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.2020年4月;21(4):1709-1716.
doi:10.3892/mmr.2020.10978。 Epub 2020年2月6日。

长非编码RNA H19通过激活PI3K/AKT和ERK/p38通路保护H9c2细胞免受缺氧诱导的损伤

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长非编码RNA H19通过激活PI3K/AKT和ERK/p38通路保护H9c2细胞免受缺氧诱导的损伤

林慧媛等。 分子医学代表. 2020年4月.

摘要

由于严重缺氧,心肌缺血/再灌注损伤常常导致不良的心血管结局。本研究旨在评估长非编码RNA H19(H19)对缺氧诱导损伤大鼠H9c2细胞的作用及其机制。用慢病毒感染H9c2细胞,以1:100的感染倍数表达H19或H19靶向短发夹RNA(shRNA)或其各自的对照。通过反转录定量PCR检测H19的表达。通过流式细胞术分析不同组细胞凋亡水平、细胞周期分布和线粒体膜电位,诱导和评估缺氧损伤。用western blotting分析PI3K/AKT和ERK/p38信号通路的表达。研究发现,缺氧刺激H9c2细胞凋亡,诱导G1期细胞周期阻滞,增加线粒体去极化率。与缺氧模型组相比,H19过度表达组的细胞凋亡率显著降低(P=0.016),G1细胞群较小,S期细胞群较高(分别为P=0.018和P=0.031),线粒体去极化率下降(P=0.036)。相比之下,H19 shRNA组表现出相反的趋势,表明H19的过度表达减轻了缺氧诱导的损伤,H19的敲除加重了缺氧诱导损伤。目前的机制研究表明,H19可能通过激活PI3K/AKT和ERK/p38通路来减轻缺氧诱导的细胞损伤。本研究结果表明,H19可能通过激活PI3K/AKT和ERK/p38通路减轻缺氧诱导的心肌细胞损伤。

关键词:长非编码rna H19;心肌缺血/再灌注损伤;击倒;Pi3K/aKT;丝裂原活化蛋白激酶。

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数字

图1。
图1。
不同组H19表达的逆转录定量PCR分析。正常对照组细胞在常压下培养。在缺氧条件下培养48小时后,收集模型对照组和不同感染组(空白表达、H19表达、H19-干扰和空白干扰)的细胞。模型对照组、空白表达组、空白干预组和正常对照组H19表达水平相似(均P>0.05)。与模型对照组相比,H19表达组的H19表达显著增加(P=0.015),H19干扰组的H19表达显著减少(P=0.023)。使用2-ΔΔCq方法。以U6作为内部对照,计算H19的相对表达。所有样品均一式三份*与模型组相比,P<0.05。H19,长非编码RNA H19。
图2。
图2。
缺氧诱导的H9c2细胞凋亡因H19敲低而加重,并因H19过表达而减轻。正常对照组细胞在常压下培养。在缺氧条件下培养48小时后,收集模型对照组和不同感染组(H19表达、空白表达、H19干扰和空白干扰)的细胞。流式细胞术检测细胞凋亡水平。所有样品均一式三份*与正常组相比,P<0.05,**P<0.01;#与模型组相比,P<0.05。H19,长非编码RNA H19;PI,碘化丙啶。
图3。
图3。
流式细胞术分析H9c2细胞的细胞周期分布。正常对照组细胞在常压下培养。在缺氧条件下培养48小时后,收集模型对照组和不同感染组(H19表达、空白表达、H19干扰和空白干扰)的细胞。对G1期细胞百分比进行量化。所有样品均一式三份*与正常组相比P<0.05;#与模型组相比,P<0.05。PE,藻红蛋白;RMS,均方根;频率,频率;CV,变异系数;H19,长非编码RNA H19。
图4。
图4。
缺氧诱导的线粒体膜去极化因H19过度表达而减少,并因H19干扰而增强。正常对照组细胞在常压下培养。在缺氧条件下培养48小时后,收集模型对照组和不同感染组(H19表达、空白表达、H19干扰和空白干扰)的细胞。用流式细胞术测定线粒体去极化率。所有样品均一式三份*与正常组相比,P<0.05,**P<0.01;#与模型组相比,P<0.05。H19,长非编码RNA H19;FL,荧光。
图5。
图5。
H19调节PI3K/AKT和ERK/p38通路。正常对照组细胞在常压下培养。在缺氧条件下培养48小时后,收集模型对照和不同感染组(H19表达、空白表达、H19干扰和空白干扰)中的细胞。以β-actin为内对照,采用免疫印迹法测定p-PI3K、p-AKT、p-ERK1/2、p-p38、PI3K,AKT、ERK1/2和p38的表达水平。所有样品均一式三份*与正常组相比P<0.05;#与模型组相比,P<0.05。H19,长非编码RNA H19;p-,磷酸化。

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