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生理学杂志。1998年10月1日;512(第1部分):61–73。
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PMID:9729617

N型和L型钙通道参与去极化诱导的大鼠海马CA1细胞抑制抑制

摘要

  1. 我们研究了大鼠海马脑片CA1锥体神经元在全细胞电压钳下去极化诱导抑制(DSI)。DSI,单突触诱发GABA的瞬时减少A类通过将锥体细胞去极化至−10或0 mV,持续1或2秒,可诱导持续约1分钟的能量IPSC。
  2. 提高细胞外钙2+浓度增加了DSI,改变DSI诱导电压阶跃表明DSI的电压依赖性类似于高压活化钙2+频道。
  3. P型和Q型钙2+通道阻滞剂ω-琼脂毒素TK(200 n和1μ)以及R型和T型钙2+通道阻滞剂Ni2+(100 μ)减少IPSC而不减少DSI。
  4. 特定N型钙2+通道拮抗剂ω-芋螺毒素GVIA(250 n)降低了IPSC振幅,几乎完全废除了DSI。
  5. 阻塞L型钙2+硝苯地平(10μ)对我们的标准方案诱导的IPSC或DSI没有影响,但减少了未阻断Na诱导的DSI+-和钙2+-当2(三乙胺基)-N个-记录吸管溶液中省略了(2,6-二甲基苯基)乙酰胺(QX-314)。
  6. 尽管细胞内钙2+未测量储存量,DSI不受环丙磺酸(CPA,20-40μ),Ca的阻断剂2+吸收到细胞内储存。
  7. 我们得出结论,DSI是由Ca启动的2+在一定条件下,通过N型钙和L型钙的流入2+频道。

钙依赖性调节突触传递在神经系统中普遍存在,主要发生在突触前神经末梢。然而,兴奋性传递也会受到突触后Ca增加的影响2+浓度([Ca2+]). 长期增强(LTP)(马伦卡语等。1988)和长期抑郁(LTD)(卡明斯等。1996)完全依赖于突触后[Ca的增加2+]此外,越来越多的证据表明钙2+-抑制性突触传递的依赖性调节。突触后[Ca升高2+]可以降低抑制传播的功效(穆吉诺等。1991;Stelzer,1992年). 在这些研究中,增加的[Ca2+]被发现降低突触后GABA的反应性A类GABA受体。

钙的另一种形式2+-海马记录的神经元中也存在GABA能传递的依赖性调节(Pitler和Alger,1992年,1994)或小脑(拉诺等。1991;文森特·马蒂(Vincent&Marty),1993年)切片制备和培养的神经元(Ohno-Shosaku公司等。1998),被称为去极化诱导抑制(DSI)(Alger&Pitler,1995年). DSI是突触后神经元短暂去极化后单突触GABA能传递的短暂(~1分钟)减少。DSI可以通过去极化电压阶跃或电流注入诱导的一系列动作电位在主细胞中诱导。与涉及GABA敏感性突触后降低的现象不同A类受体,DSI期间观察到的抑制减少是通过GABA释放减少在突触前介导的。突触后GABA没有减少A类小脑或海马的受体敏感性。由于DSI是在突触后诱导并在突触前表达的,因此可以推断逆行信使的参与(拉诺等。1991;Pitler&Alger,1994年;阿尔杰等。1996). 抑制传递减少的发现可能会促进某些类型的癫痫(麦克纳马拉,1994年)以及诱导长期增强(Wigström和Gustafsson,1983年),强调了这种现象的生理重要性。

DSI为Ca的假设2+依赖性基于以下几个观察结果:(1)据报道,DSI随着电压依赖性Ca的下降而下降2+尾流(拉诺e(电子)阿尔。1991); (2) DSI可以通过应用Ca来防止2+-免费解决方案(拉诺e(电子)阿尔。1991),或添加Cd2+到洗浴介质(拉诺e(电子)阿尔。1991;Ohnu-Shoshaku公司e(电子)阿尔。1998); (3) DSI是由诱导Ca的大电压阶跃引起的2+流入,流入(拉诺e(电子)阿尔。1991;Pitler&Alger,1992年)即使细胞内2(三乙胺基)-N个-(2,6-二甲基苯基)乙酰胺(QX-314)用于防止钠+流入,流入(Pitler&Alger,1994年)在某些细胞中,L型钙可以增强DSI2+通道激动剂Bay K 8644(Pitler&Alger,1992年); 最后,(4)当高亲和力钙浓度较高时,不存在DSI2+缓冲液BAPTA存在于记录吸管中(Pitler&Alger,1992年,1994). 因此,证据支持DSI是由增加的[Ca介导的推断2+]这可能是通过激活电压依赖性钙来实现的2+频道。然而,除了Bay K 8644数据外,没有证据表明Ca2+通道可以调节DSI。

