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.2020年4月3:2020:3150716。
doi:10.1155/2020/3150716。 eCollection 2020。

维生素C治疗可挽救Prelamin A诱导的软骨下骨间充质干细胞早衰

附属公司

维生素C治疗可挽救Prelamin A诱导的软骨下骨间充质干细胞早衰

Yan-Nv区等。 干细胞Int. .

摘要

衰老是许多慢性病的主要危险因素。干细胞功能障碍在衰老过程中起着关键作用。前层蛋白A是核层蛋白层蛋白A的一种异常加工形式,据报道可引发早衰。然而,导致干细胞功能障碍的机制尚不清楚。在本研究中,我们发现在传代软骨下骨髓间充质干细胞(SCB-MSCs)时在体外,前层胺A的积累与衰老相关的增加同时发生β-半乳糖苷酶(SA-β-Gal)表达。与对应物不同,前层蛋白A过度表达的SCB-MSCs(MSC/PLA)表现出增殖、成骨和脂肪生成减少,但炎症因子生成增加。在后肢缺血模型中,MSC/PLA也表现出折衷的治疗效果。进一步研究表明,外源性前胺A引发了异常的核形态、DNA和庇护蛋白复合物损伤、细胞周期阻滞,最终导致细胞衰老。基因表达谱的变化也通过微阵列分析验证。有趣的是,我们发现抗坏血酸或维生素C(VC)治疗可以抑制MSC/PLA中前层蛋白A的表达,并部分逆转MSC/PLA的过早老化,减少炎症因子的分泌,细胞周期阻滞和抗凋亡。重要的是,VC治疗后,MSC/PLA在后肢缺血模型中显示出增强的治疗效果。综上所述,前层蛋白A通过诱导DNA损伤而加速SCB-MSC的过早衰老。VC可能是治疗前层粘连蛋白a诱导的MSCs老化缺陷的潜在试剂。

