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.2019年12月17:10:1445。
doi:10.3389/fphys.2019.0145。 2019年eCollection。

下调miR-34a-5p通过刺激C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9的表达增强脂肪间充质干细胞对缺血性心肌梗死的保护作用

附属公司

下调miR-34a-5p通过刺激C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9的表达增强脂肪间充质干细胞对缺血性心肌梗死的保护作用

池峰翁等。 前生理学. .

摘要

脂肪衍生干细胞(ADSC)在心肌梗死(MI)的治疗中显示出巨大的前景,尽管其潜在的治疗机制尚不清楚。越来越多的证据表明,微RNA(miRNAs或miRs)参与了ADSC改善心血管疾病的生物学过程。在本研究中,我们探讨了miR-34a-5p下调对ADSC抗心肌梗死保护作用的贡献生物信息学分析。接下来,我们通过功能获得和丧失测试,测试了miR-34a-5p和CTRP9对细胞外信号调节激酶1(ERK1)、基质金属蛋白酶-9(MMP-9)、核因子(红系衍生2)样2(NRF2)和抗氧化蛋白[锰超氧化物歧化酶(MnSOD)和血红素加氧酶-1(HO-1)]表达的影响。在其他实验中,我们使用EdU试验、划痕试验、Transwell试验和流式细胞术评估ADSC的增殖、迁移和凋亡。最后,我们研究了miR-34a-5p/CTRP9轴在MI小鼠干细胞移植过程中是否能够调节ADSC对MI的保护作用。miR-34a-5p可靶向并下调心肌细胞中的CTRP9。下调miR-34a-5p增加ERK1、MMP-9、NRF2、MnSOD和HO-1的表达,而下调miR-35a-5p或上调CTRP9在体外促进ADSC增殖和迁移,抑制ADSC凋亡。此外,miR-34a-5p下调或CTRP9上调促进了ADSC对心肌梗死损伤的保护作用体内因此,miR-34a-5p的抑制可能通过刺激CTRP9的表达来促进ADSC对MI损伤的保护功能。

关键词:C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;脂肪干细胞;细胞凋亡;microRNA-34a-5p;迁移;心肌梗死;增殖。

