CD2AP表达的下调抑制了VacA从GEEC向LEs的转移以及VacA诱导的空泡化。（A） 用对照siRNA（左）或CD2AP siRNA（右）转染后36 h，HeLa细胞在4°C下与VacA孵育1 h，清洗，并在37°C下孵育120 min。细胞固定、渗透并处理以检测VacA和LAMP1。然后用共焦显微镜分析细胞。图片和插图代表了VacA标签（红色）和LAMP1标签（蓝色）从单个共焦截面的合并。方框区域描绘了相应插图中放大的区域。箭头显示，CD2AP耗尽后，VacA仍留在GEEC中。（B） 用对照siRNA或CD2AP siRNA转染细胞。36 h后，用VacA在4℃孵育1 h，洗涤，并用含有5 mM NH的DME在37℃孵养4 h4Cl.细胞通过视频显微镜进行分析。（C） 真空细胞在胶片开始时（0）和4小时后进行评分。结果表示为整个细胞群中空泡细胞的百分比，并表示三个独立视频的平均值±SEM（误差条）。（D） 在表达或不表达CD2AP的细胞中，细胞内（蛋白酶K抗性）VacA的量是相同的。用材料和方法中描述的对照siRNA或CD2AP siRNA转染HeLa细胞。3d后，在4°C下用VacA处理细胞1h（t=0），并在37°C下内化VacA 2h（t=2h）。然后用蛋白酶K处理细胞，如材料和方法中所述，以降解细胞外VacA。在表达或不表达CD2AP的细胞中，细胞内VacA（即蛋白酶K抗性）的量是相同的，表明VacA内化独立于CD2AP发生。针对微管蛋白的Western blotting用作2小时时间点的负荷控制。（E） 作为对照，如前所述，用CD预处理细胞以阻断VacA胞饮作用(Gauthier等人，2005年). HeLa细胞在VacA结合前用CD预处理或不预处理20分钟，并在10μm的D.Bars中进行处理。
