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发展。2009年1月1日;136(1): 29–34.
2008年12月7日在线发布。 数字对象标识:2014年10月12日/2006年2月2日
预防性维修识别码:PMC2648609型
PMID:19060331

淋巴结的形成不需要淋巴囊

关联数据

补充资料

总结

淋巴管从大多数器官的组织间隙排出淋巴液,并将其返回血管系统进行再循环。在到达循环系统之前,由淋巴运输的抗原和病原体被淋巴结捕获。正如佛罗伦斯·萨宾在一个多世纪前提出并最近得到验证的那样,哺乳动物淋巴管系统起源于静脉,起源于散布在胚胎体轴线上的原始淋巴囊。正如Sabin提出的,淋巴结起源于那些胚胎原始淋巴囊,这一点已被普遍接受。然而,我们现在证明,淋巴结发育的开始并不需要淋巴囊。我们发现E14.5中淋巴结的形成是正常启动的探头1-无淋巴囊和淋巴管的小鼠胚胎,E17.5探头1条件突变胚胎,具有缺陷的淋巴囊。然而,随后在这些发育中的淋巴结内聚集造血细胞的效率较低。

关键词:PROX1,淋巴内皮细胞,淋巴组织诱导细胞,淋巴结,淋巴囊

简介

一个多世纪前,佛罗伦萨宾提出了哺乳动物淋巴管系统发育的模型(萨宾,1902年). 根据这个模型,内皮细胞从静脉中发芽形成原始淋巴囊。淋巴管内皮细胞(LECs)从这些囊中萌芽并形成整个淋巴管网络。通过分析淋巴管内皮的表达,为Sabin的开创性工作提出的静脉起源提供了初步支持素食者3(飞行高度4),素食主义者,Prox1以及其他基因,其活性对哺乳动物胚胎中整个淋巴管系统的形成至关重要(Kaipainen等人,1995年;Kukk等人,1996年;Wigle等人,2002年;威格尔和奥利弗,1999年). 的表达式探头1对于在体内和体外确定静脉内皮细胞中LEC表型是必要和充分的(Hong等人,2002年;Petrova等人,2002年;Wigle等人,2002年). Sabin最初的静脉模型最近通过遗传谱系追踪方法进行了验证(Srinivasan等人,2007年).

除了提出哺乳动物淋巴管系统的静脉起源外,萨宾还提出淋巴结(LN)起源于胚胎原始淋巴囊(萨宾,1909年). 一个世纪后,尽管最近出现了合适的分子标记和小鼠模型,但这一教条仍然没有受到质疑,人们仍然普遍认为淋巴结需要淋巴囊才能形成。

在本文中,我们通过利用鼠标模型来解决这个重要问题,其中探头1功能活性要么纯合子缺失,要么半合子,要么有条件地从静脉LEC祖细胞中去除。在这些突变小鼠中,淋巴囊缺失或有缺陷,提供了一个理想的系统来评估淋巴囊是否是LN形成所必需的。

我们的结论是,原始淋巴囊对于哺乳动物LN anlagen的初始形成是不必要的。然而,它们进一步发展为与基质细胞相互作用的紧密造血细胞簇,似乎对LEC和/或相对正常的淋巴囊的存在敏感。

材料和方法

老鼠

C57BL/6小鼠购自哈伦(荷兰霍斯特)和淋巴毒素α缺乏型(Lta公司-/-)老鼠是从查尔斯河(荷兰马斯特里赫特)购买的。The generation of探头1+/-,Prox1-/-、Tie2-Cre探头1flox/flox公司之前曾报道过老鼠(威格尔和奥利弗,1999年;Kisanuki等人,2001年;Harvey等人,2005年). 所有动物实验都得到了当地动物实验委员会的批准。

将小鼠交配过夜,并将阴道塞检测的当天记为胚胎期第(E)0.5天。在不同的时间点处死怀孕的雌性,并通过在OCT中埋藏和冷冻的方式获取胚胎并准备切片(Sakura Finetek Europe,Zoeterwoude,荷兰)。

