研究交流\(\def\h填{\hskip5em}\def\hfil{\hski p3em}\def\eqno#1{\hfil{#1}}\)

期刊徽标结构生物学
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国际标准编号:2053-230X

埃博拉病毒核蛋白-RNA复合物的冷冻电镜结构

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美国加州拉霍拉斯克里普斯研究所综合结构与计算生物学系,邮编:92037b条美国加利福尼亚州拉霍亚斯克里普斯研究所免疫学和微生物学系,邮编92037
*通信电子邮件:erica@scripps.edu,andrew@scripps.edu

韩国成均馆大学医学院K.K.Kim编辑(收到日期:2019年2月13日; 2019年4月1日接受; 2019年4月24日在线)

埃博拉病毒是一种新出现的病毒,能够在人类中引起致命疾病。病毒基因组的复制、转录和包装是由病毒核衣壳进行的。核衣壳是病毒核蛋白、RNA和其他几种病毒蛋白的复合物。核蛋白形成大的、RNA结合的螺旋丝,并充当其他病毒蛋白的支架。此处展示的核蛋白–RNA螺旋丝的3.1μl分辨率单粒子冷冻电子显微镜结构与之前以较低分辨率测定的结构相似,同时提供了蛋白质–蛋白质和蛋白质–RNA相互作用的改进分子细节。本文所述结构的更高分辨率将有助于以核衣壳为靶点的新型特异性埃博拉病毒治疗药物的设计和表征。

1.简介

埃博拉病毒能够引起一种表现为严重出血热的疾病,病死率高达90%(1976年扎伊尔埃博拉出血热, 1978[扎伊尔埃博拉出血热,1976年(1978年)。公牛。世界卫生组织。56,271-293。]). 虽然疫情一般在地理上是孤立的,但2014-2015年的疫情造成了28000多例病例,并在各国之间传播(赫西等。, 2015【Hersey,S.、Martel,L.D.、Jambai,A.、Keita,S.,Yoti,Z.、Meyer,E.、Seeman,S.和Bennett,S.以及Ratto,J.、Morgan,O.、Akyeampong,M.A.、Sainvil,S.与Worrell,M.C.、Fitter,D.和Arnold,K.E.(2015)。MMWR Morb.Mortal.Wkly Rep.64,981-984。】). 埃博拉病毒是一种非片段化的负义RNA病毒,其RNA基因组在病毒的整个生命周期中都被病毒核蛋白(NP)包裹。这种蛋白-RNA复合物作为额外病毒蛋白的支架,包括病毒聚合酶,以进行病毒转录和复制。RNA、核蛋白和这些额外的病毒蛋白的复合物形成核衣壳,是埃博拉病毒的结构组成部分。全长埃博拉病毒核蛋白长度为739个氨基酸。然而,N末端450氨基酸(NP 1–450)对于蛋白质来说是必要的和足够的齐聚和RNA结合(渡边等。, 2006[渡边,S.、野田佳彦和川冈,Y.(2006),J.Virol.80,3743-3751.])蛋白质的N末端区域形成螺旋状细丝,类似于病毒粒子中的NP(Bharat等。, 2012[Barat,T.A.M.,Noda,T.,Riches,J.D.,Kraehling,V.,Kolesnikova,L.,Becker,S.,Kawaoka,Y.和Briggs,J.A.G.(2012)。美国国家科学院院刊,1094275-4280。]).

NP的行列式齐聚和RNA结合一直是一些结构研究的重点。晶体结构与氢/氘交换质谱法已经表明NP的N末端区域具有一个折叠的核,其两侧是无序区域(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). NP的折叠核具有N端和C端叶,主要是α-螺旋结构。埃博拉病毒NP的有效晶体结构均使用单体NP(Dong等。, 2015[Dong,S.,Yang,P.,Li,G.,Liu,B.,Wang,W.,Liu; 柯奇多尔等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). 在其中两个结构中,NP与病毒蛋白35(VP35;Kirchdoerfer)的肽结合等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). 这种VP35肽的结合被认为对于维持NP的单体状态和防止宿主RNA的过早和非特异性包被是重要的(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】; 莱拉等。, 2011【Leyrat,C.,Yabukarski,F.,Tarbouriech,N.,Ribeiro,E.A.Jr,Jensen,M.R.,Blackledge,M.,Ruigrok,R.W.&Jamin,M.(2011),公共科学图书馆·病理学7,e1002248。】).

