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.2021年2月26日;12(1):1333.
doi:10.1038/s41467-021-21594-6。

METTL3依赖m6T卵泡辅助细胞分化的一个修改程序

附属公司

METTL3依赖m6T卵泡辅助细胞分化的一个修改程序

姚颖鹏等。 国家公社. .

摘要

滤泡辅助器(TFH公司)细胞是专门的效应器CD4+对体液免疫至关重要的T细胞。转录后调控在T中是否起作用FH公司细胞未知。这里,我们显示了METTL3(一种催化mRNA N的甲基转移酶)的条件缺失6-甲基腺苷(m6A) 修饰)+T细胞损害TFH公司小鼠的细胞内分化和生发中心反应。METTL3对于重要T的表达是必要的FH公司特征基因,包括Tcf7、Bcl6、Icos和Cxcr5,这些影响取决于完整的甲基转移酶活性。6A-miCLIP-seq显示Tcf7信使核糖核酸的3'UTR受到METTL3依赖性m6修改。METTL3缺失或Tcf7 3'UTR m突变6一个位点导致Tcf7转录物加速衰变。重要的是,TCF-1(由Tcf7编码)的异位表达纠正了TFH公司由于METTL3缺陷引起的缺陷。我们的研究结果表明,METTL3通过m6确保T激活的修改FH公司转录程序,表明转录后调节在促进TFH公司细胞分化。

