司二十氧化二钒; 赛车ACT公司,UAS-Drac1公司V12版本; ACT公司,UAS-Rho1型V12版本; Cdc42公司ACT公司,无人机-Dcdc42V12版本.

有丝分裂眼克隆的产生

有丝分裂眼克隆是通过交叉产生的,以GFP或LacZ的缺失为标志ey-FLP1;;FRT82B P【Ubi-nlsGFP】苍蝇或ey-FLP1;;FRT82B P[mini-w]P[arm-lacZ]飞到FRT82B划线器1FRT82B划线器2股票。

要生成划线器1去除周围野生组织的克隆眼,ey-GAL4,UAS-FLP1;;FRT82B GMR隐藏ey-FLP2;;FRT82B l(3)cl-R3型1苍蝇被交叉到FRT82B P[Ubi-nlsGFP]标记1苍蝇。划线器1通过GFP的表达标记突变组织。

为了在突变克隆中表达不同的转基因,使用了MARCM系统(Lee和Lou,1999年). 在MARCM系统中,转录激活物GAL4和阻遏物GAL80在微管蛋白发起人,但FLP公司-介导重组FRT公司场地侧翼GAL80管确保克隆中GAL80的丢失,以及随后GAL4依赖性转录的去表达,包括无人机-mCD8-GFP转基因作为阳性克隆标记,特别是在突变克隆组织内。ey-FLP1,UAS-mCD8-GFP;;管-GAL4 FRT82B管-GAL80苍蝇与携带无人机-用任何一种转基因FRT82B型作为控件,或FRT82B划线器1将转基因表达于划线器1克隆。表达RasACT公司在里面e2f1型91突变克隆,FRT82B e2f191FRT82B e2f191 划线器1使用了库存。如果无人机-转基因位于第三条染色体上,产生携带无人机用任何一种转基因FRT82B型FRT82B粗布1.

免疫组织化学

为了分析眼/触角盘,幼虫在三龄时被采摘,组织在4%甲醛中固定20分钟。使用的抗体包括小鼠抗Elav(发育研究杂交瘤库,1:5)、大鼠抗细胞周期蛋白E(1:1000)、兔抗磷酸组蛋白H3(Santa Cruz,1:400)、小鼠抗BrdU(Becton-Dickinson,1:50)和兔抗β-半乳糖苷酶(Rockland,1:400。F-肌动蛋白用指骨苷-四甲基罗丹明异硫氰酸盐(TRITC;Sigma,0.3µM)检测。为了检测凋亡细胞,在磷酸盐缓冲盐水(PBS)中解剖椎间盘,并安装在10µg/ml吖啶橙(Sigma)中。对于S期细胞的检测,在1h BrdU脉冲后进行固定、LacZ免疫检测、进一步固定、酸处理和BrdU表位检测。所有荧光标记样品通过共焦显微镜(Bio-Read MRC1000)进行分析。

致谢

我们感谢Spyros Artavanis-Tsakonas、David Bilder、Bruce Edgar、Mathew Freeman、Iswar Hariharan、Gary Hime、Michael Hoffman、Phil Ingham、Laura Johnston、Elisabeth Knust、Sally Leevers、Marek Mlodzik、Hideyuki Okano、Norbert Perrimon、Tetsuya Tabata、Jessica Treisman和Bloomington果蝇属供应库存中心果蝇属股票,Karen Goulding协助准备数字,Patrick Humbert,Sarah Russell和Joe Sambrook对手稿发表评论。这项工作得到了澳大利亚国家卫生和医学研究基金会以及H.E.R.的Wellcome高级研究奖学金的支持。

