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基因发育。2005年3月15日;19(6): 697–708.
数字对象标识:10.1101/gad.326205
预防性维修识别码:项目经理1065723
PMID:15741315

通过多梳群反应元件的基因间转录抵消沉默

摘要

多梳群反应元件(PREs)介导基因表达程序的有丝分裂遗传,从而维持确定的细胞命运。默认情况下,PRE通过多梳群(PcG)复合物靶向沉默相关基因。然而,在激活信号发出后,PRE会招募抵消三胸苷组(trxG)蛋白,这些蛋白反过来会将目标基因维持在转录活性状态。使用转基因报告系统,我们表明PRE从沉默状态到激活状态的转换需要非编码转录。通过PRE的连续转录由肌动蛋白启动子阻止PcG介导的沉默的建立。表观遗传激活的维持需要通过PRE进行转录,直到胚胎发育完成。在同源异型烟嘴复合物果蝇属,基因间PRE转录物不仅可以在胚胎发生过程中检测到,也可以在幼虫晚期检测到,这表明需要通过内源性PREs持续转录,作为一种抗沉默机制,以防止抑制性PcG复合物进入染色质。此外,我们测试的同源异型复合物之外的所有其他PRE均与相应靶基因的mRNA转录在同一组织中,这表明转录的抗沉默是细胞记忆系统的一个基本方面。

关键词:多梳,染色质沉默,基因间转录,果蝇属

被称为PRE(多梳群反应元件)的染色体元件调节转录程序的有丝分裂遗传,从而确保细胞在整个发育过程中的稳定繁殖。在受抑制状态下,PRE通过向染色质招募多梳群(PcG)复合体发挥沉默剂的作用。然而,当处于激活模式时,PRE由反作用的三羧基(trxG)蛋白控制,这反过来又促进转录活性染色质结构的形成(有关综述,请参阅林格罗斯和帕罗2004). 除了在果蝇属烟熏复合物(BX-C),PRE已被证明与许多靶基因相关(Kassis 1994年Maurange和Paro 2002Bloyer等人,2003年Ringrose等人,2003年). 然而,尽管对PcG和trxG蛋白与PRE的关联动力学以及沉默或激活状态建立期间的要求进行了广泛分析(Orlando等人,1998年Poux等人,2001年Mohd-Sarip等人,2002年Déjardin和Cavalli 2004年)目前尚不清楚抑制性PcG或激活trxG复合物对PRE的招募是如何决定的。

越来越多的证据表明,沉默代表这些元素的默认状态,而PRE向活性染色质模式的转换是由目标基因启动子的胚胎激活触发的(Busturia和Bienz 1993年Chan等人,1994年; 卡瓦利和帕罗1998,1999Klymenko和Müller 2004年Sengupta等人,2004年). 然而,尚不清楚这种转录活性是如何与PRE沟通的,因此,哪种机制调节PRE的表观遗传转换为活性模式。

在BX-C中发现了非编码RNA,有人认为这种受调控的基因间转录可能在不同染色质结构域的开放中发挥作用(Lipshitz等人,1987年桑切斯·埃雷罗和阿卡姆1989Cumberledge等人,1990年). 我们和其他人发现,PcG介导的沉默的缓解与通过BX-C调节区的非编码转录之间存在紧密的相关性(本德和菲茨杰拉德2002Hogga和Karch 2002Rank等人,2002年). 首先,在转基因模型系统中,我们发现沉默PRE转换为激活模式伴随着通过这些元素本身的转录。内源性BX-C基因座的相同PRE序列也在野生型胚胎中转录。重要的是,这些转录物的模式反映了同源靶基因的表达模式,从而反映了这些PRE预期处于激活模式的模式(Bae等人,2002年Rank等人,2002年). 在两项平行研究中,通过启动子插入引起的BX-C基因间区域的异位转录被证明导致同源表型,使人想起PRE放松调控(本德和菲茨杰拉德2002Hogga和Karch 2002). 这些结果导致了这样一个命题,即通过受抑制的PRE或在此过程中产生的非编码RNA的转录可能触发这些元素的表观遗传激活(Rank等人,2002年).

除了BX-C果蝇属,描述了人类β-珠蛋白基因座的基因间转录与染色质结构开放的相关性(Ashe等人,1997年Gribnau等人,2000年)和免疫球蛋白重链(伊格)小鼠基因座(Bolland等人,2004年). 在老鼠面前伊格位点,通过V的反义转录H(H)发现该区域与DJ的转变有关H(H)至VDJH(H)复合(Bolland等人,2004年). 在人β-珠蛋白基因座珠蛋白基因表达的发育调控中,调控的基因间转录物显示出差异激活的染色质亚结构域(Gribnau等人,2000年). 类似于果蝇属BX-C,有人认为通过小鼠基因间区域的转录伊格而人类β-珠蛋白基因座是染色质结构重塑所必需的,因此具有更高的可及性。然而,迄今为止的数据不允许我们排除这样的可能性,即观察到的基因间转录与染色质结构域开放的相关性可能反映了一种结果,而不是开放染色质结构的原因。为了区分这些可能性并理解PRE表观遗传学状态的调节机制,有必要确定通过这些元件的非编码转录是否对其表观遗传学激活具有功能意义。