免疫荧光

胚胎冷冻切片(7μm)后,将切片固定在脱水丙酮中2分钟,然后风干15分钟。内源性亲和素被亲和素-生物素阻断剂阻断(加利福尼亚州伯林盖姆Vector Laboratories)。然后将切片在补充有5%(v/v)小鼠血清的PBS中预孵育10分钟。用一级抗体孵育45分钟,然后用Alexa-Flur-labeled共轭物(荷兰布雷达Invitrogen)孵育30分钟。所有培养均在室温下进行。切片用Hoechst 33342(Invitrogen)复染10分钟,并在Leica TCS SP2共焦激光扫描显微镜(Leica Microsystems,Rijswijk,荷兰)上进行分析。

抗体

抗体GK1.5(抗CD4)、MECA-367(抗粘膜血管寻址素细胞粘附分子1(MAdCAM1))、MP33(抗CD45)、8.1.1(抗足蛋白)和ERTR7(识别成纤维网状细胞分泌的细胞外基质成分)使用G-Sepharose蛋白(瑞典乌普萨拉法玛西亚)从杂交瘤细胞培养上清液中进行亲和纯化。抗体被生物素化或用Alexa-Fluro 488、546或633(Invitrogen)标记。抗体A7R34(抗IL7Rα;eBioscience,加利福尼亚州圣地亚哥)、429(抗VCAM1;eBioscience)、Avas12a1(抗VEGFR2;eBioccience;Neomarkers,加利福尼亚州弗里蒙特)、AFL4(抗VEGFR3;eBioscience)、抗PROX1(德国布伦瑞克ReliaTech)、抗RORγt(由D.Littman提供)(Sun等人,2000年)使用生物素化或非结合的抗β-半乳糖苷酶(MP Biomedicals,Aurora,OH),并视情况与Alexa-Fluro 488、546或633-结合的链霉亲和素、抗鼠或抗兔IgG或抗亚美尼亚仓鼠Cy3可视化。

结果和讨论

LN anlagen中LECs的鉴定

为了确定哺乳动物LNs的起源,我们首先评估了LECs对E14.5和E16.5野生型小鼠胚胎LNs发育的贡献。众所周知,在LN器官发生早期,在与表达淋巴毒素的造血淋巴组织诱导剂(LTi)细胞相互作用后,表达淋巴毒素β受体(LTβR)的间充质细胞分化为专门的基质组织细胞(Mebius,2003年;Vondenhoff等人,2007年). 然而,在LTβR依赖过程开始之前,某些类型的信号诱导LTi细胞和基质细胞的积累(Eberl等人,2004年;怀特等人,2007年;吉田等人,2002年). 迄今为止,来自原始淋巴囊或分化LEC的诱导信号被认为是启动LTi细胞和基质细胞聚集过程的主要候选信号。

为了表征LTi细胞簇部位LECs的存在,我们用LTi细胞表达的CD4抗体对野生型LN抗原进行免疫染色(Mebius等人,1996年)IL7Rα,由LTi细胞及其前体表达(库普多等人,2004年;吉田等人,2002年)CD45(PTPRC-小鼠基因组信息学),由所有造血细胞表达。该分析表明,~50%的CD45+无核细胞中的细胞对应于LTi细胞,如E14.5处CD4和IL7Rα的表达所示(图1A). 簇大小在E14.5和E16.5之间增加(图1B). 在E14.5,所有LN无蛋白都存在于胚胎中;然而,腹股沟和腘窝淋巴结由非常小的LTi细胞簇组成(数据未显示)。因此,使用含有较大LTi细胞簇(即腋下、肱部、肾部、颈部、肠系膜、胸腺和主动脉)的anlagen进行详细分析。

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野生型腋窝淋巴结中淋巴管内皮细胞的特征。在E14.5(A、C、E、G)和E16.5(B、D、F、H)检查淋巴结(LN)。(A、 B)通过CD4(绿色)(由LTi细胞表达)、IL7Rα(红色)(由LTi细胞及其前体细胞表达)和CD45(蓝色)(由所有造血细胞表达)的联合染色鉴定LNs。(C-H公司)随后的切片进行染色,检测(C,D)淋巴管内皮细胞(LEC)标记物LYVE1(蓝色)、基质标记物MAdCAM1(红色)和内皮细胞标记物VE-cadherin(绿色)、(E,F)LEC标记物PROX1(绿色)和LN基质细胞标记物足蛋白(红色)血管内皮细胞标记物VEGFR3(蓝色),以及(G,H)血管内皮细胞标志物VEGFR2(绿色)、MECA32(红色)和VEGFR1(蓝色)。C和E中的箭头表示淋巴管内皮的衬里。G和H中的箭头表示血管。比例尺:A-H中75μm。