工具书类

  • Adachi-Yamada T.和O'Connor,M.B.(2002)《形态发生凋亡:纠正形态发生梯度不连续性的机制》。开发生物。,251, 74–90. [公共医学][谷歌学者]
  • Adachi-Yamada T.、Fujimura-Kamada,K.、Nishida,Y.和Matsumoto,K.(1999)代理信息的扭曲导致JNK依赖性细胞凋亡果蝇属机翼。自然,400, 166–169. [公共医学][谷歌学者]
  • Agrawal N.,Kango,M.,Mishra,A.和Sinha,P.(1995年),肿瘤转化和基因镶嵌中异常的细胞-细胞相互作用致死(2)巨型幼虫(lgl公司),一种肿瘤抑制基因果蝇属.开发生物。,172, 218–229. [公共医学][谷歌学者]
  • Baonza A.和Garcia-Bellido,A.(2000)Notch信号直接控制果蝇属翼盘。程序。美国国家科学院。科学。美国,97, 2609–2614.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Bergmann A.、Agapite,J.、McCall,K.A.和Steller,H.(1998)果蝇属基因隐藏是Ras依赖生存信号的直接分子靶点。单元格,95, 331–341. [公共医学][谷歌学者]
  • 伯格曼·A·图根特曼。,M.,Shilo,B.-Z.和Steller,H.(2002)通过依赖MAPK的凋亡控制调节细胞数量:营养存活信号的机制。开发单元,2, 159–170. [公共医学][谷歌学者]
  • Bilder D.和Perrimon,N.(2000)通过基底外侧PDZ蛋白Scribble定位顶端上皮决定簇。自然,403, 676–680. [公共医学][谷歌学者]
  • Bilder D.,Li,M.和Perrimon,N.(2000)细胞极性和生长的合作调节果蝇属肿瘤抑制剂。科学类,289, 113–116. [公共医学][谷歌学者]
  • Bissell M.L.和Radisky,D.(2001)将肿瘤置于背景中。《自然》杂志癌症版,1, 46–54.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Chen Y.,Lu,Q.,Schneeberger,E.E.和Goodenough,D.A.(2000)通过下调Ras转化的Madin-Darby犬肾细胞中的丝裂原活化蛋白激酶途径来恢复紧密连接结构和屏障功能。分子生物学。单元格,11, 849–862.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Cho K.-O.和Choi,K.-W.(1998)边缘对于镜对称性和形态发生至关重要果蝇属眼睛。自然,396, 272–276. [公共医学][谷歌学者]
  • Davis R.J.(2000)MAP激酶JNK组的信号转导。单元格,103, 239–252. [公共医学][谷歌学者]
  • Dominguez M.和de Celis,J.(1998)Notch建立的背部/腹部边界控制着果蝇属眼睛。自然,396, 276–278. [公共医学][谷歌学者]
  • Duronio R.J.,O'Farrell,P.H.,Xie,J.-E.,Brook,A.和Dyson,N.(1995)转录因子E2F在S期需要果蝇属胚胎发生。基因发育。,9, 1456–1468. [公共医学][谷歌学者]
  • Gardiol D.,Kuhne,C.,Glaunsinger,B.,Lee,S.S.,Javier,R.和Banks,L.(1999)致癌人乳头瘤病毒E6蛋白以椎间盘大肿瘤抑制因子为靶点,进行蛋白酶体介导的降解。癌基因,18, 5487–5496. [公共医学][谷歌学者]
  • Gateff E.(1994)肿瘤抑制和过度生长抑制基因黑腹果蝇:发展方面。国际开发生物学杂志。,38, 565–590. [公共医学][谷歌学者]
  • Go M.J.、Eastman,D.S.和Artavanis-Tsakonas,S.(1998)通过Notch信号控制细胞增殖果蝇属发展。开发,125, 2031–2040. [公共医学][谷歌学者]
  • Halfar K.、Rommel,C.、Stocker,H.和Hafen,E.(2001)Ras控制果蝇属眼睛通过不同的MAP激酶活性阈值。开发,128, 1687–1696. [公共医学][谷歌学者]
  • Hanahan D.和Weinberg,R.A.(2000)癌症的特征。单元格,100, 57–70. [公共医学][谷歌学者]
  • Igaki T.、Kanda,H.、Yamamoto Goto,Y.、Kanuka,H.、Kuranaga,E.、Aigaki,T.和Miura,M.(2002)Eiger,一种TNF超家族配体,可触发果蝇属JNK途径。EMBO J。,21, 3009–3018.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Jacks T.和Weinberg,R.A.(2002)将癌细胞生存研究提升到一个新的维度。单元格,111, 923–925. [公共医学][谷歌学者]
  • Janda E.、Lehmann,K.、Killisch,I.、Jechlinger,M.、Herzig,M.,Downward,J.、Beug,H.和Grunert,S.(2002)Ras和TGFβ协同调节上皮细胞可塑性和转移:Ras信号通路的分离。《细胞生物学杂志》。,156, 299–313.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Karim F.D.和Rubin,G.M.(1998)活化Ras1的异位表达可诱导增生性生长和增加细胞死亡果蝇属影像组织。开发,125, 1–9. [公共医学][谷歌学者]