在这里,我们设计了一个转基因报告系统,使我们能够解决这个问题,并通过特征良好的工厂-7详细介绍PRE。我们表明,通过PRE的组成转录可以产生正义或反义工厂-7RNA导致该元素的表观遗传激活。我们讨论了通过PRE转录在发育后期维持激活模式中的可能作用。我们发现同源异型基因复合物外的PRE序列也被转录,这增加了转录触发的表观遗传激活可能在受PRE调控的基因中广泛存在的可能性。

结果

一个研究PREs非编码转录功能的转基因报告系统

为了确定通过PRE的转录和这些元素的表观遗传激活是否在功能上相关,我们设计了一个转基因报告系统,在该系统中,通过PRE进行的转录工厂-7PRE由具有明确活动的不同发起人控制(图1). 在一组转基因中,转录通过工厂-7由构成活性物质控制肌动蛋白5C发起人(图1Vigoreaux和Tobin 1987)而在第二组中,它是由短暂活跃的合子驱动的驼背发起人(图1Schröder等人,1988年). 我们克隆了工厂-7PRE在转基因的两个方向上,因此来自启动子的转录导致产生任意一种意义(pFAs和pFHs图1)或反义(pFAas和pFHas图1)工厂-7RNA与其内源性靶基因的转录腹部-B(阿卜杜勒·B). 转化标记的表达迷你白反映PRE的活性,从而作为表观遗传状态的直接读出工厂-7. TheLacZ公司本研究未使用报告人。分析转基因PRE结构的一个固有问题是,PRE施加的沉默程度受到染色体环境的强烈影响。为了克服这个问题,我们检查了工厂-7PRE在相同的转基因插入位点受到不同的转录状态。为了实现这一点,我们在液氧磷站点,而工厂-7PRE两侧是FRT公司地点。这使我们能够通过Cre从转基因中分别切除启动子或PRE序列/液氧磷或Flp/FRT公司分别进行重组(周和佩里蒙1996Siegal和Hartl,1996年).

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转基因报告基因构建通过PREs研究非编码转录的功能工厂-7PRE位于组成活性物质的下游肌动蛋白5c启动子(pFAs和pFAas)或瞬时活性合子驼背(血红蛋白)启动子(pFHs和pFHas)。The orientation of the工厂-7相对于其在BX-C中的方向,元素可以是近轴(p-d)或远轴-近轴(d-p)(Martin等人,1995年; 另请参见图5). 因此,无论是正链(d-p,pFAs和pFHs)还是反链(p-d,pFAas和pFHas)腹部B(阿卜杜勒·B)mRNA方向产生。这个工厂-7PRE两侧是FRT公司位点(三角形),启动子克隆于液氧磷位点(椭圆形),允许通过Flp从转基因中分离出这些序列/FRT公司和Cre/液氧磷重组。

这个制造-7PRE在通过元素构成转录时被激活

测试是否通过工厂-7元素对该PRE的表观遗传状态有任何影响,我们使用肌动蛋白5c启动子。我们评估了迷你白pFA中的标记(图2A-D)和pFAas(图2E-H)在所有可能的重组步骤之前和之后的转基因飞线。工厂-7转基因的PRE转录自肌动蛋白5c启动子、pFAs和pFAas成虫孵化出深橙色或红色眼睛(图2A、E). 在所有获得的转基因株系中(每个pFAs和pFAas构建体≥20个独立株系),我们从未观察到迷你白这种情况下的基因,表明工厂-7PRE切换到激活模式。我们通过工厂-7胚胎和第三恒星幼虫组织中的RNA原位杂交以预期模式发生(伯恩等人,1989年; 数据未显示)。相反,在切除肌动蛋白5c转基因启动子迷你白基因几乎完全被抑制了(图2B,F). 因此,在没有转录的情况下工厂-7PRE处于压抑状态,导致记者沉默。工厂-7元素从转基因中移除迷你白该基因在肌动蛋白5c发起人(图2C、G). 切除肌动蛋白5c来自转基因的启动子导致眼睛色素沉着的适度减少(图2D,H),表明启动子与标记基因的邻近具有激活作用。pFAs和pFAas转基因系的表现非常相似,表明工厂-7转基因的PRE与观察到的效果无关。

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工厂-7通过PRE构成转录激活。所示为pFAs和pFAas转基因系在所有可能的重组步骤之前和之后的成年蝇眼的照片。(A、 E类)的表达式迷你白标记,当工厂-7PRE是从肌动蛋白5c启动子。(B、 F类)眼部色素沉着工厂-7PRE,但缺少肌动蛋白5c转基因启动子。(C、 G公司)迷你白在没有工厂-7肌动蛋白5c启动子位于标记基因附近。(D、 H(H))眼睛色素沉着程度工厂-7也不是肌动蛋白5c启动子位于转基因上。()迷你白Cre前后通过光度色素测量确定的表达水平/液氧磷和/或Flp/FRT公司在四个独立的转基因株系中进行重组。所示为三次独立测量的平均值。