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作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1。METTL3的条件消融损伤TFH公司分化和GC反应。
,b条CD44的流式细胞术分析+CXCR5系列+T型FH公司细胞和CD44+CXCR5系列——T型H(H)1个细胞,脾CD4门控+Ctrl和梅特尔3飞行/飞行抄送4-感染后第8天的Cre小鼠(8数字功率接口). 所示细胞子集的频率和细胞数摘要如所示b条(n个 = 每组5人)。c(c),d日PD-1的流式细胞术分析你好CXCR5系列+GC测试FH公司单元格(顶部面板),ICOS你好CXCR5系列+GC测试FH公司电池(中间面板)和Bcl-6你好CXCR5系列+GC测试FH公司细胞(下图),脾脏CD44门控你好CD62L型CD4细胞+Ctrl和梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre小鼠8数字功率接口所指示的小区子集的频率和小区数量的摘要显示在d日(n个 = 每组5人)。e(电子),(f)脾GL-7的流式细胞术分析+Fas公司+GC B细胞(顶面板)和IgDCD138型+8上的浆细胞(底部面板)数字功率接口GC B细胞和浆细胞的频率和细胞数的总结显示在(f)(n个 = 每组3个)。Ctrl和Ctrl脾脏的免疫荧光染色梅特尔3飞行/飞行抄送4-创建于8数字功率接口.绿色:PNA;红色:IgD;比例尺:10μm。小时8日血清LCMV特异性IgG浓度分析数字功率接口(顶部)和56数字功率接口(底部)通过ELISA(第8天:n个 = 12代表Ctrl组,n个 = 10用于梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre组;第56天:n个 = 每组5人)。数据代表至少三个独立实验。误差条表示平均值的标准误差。P(P)值由未配对的双尾Student的t吨测试。
图2
图2。METTL3本质上控制TFH公司分化和GC反应。
采用转移模式的方案。5×106CD45.1型+将SMARTA细胞过继性转移至CD45.2+ 梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre小鼠或Ctrl宿主小鼠,随后在24小时内感染LCMV Armstrong小时。b条,c(c)CD45.1的流式细胞术分析+SMARTA或CD45.2+宿主T细胞衍生CD44+CXCR5系列+T型FH公司和CD44+CXCR5型——T型H(H)1个细胞,脾CD4门控+病毒感染后第8天来自宿主小鼠的T细胞。CD44的频率和数量+CXCR5系列+T型FH公司细胞和CD44+CXCR5系列——T型H(H)1个单元格显示在c(c)(n个 = 每组5人)。d日,e(电子)脾PNA的流式细胞术分析+Fas公司+GC B细胞(顶面板)和IgDCD138型+8只寄主小鼠的浆细胞(底部面板)数字功率接口GC B细胞和浆细胞的频率和细胞数总结如所示e(电子)(n个 = 每组6个)。(f)Ctrl或Ctrl脾脏的免疫荧光染色梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre寄主小鼠8只数字功率接口.绿色:PNA;红色:IgD;比例尺:10μm。8日血清LCMV特异性IgG浓度分析数字功率接口通过ELISA(n个 = 5表示Ctrl组,n个 = 5用于梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre组,n个 = 6表示Ctrl主机组,n个 = 6个用于梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre主机组)。数据代表至少三个独立实验。误差条表示平均值的标准误差。P(P)值由未配对的双尾Student的t吨测试(e(电子))或双向方差分析结合多重比较(c(c),).
图3
图3。METTL3对T的启动必不可少FH公司发展。
野生型受体小鼠(CD45.1)细胞的流式细胞术分析+)将标记为Ctrl或梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre SMARTA细胞,随后是LCMV-Armstrong感染,并在3天后通过转移细胞进行CTV稀释分析。b条Bcl-6的流式细胞术分析+CXCR5系列+T型FH公司SMARTA CD4门控细胞+受体小鼠的T细胞T的频率和细胞数总结FH公司单元格显示在右侧(n个 = 每组3个)。c(c),d日SMARTA CD4门控不同细胞分裂的流式细胞术分析+受体小鼠的T细胞。第三至第六部分的频率总结如下d日(n个 = 每组3个)。e(电子),(f)等高线图显示Bcl-6+CXCR5系列+T型FH公司受体小鼠SMARTA细胞中指定分裂的细胞T的频率和细胞数总结FH公司所示分区中的单元格如所示(f)(n个 = 每组3个)。,小时流式细胞术分析TCF-1在CXCR5中的表达+SMARTA CD4对指定分区的细胞进行门控+受体小鼠的T细胞所示分区中TCF-1的几何平均荧光强度(gMFI)量化如所示小时(n个 = 每组3个)。T基因mRNA丰度的定量RT-PCR分析FH公司CD25中的细胞相关基因——CXCR5系列+T型FH公司受体小鼠的细胞,相对表达标准化为Ctrl单元格(n个 = 每组6个)。数据是两个独立实验的代表。误差条表示平均值的标准误差。P(P)值由未配对的双尾Student的t吨测试(b条,)或双向方差分析结合多重比较((f),小时).
图4
图4。METTL3-null T中转录谱的交替FH公司细胞。
火山图描绘了T中上调(红色)或下调(蓝色)基因的2倍或更多FH公司8上的单元格数字功率接口右侧显示了差异表达基因的热图。b条中差异表达基因的基因本体(GO)术语梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre T公司FH公司单元格与Ctrl T进行比较FH公司单元格(上调:顶部面板;下调:底部面板)。c(c)T基因集富集分析FH公司和GC TFH公司基因植入梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre T公司FH公司相对于Ctrl T中表达式的单元格FH公司单元格,如中所示.d日“T细胞中TCF-1激活基因”的GSEA分析FH公司T细胞“和”TCF-1抑制基因FH公司电池”(GSE65693)英寸梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre T公司FH公司相对于Ctrl T中表达式的单元格FH公司单元格,如中所示。分别显示了前沿排名前30位的基因的热图表示。e(电子)中选择的感兴趣基因的定量RT-PCR分析,相对表达标准化为Ctrl TFH公司单元格(n个 = 7表示Ctrl组,n个 = 8个用于梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre组除外Bcl6公司基因(n个 = 每组7人)。数据来自一个三组实验(——d日)或者从两个实验中合并(e(电子)). 误差条表示平均值的标准误差。P(P)值由未配对的双尾Student的t吨测试(e(电子)).
