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.2020年1月1日;11(2):311-323.
doi:10.7150/jca.33982。 eCollection 2020。

长非编码RNADCST1-AS1型通过与miR-873-5p和MYC形成正调控环促进三阴性乳腺癌细胞增殖和转移

附属公司

长非编码RNADCST1-AS1型通过与miR-873-5p和MYC形成正调控环促进三阴性乳腺癌细胞增殖和转移

李唐等。 J癌症. .

摘要

背景:含有1-反义1的DC-STAMP结构域(DCST1-AS1型)是一种在三阴性乳腺癌(TNBC)组织中上调的长非编码RNA(lncRNA)。在这里,我们试图研究DCST1-AS1型.方法:使用LncRNA微阵列检测癌组织中差异表达的LncRNA。荧光就地杂交分析用于检测DCST1-AS1型在BT-549和MDA-MB-231细胞中。慢病毒系统、抑制剂、siRNA和过表达质粒用于获得和失去功能实验。采用集落形成实验、伤口愈合实验、CCK8实验、穿孔实验和流式细胞仪实验来研究其功能DCST1-AS1型荧光素酶分析用于验证MYC与启动子区域的结合以及miR-873-5p与DCST1-AS1型RNA免疫沉淀分析用于验证精氨酸2与miR-873-5p和DCST1-AS1型Western blotting用于测量蛋白质表达的变化。结果:与微阵列结果一致,我们发现DCST1-AS1型在TNBC组织样品和细胞系中均上调。DCST1-AS1型与远处转移和组织病理分级呈正相关。DCST1-AS1型分布于细胞核和细胞质中。击倒DCST1-AS1型抑制TNBC细胞增殖和转移,同时过度表达DCST1-AS1型促进TNBC细胞增殖和转移。我们确认了DCST1-AS1型TNBC细胞的表达受MYC调节。此外,我们发现DCST1-AS1型与TNBC组织中的miR-873-5p呈负相关,是miR-873-4p的直接靶基因。Argonaute 2参与了DCST1-AS1型和miR-873-5p,并促进DCST1-AS1型.相互作用DCST1-AS1型miR-873-5p最终上调胰岛素样生长因子2 mRNA结合蛋白1(IGF2BP1)、MYC、CD44和淋巴增强因子1(LEF1)的表达。结论: DCST1-AS1型被MYC激活,并通过与miR-873-5p结合而降解,从而上调miR-873-5p下游蛋白IGF2BP1、MYC、LEF1和CD44的表达。MYC、,DCST1-AS1型miR-873-5p形成正调控环,促进TNBC细胞增殖和转移。