通过工厂-7PRE上的迷你白表达水平,我们对四个独立的转基因株系进行了光度色素测定(图2I). 转录后眼睛色素沉着增加工厂-7来自肌动蛋白5c启动子差异很大,从2.9倍到19.3倍不等,这取决于转基因的插入位点。相比之下迷你白仅仅由于肌动蛋白5c仅启动子保持相对恒定(1.9-3.2倍)。果蝇眼部色素沉着水平的比较工厂-7带有肌动蛋白5c启动子,但转基因上没有PRE,表明工厂-7PRE通过转录导致迷你白标记。我们得出结论,构成转录通过工厂-7PRE导致该元素稳定的表观遗传激活。

表观遗传激活需要转录通过工厂-7之前

这个肌动蛋白5CpFAs和pFAs转基因中使用的启动子是一个强启动子。因此,可以想象制造-7元素可能通过在其附近招募转录激活物来实现。为了检测转录机制是否确实必须通过PRE才能触发表观遗传激活,我们在工厂-7元素和肌动蛋白5C发起人(图3,pFTA)。我们选择的终止信号源自果蝇hsp70基因(斯特鲁尔和巴斯勒1993). 在获得的六个转基因pFTA系中,有两个系迷你白基因几乎完全沉默,表明在这种情况下工厂-7PRE处于被压抑状态(图3A). 相反,在用Cre从转基因中切除终止序列后/液氧磷重组工厂-7PRE再次稳定激活,如迷你白标记(图3B). RNA原位杂交表明,在pFTA-1转基因株系中工厂-7PRE来自肌动蛋白5C启动子被有效终止,而终止序列被删除后,工厂-7RNA再次被检测到(图3A′、B′). 我们测试了另外两个pFTA转基因株系,其中迷你白基因未被抑制和检测工厂-7即使存在终止信号(数据未显示),也表明在转基因的这些插入位点,转录没有有效终止。此外,恢复的转基因pFTA株系总数低得令人惊讶,这表明真正的转基因株系可能由于完全抑制迷你白转化标记。

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表观遗传激活需要转录通过工厂-7之前。在pFTA构造中热休克蛋白703′UTR转录终止信号(txterm)插入工厂-7元素和肌动蛋白5c启动子。在pFLA转基因中制造-7PRE与肌动蛋白5cλDNA启动子的长度与热休克蛋白703′UTR缺少终止序列。终止信号和λDNA两侧为液氧磷站点工厂-7PRE由FRT公司序列。(A、 B类)迷你白肿瘤切除前后pFTA细胞系中的表达热休克蛋白70分别来自转基因的3′UTR。(A类′,B′)原位杂交检测工厂-7RNA显示来自肌动蛋白5c启动子在到达PRE之前被有效终止。(C、 D类)眼睛色素沉着水平保持不变,与转基因中λDNA的存在或缺失无关。C′,D类′)RNA原位杂交证实增加工厂-7元素和肌动蛋白5c启动子不通过PRE影响转录。

我们在pFTA线中观察到的抑制可能只是由于PRE和肌动蛋白5C启动子。为了测试这一点,我们建立了对照转基因系,其中工厂-7元素和肌动蛋白5C启动子由λDNA分离,λDNA的长度与热休克蛋白703′UTR终端缺少终端信号。在获得的10个转基因株系中,我们从未观察到迷你白压制(图3C). 正如预期的那样,Cre从转基因中切除λDNA/液氧磷重组对报告者的表达没有影响(图3D). 原位杂交表明工厂-7PRE在这些苍蝇中转录(图3C′、D′)从而证实pFTA系中的抑制是由终止子序列特异性引起的。

这些结果表明工厂-7元素确实需要转录机制通过PRE,这表明在PRE附近招募转录激活物不足以克服沉默。此外,这些数据表明迷你白肌动蛋白5CpFAs和pFAas系中转基因的启动子(图2A、E)是激活的结果工厂-7PRE并不是由于肌动蛋白5C启动子与迷你白基因。

表观遗传激活的维持需要在整个胚胎发生过程中进行转录

为了更好地理解PRE表观遗传激活的机制,我们希望测试转录是否只触发建立,或者是否在整个发育过程中也需要保持激活状态。为此,我们使用中描述的构建物pFH和pFH来培育转基因果蝇图1.在这些苍蝇中工厂-7PRE是从合子的0.7kb片段转录而来的驼背(血红蛋白)启动子,仅在早期胚胎发生期间激活(Schröder等人,1988年). 该启动子的转录开始于细胞分裂周期11-12,即BX-C的PRE内源性转录物出现之前不久(Schröder等人,1988年桑切斯·埃雷罗和阿卡姆1989). 最小合子的活性血红蛋白启动子随着原肠胚形成的开始而停止。RNA原位杂交证实工厂-7转基因上的PRE以预期的模式转录(数据未显示)。相比之下肌动蛋白5cpFAs和pFAas线,它们从未表现出对迷你白重组前,报告者以配对敏感的方式沉默了50%的基因(pFHs,n个=12)和55%(pFHas,n个=11)。这些是携带受抑制PRE的转基因报告株中预期的配对敏感抑制的典型比率(Kassis 2002年),表明工厂-7元件未稳定激活。的确,切除颧骨前后眼睛色素沉着的比较血红蛋白来自转基因的启动子表明转录通过制造-7该启动子不足以激活PRE(图4,参见A、B、E、F)。工厂-7PRE从转基因中移除迷你白该基因不再沉默,并表达到转基因插入位点的典型水平(图4C、G). 如果没有工厂-7PRE,去除合子血红蛋白启动子对迷你白记者(图4,参见C和D、G和H)。