[Ca增加2+]可通过激活电压依赖性钙而发生2+NMDA受体的通道(VDCC)(Mayer&Westbrook,1987年),或遵循Ca2+从细胞内储存释放(Berridge&Irvine,1984年). 由于NMDA受体在我们关于单突触抑制传递的DSI的实验中被阻断,我们将重点放在VDCC和细胞内存储作为[Ca升高的可能原因2+]有证据表明细胞内钙2+储存于CA1神经元(卡拉舒克等。1997). 这些细胞还表达多种VDCC,参与多种细胞功能,如控制细胞兴奋性、基因表达、神经递质释放和信息处理(邓拉普等。1995). 药理学研究表明至少存在六种不同的钙亚型2+通道、L、N、T、P、Q和R(邓拉普等。1995;等。1995). 为了充分了解DSI机制,了解Ca的特定途径是否重要2+入口是显著的,或者如果体积有任何增加[Ca2+]足以诱发DSI。此外,这些通道受到许多神经递质系统的调节。如果VDCC参与DSI的诱导,那么神经递质系统可以通过改变DSI来调节细胞兴奋性。因此,重要的是确定哪种钙2+通道对DSI的诱导是必要的,细胞内钙2+商店对DSI有贡献。

我们进行了目前的实验来解决这些问题。我们得出结论,DSI主要由钙引起2+通过N型和L型VDCC流入。P型、Q型、R型和T型似乎不起作用。看来Ca2+细胞内储存物的释放可能不是诱导DSI的必要条件。这项工作的初步报告以摘要形式出现(伦茨等。1997).

方法

切片的制备

成年雄性Sprague-Dawley大鼠(125-300 g,30-60天龄)用氟烷深度麻醉并斩首。将两个海马移走,安装在琼脂块上,并放置在含有含氧、部分冷冻浴溶液的切片室中(见下文)。用振动棒(国际技术产品公司)切割横向切片(400μm厚),并将其转移到保温室中,在那里将其保持在生理盐水和湿润95%O的界面处2-5%一氧化碳2室温(20–24°C)下的大气。切片在转移到浸没式灌注室之前,至少需要1小时才能恢复(尼科尔和阿尔杰,1981年)用浴液(29–31°C)在0.5–1 ml min的温度下灌注−1

解决

镀液中含有以下物质(m):120氯化钠,25氯化钠,3氯化钾,2.5氯化钙2,2 MgSO4,1个NaHPO4和10葡萄糖。6-氰基-7-硝基喹啉-2,3-二酮(CNQX,20μ)和2-氨基-5-磷酸(APV,50μ)在所有实验中,均存在于盐水中,以阻断离子型谷氨酸受体介导的反应。在检测DSI对细胞外Ca依赖性的实验中2+浓度([Ca2+]o个),除了Ca浓度2+被提升至5米和MgSO4省略了。

全细胞贴片电极的电阻为3–6 MΩ,并填充了两种溶液中的一种(M):(A)100 CsCHSO公司,50–60 CsCl,10 Hepes,2 BAPTA,0.2 CaCl2,2 MgATP,1 MgCl2,0.3 Tris-GTP,5 QX-314,pH 7.25;(B) 150–160立方厘米SO公司,10 Hepes,2 BAPTA,0.2 CaCl2,2 MgATP,1 KCl,1 MgCl2pH值7.25。QX-314块Na+-依赖动作电位与某些K+通道(安德拉德,1991年). 我们发现,解决方案A通常会产生更稳定的录音;然而,除了图6,使用两种解决方案的结果没有差异,并且数据已经合并。以下实验图6分别讨论。

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在某些条件下L型钙2+渠道可以在DSI中发挥作用

A类硝苯地平(10μ),阻止L型钙2+通道,不会阻止大电压阶跃引起的DSI,也不会影响IPSC振幅。左侧面板的校准值也适用于右侧面板。B类,一项实验的典型时间进程表明硝苯地平对DSI没有影响。符号与图3C类C类,组数据(n个=8)表明硝苯地平的DSI与对照条件下的DSI没有差异(P(P)>0.2)使用我们的标准DSI诱导协议。D类,通过一个小电压阶跃(至−25或−20 mV)诱发DSI并用缺乏QX-314的电极记录的细胞组数据表明,DSI显著降低了10μ硝苯地平(*P(P)=0.03时,n个=4),而在相同细胞中由大电压阶跃(至−5或0 mV)引发的DSI未受到硝苯地平的显著影响(P(P)> 0.4,n个= 4).

CNQX和QX-314购自Research Biochemicals International,BAPTA购自Molecular Probes。ω-琼脂毒素TK,P型和Q型钙的选择性阻断剂2+通道(寺本等。1995)从Alomone Labs(以色列耶路撒冷)购买。所有其他药物和化学品均来自Sigma。

全细胞记录和数据分析

CA1锥体细胞记录采用“盲”全细胞补丁灯记录技术。所有实验均使用Axoclamp-2或Axopatch 200A(Axon仪器)。细胞在断裂后很快被电压钳制到−70 mV。可接受的细胞的静息膜电位等于或大于−55 mV,输入电阻大于35 MΩ。在实验开始时,串联电阻小于12 MΩ,并得到60-70%的补偿。如果在实验期间串联电阻增加到大于30 MΩ,则丢弃电池。液结电位很小,没有进行修正。

双极同心刺激电极(罗德斯电子公司)位于oriens或放射状s.层,以允许CA1锥体细胞的正向激活。诱发的抑制性突触后电流(eIPCS)在0.3 Hz下被激发,在2 kHz下用八极贝塞尔滤波器(美国马萨诸塞州哈弗莱尔的频率设备)过滤,并在5 kHz下由Digidata 1200模数转换器(Axon Instruments)数字化。数据也通过14位PCM数字化系统(Neuro-order DR-484,Neuro Data Instruments Corp.)以22 kHz的频率进行数字化,存储在基于VCR的磁带录音机上,并通过pCLAMP 6.0软件(Axon Instruments)播放到计算机中进行离线分析。使用Student’s pairated对数据进行统计分析测试(SigmaStat、Jandel Scientific、Corte Madera、CA、USA)。使用Student’s unpartied评估预孵育切片组数据的统计意义测试。选择的显著性水平为P(P)<0.05,所有数据均为平均值±s.e.m.公司。

