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Nat Rev免疫学。作者手稿;PMC 2006年6月2日提供。
以最终编辑形式发布为:
PMCID公司:第1473162页
NIHMSID公司:NIHMS10125美国国家卫生研究院
PMID:16622476

癌症的过继免疫治疗:建立在成功的基础上

摘要

在宿主预处理后通过淋巴滤过进行过继性细胞转移是癌症免疫治疗的一个重要进展。在这里,我们描述了淋巴环境如何使肿瘤反应性T细胞破坏转移性肿瘤的巨大负担,以及过继转移T细胞的分化状态如何影响治疗结果。我们还讨论了这些新发现的翻译如何通过使用疫苗、造血干细胞移植、改良的预处理方案以及生成和选择待转移T细胞的替代方法,进一步提高过继细胞移植的疗效。

我们对T细胞介导的抗肿瘤反应的分子和细胞基础的理解取得了重大进展。CD8(CD8)+T细胞已被确定为适应性抗肿瘤免疫反应的有效效应器1,2.肿瘤反应性CD8识别的靶抗原+T细胞大多是非突变的自身抗原,也由肿瘤细胞表达(这些抗原在这里表示为自身/肿瘤抗原)1,2.肿瘤特异性CD4+T细胞也已被鉴定,但其功能可能是多方面的,因为CD4+T细胞可以帮助或阻碍抗肿瘤免疫反应5目前正在阐明调节T细胞激活、功能和记忆的分子信号。来自共刺激分子的正信号和负信号都已被证明可以形成抗肿瘤反应6,7细胞因子,包括通过含有常见细胞因子受体γ链(γc(c)),已显示可改变效应器CD8的编程+T细胞8,9.

尽管有大量与肿瘤免疫学基本方面相关的知识,但针对实体肿瘤的有效治疗性疫苗的临床实现尚未令人信服。人们对癌症疫苗有效性的热情通常基于替代和主观终点,而不是使用标准肿瘤学标准进行可靠的客观癌症回归。在最近对1306种疫苗治疗进行的审查中,包括马里兰州国家癌症研究所(NCI)外科分所进行的治疗,在美国,观察到3.3%的总体客观反应率10这些结果突出了改进现有癌症疫苗的必要性11并开发替代性免疫治疗策略来治疗转移癌10.

癌症疫苗旨在直接刺激免疫系统的适应性臂体内尽管宿主免疫系统存在许多多余的负面影响,但仍尝试使用治疗性疫苗进行“主动免疫治疗”5,12和肿瘤微环境13,14相比之下,过继细胞移植(ACT)疗法实现了T细胞刺激体外通过激活和扩大自体肿瘤反应性T细胞群,将其转化为大量细胞,然后再将其转回患者体内1517早期尝试使用肿瘤过滤淋巴细胞(TIL)和免疫补体患者进行ACT治疗取得了一些成功18然而,先前的临床前研究表明,免疫消融是一种有效的预处理方案,可以增加过继移植后的T细胞反应19,20。我们现在已经报道了非清髓性骨髓增生后TIL的过继转移,但是淋巴消耗,全身化疗(图1)可在相当大比例(约50%)的患者中诱导明确且可重复的反应21,22值得注意的是,对于化疗、放疗和细胞因子治疗等常规治疗难以奏效的多脏器、体积庞大的黑色素瘤患者,可以诱发显著的肿瘤退化(图2).

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过继细胞治疗的当前临床方案

过继细胞治疗(ACT)需要产生高度亲和力的肿瘤抗原反应性T细胞。来源于肿瘤滤过淋巴细胞(TIL)的肿瘤特异性T细胞,可以利用高水平的白细胞介素-2(IL-2)在体外从黑色素瘤病变中有效分离出来。当与自体或同种MHC匹配的肿瘤细胞系培养时,TIL因其分泌高水平干扰素-γ(IFNγ)的能力而被连续筛选。或者,细胞介导的裂解已被用于鉴定转移的肿瘤反应性T细胞。选择用于ACT的高度贪婪、肿瘤抗原反应性T细胞群迅速扩大(最多10个11细胞)使用CD3特异性抗体、外源性提供的IL-2和辐照的异基因外周血单核“饲养”细胞,并在转移前验证其活性。患者现在在过继转移抗肿瘤淋巴细胞之前接受全身免疫抑制。已发表的淋巴消耗治疗方案包括非清髓性但消耗淋巴的调节性化疗,在给药T细胞之前由环磷酰胺和氟达拉滨组成。新的、尚未公布的方案还包括全身照射。酶联免疫吸附试验。本图经REF许可复制。12©(2005)爱思唯尔科学。

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淋巴细胞耗竭和过继细胞治疗诱导的抗肿瘤反应

转移性黑色素瘤患者的肝脏计算机断层扫描(CT)显示,在淋巴耗竭后给予肿瘤反应性肿瘤浸润淋巴细胞(TIL)后,肝转移的肿瘤显著消退。患者27个月后仍无疾病。

在这里,我们描述了将肿瘤反应性T细胞转移到淋巴受体介导肿瘤退化的机制,以及诱导抗肿瘤反应的肿瘤特异性T细胞的表型和功能特征体内这些因素为合理设计新的基于ACT的免疫疗法奠定了基础,这些免疫疗法包括疫苗、造血干细胞(HSC)移植增强强度的预处理方案以及生成和选择转移T细胞的替代方法。

淋巴建模可提高ACT的疗效

长期以来,在小鼠中观察到,ACT前耗尽免疫细胞可以显著提高转移的CD8的抗肿瘤疗效+T细胞19,20但导致这种免疫增强的具体机制直到最近才开始被阐明。虽然以ACT为基础的肿瘤免疫治疗的疗效可以通过去除宿主免疫系统来提高,但一些机制可能是肿瘤反应性T细胞在淋巴环境中增强疗效的基础。这些因素包括消除免疫抑制细胞,如CD4+CD25型+监管T(T规则)细胞,竞争激活细胞因子的内源性细胞的耗竭,以及抗原呈递细胞(APC)功能和可用性的增加(图3).