为了鉴定LN anlagen中的LEC,我们用基质和内皮标记物MAdCAM1、VE-cadherin(钙粘蛋白5)、VEGFR1(FLT1)、VEGFR2(KDR)、MECA32(PLVAP)以及LEC标记物LYVE1、足蛋白、PROX1和VEGFR3(FLT4)对邻近切片进行免疫染色(Banerji等人,1999年;Breier等人,1996年;Breiteneder-Geleff等人,1999年;Wigle和Oliver,1999年;库普多等人,2004年;Kaipainen等人,1995年;Mebius等人,1996年;Hallmann等人,1995年). 在E14.5,腋生LN原基被LYVE1包围+(图1C)或PROX1+和足平面蛋白+(图1E)LECs和VEGFR1是造血细胞簇的核心+血管内皮生长因子2+MECA32型-检测到血管(图1G,箭头)。在E16.5处,该血管位于造血簇的远端,与MAdCAM1相对+LYVE1系列+LEC(发光二极管)(图1H,箭头)。较小的VEGFR1-血管内皮生长因子2+MECA32型+血管也位于两个发育阶段的基质细胞之间(图1G、H).

淋巴囊不需要启动淋巴结形成

接下来,我们确定与LN anlagen中最早的LTi细胞簇共定位的LEC是否提供了形成这些簇所需的某种类型的诱导信号。为此,为了最终确定LECs/淋巴囊是否调节哺乳动物LN发育的启动,我们利用现有的探头1-/-小鼠胚胎(威格尔和奥利弗,1999年).探头1活性是鉴定胚胎主静脉中静脉内皮细胞LEC表型所必需的(Wigle等人,2002年). 根据PROX1对LEC表型的说明,并符合Sabin的原始建议(萨宾,1902年),LEC祖细胞离开主静脉,形成原始淋巴囊,随后形成整个淋巴网络(威格尔和奥利弗,1999年;Wigle等人,2002年). 探头1-无胚胎,LEC规范未发生;因此,这些突变胚胎缺乏所有LEC衍生物,如淋巴囊和淋巴管(威格尔和奥利弗,1999年;Wigle等人,2002年).

如上所述,E14.5中LN原体的存在探头1-/-通过筛选CD45簇分析胚胎+CD4细胞+与MAdCAM1密切接触的LTi细胞+基质细胞和内皮细胞。在E14.5进行分析,此时可以清楚地检测到LN anlagen,如探头1-/-胚胎不能存活超过这个阶段(威格尔和奥利弗,1999年). 该分析表明,在LEC和淋巴囊缺陷的E14.5中,LTi细胞和表达MAdCAM1的基质细胞的积累没有受到影响探头1-无胚胎(图2C、F、I). 这一结果表明,在导致LN形成的初始阶段,不需要LEC和/或原始淋巴囊。然而,MAdCAM1的组织+突变体LN anlagen中的细胞似乎受到影响。通常,在这个阶段,MAdCAM1+细胞包裹造血细胞(图2G,箭头);相反,在探头1-空胚,MAdCAM1+细胞与造血细胞混合,不包裹造血簇(图2I,箭头)。此外,与野生型胚胎相比,E14.5探头1-/-胚胎似乎不含腹股沟和腘窝淋巴结无蛋白。由于这些anlagen通常最后形成,它们的缺失可能是由于探头1-无胚胎。

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淋巴结无淋巴管存在于探头1-/-小鼠胚胎。MAdCAM1(绿色)、CD4(红色)和CD45(蓝色)的联合染色表明大多数LN无蛋白存在于E14.5中探头1-/-胚胎。所示为(A-C公司)肠系膜淋巴结(D-F型)肾脏LN和(G-I公司)野生型腋窝淋巴结,探头1+/-探头1-/-胚胎。箭头表示MAdCAM1+封装造血细胞(G)或造血细胞和MAdCAM1无组织簇的细胞+单元格(I)。比例尺:A-I为75μm。

接下来,我们确认CD45的簇+CD4细胞+检测到的单元格探头1-空胚对应于LTi细胞,因此真正代表了最早的LN无核细胞。为此,我们对E14.5的部分进行了免疫染色探头1-生成LTi细胞所需的核孤儿受体RORγt(RORC)的零胚(Eberl等人,2004年). 聚集性CD45+CD4细胞+早期LN anlagen中的造血细胞表达RORγt,从而确认其LTi细胞身份(参见补充材料). 这一初步分析最终证明,与公认的教条相反,哺乳动物淋巴结形成的开始并不需要淋巴囊。