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表观遗传激活的维持需要持续转录。(A类-H(H))迷你白在所有可能的重组步骤之前和之后,pFH和pFH均为转基因株系。(A、 E类)当工厂-7PRE由合子转录而来血红蛋白启动子。(B、 F类)的级别迷你白去除合子后的表达血红蛋白启动子。(C、 G公司)切除工厂-7元素导致释放迷你白标记。(D、 H(H))进一步切除合子血红蛋白来自转基因的启动子不会改变迷你白基因。(-N个)条件性活性Cre-EBD融合蛋白的表达导致眼睛色素沉着水平的变化。()在缺乏雌激素的情况下迷你白基因没有改变。(J型)通过将一龄幼虫转移到含有0.06 mg/mL雌激素的食物中来诱导Cre-EBD活性,导致20只成虫中有一只眼睛色素沉着(红圈)较低。(K(K))当Cre-EBD公司eyGAL4型转基因与pFA结合为转基因。(L(左)-N个)与中类似的条件-K(K)对于缺少工厂-7PRE(在这些病例中未观察到克隆。

我们推断,这个转录的时间框架可能太短,无法牢固地建立表观遗传激活状态工厂-7之前。与此一致,BX-C中的内源性非编码PRE转录物也可以在胚胎发生后期检测到(Rank等人,2002年). 此外,在我们之前建立的转基因检测中工厂-7PRE可以通过一个反式-在胚胎中激活,但当反式-激活剂在胚胎发生的后期表达(卡瓦利和帕罗1998). 因此,可以想象,表观遗传激活的PRE状态的牢固建立需要更长的转录时间窗口,扩展到许多细胞分裂。

通过制造-7元素,我们在发育中眼睛的所有细胞中表达了条件活性Cre-EBD(雌激素结合域)融合蛋白UASP核心-EBD304在我们的pFAas-1转基因系中转基因。Cre-EBD融合蛋白只有在雌激素存在的情况下才有活性,这使我们能够控制切除肿瘤的时间肌动蛋白5C转基因启动子(海德曼和莱纳2001). 因此,我们限制了工厂-7通过将刚孵化的幼虫转移到含有雌激素的食物上,在pFAas-1系中从发育开始到胚胎发生完成后不久的转录。这表示通过工厂-7而不是由肌动蛋白5c启动子,在整个发育过程中都是活跃的,但比短暂活跃合子的时间更长血红蛋白发起人。

我们通过对从测试的成虫头部回收的DNA进行基因组PCR,验证了雌激素处理的幼虫中发生了重组(数据未显示)。在表达Cre-EBD融合蛋白但未经雌激素处理的对照pFAas组中,我们在所分析的五分之二的苍蝇中检测到背景重组。当一龄幼虫被转移到含有雌激素的食物上时,表现出重组的苍蝇数量增加到五分之四。虽然PCR是在饱和条件下进行的,但发生背景重组的病例中PCR产物的数量远远低于雌激素处理个体中获得的数量,这表明发生背景重组细胞的数量非常低。在对UASP核心-EBD304没有观察到雌激素诱导的依赖性重组,而在雌激素诱导后,100%的治疗个体都获得了重组产物(海德曼和莱纳2001). 在该研究中,在一龄幼虫阶段,即使在雌激素处理仅3小时后,发生重组的成年眼睛克隆也覆盖了大多数细胞。因此,我们预计在将一龄幼虫转移到含有雌激素的食物上后,大多数眼细胞会发生重组。

我们比较了接触和不接触雌激素的苍蝇的眼睛颜色,以确定切除雌激素的效果肌动蛋白5c胚胎发生末期的启动子。对照果蝇在缺乏雌激素的食物中表现出预期的高表达迷你白在两种基因都存在的情况下肌动蛋白5c发起人和工厂-7转基因PRE与eyGAL4型驾驶员和UASP核心-EBD304构造(图4I). 当将一龄幼虫转移到含有0.06 mg/mL雌激素的食物上时,大多数成虫的眼睛颜色与对照苍蝇相似(数据未显示)。在10到20个案例中,其中一个案例中获得了眼睛中有小的浅色克隆的苍蝇,这表明迷你白基因变得有弹性了(图4J). 从形式上来说,我们不能排除这种罕见的低频率迷你白表达可能是由一些非特异性重组事件引起的。然而,这些克隆的色素沉着程度与pFAas-1转基因果蝇缺乏肌动蛋白5C启动子与UASP核心-EBD304eyGAL4型转基因(图4K). 当幼虫被转移到含有0.03毫克/毫升或0.09毫克/毫升雌激素的食物中时,我们获得了类似的结果,这与之前的研究一致UASP核心-EBD304转基因,其中Cre重组酶活性在雌激素浓度高于0.01 mg/mL时趋于稳定(海德曼和莱纳2001).