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淋巴衰竭对过继转移T细胞影响的机制

A类|在淋巴充足的宿主中进行过继细胞治疗(ACT)。在淋巴充足的环境中,过继转移的肿瘤反应性CD8介导的抗肿瘤反应+T细胞可能会减少,因为:|未成熟树突状细胞(DC)在抗原提呈细胞(APC)表面竞争抗原,在缺乏共刺激分子的情况下,淋巴细胞活化效率低下;b|这些细胞因子(包括B细胞、T细胞和自然杀伤(NK)细胞)的细胞“汇”降低了激活细胞因子(其中包括白介素-2(IL-2)、白介素-7和白介素-15)的可用性;c(c)|调节性T(T)的抑制活性规则)细胞、骨髓抑制细胞(MSCs)和可能的NK细胞。T型规则-细胞抑制是由T细胞直接接触介导的,也可能是由抑制性细胞因子如IL-10和转化生长因子-β的释放介导的。间充质干细胞通过直接接触T细胞和使用参与L-精氨酸代谢的酶(如精氨酸酶和一氧化氮合酶的诱导形式、ARG1和NOS2)介导T细胞抑制。B类|ACT前的全身化疗或放疗可能会改变肿瘤宿主。直接杀伤可减少APC的数量,但由于APC表面抗原竞争减少,淋巴细胞活化可能会净增加。同时,由于粘膜损伤后Toll样受体(TLR)激动剂的释放,DC可能成熟,增加淋巴细胞活化。激活细胞因子,如IL-2、IL-7和IL-15,可能因清除细胞“汇”而增加;和T规则细胞、MSCs、NK细胞及其抑制活性降低。这些修饰可能促进过继转移的肿瘤反应性CD8的完全激活+T细胞并最终破坏肿瘤。

消除免疫抑制细胞

T型规则细胞对于维持外周自我耐受和抑制抗肿瘤反应至关重要5.T型规则细胞是一种独特的T细胞谱系,其特征是转录因子叉头盒P3(FOXP3)的表达和与T细胞活化相关的细胞表面分子的高水平表达,包括CD25(也称为IL-2Rα)、糖皮质激素诱导的肿瘤坏死因子(TNF)受体相关蛋白(GITR)和细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4(CTLA4)5然而,人类T细胞的专属分子特征规则细胞目前不存在,因为CD4激活+T细胞也可导致FOXP3表达上调23.使用缺乏T的小鼠进行实验规则由于特定的基因缺陷以及这些细胞的“回补”,细胞令人信服地表明,它们抑制过继转移的自身/肿瘤反应性T细胞的抗肿瘤活性24自我/肿瘤反应效应器CD8 ACT后观察到增强的抗肿瘤反应+T细胞与肿瘤发生抄送4/ ,但不是抄送8/ ,小鼠,表明CD4中含有免疫调节细胞+T细胞群。抑制活性仅限于CD25+CD4转移导致的T细胞亚群+CD25型+T型规则细胞单独或与CD4结合+CD25型T助手(TH(H))细胞,抑制了淋巴病小鼠的有效免疫治疗。相比之下,T的转移H(H)单独的细胞导致了深刻的自身免疫和已建立的肿瘤的根除。有趣的是,效应器CD8的维护和功能+T细胞需要T的存在H(H)能够产生白细胞介素-2(IL-2)的细胞24.

T的免疫抑制作用规则癌症患者体内的细胞直到最近才开始被探索。T型规则黑色素瘤和肺癌患者肿瘤病变中过度表达的细胞可以抑制浸润性T细胞的功能25,26,和T规则黑色素瘤抗原特异性细胞已被描述4据报道,生存率降低与T规则卵巢癌患者的细胞27尽管这些发现最近遭到了反驳28因此,目前没有确凿的数据表明体内T的函数规则细胞和癌症的进展。然而,T的抑制作用规则在非淋巴消耗环境中接受免疫治疗的癌症患者中,细胞可能导致临床反应率低下。选择性消除T规则细胞29从患者的TIL中可以进一步提高ACT方法在淋巴消耗环境中的疗效,因为T规则-淋巴环境和外源性IL-2(REFS)的存在可促进细胞增殖30,31). 此外,T的去除规则来自外周血淋巴细胞(PBL)的细胞可能会产生大量T细胞H(H)能够增强自身/肿瘤特异性CD8反应的细胞+T细胞体内24.

