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期刊徽标结构性的
生物学
编号:2059-7983

纯化、结晶和初步X射线衍射分析一种真菌皂苷脱毒酶

英国诺维奇NR4 7TJ东英吉利大学生物科学学院,b条英国诺维奇NR4 7UH约翰·因内斯中心桑斯伯里实验室c(c)英国诺维奇NR4 7TJ东英吉利大学化学科学与药学学院
*通信电子邮件:a.hemmings@uea.ac.uk

(收到日期:2004年3月12日; 2004年5月14日接受)

番茄蛋白酶,一种属于糖基家族3的胞外酶水解酶,是由真菌tomato-leaf病原体产生的斑枯病解毒皂甙α-托马汀。已开发出一种从真菌培养基中纯化酶的有效策略。单晶是在289 K下通过蒸汽扩散从17.5%生长出来的(w个/)聚乙二醇4K,5%(/)2-丙醇和0.1M(M)pH 4.5的醋酸钠作为沉淀剂。当在100 K低温保护时,这些晶体衍射至少为3.0º,属于空间组 P(P)21212.基于糖基化蛋白的估计分子量110 kDa,并假设非对称单元,这些晶体含有大约46%的溶剂。

1.简介

皂苷是一类重要的糖基化化合物次级代谢产物广泛分布于植物界。三萜皂苷主要存在于双子叶植物中,如豆科植物,但也存在于一些单子叶植物中。甾体皂苷不太常见,主要存在于百合科等单子叶植物中。甾体糖生物碱存在于350多种植物中,主要存在于茄科植物中,茄科植物包括马铃薯和番茄(Hostettmann&Marston,1995)[Hostettmann,K.A.和Marston,A.(1995)《天然产物的化学和药理学》,剑桥大学出版社。]). 许多皂苷具有抗真菌活性,因为它们通常以相对较高的水平存在于健康植物中,可能有助于植物抵抗真菌的攻击(Morrissey&Osbourn,1999【Morrissey,J.P.和Osbourn,A.E.(1999),《微生物分子生物学评论》,第63期,第708-724页。】). 因此,皂苷可被视为预成型抗菌剂。

有很好的证据表明,皂苷对真菌的毒性主要机制与其膜分解作用有关(在Morrissey&Osbourn,1999年进行了综述【Morrissey,J.P.和Osbourn,A.E.(1999),《微生物分子生物学评论》,第63期,第708-724页。】). 这是因为它们能够与膜形成复合物甾醇,导致孔隙形成、电解质泄漏和膜完整性损失。一些真菌由于其膜成分而对皂苷具有内在抗性。其他真菌产生特定的皂苷解毒酶。许多植物病原真菌产生胞外酶来解毒皂苷(Morrissey&Osbourn,1999)【Morrissey,J.P.和Osbourn,A.E.(1999),《微生物分子生物学评论》,第63期,第708-724页。】). 皂苷在植物界的广泛分布表明,对其解毒的能力可能是植物病原真菌的一个共同属性。根侵染病菌产生的皂苷脱毒酶avinacise禾顶囊壳对燕麦根三萜皂苷进行解毒,并已被证明是宿主范围的决定因素(鲍耶等。, 1995[鲍耶·P、克拉克·B·R、伦内斯·P、丹尼尔斯·M·J和奥斯本·A·E(1995),《科学》,第267、371-374页。]).