除另有说明外,每隔90–120秒以1或2秒的去极化电压阶跃至−10或0 mV诱发DSI。为了量化eIPSC的DSI,我们通常将去极化步骤后的五个IPSC的平均值与去极化步骤前的八个IPSC平均值进行比较。组数据通常表示为“%DSI”,它是根据以下公式计算得出的:

方程式图像

哪里控制IPSC(IPSCC类)是电压阶跃和测试IPSC(IPSC)之前八个eIPSC的平均值T型)是步骤后五个eIPCS的平均值。如前所述,在一些实验中,我们还确定了不同条件下DSI期间的“绝对IPSC减少”。IPSC的绝对减少量只是IPSC之间的差异(pA)C类和IPSCT型如上所述。对于每个细胞,在对照条件下以及在药物存在下进行三到六次DSI试验,以获得该细胞的平均%DSI。钙电流由500ms电压阶跃至−10或0mV引起。电流为Cd2+-或减去泄漏,然后测量峰值电流。为了量化药物对控制IPSC的影响,我们取了控制条件下和药物存在下至少25个IPSC的平均值。

结果

我们实验室以前的工作(Pitler&Alger,1992年)表明细胞内高浓度的Ca2+螯合剂BAPTA阻止了海马DSI,因此提示细胞内钙浓度升高([Ca2+])对其归纳是必要的。然而,尚不清楚这种钙的来源2+是细胞外空间、细胞内储存或两者兼而有之。通过降低[Ca2+],BAPTA可能干扰许多过程,因此,其对DSI的预防并不能明确证明DSI直接依赖于[Ca]2+]BAPTA实验的另一个缺点是,BAPTA快速扩散到突触后细胞,阻止了DSI的观察。因此,这些细胞不能作为自己的对照。

DSI依赖于[Ca2+]o个

首先,我们确认DSI依赖于细胞外钙2+通过增加[Ca2+]o个.在2.5 m处2+和2.0米2+,对突触后细胞施加1s的去极化步骤至−10 mV,导致IPSC振幅(DSI)在电压阶跃后的一个瞬态周期内降低(图1A类,左轨迹)。提高细胞外钙2+浓度至5米(高钙2+),同时降低Mg2+标称浓度为0 m导致同一小区DSI的幅度和持续时间急剧增加(图1A类,中间轨迹)。高[Ca的影响2+]o个IPSC振幅和DSI在清洗后可逆(图1A类,右轨迹)。增加[Ca2+]o个(图1B类,中间记录道)增加DSI,与对照Ca中的DSI量无关2+条件。即使降低刺激强度以诱发高[Ca的IPSC,DSI的增加仍保持不变2+]o个(图1B类,右迹线)的振幅与低[Ca记录的振幅相似2+]o个条件(图1B类,左轨迹)。存在5m时,DSI百分比也有类似增加(见方法)2+在所有测试的五个细胞中都能看到。DSI从对照条件下的23.0±5.9%显著增加到高[Ca存在时的41.9±7.8%2+]o个这些结果表明DSI依赖于细胞外钙2+,并表明1s电压步进协议引起的DSI程度可以调制。因此,该协议适用于所提出的实验。

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DSI对[Ca的变化敏感2+]o个

A类,从−70 mV到−10 mV的保持电位进行1s的去极化步骤(此处和随后的图中显示为向上偏转),导致DSI(41%)为2.5 m2+和2.0米2+在细胞外溶液中(左图)。用高钙溶液灌注2+(5米)名义上为0 m2+在同一个单元(中间记录道)中,DSI(到70%)和IPSC振幅大大增加。高钙的影响2+DSI和IPSC振幅在清洗后可逆(右迹线;43%DSI)。B类另一种细胞,在对照条件下DSI很小(左图),但通过提高细胞外[Ca2+](中间轨迹)。在降低高[Ca刺激强度后,DSI仍然增强2+]o个以获得与控制条件下(右轨迹)振幅相似的IPSC。

DSI依赖于Ca2+通过VDCC流入

如果Ca2+通过VDCC从细胞外间隙进入细胞有助于[Ca升高2+]则DSI应显示与Ca的电压依赖性密切平行的电压依赖关系2+通道激活。为了验证这一预测,我们将突触后锥体细胞去极化至−40至+50 mV的不同电压,并量化每一步诱导的DSI量。如所示图2A类,去极化电压阶跃至−30 mV几乎不会产生DSI,而阶跃至–10或0 mV则会抑制IPSC数秒。有趣的是,Ca向接近零电流电位的电压迈出了一大步去极化2+没有导致任何DSI。同一电池中钙电流(开环)的电流-电压关系和DSI(充满环)的电压依赖性叠加在一起图2B类在其他五个电池中也观察到类似的结果,六个电池DSI的归一化电压依赖性如所示图2C类Ca的类似电压依赖性2+通道激活和DSI支持钙离子2+DSI需要通过VDCC进入突触后细胞。