  • Kennedy N.J.、Sluss,H.K.、Jones,S.N.、Bar-Sagi,D.、Flavell,R.A.和Davis,R.J.(2003)通过JNK信号转导途径抑制Ras刺激的转化。基因发育。,17, 629–637.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Kockel L.、Homsy,J.G.和Bohmann,D.(2001年)果蝇属AP-1:无脊椎动物的经验教训。癌基因,20, 2347–2364. [公共医学][谷歌学者]
  • Kurada P.和White,K.(1998)Ras促进细胞存活果蝇属通过降低调节隐藏表达。单元格,95, 319–329. [公共医学][谷歌学者]
  • Lee T.和Luo,L.(1999)利用可抑制的神经技术细胞标记进行镶嵌分析,以研究神经形态发生中的基因功能。神经元,22, 451–461. [公共医学][谷歌学者]
  • Liotta L.A.和Kohn,E.C.(2001)肿瘤-宿主界面的微环境效应。自然,411, 375–379. [公共医学][谷歌学者]
  • Moreno E.,Basler,K.和Morata,G.(2002a)细胞竞争十进制瘫痪生存因子,以防止细胞凋亡果蝇属机翼开发。自然,416, 755–759. [公共医学][谷歌学者]
  • Moreno E.,Yan,M.和Basler,K.(2002b)TNF信号机制的演变:Eiger触发的JNK依赖性凋亡果蝇属TNF超家族的同源物。货币。生物。,12, 1263–1268. [公共医学][谷歌学者]
  • Nakagawa S.和Huibregtse,J.M.(2000)《人类涂鸦》(Human Scribble,Vartul)的靶点是高风险乳头瘤病毒E6蛋白和E6AP泛素蛋白连接酶介导的泛素降解。分子细胞生物学。,20, 8244–8253.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Neufeld T.P.、de la Cruz,A.F.A.、Johnston,L.A.和Edgar,B.A.(1998)果蝇属机翼。单元格,93, 1183–1193. [公共医学][谷歌学者]
  • Newsome T.P.、Asling,B.和Dickson,B.J.(2000)《分析果蝇属视特异性镶嵌中的光感受器轴突引导。开发,127, 851–860. [公共医学][谷歌学者]
  • Prober D.A.和Edgar,B.A.(2000)Ras1促进果蝇属机翼。单元格,100, 435–446. [公共医学][谷歌学者]
  • Prober D.A.和Edgar,B.A.(2002)Ras1、dMyc和dPI3K信号在发育中的相互作用果蝇属机翼。基因发育。,16, 2286–2299.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Ramet M.,Lanot,R.,Zachary,D.和Manfruelli,P.(2002)JNK信号通路是有效伤口愈合所必需的果蝇属.开发生物。,241, 145–156. [公共医学][谷歌学者]
  • Richardson H.、O'Keefe,L.V.、Marty,T.和Saint,R.(1995)异位细胞周期蛋白E的表达诱导过早进入S期,并破坏细胞内的模式形成果蝇属眼部影像盘。开发,121, 3371–3379. [公共医学][谷歌学者]
  • Royzman I.、Whittaker,A.J.和Orr-Weaver,T.L.(1997)果蝇属DP和E2F区分G1相关转录程序的-S进展。基因发育。,11, 1999–2011.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Sawamoto K.,Taguchi,A.,Yamada,C.,Jin,M.和Okano,H.(1998)Argos在发育过程中诱导细胞死亡果蝇属眼睛通过抑制Ras通路。细胞死亡不同。,5, 262–270. [公共医学][谷歌学者]
  • Shields J.M.、Pruitt,K.、McFall,A.、Shaub,A.和Der,C.J.(2000)《理解Ras:‘它不会结束’,直到结束’。趋势细胞生物学。,10, 147–154. [公共医学][谷歌学者]
  • Takatsu Y.、Nakamura M.、Stapleton M.、Danos M.C.、Matsumoto K.、O'Connor M.B.、Shibuya H.和Ueno N.(2000)TAK1参与C-Jun N末端激酶信号转导果蝇属发展。分子细胞。生物。,20, 3015–3026.[PMC免费文章][公共医学][谷歌学者]
  • Vermeer P.D.、Einwalter,L.A.、Moninger,T.O.、Rokhlina,T.、Kern,J.A.、Zabner,J.和Welsh,M.J.(2003)受体和配体的分离调节上皮生长因子受体的激活。自然,422, 322–326. [公共医学][谷歌学者]
  • Wodarz A.(2000)《肿瘤抑制剂:连接细胞极性和生长控制》。货币。生物。,10,R624–R626。[公共医学][谷歌学者]
  • 伍兹·D.F.和布莱恩特·P.J.(1991)圆盘-大抑癌基因果蝇属编码位于隔膜连接处的鸟苷酸激酶同源物。单元格,66, 451–464. [公共医学][谷歌学者]
  • Yang L.和Baker,N.E.(2001年)EGFR/Ras/Raf通路在光感受器细胞规范中的作用果蝇属视网膜。开发,128, 1183–1191. [公共医学][谷歌学者]

文章来自欧洲分子生物学组织由以下人员提供自然出版集团