其他免疫细胞,包括自然杀伤细胞、自然杀伤T细胞和CD11b+第1组+骨髓抑制细胞(MSCs)已被证明抑制T细胞功能3234虽然最近有报道称NK细胞具有依赖于穿孔素的免疫抑制机制,但对NK和NKT细胞的免疫抑制活性知之甚少33MSCs是一种异质性细胞群,由处于不同分化阶段的髓细胞组成,包括单核细胞、粒细胞和未成熟的髓单细胞亚群34在以T细胞功能受损为特征的疾病中,包括肿瘤和慢性感染,MSC的频率增加34在小鼠和人类中,MSC可以通过与肿瘤反应性T细胞直接接触、L-精氨酸消耗和L-精氨酸代谢产物释放等机制浸润肿瘤床并抑制T细胞反应35,36使用Gr1特异性抗体耗尽MSC可保护MSC免受肿瘤侵袭37因此,去除MSC及其抑制活性可能有助于在淋巴衰竭患者ACT后观察到的抗肿瘤T细胞反应增加。

最小化细胞因子汇

将少量抗原特异性T细胞转移到淋巴宿主中会导致转移的T细胞群的扩张和活化,这一过程称为稳态增殖3840在淋巴环境中,抗原经历的T细胞独立于自身肽-MHC复合物增殖40然而,联合转移“无关”T细胞群或增加转移细胞的数量都可以剂量依赖性地降低稳态增殖水平,这表明存在其他限制稳态增殖的因素3941虽然宿主介导的过继转移T细胞增殖抑制可能涉及直接细胞接触,但转移T细胞和宿主T细胞之间也可能存在竞争,以获得支持CD8所需的有限数量的细胞因子+T细胞稳态;这种竞争被称为“细胞因子库”效应12,42.

在IL-7或IL-15缺乏的小鼠表现出体内稳态维持和记忆CD8增殖受损的实验中,这些细胞因子可用性的重要性得到了证明+T细胞4345相反,由于记忆CD8的优先扩增,过表达IL-7或IL-15的转基因小鼠具有增加的T细胞数量+CD44细胞你好T细胞群46,47在ACT治疗的pmel-1小鼠模型中48与免疫补体宿主相比,细胞移植前的淋巴消耗增加了自身/肿瘤特异性T细胞的持久性,以及它们的效应功能和肿瘤退化42,49在同时缺乏IL-7和IL-15的小鼠中,消融的有益作用被完全消除42相反,当外源性给予这些细胞因子时,以及当使用缺乏重组激活基因2的小鼠去除竞争这些细胞因子的宿主淋巴细胞时,抗肿瘤反应增加(抹布2)和γc(c)42这些研究结果表明,淋巴衰竭后ACT疗法疗效提高的一个关键机制是内源性淋巴细胞的短暂清除,内源性淋巴细胞是细胞因子的汇42.

阐明作为细胞因子汇起作用的特定内源性细胞成分对于理解淋巴衰竭增强基于ACT的治疗有效性的机制非常重要。抹布1/ 老鼠(不同于抹布2/ γc(c)/ 在缺乏B细胞和T细胞但有NK细胞的小鼠中,受照射者的肿瘤消退程度比未受照射者更大,而抹布2/ γc(c) / 宿主,ACT治疗变得如此有效,以至于很难检测到辐射的影响42这一发现,再加上对表达NK1.1的细胞的去除(使用NK1.1特异性抗体)可以提高ACT治疗肿瘤的疗效抹布1/ 老鼠42,暗示NK细胞是细胞因子库效应的关键效应器,这一过程可能由IL-15介导,IL-15是NK细胞生存和增殖的关键细胞因子体内50,51.

IL-2,另一种通过含γ受体发出信号的细胞因子c(c)是一种T细胞生长因子,通常用于促进肿瘤特异性T细胞群的扩张和功能在体外体内15。也许更重要的是,IL-2对维持外周自我耐受性至关重要52IL-2或IL-2受体组分缺陷的小鼠自发发展为淋巴增殖性和自身免疫性疾病52这些观察结果与T受损有关规则-细胞内稳态与代谢适应性体内,而不是抑制功能,因为T规则IL-2或IL-2Rα(CD25)缺陷小鼠的细胞在在体外抑制功能测定53然而,最近的研究结果表明体内IL-2信号传导不仅对维持T规则-细胞的“适合性”,也因为其抑制功能54,55.过继转移的自身/肿瘤特异性CD8的抗肿瘤活性+尽管野生型小鼠和IL-2Rα缺乏小鼠的FOXP3数量相当,但它们的T细胞受到抑制+T型规则细胞54此外,用特异性抗体阻断IL-2Rα可诱导T细胞受损引起的深层自身免疫规则-细胞功能,而不是消耗这些细胞55这些结果表明体内T免疫调节规则细胞可能在一定程度上是IL-2受体组分组成性表达的产物,IL-2受体对IL-2、IL-2Rα具有最高亲和力,并且其消耗IL-2(REFS)的能力增强54,56). 因此,T的去除规则淋巴细胞减少可能导致过继转移CD8的抗肿瘤反应性增加+T细胞,不仅通过消除直接的细胞抑制,而且通过增加IL-2的可用性。