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DSI的电压依赖性与Ca的相似2+通道激活

A类,CA1锥体细胞被电压钳制在−70 mV,并阶跃1s至所示电压。电压阶跃至−30 mV不会导致DSI,而阶跃至–10和0 mV会导致标记DSI。有趣的是,大电压阶跃(+30 mV)接近Ca2+平衡电位没有引起任何DSI。痕迹在A类来自同一个单元格。B类,Ca峰值图2+电流() (○)与。电压和%IPSC振幅与。来自同一电池的感应电压阶跃(•)被叠加。电压依赖性和DSI非常相似,表明DSI的量与突触后Ca有关2+电压阶跃期间的流入。因为在非常大的电压阶跃下(Ca很少或没有2+流入),DSI不能是由于电压阶跃按本身C,显示了6个电池平均DSI的电压依赖性。这里和后面的图中,符号和误差条表示方法和s.e.m.公司。分别是。

ω-琼脂毒素TK降低IPSC,但不降低DSI

CA1锥体细胞上存在几种类型的VDCC(克里斯蒂等。1995;卡瓦利里等。1997). P型钙2+通道存在于锥体神经元以及某些抑制性突触对这些细胞的输入上(山本等。1994). 在图中所示的单元格中图3A类,去极化步骤至0 mV可靠地导致每一步之后出现DSI。在完全阻断P型通道(200 n)的浓度下应用P型通道阻断剂ω-琼脂毒素TK) (明茨等。1992;寺本等。1995),降低了IPSC振幅,但没有降低DSI。实验的时间进程(图3C类)揭示了毒素对IPSC振幅和DSI的不可逆影响。填充的圆圈表示每个DSI诱导步骤前八个IPSC的平均值,而开平方是每个步骤后五个IPSC中的平均值。阻止P型钙2+在ω-琼脂毒素TK存在的情况下,通道实际将计算的平均%DSI从对照条件下的33.2±4.3%增加到50.0±5.0%(n个=8个单元格,P(P)=0.001,图3D类).

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P型和Q型钙的活化2+DSI需要通道

A类,选择性P型Ca2+通道阻滞剂ω-琼脂毒素TK(200 n)大大降低了IPSC振幅,但没有阻止DSI。左侧面板中的校准值A类也适用于右侧面板和B.B类,切片预孵育1μω-琼脂毒素TK完全阻断P型和Q型钙2+通道未阻止DSI。用CsCH记录预孵育切片中的细胞SO公司-填充电极(见方法),因此在本实验中IPSC向外。为了显示的一致性,此轨迹被反转,因此电流看起来向下。C类,ω-无毒素代表性实验的时间进程,其中•表示DSI步骤之前8IPSC的平均振幅,□DSI步骤之后5 IPSC的均值振幅(符号为图3C类).D类,组数据(n个=8)表明控制条件下的%DSI显著降低(*P(P)=0.001)。E类,DSI期间IPSC振幅的绝对降低在控制条件和ω-琼脂毒素TK存在下相似(P(P)> 0.05).

检查数据后(图3A类)在DSI诱导步骤之后,IPSC振幅的绝对降低似乎在对照条件下和在200n的存在下是相同的ω-agatoxin TK。因此ω-agatoxin诱导的%DSI增加可能是由于用于计算%DSI的方法,而不是DSI机制的实际增加就其本身而言。如果ω-无毒素抑制了对DSI同样敏感的中间神经元群体的GABA释放,那么ω-无毒素应降低IPSC振幅,而不影响%DSI。另一方面,一些中间神经元可能对DSI不敏感。如果ω-琼脂毒素仅阻断不易受DSI影响的细胞的输出,则诱发的IPSC将减少,%DSI将增加,DSI期间IPSC振幅的绝对减少不会改变。为了验证这一观点,我们测定了DSI诱导的IPSC在对照条件下以及在存在琼脂毒素的情况下的绝对减少量(pA)。正如预期的那样,DSI引起的IPSC振幅绝对降低在对照组和ω-无毒素组之间没有显著差异(图3E类,n个= 8). 因此,ω-琼脂毒素中DSI百分比的计算增加可能是由于DSI诱导的IPSC绝对振幅的恒定减少,除以琼脂毒素产生的较小的控制IPSC振幅。我们得出结论,琼脂毒素不影响DSI机制就其本身而言。

因为200 nω-琼脂毒素TK阻断这些CA1神经元上约50%的Q型通道(萨瑟等。1993),Q型VDCC似乎不参与DSI。然而,根据这些数据,我们不能排除Q型通道对DSI的贡献。Q型通道的贡献实际上可以消除1μω-琼脂毒素。因此,我们在1μω-琼脂毒素TK持续数小时,以确保P型和Q型通道完全阻断(萨瑟等。1993;惠勒等。1994). 在来自三个琼脂毒素预处理切片的三个细胞中的三个细胞中,存在显著的DSI(图3B类)在数量上与200 n浴敷ω-琼脂毒素TK(60.5±5.6%,1μω-琼脂毒素TK与。200n时为50.0±5.0%ω-琼脂毒素TK,差异不显著)。

因为切片是在1μω-无毒素在开始记录之前,我们没有直接观察毒素的发作对IPSC振幅的影响。然而,我们确信ω-琼脂毒素的活性有两个原因:(1)刺激强度能有效诱发对照切片中典型的IPSC(335±7 pA,n个=6)在用1μω-琼脂毒素(197±31 pA,n个=3)和(2),尽管200 n当我们在正常记录过程中使用同一储备溶液中的ω-琼脂毒素时,总是会显著降低IPSC(n个= 8,图3A类C类),当200 n用1μ它对IPSC没有进一步的影响。因此,用1μ琼脂毒素已经产生了最大的IPSC抑制,因此具有活性。这些数据强烈反对P型或Q型通道参与DSI。