淋巴管系统缺陷不影响淋巴结无拉根形成

为了确定探头1我们分析了导致淋巴管缺陷的活动会影响LN anlagen的正常形成探头1-表现出错位和漏淋巴管的杂合小鼠(Harvey等人,2005年). CD45、CD4和IL7Rα(LTi细胞及其前体)、VEGFR1、MECA32和VEGFR2(血管系统)以及PROX1、足蛋白和MAdCAM1(LECs和基质细胞;我们未发表的结果)的表达(库普多等人,2004年;Mebius等人,1996年)在E14.5野生型中进行了比较,探头1+/-探头1-/-胚胎。LTi细胞簇的形态或大小没有明显变化(图3A、B),出现较大的VEGFR1+血管内皮生长因子2+MECA32型-血管(图3D、E,箭头),淋巴管内皮衬里(图3G,H,箭头),或出现较小的VEGFR1-血管内皮生长因子2+MECA32型+血管(图3D,E,箭头)介于野生类型和探头1-杂合子同卵双胞胎。相比之下,较大的VEGFR1+蔬菜2+MECA32型-血管(图3F)和淋巴管内皮的衬里(图3I)在中未检测到探头1-空室友。

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淋巴结原质在探头1-杂合子和探头1-使小鼠胚胎无效。为了确定PROX1缺陷是否以剂量依赖性的方式影响LN的发展,我们比较了E14.5野生型LN anlagen,探头1+/-探头1-/-胚胎。(A-C公司)对切片进行CD45(蓝色)、CD4(绿色)和IL7Rα(红色)染色,以识别形成LN anlagen的LTi细胞簇。(D-I公司)相邻切片染色(D-F)VEGFR1(绿色)、MECA32(红色)和VEGFR2(蓝色)以检测内皮细胞,并染色PROX1(G,H,绿色)、β-半乳糖苷酶(β-gal)(I,绿色),足蛋白(G-I,红色)和MAdCAM1(G-I)以检测淋巴管内皮细胞和LN anlagen内的基质细胞。野生型LN anlagen和探头1+/-胚胎似乎无法区分,尽管淋巴上皮和血内皮在淋巴结内的组织在探头1-/-胚胎。D和E中的箭头表示血管,箭头表示小血管。G和H中的箭头表示淋巴管内皮的衬里。比例尺:A-I中75μm。

接下来,我们追踪了成人LN形成的进展探头1-杂合小鼠。为此,我们分析了B细胞和T细胞的组织,滤泡树突状细胞的存在,含有纤维母细胞网状细胞的T细胞区,以及外周和肠系膜淋巴结中的高内皮微静脉和中间窦。未观察到野生型对照的明显差异(见图S2补充材料).

Prox1条件突变小鼠LN形成的进展受到影响

在确定LEC和淋巴囊的缺乏探头1-无效胚胎并不影响LN形成的开始,尽管在探头1-杂合子胚胎,LN形成正常,我们研究了LEC数量的大幅减少和初级淋巴囊的缺陷是否会影响LN形成的开始或LTi细胞初始簇进一步发展为真正的LN。为此,我们利用了可用的探头1条件突变胚胎(Harvey等人,2005年)其中探头1从静脉LEC祖细胞中去除活性。弗洛伊德探头1小鼠(Harvey等人,2005年)被一个Tie2-Cre铁路转基因株系。在E10.5左右,Tie2(Tek)在主静脉的内皮细胞中表达(Kisanuki等人,2001年;佐藤等人,1993年;Harvey等人,2005年;Srinivasan等人,2007年). 我们之前已经证明,在PROX1表达后,这些静脉内皮细胞采用LEC表型,并从静脉中萌芽形成初级淋巴囊(Wigle等人,2002年). 因此,我们使用Tie2-Cre铁路生成探头1淋巴管生成严重受损的无条件胚胎(Srinivasan等人,2007年). 虽然可变,但其中一些探头1条件突变胚胎在~E11.5处的前主静脉内或周围仅含有少量表达PROX1的LEC。在E15.5中,它们只表现出一些偶然的、分散的浅层LEC(Srinivasan等人,2007年). 重要的是,一些受影响更严重的突变胚胎没有深层淋巴管(Srinivasan等人,2007年). 总之,尽管标准探头1-空胚完全没有LEC,因此淋巴囊和淋巴管受到严重影响探头1条件突变胚胎表现出小而形态缺陷的淋巴囊(我们未发表的观察结果)(Srinivasan等人,2007年).