在控制中苍蝇,它没有携带工厂-7在转基因预处理中,我们没有观察到用雌激素诱导后眼睛中有小的浅色克隆的苍蝇,尽管眼睛的大区域显示出中间色素沉着(图4,参见L和M)。与缺乏肌动蛋白5c启动子提示这种较浅的色素沉着可能是由于迷你白通过删除肌动蛋白5c转基因启动子(图4N). 如上所述,在工厂-7PRE,Cre的诱导/液氧磷通过雌激素治疗的重组导致了具有和不具有低眼色素沉着克隆的苍蝇。基因组PCR表明,两种带有浅色克隆的果蝇都发生了重组(图4J)以及在没有克隆的情况下(数据未显示)。在后者中迷你白伴随着实质性重组的表达表明,尽管切除了肌动蛋白5c在大多数情况下,一龄幼虫的启动子工厂-7然而,PRE仍处于活动状态迷你白因此基因被强烈转录。这些数据表明,通常情况下,通过工厂-7在第一个幼虫期开始之前,转基因上的PRE足以建立和维持激活的PRE模式。然而,在极少数情况下,我们观察到迷你白表达,表明在这些细胞中,PRE的表观遗传激活不够稳定,因此变得重新激活。

内源性BX-C PRE在发育后期转录

在之前的研究中,我们发现野生型果蝇属胚胎,BX-C的特征PRE以空间和时间调节的方式转录,反映了其相关基因的活动模式(Rank等人,2002年). 对我们的转基因系统的分析表明,转录通过工厂-7元素直到一龄幼虫期开始,就足以稳定激活该PRE。由于这些数据是在转基因背景下获得的,我们接下来要问的是内源性PRE序列是否只在发育早期转录,或者转录是否持续到后期。

在第三恒星幼虫的大脑中,同源异型基因按照空间共线性的原则沿前后轴以特征模式表达(Duboule和Morata 1994). 如果通过PRE的转录是维持表观遗传激活所必需的,我们期望bxd、Mcp、和工厂-7元素也要转录在这个组织中。通过原位杂交,我们检测到跨越bxd、Mcp、和制造-7反映目标基因表达的模式中的序列超双胸阿卜杜勒·B分别为(图5A). 我们仅在编码基因的方向上检测到PRE转录物。与mRNAs相反,非编码RNA在脑组织中呈点状染色,表明它们定位于细胞核。荧光原位杂交结合DAPI染色显示制造-7三英寸幼虫大脑中的转录物在细胞核内显示为单点或双点(图5B). 与之前的研究一致,其中非编码转录本通过腹下的(国际建筑协会)发现BX-C区域局限于胚胎的细胞核(Drewell等人,2002年),我们检测到Fab-7,Mcp公司、和bxd公司现阶段细胞核内离散位点的RNA(数据未显示)。我们预计这些信号代表新生的非编码转录物,表明它们可能在合成后被降解。为了确定这些信号的相对RNA含量,我们比较了总RNA和新生RNA的表达水平阿卜杜勒·B非编码水平的mRNA工厂-7实时RT-PCR检测SF4组织培养细胞中的RNA。分析结果表明工厂-7RNA的含量大约是阿卜杜勒·B靶mRNA(补充图1)。

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BX-C的非编码转录本也在发育后期转录。(A类)使用RNA探针进行原位杂交,检测超双胸阿卜杜勒·BmRNA和非编码bxd、Mcp、和工厂-7PRE在三英寸幼虫的大脑中检测RNA。下面原位杂交图显示了BX-C的组织结构和用于制备RNA探针的序列的位置。(B)荧光原位杂交显示制造-7大脑后尖的感觉转录物与DAPI协同显示DNA。

在三龄幼虫的大脑中可以检测到PRE转录物的发现表明,在内源性BX-C的背景下,通过PRE的持续转录可能需要稳定地维持表观遗传激活状态。

除了同源异型基因外,已知PcG/trxG记忆系统还能调节更多靶点(有关综述,请参阅林格罗斯和帕罗2004). 因此,我们询问PcG-调节的基因转录是否伴随着BX-C以外基因座上相关PRE的转录。为了测试这一点,我们设计了针对基因特征的RNA探针雕刻的(英语)预处理(Kassis 1994年)以及与三个预测的潜在调节基因的PRE相反懒散的(斯劳Dohrmann等人,1990年),spalt大调(萨尔姆,Frei等人,1988年)、和无尾的(tll公司,Strecker等人,1986年Daniel等人,1999年Ringrose等人,2003年). 基因特征PRE英语基因和预测的PRE萨尔姆tll公司基因定位在各自的启动子区域,而预测的PRE斯劳基因位于转录起始位点上游3kb(Kassis 1994年Ringrose等人,2003年). 原位杂交显示英语PRE以及预测的PRE斯劳,萨姆、和tll公司基因在胚胎中转录(图6). 通过这些序列的转录显示出与已知mRNA相同的空间调控(英语)和预测的靶基因(斯劳,萨姆、和tll公司). 对于恩,斯劳、和萨尔姆PREs,我们检测到正链和反链的转录物(图6A-C),而tll公司PRE仅在反义方向检测到(图6D). 此外,推测的PRE转录本显示出类似于bxd、Mcp、和工厂-7RNA。三个转录的PRE序列位于其相关基因的启动子区域。为了排除上游转录是活性启动子的一般属性的可能性,我们还检测了玫瑰色的()不受PRE调节的基因(Ringrose等人,2003年). 使用原位杂交,我们没有检测到该基因启动子中的转录,这表明上游转录是一种前特异性现象。有趣的是,预测的反义链tll公司PRE也转录于三英寸幼虫大脑的视叶中tll公司mRNA也表达(图6D). 相反,我们没有通过英语萨尔姆尽管这两个基因的mRNA转录水平较高,但PRE仍处于这一阶段。

