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.2021年4月13日;35(2):108980。
doi:10.1016/j.celrep.2021.108980。

亨廷顿蛋白介导的轴突转运需要通过PRMT6实现精氨酸甲基化

附属公司

亨廷顿蛋白介导的轴突转运需要通过PRMT6实现精氨酸甲基化

爱丽丝·米加齐等。 单元格代表. .

摘要

亨廷顿蛋白(HTT)在胚胎发育过程中运输各种细胞器,包括含有神经营养因子的囊泡。为了更好地理解HTT如何介导轴突转运,以及为什么在亨廷顿病(HD)中该功能被破坏,我们研究了囊泡相关HTT,发现它在高度保守的精氨酸残基(R118)处被精氨酸甲基转移酶6蛋白(PRMT6)二甲基化。如果没有R118甲基化,HTT与小泡的相关性较小,顺行运输减少,随后发生的神经元死亡与HD非常相似。抑制HD细胞和神经元中的PRMT6会加剧突变HTT(mHTT)的毒性并损害轴突的运输,而过度表达PRMT6则会恢复轴突的转运和神经元的活性,但甲基化缺陷型mHTT除外。在HD苍蝇中,过度表达PRMT6可挽救轴突缺陷和羽化。精氨酸甲基化因此调节HTT介导的沿着轴突的囊泡转运,增加HTT甲基化可能对HD有治疗意义。