第17.5页探头1条件突变胚胎是由探头1+/-Tie2 Cre/前置器1弗洛克斯/+老鼠(Srinivasan等人,2007年). 如前所述(Srinivasan等人,2007年),在一些严重受累的患者中,仅偶尔出现分散的表面表达PROX1的LECTie2-Cre/Prox1型弗洛克斯/-突变胚胎。用MAdCAM1、CD4和IL7Rα抗体进行免疫染色显示,E17.5中存在所有LN探头1条件突变胚胎(数据未显示)。在受影响最严重的胚胎中(基于切除效率和表达PROX1的LEC数量有限),表达CD4的LTi细胞簇的大小大大减小(数据未显示)。在受影响较轻的胚胎中,有更多表达PROX1的LECs,LTi细胞簇外观正常,与MAdCAM1共定位+LYVE1系列+观察到细胞(图4B). 然而,对正在发育的LN中基质组织细胞的进一步分析表明,条件突变胚胎中MAdCAM1和VCAM1的表达降低(图4C、D). 这些结果表明,LEC和/或淋巴管系统有助于定位LTi细胞,从而刺激间充质细胞向基质组织者分化。这些条件突变株中LECs和淋巴管数量的减少阻碍了正常间充质细胞的分化。

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E17.5中显示淋巴结无淋巴结探头1无条件小鼠胚胎。(A、 B)野生型和条件性阴性染色(Tie2-Cre/Prox1型flox/flox公司)带有抗LYVE1(绿色)、MAdCAM1(红色)和CD4(蓝色)抗体的肱淋巴结显示+共表达MAdCAM1的LECs在LN anlagen中缺失Tie2-Cre/Prox1型flox/flox公司胚胎。(C、 天)用抗MAdCAM1抗体(绿色)、VCAM1抗体(红色)和足蛋白抗体(蓝色)对相邻切片进行染色,结果表明+VCAM1公司+野生型LN抗原(C)中丰富的基质组织细胞在Tie2-Cre/Prox1型flox/flox公司LN anlagen(D)。比例尺:A-D为75μm。

我们的结果最终证明,LTi细胞的初始聚集不需要LEC、淋巴囊或淋巴管的存在。这个结果推翻了萨宾一个世纪前提出的最初模型,该模型表明淋巴囊最终转化为淋巴结。我们还确定集群LTi细胞的后续组织在探头1-无胚胎,这表明LEC和/或淋巴囊是LN囊形成和造血细胞在发育中LN内定位所必需的。观察到的LN缺乏组织探头1条件突变胚胎可能是由于表达CCL21的LECs缺乏引起的,因为LTi细胞对CCL21产生反应,LECs中CCL21生成可能进一步组织第一批LTi细胞(Honda等人,2001年).

有必要进行额外的分析,以确定在LN将发育的部位吸引和聚集第一批LTi细胞所涉及的诱导信号。我们观察到LN通常发生在血管分叉处;因此,血管分支所需的信号可能会刺激LN的形成。因此,第一个诱导信号应导致趋化因子表达,而趋化因子的表达负责吸引第一个LTi细胞。哪些趋化因子有助于这一过程,以及它们是如何被诱导的,还需要进一步研究。

补充材料

本文的补充材料可在以下网址获得:http://dev.biologists.org/cgi/content/full/136/1/29/DC1

【补充资料】

笔记

我们感谢S.Srinivasan对手稿的批判性阅读,感谢Angela McArthur的科学编辑。这项工作得到了VICI拨款的支持(918.56.612)(R.E.M.)和基因组学拨款(050-10-120)荷兰科学研究组织(M.F.V.)R01-HL073402(G.O.)来自国立卫生研究院,由癌症中心支持CA-21765号来自国家癌症研究所和美国黎巴嫩叙利亚联合慈善机构(ALSAC)。存放在PMC中,12个月后发布。

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文章来自发展(英国剑桥)由以下人员提供生物学家公司