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.2021年1月6日;40(1):12.
doi:10.1186/s13046-020-01806-5。

低氧敏感性长非编码RNA CASC15通过调节SOX4/β-catenin轴促进肺肿瘤的发生

附属公司

低氧敏感性长非编码RNA CASC15通过调节SOX4/β-catenin轴促进肺肿瘤的发生

孙建勇等。 实验临床癌症研究杂志. .

摘要

背景:越来越多的证据表明,长非编码RNA(long non-coding RNAs,lncRNAs)参与低氧相关癌症过程,并在使恶性细胞在缺氧应激下存活方面发挥关键作用。然而,非小细胞肺癌(NSCLC)中lncRNA和缺氧信号级联之间的分子串扰在很大程度上尚不清楚。

方法:首先,我们根据生物信息学数据确定差异表达的lncRNA肿瘤易感性候选基因15(CASC15)与非小细胞肺癌相关。采用Kaplan-Meier生存分析法探讨CASC15在肺癌中的临床意义。然后,我们通过RNAi调节非小细胞肺癌细胞系中CASC15的表达。采用CCK-8和transwell实验检测CASC15对NSCLC细胞增殖和迁移的影响。通过荧光素酶报告分析、qRT-PCR、Western blotting和染色质免疫沉淀(ChIP)验证CASC15的上游激活物和下游靶点。最后,通过RNA原位杂交(RNA-ISH)和免疫组织化学(IHC)来确认CASC15与临床样本中相关基因的遗传关系。

结果:CASC15在非小细胞肺癌组织中高表达,与预后不良密切相关。功能缺失分析表明,CASC15对NSCLC细胞的迁移和生长至关重要。机制研究表明,CASC15在NSCLC细胞中被缺氧信号转录激活。进一步分析表明,低氧诱导的CASC15反式激活主要依赖于位于CASC15启动子的低氧诱导因子1α(HIF-1α)和低氧反应元件(HREs)。CASC15促进其染色体附近基因SOX4的表达。然后SOX4发挥稳定β-catenin蛋白的作用,从而促进NSCLC细胞的增殖和迁移。HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin通路在相当一部分NSCLC患者中被激活。

结论:HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin轴在非小细胞肺癌的发生发展中起着重要作用。本研究提供了新的证据,表明lncRNA CASC15有望作为新的非小细胞肺癌生物标记物。阻断HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin轴可以作为治疗非小细胞肺癌的潜在治疗策略。