改进了APC功能和可用性

在ACT之前,全身化疗和全身照射都被用于耗尽宿主的淋巴腔,并为转移的细胞创造一个生态位。研究人员长期以来一直假设,这些治疗也可能导致肿瘤细胞坏死或凋亡,导致APC摄取肿瘤抗原,并随后将这些抗原交叉呈现给过继转移的肿瘤反应CD8+T细胞57虽然淋巴滤过可以减少APC的绝对数量体内,它还可以促进它们向激活状态的过渡58,59在小鼠中,活化标记CD86和I-A的表达b据报道,照射后脾树突状细胞(DC)表面的MHC II类分子上调59此外,照射后分离的DC释放的IL-12明显多于从未照射小鼠分离的DC59化疗或放疗后DC的激活可能是由于粘膜屏障完整性受损后细菌产物(如脂多糖(LPS)和其他Toll-like受体(TLR)激动剂)移位到血液中而触发的60宿主细胞产生促炎细胞因子如TNF、IL-1和IL-4也可能参与介导DC成熟58,6163此外,淋巴环境可能通过减少携带抗原的APC表面的竞争,促进转移的自身/肿瘤反应性T细胞的活化64虽然淋巴衰竭对APC功能的净影响不如其对T细胞的影响明显规则细胞和细胞因子下沉,消融可能通过增加APC的激活和可用性最终增加转移T细胞的抗肿瘤反应性。

T细胞分化状态与ACT

淋巴建模可以对基于ACT的免疫疗法的治疗产生显著影响,但它并不是影响临床反应的唯一因素。小鼠研究和临床试验的新发现表明,与过继转移T细胞群分化状态相关的内在特性对基于ACT的方法的成功至关重要6568.

CD8(CD8)+根据表型和功能属性,小鼠和人类的T细胞亚群可分为不同的分化状态69,70(图4). CD8的进行性途径+T细胞分化69,70根据以下调查结果获得认可体外病毒特异性T细胞的表型分析69,端粒长度测量71,基因表达谱72在体外分化研究65,71在这个模型中,初始CD8的激活+T细胞根据信号强度通过早期、中期和晚期效应器阶段导致增殖和渐进分化70(图4). 存储器CD8+T细胞可能反映了T细胞在分化途径的中间阶段被阻滞73,74,但对于效应器和记忆T细胞发育的途径仍存在一些争议75.

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的反向关系在体外体内过继转移的原始和效应T细胞亚群的抗肿瘤功能

随着刺激强度的增加,原始CD8+T细胞在早期、中期和晚期效应器阶段增殖并逐渐分化。表征这一过程的表型和功能变化表现为各种标记的无表达(–)、中间表达(+)和高表达(hi)。T细胞逐渐失去端粒长度和增殖潜能,随后衰老并发生凋亡。全效应器功能的逐渐获得(紫红色虚线)与过继转移后T细胞导致肿瘤退化的能力降低(黑线)有关。这种负相关的分子机制可能包括:T细胞减少淋巴结归巢和共刺激分子的表达,从而减少体内T细胞的激活;终末分化T细胞不能产生白细胞介素-2(IL-2);减少从稳态细胞因子接收激活信号所需的受体数量;最后,促凋亡和抗凋亡分子的表达发生逆转,相应的获得复制性衰老。过继转移的肿瘤滤过性淋巴细胞(TIL)包含几个克隆型,其分化状态介于中间和晚期效应期之间,而肿瘤反应性CD8+T细胞克隆是一致的晚期效应T细胞。KLRG1,杀伤细胞凝集素样受体G1。本图经REF许可复制。65©(2005)Highwire出版社。

自身/肿瘤特异性CD8的表型和功能特征+与最佳体内ACT治疗的pmel-1小鼠模型中的肿瘤反应最近被阐明65.自身/肿瘤特异性CD8+分化进行阶段的T细胞是通过使用多个在体外用抗原刺激。令人惊讶的是,CD8+获得末端效应物特性并增强抗肿瘤活性的T细胞在体外发现在触发肿瘤消退方面效果较差体内.终末分化CD8+T细胞的有效性几乎降低了100倍体内在分化的早期阶段,T细胞的细胞百分率高于T细胞。其他使用不同小鼠肿瘤的小组也报告了类似的发现76,77和异基因造血干细胞移植78,79模型。体外ACT中T细胞的扩增-正如目前临床使用的一样-诱导进行性CD8+T细胞向晚期效应状态分化,导致表型和功能改变,使T细胞不太适合调节抗肿瘤反应体内并且不能从淋巴宿主的激活线索中获益(图4). 例如,低分化、中央记忆样T细胞具有很高的增殖潜能,与高分化细胞相比,不太容易发生凋亡,并且对稳态细胞因子有较高的反应能力,因为它们表达诸如IL-7受体α链(IL-7Rα)等受体65,75,80,81因此,分化程度较低的中央记忆样T细胞可能会在淋巴白癜风环境中增殖并完全激活,该环境中充满稳态细胞因子,如IL-7。

与小鼠研究类似,人类肿瘤反应CD8的ACT+生成和扩增的T细胞克隆体外通过多次刺激,两种免疫反应都没有产生客观反应16或免疫力低下的患者82用于治疗的T细胞克隆表现出强烈的肿瘤特异性细胞溶解活性在体外,但输注后未持续,表明其处于终末分化状态16,82(图4).