许多感染西红柿的真菌会产生一种名为tomatinases的酶,对甾体糖生物碱进行解毒α-tomatine(1999年在Morrissey&Osbourn杂志上评论【Morrissey,J.P.和Osbourn,A.E.(1999),《微生物分子生物学评论》,第63期,第708-724页。】).α-西红柿碱的浓度很高(高达1mM(M))在番茄的叶子、茎、根和绿色果实中,这表明它可能在抵抗潜在病原体方面很重要。斑枯病番茄叶斑病的病原体,具有一种能解毒的组成型番茄酶α-?通过移除单个端子实现番茄酱D类-葡萄糖部分(Pegg&Woodward,1986年【Pegg,G.F.和Woodward,S.(1986),《生理学、分子、植物病理学》,第28期,第187-201页。】; 奥斯本等。, 1995[Osbourn,A.E.,Bowyer,P.,Lunness,P.、Clarke,B.和Daniels,M.(1995)。《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第971-978页。]; 砂岩等。, 1995【Sandrock,R.W.,Della Penna,D.&Van Etten,H.D.(1995),《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第960-970页。】). 的突变番茄链球菌在茄科植物中,不能产生番茄酶的物质会引发防御反应的增强(马丁·埃尔南德斯等。2000年【Martin-Hernandez,A.M.、Dufresne,M.、Hugouvieux,V.、Melton,R.和Osbourn,A.E.(2000)。《分子-植物-微生物相互作用》,第13期,第1301-1311页。】; 波拉布等。2002年[Bourab,K.,Melton,R.,Peart,J.,Baulcombe,D.&Osbourn,A.(2002)。《自然》(伦敦),41889-892。]). 有趣的是,这些实验和其他数据表明α-?番茄红素水解能够直接或间接干扰诱导的植物防御反应(Martin-Hernandez等。2000年【Martin-Hernandez,A.M.、Dufresne,M.、Hugouvieux,V.、Melton,R.和Osbourn,A.E.(2000)。《分子-植物-微生物相互作用》,第13期,第1301-1311页。】; 波拉布等。2002年[Bourab,K.,Melton,R.,Peart,J.,Baulcombe,D.&Osbourn,A.(2002)。《自然》(伦敦),41889-892。]). 皂苷酶(如番茄红素酶)的高底物特异性和胞外性质使其成为设计用于控制植物真菌疾病的抑制剂的诱人靶点。

预测的番茄酶氨基酸序列表明它属于糖基家族3水解酶类(奥斯本等。, 1995[Osbourn,A.E.,Bowyer,P.,Lunness,P.、Clarke,B.和Daniels,M.(1995)。《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第971-978页。]; 砂岩等。, 1995[Sandrock,R.W.,Della Penna,D.和Van Etten,H.D.(1995)。分子植物微生物相互作用。8960-970。]). 这个家族有100多个成员,包括真菌和细菌纤维二糖降解酶(Henrissat&Bairoch,1996)【Henrissat,B.和Bairoch,A.(1996),《生物化学杂志》316,695-696。】). 家庭中唯一的成员晶体结构有大麦吗β-D类-葡聚糖外水解酶(Varghese等。, 1999【Varghese,J.N.、Hrmova,M.和Fincher,G.B.(1999)。结构,7179-190。】). 这种结构被用来为代表主要系统发育簇(哈维)的其他家族成员生成比较(同源)模型等。2000年【Harvey,A.J.、Hrmova,M.、De Gori,R.、Varghese,J.N.和Fincher,G.B.(2000)。蛋白质,41,257-269。】). 建议集群成员(包括番茄蛋白酶)包含(α/β)8-桶和(α/β)6-大麦外水解酶结构域1和2的夹心结构(氨基酸序列中的顺序相同)。然而,它们比大麦酶大得多(在番茄蛋白酶中多198个残基),因此具有额外的预测域。此外,番茄蛋白酶的对齐区域与大麦酶只有22%的序列一致性,对于这种高度分化的蛋白质,同源模型不太可能准确描述番茄蛋白酶的结构。

在本文中,我们报道了一种高效纯化番茄红素酶的策略的开发斑枯病培养滤液和蛋白质成功结晶。X射线数据是从天然蛋白质晶体中收集的。确定晶体结构有望为皂苷酶抑制剂的设计提供结构基础。

2.材料和方法

2.1. 文化番茄红球菌

含有最终浓度为34µ链霉素的马铃薯葡萄糖琼脂培养皿M(M)接种1mm2生长旺盛的菌丝体切片番茄链球菌荷兰巴恩Schimmelcultures中心提供的殖民地(Isolate 353-­49)。将平板在295 K的黑暗中培养14–20天。将菌落均质化,并添加到500 ml Czapek-Dox液体培养基中,其中含有10 g l−1酪蛋白氨基酸和链霉素的最终浓度为34µM(M).烧瓶在295 K温度下孵育5 d,并在300转/分下摇晃−1.