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通过预测PRE的非编码转录。显示的是使用链特异性探针检测mRNA以及跨越预测PRE序列的转录物的原位杂交。(A类)英语PRE是以正反义方向转录的,其模式反映了英语mRNA分布。(B)通过预测斯劳在表达斯劳mRNA。(C)预测的萨尔姆PRE以与各自的mRNA相同的模式在两个方向上转录(D类)通过预测的转录tll公司PRE仅在反义方向上被发现,其模式反映了tll公司mRNA表达域。对于这种PRE,在三龄幼虫的视叶中也检测到转录物。

这些结果表明,基因的激活不会通过其启动子区域导致虚假转录,而是我们在胚胎中观察到的转录与触发我们测试的已知和预测PRE的表观遗传激活有关。事实上,我们只通过tll公司PRE而不是通过英语萨尔姆发育后期的PRE表明,激活状态的维持可能受不同组织中不同机制的调节。或者英语萨尔姆基因可能由一个以上的PRE控制,这些PRE在不同的组织中有不同的分布,因此会表现出表观遗传学激活和非编码转录的不同模式。

讨论

果蝇属基因组,由几百个基因组成的一组特定基因被PcG蛋白稳定地和遗传地灭活。PcG蛋白对这些基因施加的发育沉默似乎代表了一种默认状态。例如,在大多数情况下,转基因上的PRE会诱导相邻报告基因的全局和组织依赖性抑制。因此,为了获得预调节靶基因的永久活性状态,需要对抗PcG诱导的沉默。在这项工作中,我们提供了证据表明,通过PRE转录可以防止沉默,并将元素的维持模式转换为活动。我们对转基因系统的研究结果表明,非编码转录不是基因激活的结果,而是与沉默的预防有关。转录过程似乎是这一机制的核心,而产生的RNA似乎起着次要作用,如果它们确实有功能的话。

我们和其他人已经证明,BX-C中的基因间转录对Hox基因的表达具有深刻的表型影响。我们对转基因的研究结果表明,BX-C中非编码RNA的时空调控转录可诱导染色质重塑,从而阻止PcG介导的沉默。其结果是Hox基因的片段特异性激活。这在PRE位于其调控的启动子之间的远距离的大型基因复合体中可能特别重要。德贾丁和卡瓦利(2004)表明在转基因检测中,最小219-bp的激活工厂-7PRE不伴随通过元素的转录。然而,在这种情况下,最小的PRE与启动子并列,这可能得益于结合转录因子诱导的开放染色质环境。我们自己的结果(Rank等人,2002年)然而,这表明870个基点的工厂-7PRE在类似条件下,但含有更多PcG蛋白结合位点,不能再被激活。这表明,在沉默复合物稳定性所施加的沉默阈值水平上,需要通过转录进行染色质重塑来去除PcG复合物,以有丝分裂遗传的方式抵消其沉默活性。

Hox簇调控只是整个PcG/trxG记忆系统的一部分,这促使我们分析表征的英语和预测萨尔姆、斯劳、和tll公司靶基因及其各自的PRE序列(Kassis 1994年Ringrose等人,2003年). RNA原位杂交显示,这些序列也以反映同源靶基因表达的模式转录。这表明,最初为同源异型基因簇描述的PRE表观遗传激活机制可能需要调控比先前认为更多的PcG靶基因。通过这些PRE的转录可以是(tll公司PRE)或双向(恩,斯劳、和萨尔姆进一步表明表观遗传激活的诱导依赖于转录过程诱导的染色质重塑,而不是非编码RNA。

通过我们的转基因报告系统,我们发现通过工厂-7PRE来自肌动蛋白5c启动子导致该元件稳定的表观遗传激活。这就提出了如何从机械上实现这一点的问题。已被提议用于珠蛋白基因表达的发育调控(Ashe等人,1997年Gribnau等人,2000年)和VDJ的规定H(H)-小鼠重组(Bolland等人,2004年),转录PRE处染色质结构的开放可能是由转录机制通过调控序列引起的。研究表明,拉长的RNA聚合酶II复合物与SWI/SNF重塑复合物和组蛋白乙酰转移酶活性有关(Wilson等人,1996年Cho等人,1998年Wittschieben等人,1999年). 这种与转录机制相关的酶活性可能催化染色质的表观遗传修饰。