贩运淋巴结的重要性

肿瘤免疫学家长期以来一直在寻求使T细胞特异性地向其肿瘤靶点运输83,84据报道,淋巴细胞归巢分子CD62L的表达缺失和CD44表达的获得与过继转移T细胞的抗肿瘤作用增强有关76,85然而,现在很明显,在肿瘤和病毒模型中,可以归属于次级淋巴结的T细胞在DC的有效刺激下,在过继免疫疗法中更有效65,75,81事实上,肿瘤本身在触发有效免疫反应方面效率低下65,81,86在缺乏外周淋巴组织和脾脏结构受损的宿主中,抗肿瘤反应被取消81此外,转移后,CD62L缺陷的自身/肿瘤反应性CD8+与CD62L充足的T细胞相比,T细胞抑制肿瘤生长的能力明显受损65,81类似地,在异基因造血干细胞移植模型中,CD62L缺陷的T细胞在介导异基因应答方面的效果较差78因此,效应器CD8中后期淋巴结归巢分子的表达下调+T细胞分化可导致其抗肿瘤能力受损。然而,T细胞必须位于淋巴结才能发挥作用的原则尚未在人类中确立。尽管缺乏淋巴结归巢分子的表达,但过继性转移CD62LCCR7号机组TIL公司87约50%的患者能够植入、增殖并最终诱导客观反应21,22.

共刺激分子与T细胞持久性

CD28表达下调标志着从早期效应器阶段过渡到中期效应器阶段。APC上CD28与CD80和/或CD86的相互作用增强T细胞受体(TCR)介导的T细胞活化和增殖88CD28表达的T细胞分泌IL-2、诱导抗凋亡分子和加速细胞周期进展的报道88,89CD28表达在基于ACT的临床试验中的作用最近已被详细研究。肿瘤特异性TIL表达低水平但可检测到的CD28(REF)。87). 细胞输注后,在循环肿瘤反应性T细胞上检测到CD28的立即和高表达,这表明CD28表达的快速上调或CD28的早期选择性扩增和存活+出现了T细胞群。对持续性和非持续性TIL克隆的分析表明,表达最高水平CD28的克隆型优先存活,这意味着具有早期效应表型的转移T细胞的存活优势67,68.

共同刺激分子CD27的参与也可以增强TCR诱导的T细胞增殖,并且是产生和维持记忆性T细胞所必需的体内90,91与晚期效应状态一致,缺乏CD27的T细胞已被证明具有强大的细胞溶解功能,并且分泌很少的IL-2(参考。75). 在pmel-1小鼠模型中,与表达高水平CD27(REF)的早期效应T细胞相比,过继移植后自身/肿瘤特异性晚期效应细胞在介导肿瘤退化方面的效果较差。65). 此外,可溶性CD27配体CD70的给药增加了体内CD8(CD8)+通过增加抗原特异性T细胞群的扩张和维持,T细胞对病毒感染和肿瘤挑战的反应,表明CD27的表达不仅是低分化T细胞的标志,而且对最佳免疫反应具有重要功能92在临床领域,当IL-2被撤回时,在大量TIL人群中,有反应的患者与无反应的患者中,CD27表达细胞的频率和数量在统计学上存在显著差异93ACT后,表达CD27的TIL的频率逐渐增加,并与应答患者肿瘤特异性T细胞数量的长期稳定相关87这一结果和病毒研究的结果预测,表达CD27的T细胞选择性地持续存在体内,产生稳定的内存CD8+T细胞87,94.

稳态细胞因子信号与T细胞持续性

增加获得稳态细胞因子的机会对于增强ACT对淋巴衰竭宿主的抗肿瘤反应至关重要8,12,42稳态信号可以通过宿主中细胞因子的可用性和转移CD8表面细胞因子受体的表达水平来调节+T细胞。效应子CD8亚群表达IL-7Rα+T细胞可能识别出注定会成为长寿记忆细胞的前体80IL-7Rα低的自身/肿瘤特异性晚期效应剂CD8+转移到荷瘤小鼠的T细胞数量持续减少,诱导抗肿瘤反应的效果不如IL-7Rα你好早期效应CD8+T细胞65在患者中,在ACT时,IL-7Rα在所有TIL人群中均呈低水平表达,但在输注到持续增殖的肿瘤特异性T细胞表面后立即上调87因此,IL-7信号似乎对ACT后肿瘤特异性T细胞的即刻和长期存活至关重要。

大多数用于ACT的TIL都弱表达IL-15Rα,与IL-7Rα不同,ACT后持续存在的肿瘤特异性T细胞没有上调IL-15Rα的表达87然而,IL-15信号可能保持完整,因为APC和基质细胞可能发生IL-15的转呈95.

T细胞持久性和抗肿瘤反应

因为IL-2同时提供在体外在T细胞数量增加和体内细胞输注后立即出现肿瘤反应性CD8+退出IL-2后T细胞可能发生凋亡96由于早期效应T细胞具有释放IL-2的能力,这些细胞的选择性存活可能以自分泌方式发生65此外,早期效应T细胞比中晚期效应T细胞具有生存优势,这反映在前凋亡分子BID(B细胞淋巴瘤2(BCL-2)-同源域3(BH3)-相互作用域死亡激动剂)、BAD(BCL-2-细胞死亡拮抗剂)和CD95L(CD95配体;也被称为FASL),以及更高水平的抗凋亡分子65,81过继转移的T细胞的固有增殖能力也可能影响其移植和存活的能力。早期效应T细胞亚群的增殖增加在体外体内同源抗原刺激后65在T细胞增殖和进行性分化的同时,端粒逐渐侵蚀,直至临界缩短程度(称为Hayflick极限)导致染色体异常,细胞死亡或衰老97端粒酶活性可部分补偿这一过程97因此,端粒长度和端粒酶活性可以影响T细胞的复制能力。有趣的是,最近对人类TIL的分析表明,转移细胞的端粒长度与T细胞的持久性之间存在相关性体内继ACT之后,表明除了肿瘤抗原识别外,过继转移的T细胞的固有增殖能力也可能是影响肿瘤持续治疗和成功治疗的因素68.