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利益冲突声明

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数字

图1
图1
Prelamin A的积累触发了早衰表型并降低了多分化潜能。(a) Prelamin a在在体外继代培养。(b)SA-β-传代后Gal活性增加。比例尺:100μm。(c)代表性的共焦图像显示核膜异常、核增大和形态缺陷。比例尺:50μm.(d)Prelamin A触发SA活性增加-β-加尔。比例尺:100μm.(e)MSC/GFP和MSC/PLA中干细胞标记物的免疫表型特征。(f) 典型共焦图像(左)和流式细胞术(右)显示Ki67在MSC/GFP和MSC/PLA中的表达。比例尺:100μm.(g)MSC/GFP和MSC/PLA细胞因子mRNA表达水平的比较(∗∗P(P)< 0.001,∗∗∗∗P(P)< 0.0001). (h) ALP染色(顶部,左侧)和茜素红(底部,左侧)显示MSC/PLA的成骨潜能降低。比例尺:500μm.成骨相关基因(Runx-2和OPN,OCN)mRNA表达水平的比较(右)。油红染色(I,左)和PPAR mRNA表达水平-γ和CEBP/α(I,右)显示了两组的成脂特征。n个=3个独立实验(∗∗P(P)< 0.001).
图2
图2
MSC/PLA移植减弱了SCB-MSCs对后肢缺血的挽救作用。(a) 移植研究的实验范式。(b) PBS、MSC/GFP和MSC/PLA组肢体存活的代表性图片。(c) 缺血后和第0、7和14天PBS、MSC/GFP和MSC/PLA的典型激光多普勒血流图像(左)。以缺血肢体与正常肢体之比表示的血流定量评估(右)表明,与PBS和MSC/PLA组相比,MSC/GFP组肢体血液灌注显著增加。(d) 缺血腿PBS、MSC/GFP或MSC/PLA组横截面的组织学分析。苏木精和伊红染色(顶部,左侧)和定量(顶部,右侧),用于大量粒细胞和中性粒细胞的浸润。比例尺:50μm.马森三色染色(中,左)和定量(中,右)显示了后肢缺血中的纤维化。通过免疫荧光图像(底部,左侧)和CD31标记的定量(底部,右侧)对新生血管进行可视化。疤痕条:100μm(MSC/GFP与PBS:P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.001,∗∗∗∗P(P)< 0.0001; MSC/PLA与PBS:&P(P)< 0.05,&&P(P)<0.001,MSC/GFP vs.MSC/PLA:$P(P)< 0.05).
图3
图3
PrelaminA的积累触发SCB-MSCs并增加DNA损伤、凋亡抵抗和细胞周期阻滞。(a)的典型共焦图像γ-H2AX染色和(b)量化γ-H2AX焦点。蓝色:DAPI;红色:γ-H2AX。比例尺:25μm.每个样品至少分析100个细胞核。χ2用于统计显著性。(c) MSC/GFP和MSC/PLA中53BP1的典型共焦图像。蓝色:DAPI;红色:53BP1。比例尺:50μm.(d)GADD45A mRNA水平显著增加(P(P)< 0.05). (e) Shelterin复合物(POT1、RAP1A、TERF1、TERF2、TPP1和TINF2)mRNA表达水平的比较(P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.01). (f) 使用Annexin V/7AAD过度表达前层蛋白A的SCB-MSC中凋亡细胞减少。(g) 定量RT-PCR显示caspase 3下调,Bcl2 mRNA水平显著升高(P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.01). (h) 流式细胞术分析显示,与MSC/GFP相比,MSC/PLA的S期下降(P(P)< 0.05). (i) 前层蛋白A过度表达的SCB-MSCs中p21和p53蛋白水平显著升高。(j) 定量RT-PCR证实MSC/PLA中p53和p21的上调(P(P)< 0.05). (k) MSC/PLA mRNA水平下调的CDK2和CCNE显示G1/S检查点阻滞(P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.01).
图4
图4
MSC/GFP和MSC/PLA的基因表达谱分析。(a) 火山图显示前层蛋白a过度表达上调和下调基因的数量。(b) 显示MSC/GFP和MSC/PLA复制品之间差异表达基因的热图(第5代)。(c) MSC/PLA上调基因的KEGG富集分析。(d) 基因集富集分析(GSEA)图显示前层蛋白A过度表达上调的代表性基因项。(e) 热图显示了富含各种基因术语的基因的转录水平。(f) 定量RT-PCR证实MSC/PLA中I型胶原和III型胶原表达降低(P(P)< 0.05).
图5
图5
VC减轻MSC/PLA的过早衰老。SA的代表性图像(a)和量化(b)-β-用不同浓度的VC处理MSC/PLA中的Gal阳性细胞。数据表示为平均值±SEM,∗∗P(P)< 0.01,∗∗∗P(P)< 0.005,∗∗∗∗P(P)< 0.0001,n个≥3。通过方差分析计算平均值之间的显著差异。比例尺:100μm.(c)免疫印迹显示VC治疗后前层蛋白A的蛋白水平显著降低。(d) TNF表达减少α和IL1β在mRNA水平上比较MSC/PLA与VC治疗的差异(∗∗P(P)< 0.01). (e) 经或不经VC治疗的MSC/PLA中Ki67表达的典型共焦图像。(f) VC恢复了MSC/PLA中TERF1、POT1和RAP1A表达的降低(∗∗∗∗P(P)< 0.001). (g) 定量RT-PCR显示VC处理的MSC/PLA中I型胶原和III型胶原表达增加(P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.01). (h) MSC/PLA中VC治疗后P21下调(P(P)< 0.05). (i) VC在mRNA水平拯救了CDK2和CCNE的表达,并部分改善了MSC/PLA的细胞周期阻滞(P(P)< 0.05,∗∗P(P)< 0.01). (j) 定量RT-PCR显示VC治疗后凋亡Bcl2/BAX比率降低(P(P)< 0.05). (k) PBS、MSC/GFP、MSC/PLA和MSC/PLA+VC组肢体存活的代表性图片。(l) 缺血后第0天、第7天、第14天和第21天PBS、MSC/GFP、MSC/PLA和MSC/PLA+VC的典型激光多普勒血流图像(左)。定量评估以缺血肢体与正常肢体的比率表示的血流(右)显示,与PBS和MSC/PLA相比,MSC/GPP的肢体血流灌注显著增强(MSC/GFPvs.PBS,∗∗P(P)< 0.01,∗∗∗∗P(P)< 0.0001; MSC/PLA与PBS,&P(P)< 0.05; MSC/GFP与MSC/PLA,$P(P)< 0.05; MSC/PLA与MSC/PLA+VC的比较~P(P)< 0.05; MSC/PLA+VC与PBS,#P(P)< 0.05).
图6
图6
所提出的模型说明了前层蛋白A过度表达诱导的SCB-MSCs的老化特性,并通过VC治疗部分修复。

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引用人

工具书类

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