去除VP35肽后,NP齐聚成线性聚合物能够封装RNA。齐聚作用NP的N端和C端蛋白区域介导到两个折叠的NP 1–450核心(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】). 这个齐聚NP引起两个叶之间的构象变化,为RNA创造高亲和力结合位点(Kirchdoerfer等人。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 杉田等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 埃博拉病毒核衣壳和埃博拉流感病毒NP 1–450的冷冻电子断层扫描(Cryo-ET)研究证明了NP丝的左手螺旋性质,以及NP的第一个结构证据齐聚调节NP单体之间接触的区域(Wan等。, 2017【Wan,W.,Kolesnikova,L.,Clarke,M.,Koehler,A.,Noda,T.,Becker,S.&Briggs,J.A.G.(2017),《自然》(伦敦),551,394-397。】). 然而,这项早期冷冻电镜工作的分辨率有限,无法清楚阐明NP之间和与RNA的分子相互作用。最近一项使用单粒子冷冻电镜(cryo-EM)对NP 1–450进行的研究以3.6Å的分辨率确定了这种螺旋丝的结构(Sugita等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 这种结构揭示了单体、伴侣NP和寡聚体、RNA-结合NP之间的分子相互作用和构象变化。在这里,我们使用单粒子低温电子显微镜以3.1º的改进分辨率测定了NP 1–450螺旋的结构。

2.材料和方法

2.1. NP螺旋丝的表达

NP细丝的制备方法与之前描述的方法类似(Bharat等。, 2012[巴拉特,T.A.M.,野田佳彦,里奇斯,J.D.,克莱林,V.,科莱斯尼科娃,L.,贝克尔,S.,川冈,Y.和布里格斯,J.A.G.(2012),美国国家科学院院刊,109,4275-4280.]). 将不含任何额外肽标签的0.5 mg NP 1–450-pDisplay质粒稀释成20 ml Opti-MEM,然后通过0.22µm过滤器过滤。将1.5 mg聚乙烯亚胺(PEI)添加到5 ml Opti-MEM中。将DNA–PEI复合物在室温下孵育20分钟,然后以1.1×10的温度添加到1 l 293F细胞中6细胞ml−1生长于293Freestyle培养基中,置于2l挡板烧瓶中。转染细胞在37°C和8%CO下培养2最低转速为130转−148小时。

2.2. NP螺旋丝的提纯

细胞在1000℃离心收集15分钟,然后在8 ml 25 m中重新悬浮M(M)三氯化氢,150 mM(M)氯化钠,1 mM(M)氯化钙,5 mM(M) β-巯基乙醇。然后通过添加10 ml 25 mM(M)Tris–HCl pH 7.4,150 mM(M)氯化钠,1 mM(M)氯化钙,0.2%Igepal CA-630,5 mM(M) β-巯基乙醇。在3200℃离心澄清裂解液持续20分钟。

通过将清除的裂解物装载到5ml 20%蔗糖和5ml 90%蔗糖的双层缓冲垫上来分离NP螺旋丝。蔗糖垫在超离心机中使用贝克曼SW28转子以28000转/分的转速旋转−1持续3小时。通过底部穿刺对蔗糖垫进行分级,并通过SDS–PAGE分析人工收集的~1 ml级分。将含有NP 1–450的组分透析至500 ml 25 mM(M)三氯化氢,150 mM(M)氯化钠,1 mM(M)氯化钙,5 mM(M) β-使用1 MDa分子量的巯基乙醇切断透析管过夜,更换一个缓冲液以去除蔗糖。然后将3 ml透析蛋白加载到两个不连续的氯化铯梯度中的一个梯度上,其中含有24 ml 25%(w个/v(v))氯化铯和10毫升60%(w个/v(v))氯化铯。氯化铯梯度在SW28转子中以28000转/分的转速旋转−14小时后,在底管穿刺后手动分馏梯度,并在隔夜透析含有NP 1–450的组分以去除氯化铯之前,用SDS–PAGE分析组分。

使用Beckman TLA100.3转子,在48000转/分的转速下,通过400µl 20%蔗糖缓冲液中造粒透析蛋白(~3 ml),浓缩NP 1–450−1将颗粒重新悬浮在400µl 25 m中1 hM(M)Tris–HCl pH 7.4,150 mM(M)氯化钠,1 mM(M)氯化钙,5 mM(M) β-巯基乙醇。测量再悬浮样品的紫外吸收率得出A类280第3.8页,带有A类260/A类280比率为1.8。