优化ACT的肿瘤反应性T细胞

分化程度较低的中枢记忆样T细胞可能是基于ACT的免疫疗法的最佳群体,这一发现引发了一个临床问题。动物研究数据表明过继转移的T细胞数量与抗肿瘤反应之间存在直接关系体内,导致了这样一种观点,即必须给患者注射大量的肿瘤反应性T细胞,以获得治疗有效的抗肿瘤反应65,76因此,在临床试验中,肿瘤反应CD8+T细胞数量大量增加在体外CD3特异性抗体加IL-2或特异性抗原加IL-2,将T细胞分化到分化的中晚期效应阶段16,22,82在小鼠身上的新发现强调,当使用相同质量和适合度的T细胞进行ACT时,转移的T细胞数量是一个重要因素。与大量“不适合”(晚期效应)T细胞相比,过继转移少量“适合”(早期效应)T淋巴细胞后,观察到抗肿瘤反应增加65,76因此,目前该领域最大的挑战之一是为ACT生成大量“合适”的T细胞。

扩大T细胞群的现行体外方案的修改

使用标准的快速扩增方案,选择用于转移的TIL,并使用CD3特异性抗体、高剂量IL-2和辐照的异基因饲养细胞将种群扩增约2周22(图1). 这一过程导致肿瘤特异性CD8的分化+T细胞处于中间和晚期效应状态。限制在体外短时间的扩张期可能会显著提高转移的T细胞的“适应性”,因为更大比例的肿瘤反应性T细胞表达CCR7、共刺激分子和IL-7Rα,并且在生长的第一周内积极分裂98问题是,这种适应性的提高是否可以弥补激活后不久生成的细胞数量的减少。

细胞因子通过TCR和共刺激分子与信号协同作用,可以作为T细胞增殖和分化的加速器或制动器70IL-2已被证明是一种有效的T细胞生长因子,但具有不良作用,包括能够降低淋巴结归巢分子的表达,促进T细胞的末端分化,使其易于活化诱导的细胞死亡65,99其他通过含有γ的受体发出信号的细胞因子c(c),如IL-15,可以类似地诱导在体外肿瘤反应CD8的扩增+ACT的T细胞群8,65,100IL-15支持与IL-2相似数量的T细胞生长,但不会像IL-2那样诱导有害的T细胞分化和凋亡65,101,102在IL-15存在下扩增的T细胞群被证明具有较高的诱导肿瘤消退的能力体内对荷瘤小鼠进行ACT后,与在IL-2(REFS)存在下扩增的T细胞群进行比较8,65,81). 其他通过含有γ的受体发出信号的细胞因子c(c)以类似方式评估的(包括IL-7和IL-21)不能促进自身/肿瘤反应CD8的强劲增殖或分化+T细胞在体外,但与IL-2处理的细胞相比,它们具有更大的抗肿瘤功效体内(Hinrichs C.S.,未发表的观察结果)。相比之下,当细胞受到刺激时,未检测到接种患者的肿瘤反应性T细胞分化状态的差异体外在存在IL-2、IL-7或IL-15(REF)的情况下使用同源抗原。103). 使用人类细胞获得的结果可能反映了使用的抗原经历过的T细胞已经分化为中间和晚期效应器阶段,而不是小鼠研究中使用的原始群体104事实上,在IL-21存在下刺激原始人类肿瘤反应性T细胞可诱导低分化CD28的优先扩增你好CD45RO+同源抗原刺激后释放IL-2的T细胞群9因此,获得原始肿瘤特异性CD8的能力+T细胞可能对改善目前以ACT为基础的治疗方法至关重要。

ACT用T细胞的基因改造

癌症患者和健康人中都有自然产生的自身/肿瘤特异性T细胞105,106.抗原经历CCR7CD45RACD45RO+自身/肿瘤特异性T细胞在转移性淋巴结中占优势,并均匀存在于肿瘤部位,而原始的自身/肿瘤特异性T细胞主要存在于血液中106不幸的是,这些幼稚细胞的主要特征是TCR亲和力低,因此不适合ACT107。为了避免这个问题,高亲和力TCR,来源于中介作用强的TIL体内肿瘤退化已经被鉴定、克隆并转导到癌症患者的PBL中108110这些TCR转导的PBL具有细胞溶解活性,分泌细胞因子在体外用黑色素瘤细胞株刺激后,目前正在进行临床评估109,110.

选择用于转导的TCR的亲和力、细胞表面表达的转导TCR水平以及用于ACT的转导T细胞的分化状态可能有助于TCR转导后试验的成功。由于胸腺内缺失,可能很难获得表达对自身/肿瘤抗原特异的高亲和力TCR的天然存在的T细胞。然而,可以生成高亲和力TCR体内免疫HLA-A2转基因小鼠111,112在体外通过噬菌体展示含有简并互补决定区的TCR113.

整合逆转录病毒传递的序列需要靶细胞的积极分裂,这一过程也促进T细胞分化(图5a). 由于PBL包含处于多个分化阶段的T细胞,因此诱导PBL的激活和增殖可确保TCR转导的T细胞在很大程度上缺乏原始T细胞。另外,由于慢病毒载体对活性细胞分裂的依赖性较低,它们可能被用于将高亲和力TCR转导到T细胞中,而不会驱动分化114因此,预先选择用于特异性标记物的T细胞的慢病毒转导可能是产生大量用于ACT的原始肿瘤特异性T细胞的一种方式(图5b).