图5
图5。METTL3促进TFH公司m中的微分6催化活性依赖方式。
野生型(Mettl3-WT)和催化域死亡(Mettl3-Mut;DPPW到APPA)Mettl3结构的图形表示。b条逆转录病毒转导实验方案。利用逆转录病毒转导系统转导具有指示结构的SMARTA细胞。然后,将转导的细胞过继转移到同源CD45.2中+野生型小鼠随后感染LCMV-Armstrong,并在病毒感染后第5天进行分析。c(c)GFP中METTL3 gMFI的流式细胞术分析+CD4细胞+来自受体小鼠的SMARTA细胞。METTL3 gMFI的定量如右图所示(n个 = 每组3个)。d日逆转录病毒转导的SMARTA CD4的频率和细胞数摘要+宿主小鼠的T细胞(n个 = 每组3个)。e(电子),(f)CD44的流式细胞术分析+CXCR5系列+T型FH公司人群和CD44+CXCR5型——T型H(H)SMARTA GFP上的1个子集+CD4细胞+用空载体(EV)、Mettl3-WT或Mettl3-Mut逆转录病毒导入的SMARTA细胞过继转移宿主小鼠的T细胞。T的频率和细胞数总结FH公司细胞和TH(H)1个单元格显示在(f)(n个 = 每组3个)。,小时PD-1的流式细胞术分析你好CXCR5系列+GC测试FH公司基于SMARTA GFP的人群+CD4细胞+来自用EV、Mettl3-WT或Mettl3-Mut逆转录病毒过继转移的宿主小鼠的T细胞引入SMARTA细胞。GC T的频率和细胞数总结FH公司单元格如所示小时(n个 = 每组3个)。T基因mRNA丰度的定量RT-PCR分析FH公司CD44中的细胞相关基因+CXCR5系列+T型FH公司用EV、Mettl3-WT或Mettl3-Mut体外表达的细胞,相对表达归一化为用EV逆转录病毒转导的Ctrl细胞(n个 = 6表示控制EV,梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre-EV,以及梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre-Mettl3 WT组;n个 = 5用于梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre-Mettl3 Mut组)。数据是两个独立实验的代表。误差条表示平均值的标准误差。P(P)该值通过单向方差分析计算,然后是未配对的双尾Student’st吨测试指示的两两比较。
图6
图6。6A修改七氟化碳mRNA来控制其稳定性。
m的变质作用剖面6沿标准化转录本的位点分布,包含三个重缩放的非重叠片段:Ctrl和Ctrl中的5′UTR、CDS和3′UTR梅特尔3飞行/飞行镉4-Cre SMARTA CD4+T细胞。b条显示m分布的饼图6位于Ctrl和梅特尔3飞行/飞行镉4-Cre SMARTA CD4+T细胞。c(c)描述具有不同内部m的mRNA百分比的条形图6丰富。d日显示RNA-seq和m的重叠差异表达基因的文氏图6来自m的A-修改的转录本6A-miCLIP-SMARTer-seq。208个差异表达基因的热图6右侧显示了修改。e(电子)生物过程类别的代表性GO术语富含差异表达的转录物,m6A峰值(红色:上调基因;蓝色:下调基因;灰色:GO术语)。(f)集成基因组查看器(IGV)跟踪显示RNA-seq(顶面板)和m6A-miCLIP-SMARTer-seq(底部面板)显示七氟化碳基因。高置信度m6场地标记为三角形。RIP-qPCR分析显示METTL3在七氟化碳SMARTA CD4中的mRNA+T细胞。这个七氟化碳mRNA富集表现为IP/输入,并归一化为IgG组(n个 = 每组4个)。小时6m的A-RIP-qPCR分析6丰富了七氟化碳Ctrl和梅特尔3飞行/飞行抄送4-Cre SMARTA CD4+T细胞(n个 = 每组4个)。流式细胞术分析TCF-1在T细胞上的表达水平FH公司8上的单元格数字功率接口TCF-1的gMFI量化如右图所示(n个 = 每组5人)。j个野生型或m型质粒的构建6中的一个位点突变七氟化碳3英尺UTR。k个荧光素酶报告分析。将结果归一化为与pGL4.23空质粒和EV-Myc质粒共同转染的细胞的荧光素酶活性(n个 = 每组6个)。RNA衰变分析。的半衰期七氟化碳定量RT-PCR检测mRNA。其余的mRNA被归一化为t吨 = 0个(n个 = 每组4个)。定量RT-PCR分析七氟化碳mRNA丰度,相对表达标准化为t吨 = 0个Ctrl单元格(n个 = 每组4个)。数据来自一个重复的实验(——e(电子))或至少三个独立实验的代表(——小时,k个——). 误差条表示平均值的标准误差。P(P)值由未配对的双尾Student的t吨测试(——)或双向方差分析结合多重比较(k个,).
图7
图7。增强TCF-1表达可纠正T细胞缺陷FH公司METTL3-null细胞的分化。
TCF-1救援实验方案。利用逆转录病毒转导系统,以TCF-1结构(不含3′UTR区的P45亚型全长CDS)转导SMARTA细胞。然后,将转导的细胞过继转移到同源CD45.1中+野生型小鼠随后感染LCMV-Armstrong,并在病毒感染后第8天进行分析。b条流式细胞术分析SMARTA GFP中TCF-1 gMFI+CD4细胞+8只受体小鼠的细胞数字功率接口右侧显示了TCF-1 gMFI的定量(n个 = 每组3个)。c(c),d日CD44的流式细胞术分析+CXCR5系列+T型FH公司人群和CD44+CXCR5系列——T型H(H)SMARTA GFP上的1个子集+CD4细胞+感染后8天,将不同宿主小鼠的T细胞与空载体(EV)或TCF-1逆转录病毒导入的SMARTA细胞过继转移。T细胞的频率和细胞数量汇总FH公司细胞和TH(H)1个单元格显示在d日(n个 = 每组3个)。e(电子),(f)PD-1的流式细胞术分析你好CXCR5系列+气相色谱法FH公司基于SMARTA GFP的人群+CD4细胞+用EV或TCF-1逆转录病毒导入的SMARTA细胞过继转移不同宿主小鼠的T细胞。GC T的频率和细胞数总结FH公司单元格如所示(f)(n个 = 每组3个)。,小时流式细胞术分析CD44上TCF-1、CXCR5、PD-1、ICOS和Bcl-6的gMFI+CXCR5系列+T型FH公司用EV或TCF-1逆转录病毒转导的细胞。gMFI的量化如所示小时(n个 = 每组3个)。数据是三个独立实验的代表。误差条表示平均值的标准误差。P(P)该值通过单向方差分析计算,然后是未配对的双尾Student’st吨测试指示的两两比较。
图8
图8。m的建议模型6提升T的改进FH公司区别。
急性感染期间,METTL3-足够的CD4+T细胞被激活。使用m6一台机器,七氟化碳mRNA为m6一种改良和稳定的TCF-1蛋白,可以正常生产。TCF-1反过来调节T的表达FH公司细胞调节器,最终编程TFH公司承诺、增殖、生存和功能成熟。

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工具书类

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