DSI需要N型通道激活

N型钙2+CA1锥体细胞体和树突上存在通道(克里斯蒂等。1995;卡瓦利利等。1997)和参与突触前海马GABA释放的控制(Horne&Kemp,1991年;Ohno-Shosaku公司等。1994). 我们发现特异性N型通道阻滞剂ω-芋螺毒素GVIA(250 N),IPSC振幅显著降低(图4A类)与ω-无毒素不同,和大大降低了%DSI。洗净30分钟后,芋螺毒素的作用无法逆转。来自7个细胞的分组数据显示,ω-芋螺毒素GVIA显著降低了平均DSI,从50.5±8.7%降至9.0±4.4%(P(P)= 0.005). 无论是测量DSI期间的%DSI还是IPSC的绝对减少量(pA),都可以看到这种影响(图4D类E类). 增加刺激强度可以部分恢复IPSC振幅,但不能恢复DSI。在以这种方式测试的四个细胞中,ω-芋螺毒素引起的IPSC振幅的平均降低为83.5±5.1%(即对照值的16.5%),并且增加ω-芋螺毒素的刺激强度使IPSC恢复到对照的58.5±10.1%,而没有恢复DSI。实验的时间进程显示在图4C类并证明ω-芋螺毒素作用的快速性。

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N型Ca2+通道激活对于DSI是必要的

A类,浓度可选择性阻断N型钙2+通道,ω-芋螺毒素GVIA(250 n)大大降低了IPSC振幅,实际上取消了DSI。增加刺激幅度以部分恢复IPSC幅度并不能恢复DSI。ω-芋螺毒素将平均IPSC降低至210 pA,随着刺激强度的增加,平均IPSC为358pA。B类,ω-芋螺毒素可在降低IPSC振幅之前导致DSI进行性阻滞。ω-芋螺毒素的应用速度较慢,使DSI从第一步去极化后的38%逐渐降低到第三步后的26%。IPSC振幅在此期间没有改变。继续将ω-芋螺毒素应用于该细胞,导致DSI完全阻断,IPSC振幅大幅降低(未显示)。C类ω-芋螺毒素典型实验的时间进程表明,该毒素迅速降低了IPSC振幅和DSI。符号与图3C类D类ω-芋螺毒素的对照DSI显著大于DSI(*P(P)= 0.005,n个= 7).E类在对照条件下DSI期间,IPSC振幅的绝对减少量远远大于ω-芋螺毒素的存在。

ω-芋螺毒素GVIA对DSI的近完全阻断表明,突触后N型通道激活对DSI是必要的。然而,从这个实验中,很难排除ω-芋螺毒素阻断DSI的作用是通过其有效减少IPSCs在突触前介导的。ω-芋螺毒素可以通过阻止易受DSI影响的GABA神经元的输出而阻断DSI。然而,如果ω-芋螺毒素的作用是严格意义上的突触前效应,那么ω-汕螺毒素存在下的IPSC不应大于最大DSI期间发生的IPSC。为了计算“最大DSI”,我们只使用了DSI效应峰值时出现的两个IPSC(跨度为6秒),而不是通常使用的五个IPSC,因为在五个响应中,DSI的恢复总是很明显的,因此最大DSI会被低估。在七个单元格中的三个(参见图4A类例如),我们在ω-芋螺毒素应用期间观察到的IPSC明显大于相同细胞最大DSI期间发生的IPSC。在这三个细胞中,ω-芋螺毒素(267 pA)的平均IPSC振幅比最大DSI(186 pA)期间测得的IPSC振幅大44%。ω-芋螺毒素具有严格的突触前作用位点的进一步证据是,偶尔观察到ω-汕螺毒素可以在减少IPSC之前降低DSI。示例如所示图4B类其中ω-芋螺毒素逐渐阻断DSI(从第一步去极化的38%,到第二步的32%,再到第三步的26%),然后降低了IPSC振幅(在本例的第三次DSI试验结束时,该振幅是记录道开始时振幅的102%)。在这三个细胞中,ω-芋螺毒素中的平均IPSC为对照振幅的98%,而DSI仅为对照值的76%。因此,ω-芋螺毒素可能通过阻断钙而部分降低DSI2+突触后流入,尽管这些数据不能排除更复杂的突触前机制。

2+减少IPSC,但不减少DSI

有人建议T型和R型钙2+海马CA1神经元上存在通道(克里斯蒂等。1995;卡瓦利等。1997). 低浓度氯化镍2(50–100 μ)阻断T型和R型通道,同时不会严重影响其他电压依赖型Ca2+通道(高桥和秋叶,1991年;埃利诺等。1993;Randall&Tsien,1995年). 确定这些通道是否有助于[Ca的突触后升高2+]启动DSI,我们测试了100μ氯化镍2,但发现它对DSI没有影响(图5A类C类). 氯化镍2将诱发IPSC振幅平均降低至对照组的70.8±8.7%(n个= 15,P(P)=0.04),这种影响在冲刷后完全可逆(图5A类B类). NiCl未显著改变平均%DSI2(对照组DSI:43.9±2.7%;氯化镍2DSI:41.9±2.6%;n个= 6,P(P)=0.2),尽管DSI诱导的IPSC绝对值降低。