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生成低分化、中央记忆样肿瘤抗原特异性CD8+TCR转导的T细胞

|外周血淋巴细胞(PBL)的逆转录病毒转导。在白细胞介素-2(IL-2)的存在下,CD3特异性抗体在体外激活处于不同分化阶段的PBL,包括原始(灰色)、早期(绿色)、中间(米色)和晚期效应器(紫红色),以促进肿瘤特异性T细胞受体(TCR)逆转录病毒结构的整合。这一过程导致产生更多差异化的TCR传感器。与内源性受体配对可以减少肿瘤特异性TCR的数量。b|幼稚CD8的慢病毒转导+T细胞。天真的CD8+通过选择性分选分离的T细胞可以通过使用不需要激活和随后分化的慢病毒构建物,用肿瘤特异性TCR转导。与内源性受体配对可以减少肿瘤特异性TCR的数量。c(c)|造血干细胞的慢病毒转导。CD34型+CD38型通过选择性分选分离的HSC可以通过慢病毒构建物的肿瘤特异性TCR转导。HSC可以被诱导分化为单纯CD8+通过Notch介导的信号转导体外T细胞。转导的肿瘤特异性TCR对重组激活基因的抑制允许肿瘤特异性TCR的均匀表达。

TCRα链(TCRα)和β链(TCR-β)的传递引导完整TCR的表达;然而,可以与内源性TCRα和TCRβ配对,从而降低肿瘤特异性TCR的表面密度(图5a、b). 造血干细胞的转导,随后通过T细胞分化在体外陷波信号115,116或通过自然发展体内免疫缺陷小鼠117-是克服这个问题的一种有吸引力的方法。通过分化HSC强制表达转导的TCR有助于抑制拉格牌手表内源性TCRβ不表达的基因118(图5c). 克服内源性TCRα和TCRβ错配问题的替代方法可能包括操纵TCRα与TCRβ的跨膜关联域119使用具有抗体特异性的嵌合受体(称为T体)120和TCR转导到缺乏αβTCR的T细胞,如γδT细胞121.

一些其他基因被提议用于转导肿瘤反应性T细胞以提高其质量和功能122包括共刺激分子89,抗凋亡分子123、促炎或稳态细胞因子96,102和趋化因子受体84虽然这些操作能够改变分化的肿瘤特异性T细胞中的特定细胞功能,但TCR方法赋予可能具有所有所需特征的细胞自我/肿瘤特异性。通过对已知表位特异性TCR编码基因的转导,可以同时使用疫苗来增强过继转移T细胞的抗肿瘤反应124126另一个有趣的方法包括调节转录因子,如BCL-6(REFS127,128),BCL-6B129,淋巴增强因子结合因子1(LEF1)和T细胞因子7(TCF7)130在中晚期效应性肿瘤反应性T细胞中,可能将T细胞还原为低分化状态131.

结束语

针对淋巴衰竭宿主的ACT已成为癌症免疫治疗的一个有希望的进展。临床前和临床研究已经确定了多种有助于成功过继免疫治疗的机制,包括宿主相关因素,以及用于转移的肿瘤反应性T细胞的表型和功能特征。这些发现为设计治疗癌症患者的新临床方案提供了理论依据。

非清髓性淋巴衰竭方案后免疫治疗的有效性提高为评估更密集的预处理方案提供了合理的基础,如清髓方案与自体HSC移植联合使用132在ACT治疗的pmel-1小鼠模型中,与非清髓条件反射相比,清髓方案的使用深度耗尽了宿主免疫抑制细胞和细胞汇以激活细胞因子,导致效应细胞与内源性细胞的比率增加,抗肿瘤反应增加(C。Wrzesinski,未发表的观察结果)。改善的治疗效果独立于抗原特异性疫苗接种,但需要转移HSC,这可能通过释放细胞因子、生长因子和抗凋亡因子来增加联合给药的自身/肿瘤反应性T细胞的增殖和存活(C.Wrzesinski,未发表的观察结果)。通过HSC移植进行清髓调节,消除了特定疫苗接种的需要,这一发现对人类基于ACT的免疫治疗具有重要意义,因为人类使用的多克隆TIL的特异性通常未知,目前还没有有效的疫苗10目前正在评估将化疗、全身照射和HSC移植用于人类的清髓预处理方案。

通过使用更具选择性的淋巴滤过方法来消除基于化疗和放疗的非特异性预处理方案的毒性,可以提高免疫力。例如,T规则细胞和其他免疫抑制细胞可能被定向免疫毒素选择性地耗尽,或被给予细胞因子如TNF抑制133136为了克服竞争性内源性细胞的汇效应,可以外源性提供饱和水平的激活细胞因子137因为IL-2可以促进T规则-细胞增殖和抑制功能,其他细胞因子通过含有γ的受体发出信号c(c)如IL-7、IL-15和IL-21,可能更可取12,42或者,给予IL-2–IL-2特异性抗体复合物可以用于选择性刺激效应T细胞,而不是T细胞规则细胞138此外,TH(H)能够产生多种细胞因子的细胞可能与自身/肿瘤反应性T细胞共同转移24最后,APC可能通过选择性连接激活相关分子(如TLR)而被激活139组合方法的使用可能比单一模式策略具有更大的临床效益。