关键词:CASC15;缺氧信号;长非编码RNA;非小细胞肺癌;SOX4。

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作者声明,他们没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
CASC15在非小细胞肺癌中高表达,对肿瘤细胞迁移和生长至关重要。人原发性非小细胞肺癌组织和邻近正常组织中CASC15的相对RNA水平。(地理位置:GDS3837,n个 =每组60人)。b条根据CASC15的表达水平分层的293名肺癌患者(GEO:GSE30219)队列的总体生存概率的Kaplan-Meier曲线。c(c)CASC15的相对RNA水平(平均值±扫描电镜,n个 =3) 在五个NSCLC细胞系(H1650、H1299、H1975、A549、H520)和一个正常人支气管上皮细胞系BEAS-2B中。d日si-CASC15或si-CASC15处理A549和H1299细胞72小时的跨阱迁移分析小时。e(电子)经si-Control或si-CASC15处理72小时的A549和H1299细胞的FITC-卵磷脂染色h、 然后是共焦显微成像。比例尺:30微米。(f)si-CASC15处理A549和H1299细胞的细胞增殖曲线。实验在五口井中进行,并至少重复两次。人类非小细胞肺癌异种移植模型的生物发光成像。将稳定敲除CASC15的A549或H1299细胞皮下注射到裸鼠体内(n = 每组6个)。随后,通过使用数字卡尺定期测量来监测原发性肿瘤的生长
图2
图2
CASC15主要通过上调其邻近癌基因SOX4在NSCLC细胞中发挥促肿瘤作用。显示基因组位置的示意图CASC15公司以及相邻基因。老鼠2610307P16瑞克该基因与CASC15公司人类的基因。b条SOX4和PRL的相对mRNA水平(平均值±扫描电镜,n = 3) 在用si-Control或si-CASC15处理48小时的A549和H1299细胞中h.A549中SOX4蛋白水平的(C和D)Western blot分析(c(c))和H1299(d日)用si-Control或si-CASC15处理48个细胞h.用抗GAPDH抗体检测印迹,以确保装载量相等。e(电子)用si-Control或si-SOX4处理A549和H1299细胞的细胞增殖曲线。实验在五口井中进行,并至少重复两次。(f)用si-Control或si-SOX4处理A549和H1299细胞48小时的跨阱迁移分析小时。稳定敲除CASC15或同时过表达SOX4的A549和H1299细胞的细胞增殖曲线。实验在五口井中进行,并至少重复两次。小时稳定敲除CASC15或同时过表达SOX4的A549和H1299细胞的跨阱迁移分析。人类非小细胞肺癌异种移植模型的生物发光成像。将稳定敲除CASC15或同时过度表达SOX4的A549和H1299细胞皮下注射到裸鼠体内(n = 每组6个)。随后,通过使用数字卡尺定期测量来监测原发性肿瘤的生长
图3
图3
CASC15通过SOX4介导的β-连环蛋白稳定作用激活NSCLC中的Wnt信号。对转染si-CASC15或同时过表达SOX4的A549细胞进行TOP-FLASH分析。采用TOP-FLASH(TOP)或FOP-FLASH(FOP)质粒进行报告分析。pRL-TK被联合转染作为内部对照。结果显示为TOP/FOP比率。b条稳定敲除CASC15或同时过度表达SOX4的A549和H1299细胞中β-catenin蛋白水平的Western blot分析。用抗GAPDH抗体检测印迹,以确保载量相等。c(c)CTNNB1的相对mRNA水平(平均值±扫描电镜,n = 3) 在A549和H1299细胞中稳定敲除CASC15或同时过表达SOX4。d日用SOX4表达质粒或空载体对照转染稳定敲除CASC15的A549细胞。收集细胞裂解物0、60、120、180或240放线菌酮处理后min(CHX,10μg/ml),并通过蛋白质印迹检测β-连环蛋白水平
图4
图4
CASC15在NSCLC中通过缺氧/HIF-1α信号转录激活。缺氧诱导A549和H1299细胞中HIF-1α和CASC15基因表达谱的动态变化。上面板:通过Western blotting监测HIF-1α的蛋白水平,并将其归一化为GAPDH蛋白水平。数据以平均值表示±来自三个独立实验的SEM,表示为正常对照组的相对折迭变化;下面板:在qRT-PCR实验中监测CASC15的RNA水平,并将其归一化为18S表达水平。b条A549和H1299细胞HIF-1α蛋白水平的Western blot分析小时。c(c)A549和H1299细胞中CASC15 RNA水平的qRT-PCR分析,这些细胞用si-Control或si-HIF1A处理,然后接受常氧或缺氧24小时小时。d日低氧条件下HRE-和HIF-1α依赖的CASC15反式激活。左侧面板:启动子区域示意图CASC15公司荧光素酶报告物分析中使用的报告体;右上角:A549细胞与荧光素酶报告子共转染CASC15公司带有野生型HREs(pGL3-CASC15)或突变HREs的启动子片段(pGL3-CASC15-mut1、pGL3-CASC15-mut2和pGL3-CASC15-mut1&2),或VEGF-Luc阳性对照或pGL-3阴性对照,以及Renilla-Luc报告者。转染后20小时,细胞经受常氧或缺氧24小时h、 荧光素酶活性测定;右下角:分别用上述构建物转染A549细胞,以及Renilla-luc报告人。转染后24小时,细胞缺氧24小时h、 然后进行荧光素酶活性测定。e(电子)常氧或缺氧条件下生长24小时A549细胞的ChIP分析h.染色质与IgG或抗HIF-1α抗体孵育。DNA沉淀物用引物集进行PCR扩增CASC15公司启动程序(上面板)或VEGFA(血管内皮生长因子)启动子(下面板),作为阳性对照
图5
图5
HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin轴相关基因在非小细胞肺癌组织中高度表达。TCGA-LUAD队列中HIF1A、CASC15、SOX4和CTNNB1的相对RNA水平,涉及58对匹配的肺腺癌和邻近正常肺组织。b条在含有515个肺腺癌组织的TCGA-LUAD队列中,CASC15、HIF1A、SOX4和CTNNB1表达水平之间的成对相关性
图6
图6
HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin途径在大量非小细胞肺癌患者和A549异种移植组织中激活。由35对NSCLC和邻近正常肺组织组成的组织芯片中CASC15的代表性ISH染色和HIF-1α、SOX4和β-catenin的IHC染色。比例尺:200微米。b条非小细胞肺癌和邻近正常肺组织中CASC15表达与HIF-1α、SOX4和β-catenin水平呈正相关。通过qRT-PCR评估LncRNA的表达,通过Western blotting评估蛋白质丰度。c(c)A549-shControl和A549-sh CASC15异种移植组织中CASC15的代表性ISH染色和HIF-1α、SOX4和β-catenin的IHC染色。d日非小细胞肺癌HIF-1α/CASC15/SOX4/β-catenin信号通路激活的示意模型

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