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R型和T型钙的活化2+DSI需要通道

A类,氯化镍2(100 μ),阻止R型和T型Ca2+通道,不影响DSI,但确实降低了IPSC振幅。这表明R型或T型Ca2+通道参与GABA释放到CA1锥体细胞。左侧面板中的校准值也适用于中间和右侧面板。B类,氯化镍作用的典型时间过程2IPSC振幅和DSI缺乏影响。氯化镍的影响2洗后可反转。符号与图3C类C类,组数据(n个=6)表明控制条件下的DSI与存在NiCl时的DSI没有差异2(P(P)> 0.1).D类,在存在NiCl的DSI期间,IPSC振幅绝对降低2小于对照条件下的值,可能是因为NiCl2降低了IPSC振幅。

硝苯地平在某些条件下会影响DSI

L型钙2+CA1锥体细胞上存在通道(韦斯坦布鲁克等。1990)对体细胞总钙有显著贡献2+在这些电池中测得的电流。L型钙2+通道拮抗剂硝苯地平(10μ)未阻断诱发IPSC的DSI(图6A类)与之前的发现一致,即硝苯地平没有阻断自发IPSC的DSI(Pitler&Alger,1992年). 在所测试的八个细胞中,对照条件下的平均%DSI(41.0±4.8%)与硝苯地平存在下的%DSI没有显著差异(43.4±5.8%,P(P)= 0.2).

我们有点惊讶于阻断L型钙2+通道对DSI没有影响,特别是在这些细胞的胞体和顶端树突密度较高的情况下(韦斯坦布鲁克等。1990)以及它们对全细胞钙的巨大贡献2+电流。为了确定L型VDCC是否在任何条件下都能在DSI中发挥作用,我们改变了记录条件,试图最大化其对Ca的相对贡献2+通过降低电压阶跃直接去极化树枝状区域的能力来注入。我们通过从记录电极溶液中省略QX-314(除了阻断Na之外+通道,QX-314阻止特定K+通道并促进电压向树枝晶扩散),并使用产生未捕获Na的小电压阶跃(至−25或−20 mV+-和钙2+-依赖性峰值。有趣的是,在这些条件下,硝苯地平部分阻断了由小电压阶跃引起的DSI(平均对照DSI:22.5±2.0%;平均硝苯地平DSI:10.9±1.0%;P(P)= 0.03,n个=4)同时不影响同一细胞内大电压阶跃(至−5或0 mV)诱导的DSI(平均对照DSI:31.3±8.3%;硝苯地平DSI:27.9±2.6%;P(P)> 0.4,n个= 4,图6D类). 这些结果表明,在某些电压协议下,L型钙2+通道电流会对DSI产生影响。

同样的推理可能意味着,在没有QX-314的情况下,R型或T型通道电流可能在次最大电压阶跃引起的DSI中发挥作用。为了测试这种可能性,我们用氯化镍重复了同样的实验2.在NiCl存在下,通过小电压阶跃诱发DSI2(24±3%)与对照组DSI(26±4%,n个= 4,P(P)> 0.1). 这些数据反对T型或R型钙的贡献作用2+DSI中的通道,与电压协议无关。

VDCC拮抗剂对突触后电压依赖性钙离子的影响2+电流,电流()

我们测量了每种通道阻滞剂对在标准条件下激发,即记录电极中存在QX-314。尽管不能理想地固定在具有延伸过程的细胞中,可以对各种拮抗剂的作用效果进行一些比较。在控制槽溶液中,在每个通道阻滞剂存在的情况下,通过500 ms电压阶跃至−10或0 mV来激发电流。样本电流显示在图7A类,峰值电流的组数据如所示图7B类与之前的研究基本一致(克里斯蒂等。1995;卡瓦利里等。1997),我们发现硝苯地平在导致峰值电流为对照的59±13%。阻止N型通道减少至对照的76±8%,而200 nω-琼脂毒素TK使其降至对照组的73±8%。氯化镍2将其降至对照的93±3%。

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钙的作用2+通道阻断器打开

A类,电压阶跃至−10或0 mV,持续500 ms,引发Cd内向电流2+或减去泄漏。2+在实验结束时使用,有时在使用前细胞会丢失。在这些细胞中,只有渗漏减法是可能的。在对照条件下和给药后测量细胞的峰值电流。左上方面板中的校准值适用于中的所有其他面板A类B类,每个通道阻滞剂的平均数据以控制Ca的百分比显示在直方图中2+电流。氯化镍2, 93.2 ± 3.3 %,n个= 6; ω-芋螺毒素GVIA,76.2±8.0%,n个= 7; ω-琼脂毒素TK,73.3±8.0%,n个= 5; 硝苯地平58.9±13.4%,n个= 7.