小鼠模型现在显示早期效应T细胞介导更好体内与中晚期效应T细胞相比,它们的抗肿瘤反应是基于其增殖和存活潜能增加、对稳态和共刺激信号的接受能力、对次级淋巴组织的归巢以及分泌IL-2(REF)的能力。65). 在人类中,越来越多的证据似乎支持临床前的发现,即低分化T细胞是ACT的理想细胞6668综上所述,这些发现表明,目前选择ACT T细胞的标准,包括释放干扰素-γ或单独细胞溶解,是次优的。目前正在研究其他重要的选择因素,如表型、端粒长度、替代细胞因子产生(如IL-2)和TCR亲和力。下一代基于ACT的免疫治疗可能依赖于通过基因转移技术赋予“适合”细胞高亲和力、自身/肿瘤特异性TCR的细胞表面表达升高的能力,该技术可与特定疫苗结合使用48,124126最终,TCR基因治疗方法可能是ACT疗法广泛应用于多种组织学癌症治疗的关键110,112.

证据中添加的注释

最近有研究表明,T细胞也表达转录抑制因子B淋巴细胞诱导成熟蛋白1(BLIMP1)140,141这进一步提供了一个潜在的转录因子靶点来调节,以产生分化程度较低的T细胞。

常见细胞因子受体γ链

c(c)). 白细胞介素-2(IL-2)、IL-4、IL-7、IL-9、IL-15和IL-21受体的信号亚单位。

标准肿瘤学标准

确定癌症治疗是否有效的临床标准。世界卫生组织最初将客观的临床反应定义为所有病灶垂直直径乘积之和减少50%,而任何病灶或新病灶的出现没有增加超过25%。随后更新的标准被称为实体瘤反应评估标准(RECIST)。RECIST将客观的临床反应定义为靶病变最长直径总和减少30%,而任何靶病变或新病变的出现没有增加超过20%。

肿瘤滤过性淋巴细胞

(TIL)。肿瘤床上发现的异质性T细胞群。这些细胞具有多种表型、抗原特异性、亲和力和功能特征。它们可以被激活和扩展体外并重新融合到携带肿瘤的宿主中。

非清髓疗法

诱导严重但短暂的白细胞减少,而不会对造血干细胞造成永久性损伤,从而使宿主血液功能自然恢复的治疗。

稳态增殖

白细胞在淋巴环境中活化和增殖的过程。T细胞稳态增殖由T细胞受体与自身肽-MHC复合物的相互作用以及T细胞对细胞因子如白细胞介素-7(IL-7)、白细胞介导素-15(IL-15)和可能的白介素-21(IL-21)的反应性驱动。

ACT的Pmel-1小鼠模型

过继细胞移植(ACT)治疗B16黑色素瘤的小鼠模型和对黑色素细胞相关分化抗原gp100的自身免疫。治疗包括过继转移gp100特异性CD8+来自T细胞受体(TCR)转基因小鼠pmel-1的T细胞,结合改变的配体疫苗和细胞因子,这些细胞因子通过含有共同细胞因子受体γ链(γc(c)).

交叉演示

抗原呈递细胞与MHC I类分子结合,向CD8摄取、处理和呈递细胞外抗原的过程+T细胞。

Toll样受体

进化上保守的受体家族成员,首次描述于黑腹果蝇这些受体介导固有免疫和炎症反应,随后可调节哺乳动物的适应性免疫。

转呈现

白细胞介素-15受体α链(IL-15Rα)表达活性IL-15的过程反式对表达IL-15亲和力低的复合物的对立细胞,该复合物包含IL-15Rα和常见的细胞因子受体γ链(γc(c))从而转换信号。

端粒

染色体臂末端的片段,由一系列重复的DNA序列(所有脊椎动物中的TTAGGG)组成,在每个细胞分裂中调节染色体复制。

端粒酶

一种核糖核蛋白酶,利用其内部RNA成分作为模板,将端粒DNA直接合成到染色体臂末端。

噬菌体显示

噬菌体被设计成在其细胞表面表达由外来肽或蛋白质及其衣壳蛋白组成的融合蛋白的技术。

互补性决定区

T细胞受体可变区中的高变氨基酸序列,与肽-MHC复合物上的互补氨基酸相互作用。

骨髓清除方案

导致严重骨髓抑制的治疗需要使用造血干细胞来重建宿主的血液功能并确保宿主生存。

致谢

这项工作得到了NIH NCI癌症研究中心的内部研究计划的支持。作者感谢NCI翻译免疫学团队的所有成员,尤其是M.E.Dudley、J.C.Yang、P.F.Robbins、R.A.Morgan、R.M.Sherry、M.R.Parkhurst、J.R Wunderlich和S.L.Topalian。

脚注

竞争利益声明

作者声明没有竞争性的经济利益。

数据库

本文中的以下术语在线链接到:

Entrez基因:

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=gene网站γc(c)|CD4|CD8|CD25|CD28|CD62L|CCR7|FOXP3|IL-2|IL-7|IL-15|IL-7α|IL-15α

更多信息

尼古拉斯·雷斯蒂夫的实验室

http://ccr.cancer.gov/staff/staff.asp?profileid=5762

史蒂文·罗森博格的实验室

http://ccr.cancer.gov/staff/staff.asp?profileid=5757

可以在线访问此链接框。

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