2.3. 低温电子显微镜数据采集和预处理

使用Ar/O等离子清洁UltraAuFoil R 1.2/1.3 Au 300网格(Quantifoil)7 s2气体混合物。将4µl样品吸附在格栅上,使用Vitrobot IV(Thermo Fisher)将格栅吸附4 s,然后将其放入液态乙烷中冷冻。数据收集使用Leginon公司(苏洛韦等。, 2005[Suloway,C.、Pulokas,J.、Fellmann,D.、Cheng,A.、Guerra,F.、Quispe,J.,Stagg,S.、Potter,C.S.和Carragher,B.(2005),《结构生物学杂志》151、41-60。])塔洛斯·阿奇提卡(Herzik等。, 2017【Herzik,M.A.Jr,Wu,M.&Lander,G.C.(2017),《自然方法》,第14期,第1075-1078页。】)(赛默飞世尔)在200 kV下运行,K2 Summit探测器(Gatan)在计数模式下使用43 478的放大率和每秒5.06 e每像素的剂量率,收集13 s曝光的200 ms帧和49.7 eÅ的总剂量−2。框架对齐使用运动Corr2(郑等。, 2017[Zheng,S.Q.,Palovcak,E.,Armache,J.-P.,Verba,K.A.,Cheng,Y.&Agard,D.A.(2017).自然方法,14,331-332.]). CTF评估采用Gctf公司(张,2016【张凯(2016).《结构生物学杂志》193,1-12.】)并且去除了估计分辨率低于5º的图像。

2.4. 数据处理和细化

手动拾取丝状物,并使用360像素的盒子大小从丝状物中提取颗粒,每个像素的像素大小为1.15º,盒子之间的距离为100º(He&Scheres,2017【He,S.&Scheres,S.H.W.(2017),《结构生物学杂志》198,163-176。】). 由此产生的颗粒堆积在RELION公司2.1(基马尼乌斯等。, 2016【Kimanius,D.、Forsberg,B.O.、Scheres,S.H.W.和Lindahl,E.(2016)。Elife,5,e18722。】)将排列不良的颗粒排除在后续处理之外。三维精炼由使用relion_helix工具箱(He&Scheres,2017年【He,S.&Scheres,S.H.W.(2017),《结构生物学杂志》198,163-176。】)根据埃博拉病毒核衣壳(Bharat等。, 2012[巴拉特,T.A.M.,野田佳彦,里奇斯,J.D.,克莱林,V.,科莱斯尼科娃,L.,贝克尔,S.,川冈,Y.和布里格斯,J.A.G.(2012),美国国家科学院院刊,109,4275-4280.]; 等。2017年【Wan,W.,Kolesnikova,L.,Clarke,M.,Koehler,A.,Noda,T.,Becker,S.&Briggs,J.A.G.(2017),《自然》(伦敦),551,394-397。】). 相同的螺旋参数用作3D的起始螺旋参数精炼这些参数可以在细化过程中进行优化。

原子坐标被内置到密度中,用于计算非对称单元螺旋线的使用库特(埃姆斯利等。, 2010【Emsley,P.、Lohkamp,B.、Scott,W.G.和Cowtan,K.(2010),《水晶学报》D66、486-501。】)和单体埃博拉病毒NP结构,PDB入口4升(柯奇多尔等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】),作为起始模型。先前发布的带有PDB代码的3.6º分辨率模型5z9瓦用于比较(Sugita等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 坐标根据地图使用Rosetta放松(地脉等。, 2015[DiMaio,F.、Song,Y.、Li,X.、Brunner,M.J.、Xu,C.、Conticello,V.、Egelman,E.、Marlovits,T.、Cheng,Y.&Baker,D.(2015)。《自然方法》,第12期,第361-365页。]). 最终坐标使用摩尔浓度(威廉姆斯等。, 2018【Williams,C.J.,Head,J.J.,Moriarty,N.W.,Prisant,M.G.,Videau,L.L.,Deis,L.N.,Verma,V.,Keedy,D.A.,Hintze,B.J.,Chen,V.B.,Jain,S.,Lewis,S.M.,Arendall,W.B.,Snoeyink,J.,Adams,P.D.,Lovell,S.C.,Richardson,J.S.&Richardsen,J.S(2018),《蛋白质科学》27,293-315.】)和EM振铃器(巴拉德等。, 2015【Barad,B.A.,Echols,N.,Wang,R.Y.-R.,Cheng,Y.,DiMaio,F.,Adams,P.D.&Fraser,J.S.(2015)。《自然方法》,第12943-946页。】). 数据收集和处理以及模型细化统计数据如表1所示[链接].