关键词:亨廷顿病;PRMT2;PRMT6;精氨酸甲基化;轴突运输;亨廷顿;神经退行性疾病;神经元死亡;蛋白精氨酸甲基转移酶;蛋白质翻译后修饰。

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利益声明作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1。
图1.囊泡相关HTT在R118被PRMT6甲基化
(A和B)用于液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)分析和鉴定甲基化精氨酸残基(R101和R118)的小鼠脑囊泡相关HTT纯化示意图。N17,N-末端17氨基酸;PRD,富含脯氨酸结构域;polyQ,聚谷氨酰胺束。(C) 在过度表达HTT 548-17Q和可溶性EGFP或EGFP标记的PRMT1–PRMT8的HEK293T细胞中进行免疫沉淀(IP)检测。所示为四个实验中的一个。(D) STHdh中的IP分析第7季度/第7季度过度表达EGFP-PRMT2或EGFP-PRM T6的细胞。所示为四个实验中的一个代表。(E) STHdh中的邻近连接分析(PLA)第7季度/第7季度细胞。DAPI显示细胞核。所示为三个独立实验的代表性图像。棒材,10μm。(F)体外甲基化测定通过在存在以下物质的情况下孵育野生型或突变型GST-HTT融合蛋白和重组PRMT2(左图)或PRMT6(右图)进行[H] -SAM顶部:荧光照相。底部:考马斯亮蓝染色。所示为两个实验中的一个。学生t检验,*p<0.05。量化(平均)[H] -HTT/HTT比率显示在荧光屏底部。(G) 在过度表达HTT 548-17Q-mCherry和可溶性EGFP或EGFP-PRMT6的小鼠皮层神经元中使用抗单甲基和双甲基精氨酸抗体进行IP检测,并用EPZ(10μM)处理或不处理。所示为来自至少两个独立实验的代表性图像。HTT IP/HTT输入比的量化(平均值)显示在IP面板的底部。(H) 用表达EGFP或EGFP-PRMT6的慢病毒载体转导的原代大鼠皮层神经元的IP检测。所示为两个实验中的一个。不对称二甲基精氨酸/HTT信号比率的量化(平均值)显示在IP面板的底部。
图2。
图2.PRMT6在轴突中与HTT共定位,并存在于脑源性囊泡中
(A) 微流控室重建皮质纹状体网络的示意图。(B和C)微流控室内DIV14小鼠初级神经元PRMT6和HTT的免疫荧光分析,如(A)所示。棒材,5μm(B)和2μm(C)。所示为三个独立实验的代表性图像。(D) 皮层神经元中的PLA。用DAPI对细胞核进行可视化。所示为三个独立实验的代表性图像。棒材,10μm。(E) 小鼠脑提取物的亚细胞分级。通过免疫印迹法检测层粘连蛋白B1(核标记)、GM130(高尔基标记)和p150的存在,验证组分的纯度胶水(富含P3组分)。S1、S2和S3代表相应的细胞溶质部分。所示为三个实验中的一个代表。(F) (E)P3组分的免疫金透射电镜(TEM)分析。PRMT6用箭头表示(5纳米金纳米粒子);HTT用箭头表示(15纳米金纳米粒子)。所示为三个独立实验中的一个代表性图像。条形,50 nm。(G) 从(F)小鼠脑中分离的免疫金标囊泡的定量。带有抗PRMT6一级抗体的PRMT6,5nm金纳米粒子;5 nm PAG,阴性对照,无抗PRMT6一级抗体。学生t检验,*****p<0.0001;n个CTRL键=188和nPRMT6项目= 174. (H) PRMT6和HTT阳性囊泡百分比的定量。PRMT6,5纳米金颗粒;HTT,15纳米颗粒。学生t检验,*p<0.05。
图3。
图3.R118处HTT的甲基化调节其参与轴突贩运
(A) 用表达野生型HTT 548-17Q或HTT 548-17Q R118K融合到mCherry的慢病毒载体转导的DIV14皮层神经元的贩运动力学分析。双尾非参数Mann-Whitney检验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。(B) 用表达野生型HTT 548-17Q的慢病毒载体转导DIV14皮层神经元,并与mCherry和加扰或PRMT6 shRNA融合的贩运动力学分析。双尾非参数Mann-Whitney检验,**p<0.01和**p<0.001;NS,不显著。(C) 用表达BDNF-mCherry的慢病毒载体和加扰或PRMT6 shRNA转导的DIV14皮层神经元的贩运动力学分析。双尾非参数Mann-Whitney检验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001和***p<0.0001。(D) 用mCherry-tagged HTT 548-17Q或HTT 548-17Q R118K转导的原代大鼠神经元的免疫沉淀分析。(E) 如(A)所述转导的原代大鼠皮层神经元亚细胞分离的免疫印迹分析。所示为三个实验中的一个代表。(F) P3组分中HTT 548-mCherry信号相对于(C)总组分的定量。图表显示平均值±SEM;n=3。Student t检验,*p<0.05(G)表达mCherry或HTT 548-17Q-mCherry或HTT 548-17Q-R118K-mCherry的DIV11小鼠原代皮层神经元的细胞活力分析。存活mCherry的总数+使用Operetta高含量成像系统计算每种情况下的神经元。图表显示平均值±SEM;n=3。单向方差分析,Tukey的事后检验,*p<0.05;NS,不显著。(H) 用表达HTT 548-17Q的慢病毒载体与mCherry融合,再加上加扰或PRMT6 shRNA,转导DIV11小鼠初级皮层神经元的细胞活力分析+使用Operetta高含量成像系统计算每种情况下的神经元。图表显示平均值±SEM;n=4。单向方差分析,Tukey的事后检验,*p<0.05。
图4。
图4 mHTT中保留了与PRMT6和R118甲基化的相互作用
(A) 在过度表达野生型(HTT 548-17Q)或突变N末端HTT(HTT 54/8-73Q)以及可溶性EGFP或EGFP标记的PRMT6的HEK293T细胞中进行CoIP检测。所示为四个实验中的一个。虚线表示车道在同一凝胶上行驶,但不连续。原始印迹如图S7A所示。(B) STHdh中的CoIP测定2011年第11季度/2011年第1季度过度表达EGFP或EGFP-PRMT6的细胞。显示的是四个实验中的一个。虚线表示车道在同一凝胶上行驶,但不连续。原始印迹如图S7B所示。(C) STHdh中的PLA2011年第11季度/2011年第1季度细胞。DAPI显示细胞核。所示为三个独立实验的代表性图像。棒材,10μm。(D) 电喷雾电离(ESI)-MS/MS分析从转染HEK293细胞纯化的人全长mHTT(HTT-82Q)。(E和G)HD患者或健康个体大脑皮层(E)和纹状体(G)中PRMT6表达的免疫印迹分析。(F和H)分别量化(E)和(G)。图表显示平均值±SEM;n=3。学生的t测试。NS,不显著。
图5。
图5.PRMT6修饰mHTT诱导的毒性
(A) STHdh中的细胞活力测定2011年第11季度/2011年第1季度稳定表达干扰shRNA或针对PRMT6的shRNA的单细胞克隆。图表显示平均值±SEM;n=3。学生t检验,*p<0.05。单个独立实验如图S8所示。(B) 用表达HTT 548-73Q的慢病毒载体转导DIV11小鼠初级皮层神经元,并将其与mCherry和加扰或PRMT6 shRNA融合,分析其细胞存活率+使用Operetta高含量成像系统计算每种情况下的神经元。图表显示平均值±SEM;n=4。单向方差分析,Tukey的事后检验,*p<0.05。(C) 分析表达mCherry-tagged HTT 548-73Q或HTT 547-73Q R118K以及EGFP或EGFP-PRMT6的小鼠初级皮层神经元的细胞活力。存活mCherry的总数+/EGFP公司+使用Operetta高含量成像系统计算每种情况下的神经元。图表显示平均值±SEM;n=4。双向方差分析,Tukey的事后检验,**p<0.01;NS,不显著。(D) 分析用表达mCherry-tagged HTT 548-17Q、HTT 548-73Q或HTT 547-73Q R118K的慢病毒载体与EGFP、EGFP-PRMT6、加扰shRNA和PRMT6 shRNA转导的DIV12-DIV14神经元的贩运动力学。图中显示平均值±SEM;n=3。Kruskal-Wallis检验,Dunn's post-hoc,*p<0.05;NS,不显著。(E) STHdh亚细胞分级的免疫印迹分析第7季度/第11季度用EGFP或EGFP-PRMT6慢病毒转导。所示为三个实验中的一个代表。(F) P3分数中HTT和mHTT信号相对于(E)总分数的量化。图表显示平均值±SEM;n=3。学生t检验,*p<0.05。(G) 对照苍蝇或表达全长HTT 16Q或HTT 128Q的苍蝇的蜕皮试验。每个实验组的分析蛹数在70到100之间。图表显示平均值±SEM,n=5。双向方差分析,Tukey的事后检验,****p<0.0001;NS,不显著。
图6。
图6:PRMT6表达可挽救HTT介导的轴突和神经肌肉接头(NMJ)缺陷果蝇属
(A) ELAV-GeneSwitch(ElavGS)的代表性幼虫节段神经;w1118型(CTRL)、PRMT6(PRMT6;w1118型)、HTT 128Q(128Q)或PRMT6;HTT 128Q(PRMT6;128Q)幼虫(CSP,半胱氨酸串蛋白[箭头])。棒材,15μM。(B) (A)中CSP块的量化(***p<0.0001,n=5)。(C) 突触前标记物辣根过氧化物酶(HRP;箭头)染色的肌肉4段A2-A3神经肌肉接头的免疫荧光图像。棒材,10μM。(D–F)成熟香肠(D)和卫星香肠(E)的平均数量以及香肠总数(F)的量化(n=16–19)。(B)和(D)–(F)中的图形表示平均值±SEM。(B)与(D)-(F)的统计比较使用单向方差分析和Tukey的多重比较测试确定(*p<0.05和***p<0.0001;NS,不显著)。

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引用人

参考文献

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