在这方面,有趣的是,大多数trxG突变体最初被发现是Pc表型的抑制物(Kennison和Tamkun 1988年)PcG和trxG突变的结合可以将单个突变的典型表型恢复为野生型(英格姆1985). 这种对抗背后的分子机制尚不清楚。使用克隆分析,Klymenko和Müller(2004)最近有报道称,trxG蛋白Ash1和Trx不作为Hox基因表达的辅激活物,但它们需要作为抗阻遏物来阻止PcG诱导的沉默。相反,含有trxG蛋白Brm、Osa和Mor的Brahma复合物被证明是转录的辅激活剂(Kal等人,2000年)trxG基因的一个子集编码介体复合体的成分(Kennison和Tamkun 1988年Boube等人,2000年Treisman 2001年). 我们的发现是通过工厂-7诱导该PRE的表观遗传激活可能解释了参与更一般转录过程的trxG复合体如何对抗PcG沉默的建立。

有趣的是,在芽殖酵母中,最近发现通过启动子的基因间转录可以阻止转录激活物与其靶序列的结合(Martens等人,2004年). 以类似的方式,通过PRE的转录可能会导致抑制性PcG复合体从染色质中移位,和/或首先阻止PcG向PRE募集。RNA聚合酶II复合物携带的酶活性可能随后或另外修饰具有阳性表观遗传标记(如乙酰基或甲基部分)的PRE组蛋白(卡瓦利和帕罗1999Beisel等人,2002年Klymenko和Müller 2004). 有趣的是,最近的研究表明霍克斯B维甲酸在小鼠胚胎干细胞(ES)中的基因表达与染色体区域中该基因座的有序循环相关(Chambeyron和Bickmore 2004). 这表明,除了染色质结构的局部变化(如组蛋白修饰)外,基因的转录活性还可能受到额外的复杂性顺序的调节。除了诱导染色质结构的“小规模”变化外,通过PRE的转录可能导致靶基因位点从抑制性环境亚核重定位到转录许可性环境。

通过组织特异性转录去除或抑制PcG沉默复合物与PRE的结合似乎是一种有吸引力的机制,可以抵消默认作用的抑制系统的恒定压力。然而,有了这样的解决方案,表观遗传维持的问题就简单地转移到了另一个层面,因为我们现在面临的问题是,是什么阻止了PcG沉默基因间转录。简单的回答是,非编码转录物的启动子对PcG/PRE沉默不敏感,这可能是无效的。BX-C的非编码转录物与编码mRNA的Hox蛋白被同一组早期分割基因激活(卡萨雷斯和桑切斯·埃雷罗1995). 因此,它们随后的调控可能受到与蛋白编码转录物相同的一系列因素的影响。然而,转录记忆的问题可能会简化为如何抑制特定细胞/组织中PcG沉默的问题,而其余的则默认下调。

以过程转录为中心,细胞周期可能成为维持活性转录的重要因素。果蝇属,PcG蛋白在有丝分裂时从染色体上分离(Buchenau等人,1998年). 因此,如果在有丝分裂后,基因间转录在PcG蛋白重新结合到PRE之前开始,染色质将转变为活性模式,从而在下一轮细胞分裂之前免受PcG介导的沉默。在这一点上,是否需要在整个细胞周期中持续转录非编码RNA以防止PcG复合物重新结合,或者早期转录过程中阳性表观遗传标记的初始设置是否足以防止间期沉默,仍然是一个悬而未决的问题。这个被提出的机制进一步将转录活性如何维持的问题简化为DNA复制和有丝分裂期间如何仅维持阳性表观遗传标记的问题。在这里,组蛋白变体研究的最新进展提出了一些有吸引力的候选标记。特别是,与活性基因转录相关的组蛋白变异体H3.3可以被设想为一种可能的阳性信号,在细胞分裂时被局部维持和传播(Ahmad和Henikoff 2002年aTagami等人,2004年). 如前所述,H3.3变异体在活性转录位点的靶向沉积可能有助于消除抑制性表观遗传标记,如甲基化(Ahmad和Henikoff 2002b). 研究表明,建立稳定的PcG沉默复合物不仅需要序列成分,而且还伴随着组蛋白H3的K9和K27甲基化(Czermin等人,2002年Müller等人,2002年Fischle等人,2003年Ringrose等人,2004年). 相反,与H3相比,阳性标记主要与H3.3相关(McKittrick等人,2004年)在转录的PRE中特异性富集,并通过有丝分裂传递。细胞分裂后,这些表观遗传标记可能反过来通过细胞周期早期的PRE为非编码转录提供平台,PRE本身可能重建完全活性的染色质环境,不适合PcG蛋白结合和沉默。此外,报告的结果是,在转录停止后的一段时间内,激活的PRE仍保持不变(通过诱导性Cre重组酶去除启动子,图4)这表明这种阳性的表观遗传信号相当稳定,只会被多个细胞分裂所稀释。

总之,我们提出PcG/trxG系统在发育过程中的转录维持主要是防止PcG沉默发生在那些需要在特定细胞谱系中保持活性的靶基因上的过程。这种作用模式的优点是,一个积极的表观遗传标记,即幸存的DNA复制和有丝分裂,足以确保基因表达模式的稳定和可遗传维持,因为沉默模式是默认创建的。因此,基因间序列的转录将作为一种抗沉默机制,持续抵消PcG介导沉默的启动。未来,重要的是寻求各种trxG组分参与调节转录机制的建立和维持,并分析与细胞周期控制的联系以及维持活性转录所需的阳性表观遗传标记的识别和传播。