表1
数据收集和协调模型重新定义统计

数据和重建统计
EMDB代码 EMD-0522
显微镜 Talos Actica公司
电压(kV) 200
探测器 Gatan K2峰会
剂量率(e/像素/秒) 5.06
暴露 13
剂量(eá−2) 49.7
框架 65
离焦范围(µm) 0.6–2.0
丝状物 2143
粒子 24609
B类系数(Ω2) −94
分辨率(Ω) 3.1
坐标模型细化
PDB代码 6螺母
残留物数量
  氨基酸 379
  核苷酸类 6
R.m.s.d.,债券(Au) 0.016
R.m.s.d.,角度(°) 1.35
拉马钱德兰统计
  支持(%) 99.2
  允许(%) 0.8
  异常值(%) 0
Rotamer异常值(%) 0.3
冲撞得分 2.89
摩尔概率分数 1.08
EM振铃器分数 3.15

3.结果

NP螺旋丝在对齐的剂量加权显微照片胶片中具有倒刺状外观(图1[链接]). 粒子的二维排列揭示了具有明显二级结构特征的类别。精细的3D粒子取向显示了垂直于螺旋轴的视图的优势,正如在原始显微照片中拾取的螺旋丝的取向所预期的那样(图2[链接]). 最终图谱的精细螺旋参数为每NP原聚体−14.71°扭曲和2.84°上升。重建后的地图分辨率为3.1º,使用金标准傅里叶壳相关截止值0.143估算。局部分辨率估计显示分辨率范围为3.0–3.8º(图2[链接]),NP折叠核心显示最高分辨率,而外围表面暴露区域重建为较低分辨率,可能表明局部迁移或构象复形。

[图1]
图1
通过二维对齐进行图像采集和处理。()对原始显微照片电影进行校准和剂量加权。比例尺为100 nm。(b条)拾取粒子的二维对齐显示了粒子的螺旋性质,并有二级结构的证据。
[图2]
图2
粒子角度分布和贴图分辨率。()精细粒子取向的角分布表明垂直于灯丝轴的视图(红色)占主导地位。(b条)傅里叶壳层相关图显示,使用黄金标准FSC截止值0.143,分辨率为3.1º,如虚线所示。NP螺旋丝的局部分辨率(c(c))和一个孤立的NP原聚体(d日)估计为RELION公司(库库克尔比尔等。, 2014[Kucukelbir,A.、Sigworth,F.J.和Tagare,H.D.(2014)。《自然方法》,第11期,第63-65页。])表明NP的高分辨率折叠核具有低分辨率外围区域。

地图的高分辨率使建筑和精炼埃博拉病毒NP与RNA结合的原子模型。大多数氨基酸的侧链密度很明显,我们观察到6种氨基酸的密度核苷酸RNA,类似于先前的研究(Sugita等。, 2018[Sugita,Y.,Matsunami,H.,Kawaoka,Y.,Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。]; 图3[链接]). 由于NP被认为与RNA结合而没有序列特异性,RNA核苷酸在地图上看到的表示界的平均值核苷酸。我们将这种密度建模为六个腺苷残基的聚合物,因为正如预期的那样,这些残基都不进行序列特异性接触。

[图3]
图3
模型与重建密度的拟合。NP–RNA螺旋丝的立体视图()结合RNA(b条)N端子齐聚手臂和(c(c))C端子齐聚螺旋线。

这里提出的坐标模型与之前发表的与RNA结合的NP(Sugita等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】; 图4[链接]). 在之前发布的地图和此处显示的地图之间,似乎存在2.2%的各向同性拉伸。我们将此归因于之前收集的数据的像素大小校准中的问题。然而,这种影响很小,不太可能影响之前研究得出的结论。未来的抗病毒药物开发工作可能受益于记录此类校准问题,以产生更准确的模型。

[图4]
图4
()此处显示的3.1º分辨率模型(深绿色)立体图与之前发布的3.6º分辨率蛋白质模型(浅绿色;PDB条目5z9瓦; 杉田等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】). 此处所示模型中的结合RNA显示为棒状。此处所示3.1º分辨率密度的比较(b条)分辨率为3.6º的Sugita等。(2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】) (c(c))显示了中高分辨率数据的RNA碱基的更清晰定义(b条).