环哌唑酸不影响IPSC或DSI

综合起来,我们的结果证实DSI是Ca2+-依赖机制,表明Ca2+在某些条件下通过N型通道和L型通道进入对于DSI的诱导是必要的。然而,这些结果并不排除钙的可能贡献作用2+-诱导钙2+这些神经元中存在的细胞内储存物释放(CICR)(卡拉舒克等。1997). 因此,我们测试了浓度为(20和40μ)阻止咖啡因诱导的钙2+海马脑片中的瞬态(卡拉舒克等。1997)通过阻断ATP-依赖性钙2+吸收到细胞内隔间。八个暴露于CPA的细胞的平均DSI(47.5±8.6%)与在对照条件下获得的DSI(53.8±9.0%,P(P)= 0.3). 同样,我们发现丹曲烯钠(30μ)钙的抑制剂2+从仓库中释放,不影响DSI(对照组DSI:55.7±6.3%;丹曲林DSI:53.4±4.2%;n个= 2). 因此,尽管我们没有测量Ca2+直接存储,似乎CICR可能不参与DSI,而Ca2+从细胞外环境进入可能足以诱导DSI。

讨论

先前的研究表明DSI调节Ca中抑制性突触传递2+-依赖方式(拉诺等。1991;Pitler&Alger,1992年,1994;Ohnu-Shosaku公司等。1998). 目前的结果有力地支持Ca的作用2+通过DSI中的VDCC流入。增加[Ca2+]DSI显著增加,DSI的电压依赖性与突触后Ca的电压依赖密切相关2+电流激活。我们已经证明了N型钙的作用2+通道激活在DSI诱导中的作用,并表明L型通道在一定条件下对DSI有贡献。初步药理试验表明细胞内钙2+DSI入职培训不需要门店。

提高[Ca的发现2+]o个增加的DSI支持DSI依赖于[Ca2+]o个然而,细胞内钙2+商店对[Ca的变化非常敏感2+]o个(Parekh&Penner,1997年). 或者,升高[Ca2+]o个可能影响中间神经元的释放特性,从而改变DSI。改变电压阶跃的大小,这会影响Ca的量2+在该步骤中流入细胞,改变了%DSI,事实上,可以通过将膜去极化到接近Ca零电流电位的电压来防止DSI2+因此,DSI的电压依赖性与高压激活VDCC的电压依赖关系非常相似。由于DSI的程度对传递到突触后细胞的幅值电压阶跃敏感,我们可以排除突触前或细胞外因素的影响。我们得出结论,Ca2+通过VDCC流入是DSI的关键触发因素,与之前的建议一致。

阻断N型通道产生了接近完整的DSI阻断,表明Ca2+通过突触后N型通道的内流可能是DSI的原因。然而,很难排除ω-芋螺毒素对DSI的影响是突触前介导的可能性。ω-芋螺毒素可以通过阻止易受DSI影响的中间神经元释放GABA来阻断DSI。或者,逆行DSI信号可以通过阻断N型钙离子引起DSI2+位于突触前终末的通道,在这种情况下ω-芋螺毒素也会在突触前阻断DSI。然而,根据以下观察结果,这些解释似乎不太可能解释ω-芋螺毒素的所有作用。(1) 在一些细胞中,ω-芋螺毒素的IPSC振幅大于DSI最大时的振幅。如果ω-芋螺毒素对DSI的唯一影响是通过减少IPSC来阻断它,那么ω-汕螺毒素应用期间的IPSC不应大于最大DSI期间的IPCC。(2) 我们发现ω-芋螺毒素可以在IPSC不受影响的时期降低DSI。如果ω-芋螺毒素除了其突触前作用外,还通过阻止突触后钙离子来阻止DSI的诱导,则可以简单地解释这两个观察结果2+通过N型通道流入。然而,这些实验不能排除更复杂的突触前解释,可能包括神经元间-神经元抑制,而且还需要更多的工作来确定N型钙的作用2+毫无疑问地涌入。值得注意的是,鉴于VDCC参与DSI(例如。图2)以及L型、P型、Q型、R型和T型VDCC拮抗剂对DSI的作用不足,看来可能涉及N型通道,或者必须涉及具有不同拮抗特性的VDCC。

阻断P型和Q型通道在不阻断DSI的情况下降低IPSC振幅的发现表明,无论是降低IPSC还是降低Ca2+流入足以降低DSI。事实上,阻断P型通道显著增加了%DSI,而不影响DSI期间IPSC的绝对减少。对这些数据的一种解释是,P型通道仅存在于不易受DSI影响的中间神经元上。有证据表明,某些中间神经元在其轴突末端表达P型或N型通道,但并非两者都表达(蓬塞(Poncer)等。1997; 但是,请参见Ohno-Shosaku公司等。1994). 如果ω-agatoxin阻止不易受DSI影响的中间神经元释放GABA,那么对DSI敏感的中间神经元对诱发的IPSC的相对贡献将更大。这将增加%DSI,同时不会改变DSI期间的IPSC绝对减少量。DSI诱导的IPSC绝对减少量缺乏变化表明,ω-无毒素不会改变DSI过程,因此突触后Ca2+DSI不涉及通过P型或Q型通道的流入。

与ω-琼脂毒素相比,100μ2+作为R型和T型通道的阻断剂,在DSI期间降低了IPSC振幅和平均IPSC降低,而不影响%DSI。如果Ni2+导致所有GABA IPSC均匀减少,包括那些对DSI敏感和不敏感的GABA IPSCs,而对突触后Ca没有影响2+DSI导入所需的流入。许多研究报告了低浓度镍的相对特异性2+用于T型和R型通道(埃利诺等。1993;等。1993). 2+仅阻塞了总Ca的一小部分2+在突触后细胞中测量的电流,因此在我们的细胞中不是VDCC的有效非特异性阻断剂。2+可以通过阻断突触前钙的成分来减少IPSC2+流入,如等。(1998)已报告Ni2+-钙的敏感成分2+海尔德花萼中的电流。这与研究结果一致,即孔层、放射状和腔隙分子中的中间神经元对R型钙具有免疫反应性2+通道α1亚基(横山等。1995). 另一方面,倪2+还直接阻断龟视网膜中的GABA反应(Kaneko&Tachibana,1986年),这可以解释我们观察到的IPSC抑制。无论如何,数据排除了突触后钙2+通过R型或T型通道的流入是DSI的一个因素。