2.2。蛋白质纯化

六个烧瓶番茄链球菌将液体培养物过滤并合并。上清液用4M(M)氢氧化钠。将蛋白酶抑制剂添加到所示浓度:EDTA(2 mM(M))、PMSF(0.05米M(M)),盐酸苯甲脒(1µM(M)),胃蛋白酶抑制素A(1.5µM(M)),菲咯啉(0.5µM(M)),抑肽酶(0.5µM(M))和leupeptin(2µM(M))(奥斯本等。, 1995[Osbourn,A.E.,Bowyer,P.,Lunness,P.、Clarke,B.和Daniels,M.(1995)。《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第971-978页。]). 通过添加100 g DE52阴离子交换介质(预平衡20 m)来实现蛋白质的浓缩M(M)每3升培养液中pH值为7.0的双三丙烷。在277 K下缓慢搅拌过夜,然后让其沉淀。去除多余的上清液,剩余的DE52在277 K的温度下装入XK 26/40色谱柱中。用20 m洗脱馏分M(M)双三丙烷pH值7.0加1M(M)氯化钠。使用葡萄糖氧化酶试验(Sigma)评估部分番茄灰酶活性,以检测天然番茄灰酶底物中的葡萄糖释放,α-托马汀,如奥斯本所述等。(1995[Osbourn,A.E.,Bowyer,P.,Lunness,P.、Clarke,B.和Daniels,M.(1995)。《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第971-978页。])(请注意,在分析之前,使用10kDa NMWC膜对含有番茄红素的培养基样品进行透析,以去除游离葡萄糖),并在277K下与水进行混合和透析之前使用SDS-PAGE。

将浓缩的蛋白质缓冲至20米M(M)通过添加适当体积的1,pH 9.0的二乙醇胺M(M)二乙醇胺pH 9.0。阴离子交换色谱法在POROS 20HQ(4.6×100 mm)色谱柱上进行。用0–400 m的线性梯度洗脱馏分M(M)氯化钠。有效分数α-将番茄红素混合,在277 K的温度下用水透析,然后冷冻干燥。然后使用HiPrep Sephacryl S-200 HR色谱柱进行凝胶过滤,该色谱柱与20 m预平衡M(M)pH 6.2的磷酸钠缓冲液,含200mM(M)NaCl,用相同的缓冲液洗脱。

2.3. 结晶和X射线衍射分析

番茄酶浓缩至约10 mg ml−1在277 K温度下使用Amicon过滤装置。蛋白质样品在使用前通过300 kDa NMWL过滤器过滤,以去除可能存在且可能干扰结晶的任何聚集物或灰尘颗粒。使用Jancarik&Kim(1991)的筛网在277 K和281 K下进行了初始结晶筛选实验【Jancarik,K.和Kim,S.-H.(1991),《应用结晶杂志》,第24期,第409-411页。】)和Cudney等。(1994【Cudney,R.,Patel,S.,Weisgraber,K.,Newhouse,Y.&McPherson,A.(1994),《水晶学报》D50,414-423.】)以及悬挂式蒸汽扩散技术。每个实验使用4µl液滴,其中含有等量的浓缩蛋白溶液和筛分溶液。在700µl筛液储罐中平衡每个悬挂液滴。在含有17.5%的优化条件下,几天后观察到晶体(w个/)聚乙二醇4K,5%(/)2-丙醇和0.1M(M)277 K下pH 4.5的醋酸钠。将晶体转移到含有20%的溶液中进行冷冻保护(w个/)聚乙二醇4K,0.1M(M)pH 4.5和15%的醋酸钠(/)乙二醇。使用ADSC Quantum 4 CCD探测器和0.87º的波长在SRS(达累斯伯里实验室)的9.6号站收集X射线衍射数据。数据在100 K下收集,每张图像使用1°的振荡角。使用香港(HKL)通过程序实现的程序集DENZO公司电子秤组件(Otwinowski&Minor,1997年[Otwinowski,Z.&Minor,W.(1997),《酶学方法》,276307-326。]). 从观测到的反射强度导出结构因子振幅,并使用中央对手方清算所4程序集(协作计算项目,1994年第4期[合作计算项目,第4期(1994年),《晶体学报》,D50,760-763。]). 原始结构因子数据不足以明确确定空间组tomatinase晶体的轴向反射被收集到中等分辨率,从一个冷冻到100K的大型单晶,并安装在配备有Osmic镜和R-AXIS IV探测器的Rigaku RU-200HB铜旋转阳极X射线发生器上。