NP与RNA的相互作用主要由静电相互作用介导,其中Lys160、Arg174、Arg298、His310和Arg401直接与RNA主干带负电荷的磷酸盐相互作用(图5[链接]). 其他残留物Val178、Leu245、Leu331和Val334为疏水填料创造了表面核苷酸碱基。开启-开启NP交互似乎是最小的。螺旋线匝间间隙大(图5[链接]b条)表明在转动之间由带电氨基酸介导的柔性或构象不均匀的侧链相互作用,此前曾被假设为赋予NP丝柔性(Sugita等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】).齐聚作用NP的相互作用以及NP折叠核两侧的N端和C端区域介导(图5[链接]c(c)). 侧对侧NP相互作用由盐桥和疏水相互作用的混合物介导(图5[链接]d日). N端子齐聚该区域是一个螺旋,通过短连接体连接到NP的折叠核心。这种螺旋将Ile24埋在相邻NP上的疏水口袋中,并占据与VP35伴侣肽相同的位置(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.&Saphire,E.O.(2015),《细胞报告》第12期,第140-149页。】; 等。, 2015【梁·D·W、博雷克·D、卢特拉·P、宾宁·J·M、阿南帕德玛·M、刘·G、哈维·I·B、苏·Z、恩德利希·弗雷泽·A、潘·J、沙布曼·R·S、邱·W、戴维·R·A、奥特温诺夫斯基·Z、巴斯勒·C·F和阿马拉辛格·G·K(2015)。细胞报告11,376-389。】)图5[链接]e(电子)). C端子齐聚区域折叠成一对螺旋,这些螺旋叠加在相邻NP的等效螺旋上,主要使用疏水残基(图5[链接](f)). 这些螺旋的形成创造了一个平台,将折叠NP核的C末端叶的疏水表面放置在该平台上,支持NP核中寡聚化诱导的NP构象变化模型,以创建RNA-结合位点。

[图5]
图5
蛋白质–参与NP齐聚和RNA结合的蛋白质界面。()RNA在折叠核心的NP N端和C端叶之间结合,由几个基本氨基酸以及核苷酸碱基堆积的疏水表面的形成介导。(b条)NP之间的导通-匝间相互作用最小,螺旋匝间存在较大间隙。(c(c)——(f))NP-蛋白质-蛋白质相互作用在相互作用中扩散(d日),N端子齐聚地区(e(电子))和C端子齐聚地区((f)).

4.讨论

与其他非片段负义RNA病毒的核蛋白类似,埃博拉病毒核蛋白开始其生命,由VP35以单体形式伴随,然后转变为与病毒RNA结合的寡聚形式。这里,我们展示了寡聚RNA结合埃博拉毒核蛋白的高分辨率低温电子显微镜结构。从伴侣单体到寡聚体、RNA-结合形式的转变涉及广泛蛋白质-蛋白质界面的破坏和形成,这些界面与构象变化相耦合。从伴侣单体中去除VP35肽是这些变化的先决条件(Kirchdoerfer等。, 2015【Kirchdoerfer,R.N.,Abelson,D.M.,Li,S.,Wood,M.R.和Saphire,E.O.(2015)。细胞。众议员12140-149。】),尽管VP35是如何删除的体内尚不清楚,可能涉及其他细胞或病毒因子,如病毒聚合酶L。从NP中去除VP35后,NP N末端齐聚进入的单体的区域和横向NP面能够与相邻的NP相互作用。C末端的随后折叠齐聚螺旋创造了一个疏水平台,通过其C端叶结合传入的NP。NP的C端螺旋的这种相互作用−1带有NP的C端叶导致NP的C端叶移动朝向N末端叶,形成RNA-结合位点。以这种方式向生长的低聚物中添加单体NP将允许病毒RNA在5′到3′方向包被,这是一种有助于病毒RNA共同复制包被的机制。与该模型相关的一个未知因素是,该过程是如何逆转以暴露病毒RNA以进行RNA合成的,正如核苷酸碱基当用NP包埋时,不能作为聚合酶模板。

此处介绍的3.1º分辨率结构概括了先前发布的3.6º分辨率(Sugita)结构中观察到的特征等。, 2018【Sugita,Y.、Matsunami,H.、Kawaoka,Y.和Noda,T.&Wolf,M.(2018)。《自然》(伦敦),563137-140。】)包括蛋白质与蛋白质和蛋白质与RNA的相互作用。改进的分辨率提供了蛋白质侧链和核苷酸碱基,阐明NP原生质体和RNA之间的分子接触。埃博拉病毒仍然是世界卫生安全的新威胁。应对这一威胁的关键是发现和评估新的治疗方法。与RNA结合的埃博拉病毒NP的高分辨率结构将更好地描述以病毒核衣壳组装为靶点的潜在抗病毒药物。

致谢

我们非常感谢Mark Herzik和Bill Anderson在显微镜校准和数据收集方面的帮助。特别感谢Sebastian Raemisch在使用Rosetta放松。我们也感谢查尔斯·鲍曼的计算支持。

资金筹措信息

这项工作由NIH/NIAID向RNK拨款AI123498,向EOS和ABW拨款AI118016。

工具书类

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