L型钙2+在一定的实验条件下,通道可以促进DSI的诱导。在早期的工作中,我们发现L型通道激动剂Bay K 8644增强了DSI,但仅在50%的细胞中(Pitler&Alger,1992年). 我们现在报告,虽然硝苯地平对大去极化步骤诱发的DSI没有影响(到−5或0 mV),但当从记录移液管溶液中省略QX-314时,它会将小步骤诱发的DSI降低到−25或−20 mV。一些二氢吡啶可以阻断钙的ω-芋螺毒素敏感成分的一部分2+电流(里根等。1991)以及低电压激活钙电流的持续成分(Avery&Johnston,1996年). 然而,因为Ni2+(100 μ),阻止低电压激活的钙2+通道,并没有阻断小电压阶跃诱导的DSI,我们得出的结论是硝苯地平的作用不是通过这些通道发挥的。此外,硝苯地平似乎不太可能阻断部分钙离子2+通过N型通道的电流,因为它不会降低IPSC振幅。相反,可能是某些电压协议引发突触后反应,其中L型电流对DSI诱导的作用比其他协议下更重要。当电压阶跃较大时,L型电流的作用将被旁路。一种可能的模型是,仅N型电流就可以触发DSI,而大的电压阶跃直接激活N型Ca2+通道,主要定位于树枝晶。在没有QX-314的情况下,施加在胞体上的小电压阶跃不会使树突去极化,足以直接激活N型通道,但会引发未捕获的Na+和L型钙2+电流依赖性动作电位。这些动作电位将提高传递到枝晶的电压,从而允许N型沟道的激活,除非L型电流分量被抑制。或者,DSI通常会被Ca饱和2+通过大电压阶跃打开的N型通道进入,以及L型钙的贡献2+只有在饱和水平下才能检测到流入。

这些结果,以及树枝晶和脊椎上N型通道的分布,与Ca2+必须在树突处进入以诱导DSI。目前尚不清楚在生理条件下,哪种VDCC,N型或L型起着更大的作用。有趣的是,西蒙斯等。(1995)据报道,齿状回颗粒细胞树突释放强啡肽是由钙介导的2+通过L型和N型通道进入。最近勒博和阿尔杰(1998)发现低镁对IPSC有类似DSI的抑制作用2+-因此,可以更直接地解决DSI中L型通道参与的问题。

这些实验表明Ca2+突触后VDCC的进入对DSI的诱导至关重要,但不排除Ca的作用2+从细胞内储存释放。因为DSI发病相对较慢(Pitler&Alger,1992年)持续时间相当长,我们认为2+从细胞内储存中释放可能有助于DSI。CPA和丹曲林钠都不会消耗细胞内钙2+门店,受影响的DSI。然而,细胞内钙2+成像超出了当前工作的范围;在我们的实验中,我们对这些药物的疗效没有阳性对照,可以想象,DSI的全部或部分长时间是由钙介导的2+从细胞内储存释放。或者,DSI可能由钙的短暂内流触发2+进入锥体细胞,其动力学相对较慢是下游效应器的结果。

有趣的是,VDCC阻滞剂对抗DSI的能力与它们降低的程度没有明显关系ω-芋螺毒素和ω-琼脂毒素在减少但是,虽然前者在阻断DSI方面非常有效,但后者完全无效。硝苯地平(Nifedipine)不影响我们的标准电压方案引发的DSI,降低了由同样的协议引起的。这些数据表明Ca2+通过各种来源进入并不等同于诱发DSI。N型Ca2+通道主要位于树突和树突棘上(韦斯坦布鲁克等。1992)和L型通道主要定位于细胞体和近端树突。然而,树突上也发现了P型、Q型和R型通道,并且似乎在DSI中不起作用。可能是Ca2+流入必须发生在精确定位的地点,以触发DSI。

鉴于大量证据表明DSI涉及从锥体细胞到中间神经元的逆行信号传递过程,局部Ca2+涌入可能会触发逆行信使的释放。最近对两个小脑的研究(格利奇等。1996)和海马(森下等。1998)揭示了谷氨酸样物质在DSI诱导中起关键作用。很容易推测Ca2+通过VDCC的内流导致谷氨酸从主要神经元树突状区域的位置释放,可能是通过最近发现的对海马CA1细胞LTP建立至关重要的膜融合依赖过程(列多等。1998).

致谢

我们要感谢F.E.N.Le Beau、S.E.Mason和W.Morishita对这份手稿草稿的评论。这项工作得到了美国公共卫生服务拨款NS30219和NS22010(B.E.A.)的支持。R.A.L.由美国国立卫生研究院神经科学培训基金NS07375资助。这份手稿将构成为部分满足R.a.L.博士学位要求而提交的论文的一部分。我们感谢E.Elizabeth提供的专业文字处理和编辑帮助。

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文章来自生理学杂志由以下人员提供生理学会