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数字

图1
图1
CTRP9是miR-34a-5p的靶基因。(A)预测CTRP9的miR-34a-5p和3′UTR之间的结合位点。(B)使用双荧光素酶报告基因分析检测荧光素酶活性。*与模拟-NC组相比,<0.05。(C)western blot分析检测miR-34A-5p抑制剂对CTRP9表达的影响。#与miR-34a-5p抑制剂-NC组相比,<0.05。两组之间的数据(平均值±标准差)由未配对的t吨-测试。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p,microRNA-34a-5p;野生型;MUT,突变型;3′UTR,3′非翻译区;NC,阴性对照;标准偏差。
图2
图2
miR-34a-5p的下调促进CTRP9的表达。(A)RT-qPCR检测ADSC中ERK1、MMP-9、NRF2、MnSOD和HO-1的表达。(B、C)ADSC中ERK1、MMP-9、NRF2、MnSOD和HO-1蛋白的Western blot分析。*与载体组相比<0.05;#与sh-NC组相比<0.05;&与miR-34a-5p抑制剂NC组相比,<0.05;@与miR-34a-5p抑制剂组相比,<0.05;$与DMSO组相比<0.05;%与miR-34a-5p抑制剂+DMSO组相比,<0.05;采用单因素方差分析法分析多组数据(平均值±标准差),然后采用Tukey's事后(post-hoc)测试。单变量分析采用对数秩法。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p、微小RNA-34a-5p;ERK1,细胞外信号调节激酶1;基质金属蛋白酶-9;NRF2,核因子(红细胞衍生2)样2;锰超氧化物歧化酶;血红素氧化酶-1;RT-qPCR,逆转录定量聚合酶链反应;脂肪源性干细胞;sh,短发夹;NC,阴性对照;二甲基亚砜;标准差;方差分析,方差分析。
图3
图3
miR-34a-5p下调通过上调CTRP9促进ADSC增殖在体外.(A、B)通过EdU分析测量各组ADSC增殖(蓝色代表Hoechst阳性细胞,红色代表EdU阳性细胞)(200×)。*与载体组相比<0.05;#与sh-NC组相比<0.05;&与miR-34a-5p抑制剂NC组相比,<0.05;@与miR-34a-5p抑制剂组相比,<0.05;$与DMSO组相比<0.05;%与miR-34a-5p抑制剂+二甲基亚砜组相比,<0.05。采用单因素方差分析法分析多组数据(平均值±标准差),然后采用Tukey's事后(post-hoc)测试。单变量分析采用对数秩法。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p、微小RNA-34a-5p;脂肪源性干细胞;sh,短发夹;NC,阴性对照;乙二胺四乙酸,5-乙炔基-2′-脱氧尿苷;二甲基亚砜;标准差;方差分析,方差分析。
图4
图4
抑制miR-34a-5p促进ADSC迁移在体外通过上调CTRP9。(A、B)划痕试验检测转染后细胞迁移。(C、D)Transwell分析检测转染后细胞迁移(200×)。*与载体组相比<0.05;#与sh-NC组相比,<0.05;&与miR-34a-5p抑制剂NC组相比,<0.05;@与miR-34a-5p抑制剂组相比,<0.05;$与DMSO组相比<0.05;%与miR-34a-5p抑制剂+二甲基亚砜组相比,<0.05。采用单因素方差分析法分析多组数据(平均值±标准差),然后采用Tukey's事后(post-hoc)测试。单变量分析采用对数秩法。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p,microRNA-34a-5p;脂肪源性干细胞;sh,短发夹;NC,阴性对照;二甲基亚砜;标准差;方差分析,方差分析。
图5
图5
抑制miR-34a-5p抑制ADSC凋亡在体外通过促进CTRP9表达。(A、B)使用流式细胞术测量ADSC周期的分布。(C、D)采用Annexin V-PE/7-ADD染色和流式细胞术检测ADSC凋亡。*与载体组相比<0.05;#与sh-NC组相比<0.05;&与miR-34a-5p抑制剂NC组相比,<0.05;@与miR-34a-5p抑制剂组相比,<0.05;$与DMSO组相比<0.05;%与miR-34a-5p抑制剂+二甲基亚砜组相比,<0.05。采用单因素方差分析法分析多组数据(平均值±标准差),然后采用Tukey's事后(post-hoc)测试。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p,microRNA-34a-5p;脂肪来源干细胞;sh,短发夹;NC,阴性对照;二甲基亚砜;标准差;方差分析,方差分析。
图6
图6
下调的miR-34a-5p促进ADSCs对MI损伤的保护作用体内上调CTRP9表达。(A)各组小鼠的LVEF。(B)+各组小鼠的dp/dtmax。(C)各组小鼠LVEDP。(D)TUNEL染色(400×)检测各组小鼠心肌细胞凋亡。(E)各组小鼠心肌组织Masson’s三色染色(400×)。(F)RT-qPCR检测心肌组织中miR-34a、BNP和ANP的表达。*与假手术组相比<0.05;#与MI+ADSC组相比<0.05;&与MI+miR-34a-5p antagomir+ADSC组相比,<0.05。采用单因素方差分析法分析多组数据(平均值±标准差),然后采用Tukey's事后(post-hoc)测试。实验重复了三次。CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;miR-34a-5p,microRNA-34a-5p;脂肪源性干细胞;心肌梗死;LVEF,左室射血分数;左室舒张末期压;末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP-生物素缺口末端标记;标准差;方差分析,方差分析。
图7
图7
miR-34a-5p在小鼠心肌梗死模型ADSC功能中的作用示意图。miR-34a-5p靶向并负调控CTRP9的表达。上调CTRP9可通过增加ERK1、MMP-9、NRF2、MnSOD和HO-1的表达,促进ADSC的增殖和迁移。因此,miR-34a-5p的下调通过上调CTRP9在ADSCs对MI损伤的保护作用中发挥促进作用。miR-34a-5p,microRNA-34a-5p;脂肪源性干细胞;心肌梗死;CTRP9、C1q/肿瘤坏死因子相关蛋白-9;基质金属蛋白酶-9;NRF2,核因子(红细胞衍生2)样2;HO-1,血红素加氧酶-1。

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引用人

工具书类

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