3.结果和讨论

开发了一种简单的三步纯化方案,以最大限度地提高真菌细胞培养基中番茄红素酶的产量(图1[链接]). 表1列出了该程序中番茄蛋白酶的产量和比活性[链接]与之前公布的方法相比,有了重大改进(例如奥斯本等。, 1995[Osbourn,A.E.,Bowyer,P.,Lunness,P.,Clarke,B.和Daniels,M.(1995)。分子植物微生物相互作用。81971-978。]; 砂岩等。, 1995【Sandrock,R.W.,Della Penna,D.&Van Etten,H.D.(1995),《分子-植物-微生物相互作用》,第8期,第960-970页。】)涉及使用分批阴离子交换蛋白浓缩步骤代替使用硫酸铵作为沉淀剂。最终产量为每升真菌培养基1.0mg蛋白质,纯化因子为15.5。纯化程序浓缩步骤后,番茄灰酶制剂的总活性增加很有趣,这可能是由于去除了干扰番茄灰酶或葡萄糖氧化酶活性或两者都干扰的高分子量因子所致。需要进一步调查以确定该部件。

表1
番茄红素酶的纯化统计

引用的数字是每升培养基。

净化阶段 总蛋白质(mg) 比活度(µmol min−1毫克−1) 总活性(µmol min−1)
培养滤液 43 10 430
浓度 20 40 800
阴离子交换 2 150 300
凝胶过滤 1 155 155
[图1]
图1
银染的10-20%梯度SDS-PAGE凝胶显示了tomatinase纯化的进展。车道M(M),分子量标记(kDa);第1道,培养滤液(总蛋白100ng);通道2,POROS HQ阴离子交换后的混合馏分色谱法(总蛋白10 ng);lane 3,纯化番茄蛋白酶(10ng蛋白)

尽管蛋白质有广泛的糖基化作用,但使用纯化酶进行的结晶试验从含有17.5%混合物的结晶溶液中获得了晶体(w个/)聚乙二醇4K和5%(/)2-丙醇作为沉淀剂。结晶条件的优化得到了典型尺寸为100×50×20µm的单晶。当用SDS-PAGE分析溶解晶体中的蛋白质时,染色时检测到一条表观分子量为110kDa的单一条带。这些样本也对α-番茄红基质。