材料和方法

DNA载体与克隆策略

pUZ矢量(Lyko等人,1997年)被ET-cloning修改(Zhang等人,1998年Muyrrs等人,2000年)去除UAS位点并引入BglII和AscI限制位点(pUZmod;有关所有引物序列,请参阅补充材料)。简单地说,使用含有pUZ同源区域(ET上部和ET下部)的引物来扩增CAT公司-705Core载体的基因(Zhang等人,1998年). 通过重组pUZ载体和CAT公司用于选择的基因通过AscI消化去除。最小0.7-kb合子血红蛋白从基因组DNA扩增启动子肌动蛋白5c启动子是从pMK26/SV40BS载体(由耶鲁大学M.Koelle善意提供)中切除的。然后将这些启动子亚克隆到pSV-paX1载体(Buchholz等人,1996年)通过HindIII/钝端和BamHI/HindIII限制性位点。产生的结果loxP-actin5c-loxPloxP-hb-loxP分别通过AscI和BglII/AscI限制位点对片段进行PCR-扩增并克隆到pUZmod载体中,得到pUZmod-act5c和pUZmode-hb载体。3.6-kb工厂-7HindIII片段(Zink和Paro 1995)被亚克隆到pSV-paZ11载体(Buchholz等人,1996年),以及由此产生的FRT-Fab-7-FRT公司该片段经PCR-扩增并通过NotI限制性位点克隆到pUZmod-act5c和pUZmode-hb载体中,得到pFAs、pFAas、pFHs和pFHas结构体。这个热休克蛋白703′UTR poly(A)信号,不包括供应链管理系统'来自pBS669载体的序列(斯特鲁尔和巴斯勒1993)PCR-扩增2-kbλ对照DNA(DNA标记II,Roche)并将其亚克隆到pSV-paX1载体中(Buchholz等人,1996年)通过BamHI/HindIII限制区。产生的结果loxP-txterm-loxP液氧磷-λ-液氧磷这些片段经PCR-扩增并通过AscI位点克隆到pFAs载体中液氧磷网站已被删除肌动蛋白5c通过末端结扎重新引入启动子,产生pFTA和pFLA结构。所有结构均已测序。

苍蝇菌株和处理

此处使用的转基因株系为p[FAs]-1(第2染色体)、p[pFAs]-2(chr.3)、p[pFAas]-1(chr.3)、p[pFAas]-2(chr.3。使用24小时大的成年女性进行了描述和分析的定量色素测量(路透社和沃尔夫1981). Germline Cre公司/液氧磷和Flp/FRT公司重组是使用P[w个+、cre](布卢明顿库存编号1092)和P[+,hs飞行时间](布卢明顿库存编号1929)。雌激素诱导Cre/液氧磷使用UASP核心-EBD304 II.6转基因系基本上是按照描述进行的(Heidmann和Lehner 2001年). 这个eyGAL4型驱动线由Stefan Schönfelder(海德堡大学;未解释)善意提供。通过单蝇基因组PCR验证重组(Gloor等人,1993年)使用整只苍蝇或成年苍蝇的头部(用于雌激素诱导的重组)作为模板。

RNA原位杂交

如前所述,对胚胎进行RNA原位杂交(Rank等人,2002年)具有以下修改。杂交溶液含有50%甲酰胺、5×SSC、50μg/mL肝素、100μg/mL鲱鱼精子DNA(Invitrogen,目录号15634-017)、0.1%吐温-20,pH值为5。杂交在60°C下过夜。幼虫组织上的RNA原位杂交基本上按照所述进行(沃尔夫2000). 对于RNA的荧光检测,我们使用了单克隆小鼠抗DIG抗体(1:400,Roche cat.no.1 333 062)和山羊抗鼠Alexa 488-偶联二级抗体(1:200,Molecular Probes cat.no.a-11029)。通过DAPI(0.5μg/mL,Sigma cat.no.D 9542)染色观察细胞核。所有抗体培养均在含有5%山羊血清的PBS/Tween-20(0.1%)中进行。

致谢

我们感谢K.Basler提供的pBS669载体、P.Becker(慕尼黑路德维希·马克西米利安大学)提供的SF4细胞系、C.Lehner提供的UASP核心-EBD304II.6转基因系和S.Schönfelder提供eyGAL4型驱动线路。我们感谢A.Löwer和L.Ringrose对手稿的有益讨论和批判性阅读,感谢S.Schönfelder和M.Hild的讨论。S.S.得到了Boehringer Ingelheim Fonds Fellowship的支持,R.P.得到了Deutsche Forschungsgemeinschaft(SFB/Transregion 5)的资助。

注意事项

补充材料可在http://www.genesdev.org。

文章在印刷前在线发布。文章和发布日期为http://www.genesdev.org/cgi/doi/10.1101/gad.326205。

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文章来自基因与发育由提供冷泉港实验室出版社