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.2021年6月;25(12):5691-5706.
doi:10.1111/jcmm.16583。 Epub 2021年5月4日。

Krϋppel-like factor 15通过增强P53 SUMO1结合抑制肾小球系膜细胞增殖

附属公司

Krϋppel-like factor 15通过增强P53 SUMO1结合抑制肾小球系膜细胞增殖

吴玲玲等。 细胞与分子医学杂志. 2021年6月.

摘要

系膜细胞(MC)增殖是许多常见人类肾脏疾病的主要病理特征,包括系膜增生性肾炎和糖尿病肾病。了解MC对病理刺激的反应对于理解这些疾病过程至关重要。我们之前确定,抑制MC增殖需要Krϋppel-like factor 15(KLF15),一种富含肾脏的锌指转录因子。在本研究中,我们研究了KLF15调节系膜增殖的直接靶基因及其潜在机制。首先,我们筛选了小泛素相关修饰物1(SUMO1)作为KLF15的直接转录靶点,并通过ChIP-PCR和荧光素酶分析验证了这一发现。此外,我们证明过表达KLF15或SUMO1可增强P53的稳定性,从而阻断人肾MC(HRMC)的细胞周期,从而抑制细胞增殖。相反,敲除HRMC中的SUMO1,即使是那些用KLF15过度表达的细胞,也不能抑制HRMC的增殖率并增加P53的SUMO化。最后,结果表明,在增殖期,抗Thy 1模型大鼠肾皮质SUMOylated P53的水平降低。这些发现揭示了KLF15靶向SUMO1介导MC增殖的关键机制。

关键词:KLF15;系膜细胞增殖;P53;SUMO1。

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提交人确认,不存在利益冲突。

数字

图1
图1
HRMC中KLF15 ChIP‐Seq数据的注释A‐B,2478个筛选基因的GO分析。C、 1315个细胞过程相关基因的GO分析。D、 细胞周期过程相关基因分析结果。E、 生长过程相关基因分析结果
图2
图2
KLF15结合基因的生物信息学分析A、DAVID分析和IPA用于获取1357个SILAC‐LC/MS筛选蛋白的GO结构域。B、 SILAC‐LC/MS数据的IPA确定的前30条信号通路。C、 通过对ChIP‐Seq数据和SILAC‐LC/MS数据的生物信息学分析确定52个基因。D、 HG处理的HRMC中KLF15和SUMO1 mRNA的表达。E、 PDGF-BB处理的HRMC中KLF15和SUMO1 mRNA的表达。HG处理的HRMC中F‐G、KLF15和SUMO1蛋白的表达。PDGF-BB处理的HRMC中的H‐I、KLF15和SUMO1蛋白表达*P(P)<0.05***P(P)<.01,n=3
图3
图3
KLF15结合位点的基序分析和验证.A,WebLogo使用MEME程序在KLF15 ChIP‐Seq数据中确定的共识KLF15‐绑定主题。B、 KLF15结合的SUMO1启动子的靶区。C、 SUMO1的ChIP‐PCR结果,n=5。D、 双荧光素酶报告分析结果,n=5***P(P) < .01
图4
图4
SUMO1下游信号分子的IPA和验证.A‐C,与SUMO1关联的IPA网络。D、 不同物种的不同P53序列的比对(如图所示)。SUMO酸化共识位点以红色显示。SUMO1过度表达或SUMO1缺失HRMC中的E‐J、SUMO1‐P53、KLF15和SUMO1表达*P(P) < .05, **P(P)<.01,n=3
图5
图5
KLF15过表达和SUMO1过表达均抑制PDGF‐BB诱导的细胞增殖A‐C、HRMC转染对照质粒(VECTOR)或KLF15过表达质粒(KLF15),并与PDGF‐BB孵育。A、 通过IP分析评估SUMO1‐P53和输入(P53)的表达。B、 通过Western blot分析评估KLF15和SUMO1的表达。C、 定量数据。用空载体(vector)或SUMO1过表达质粒(SUMO1)转染D‐F、HRMC,并用PDGF‐BB孵育。D、 通过IP分析评估SUMO1‐P53和输入(P53)的表达。E、 通过Western blot分析评估KLF15和SUMO1的表达。F、 定量数据。G‐H,细胞增殖试验结果。KLF15或SUMO1过度表达抑制PDGF‐BB诱导的细胞增殖*P(P)<0.05,n=3
图6
图6
KLF15通过以下途径抑制MC增殖 增强p53 SUMO1结合A‐C、HRMC转染阴性对照siRNA(SI CON)或SUMO1 siRNA(SISUMO1),并与PDGF‐BB孵育。A、 通过IP分析评估SUMO1‐P53和输入(P53)的表达。B、 通过Western blot分析评估KLF15和SUMO1的表达。C、 定量数据。D‐F,HRMC转染有对照质粒和阴性对照siRNA(VECTOR+SI CON)或SUMO1 siRNA(VECTOR+SI-SUMO1),以及KLF15过表达质粒和阴性控制siRNA(KLF15+SI-CON)或SUMO1 siRNA,并与PDGF-BB孵育。D、 通过IP分析评估SUMO1‐P53和输入(P53)的表达。E、 通过Western blot分析评估KLF15和SUMO1的表达。F、 定量数据。G‐H,细胞增殖试验结果*P(P)<0.05,n=3
图7
图7
SUMO1和P53在抗Thy1大鼠肾小球中的表达.A,定期酸-希夫(PAS)染色结果和PCNA免疫组织化学染色结果。B、 肾小球中PCNA阳性细胞比例的统计结果。肾小球蛋白提取物中C‐D、P53、KLF15和SUMO1的表达。E-F,通过免疫组织化学染色评估肾小球中KLF15和SUMO1的表达*P(P) < .05, P(P) < .01, #P(P)<.01,n=5

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