晶体被冷冻保护20%(w个/)聚乙二醇4K,0.1M(M)pH 4.5和15%的醋酸钠(/)N中闪速冷冻前的乙二醇2-气流。单晶衍射数据采集(图2[链接])使用同步辐射可以获得最大分辨率为3.0?的本地数据集(表2[链接]). 自动索引和对系统无反射的考虑表明,这些晶体属于空间组 P(P)21212或P(P)2221,带有单位-细胞参数 = 57.4,b条= 149.3,c(c)= 240.3 Å,α = β = γ = 90°. 在内部X射线探测器系统上收集到的中等分辨率的额外轴向反射揭示了空间组成为P(P)21212.假设每个不对称单元蛋白质分子量为85 kDa(根据氨基酸序列计算),V(V)M(M)为2.99欧Da公司−1相当于58.5%的溶剂含量。如果使用的分子量为110 kDa(糖蛋白分子量由SDS–PAGE测定),V(V)M(M)降至2.31欧Da公司−1溶剂含量降至46.3%。然而,使用中央对手方清算所4程序集无法识别清晰的非晶体学双轴。分子替换使用基于大麦的多种搜索模型β-D类-葡聚糖外水解酶也不成功。根据从蛋白质的许多晶体中收集的衍射数据推断出的晶体细胞是同晶的,这表明MIR方法可能适合于相位测定。寻找合适的重原子衍生物的工作正在进行中。

表2
番茄蛋白酶的本地X射线数据收集统计

括号中的值是指最高分辨率外壳(3.11–3.0º)中的数据。

光束线 SRS站9.6
波长(Ω) 0.87
单位-细胞参数(Ω,°) = 57.4,b条= 149.3,c(c)= 240.3,α=90,β= 90,γ= 90
分辨率范围(Ω) 20–3.0
R(右)sym(对称)(%) 14.7 (31.7)
〉/〈σ()〉 < 3 (%) 29.1 (53.5)
完整性(%) 93.3 (85.9)
观察结果总数 314896
独立思考 42819
R(右)sym(对称)=[\textstyle\sum\sum|I_{I}-\langle I\rangle |/][\textstyle\sum I_{I}],其中〈〉是对称等效反射的平均值,总和覆盖所有唯一反射的所有观测值。
[图2]
图2
番茄糖酶晶体的X射线衍射图。

致谢

我们非常感谢BBSRC根据83/B09174号拨款提供的财政支持。我们还确认可以进入SRS达累斯伯里实验室的9.6号站。

工具书类

第一次引用Bourab,K.、Melton,R.、Peart,J.、Baulcombe,D.和Osbourn,A.(2002年)。自然(伦敦),418, 889–892. 科学网 公共医学 谷歌学者
第一次引用鲍耶(Bowyer,P.)、克拉克(Clarke,B.R.)、伦内斯(Lunness,P.,Daniels,M.J.)和奥斯本·A·E(1995)。科学,267, 371–374. 交叉参考 中国科学院 公共医学 科学网 谷歌学者
第一次引用协作计算项目,第4期(1994年)。《水晶学报》。D类50,760–763交叉参考 IUCr日志 谷歌学者
第一次引用Cudney,R.、Patel,S.、Weisgraber,K.、Newhouse,Y.和McPherson,A.(1994)。《水晶学报》。D类50, 414–423. 交叉参考 中国科学院 IUCr日志 谷歌学者
第一次引用Harvey,A.J.、Hrmova,M.、De Gori,R.、Varghese,J.N.和Fincher,G.B.(2000年)。蛋白质,41, 257–269. 科学网 交叉参考 公共医学 中国科学院 谷歌学者
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第一次引用Martin-Hernandez,A.M.、Dufresne,M.、Hugouvieux,V.、Melton,R.和Osbourn,A.E.(2000)。分子-植物-微生物相互作用。 13, 1301–1311. 科学网 公共医学 中国科学院 谷歌学者
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第一次引用Pegg,G.F.和Woodward,S.(1986年)。生理学。分子植物病原体。 28, 187–201. 交叉参考 中国科学院 谷歌学者
第一次引用Sandrock,R.W.、Della Penna,D.和Van Etten,H.D。(1995).分子-植物-微生物相互作用。 8, 960–970. 交叉参考 中国科学院 公共医学 科学网 谷歌学者
第一次引用Varghese,J.N.、Hrmova,M.和Fincher,G.B.(1999年)。结构,7,179–190科学网 交叉参考 公共医学 中国科学院 谷歌学者

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