关键词:IGF2BP1;MYC;长非编码RNA;转移。;miR-873-5页。

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竞争利益:作者声明不存在竞争利益。

数字

图1
图1
DCST1-AS1型在TNBC组织中上调。(A)6对肿瘤样本和邻近正常组织样本中lncRNA的层次聚类分析。(B)使用火山图分析6484个差异表达的lncRNA(≥2倍;P<0.05)。其中,2464个上调,4020个下调。(C) DCST1-AS1型通过RT-qPCR分析肿瘤样本和邻近正常组织(n=30)中的表达。DCST1-AS1型表达水平归一化为GAPDH。方框图中的水平线代表中位数;方框表示四分位范围。使用Wilcoxon符号秩检验分析样本之间的显著差异。**,P(P)< 0.0001.(D)基于RT-qPCR的TNBC预测ROC曲线DCST1-AS1型表达式级别。AUC为0.952,95%CI和P(P)指示值,P(P)= 0.023.
图2
图2
DCST1-AS1型是一种真正的lncRNA,分布在细胞核和细胞质中。(A)的编码能力分析DCST1-AS1型,MYC公司作为编码基因对照HOTAIR公司作为非编码基因控制。(B)RT-qPCR检测DCST1-AS1型在BT-549、MDA-MB-231、HCC1937、MDA-MB-453和HBL-100细胞中。以乳腺上皮细胞系HBL-100为参考。数值代表平均值,条形代表三个独立实验的S.D。(C)RT-qPCR用于测定核/细胞质表达率DCST1-AS1型在BT-549和MDA-MB-231细胞中。U6被用作提取核糖核酸质量的内部参考,GAPDH被用作细胞质RNA提取质量的内部参照。数值代表平均值,条形代表三个独立实验的S.D。(D)FISH用于检测DCST1-AS1型用DAPI染色检测细胞核DCST1-AS1型用Cy3标记探针检测到。
图3
图3
击倒DCST1-AS1型抑制增殖和迁移。(A)用RT-qPCR检测DCST1-AS1型慢病毒转染后TNBC细胞中。*,与NC组相比,P<0.01。(B、C)CCK8试验和集落形成试验用于检测细胞增殖DCST1-AS1型击倒TNBC细胞。*,与NC组相比,P<0.01。(D、E)流式细胞术检测慢病毒转染后BT-549-si、MDA-231-si细胞的细胞周期和凋亡率,与NC组相比,P<0.01。(F、G)采用伤口愈合试验和穿孔试验测定细胞的迁移能力DCST1-AS1型击倒TNBC细胞。在迁移试验中,BT-549和MDA-MB-231细胞培养18小时,而在侵袭试验中,细胞培养24小时。*,与NC组相比,P<0.01。
图4
图4
的过度表达DCST1-AS1型促进TNBC细胞增殖和侵袭。(A)RT-qPCR用于检测DCST1-AS1型慢病毒转染后在MDA-MB-231和HBL-100细胞中表达。转录水平按照GAPDH标准化。*,与NC组相比,P<0.01。(B)进行CCK8分析以确定异位表达DCST1-AS1型对TNBC细胞增殖的影响#,与NC组相比,P<0.05。(C)流式细胞术用于检测过表达MDA-MB-231细胞的细胞周期变化DCST1-AS1型.(D)菌落形成分析用于确定DCST1-AS1型TNBC细胞的过度表达依赖于凤尾鱼的生长。*,与NC组相比,P<0.01。(E)Transwell分析用于确定上调DCST1-AS1型细胞侵袭。在迁移试验中,MDA-MB-231细胞培养12小时,HBL-100细胞培养24小时。在侵袭试验中,MDA-MB-231细胞培养24小时,HBL-100细胞培养48小时。*,与NC组相比,P<0.01。
图5
图5
DCST1-AS1型被MYC激活。(A)使用TCGA数据分析乳腺癌亚型中MYC的表达水平。**,P<0.0001。(B、C) DCST1-AS1型当向BT-549和MDA-MB-231细胞中添加MYC-siRNA或MYC-MAX抑制剂10058-F4(50μg/ml)时,表达降低。*,与NC组相比,P<0.01。(D) DCST1-AS1型当MYC过表达质粒转移到BT-549和MDA-MB-231细胞中时,表达上调,与NC组相比,P<0.01。(E)双重荧光素酶分析证实MYC与DCST1-AS1型启动子位点。Pro,发起人*,与NC组相比,P<0.01。
图6
图6
DCST1-AS1型是miR-873-5p的直接靶点。(A)miR-873-5p结合位点的预测DCST1-AS1型.(B)miR-873在30对TNBC组织及邻近正常组织中的表达。miR-873-5p表达水平归一化为U6。使用Wilcoxon符号秩检验分析样本之间的显著差异。*,P<0.01。(C)表达式之间的反向关系DCST1-AS1型和miR-873-5p。表达被归一化,相关分析采用皮尔逊相关系数,R2=0.6249,P<0.0001(D)RT-qPCR分析表明DCST1-AS1型转染miR-873-5p模拟物的BT-549和MDA-MB-231细胞的表达降低,P<0.01。(E)qPCR分析表明miR-873-5p的表达通过干扰DCST1-AS1型在BT-549和MDA-MB-231细胞中。*,P<0.01。(F)双重荧光素酶分析证实miR-873-5p与预测的结合位点结合DCST1-AS1型.WT,野生型。Mut,突变体。*,P<0.01。(G)mRNA稳定性分析:半衰期DCST1-AS1型BT-549细胞的半衰期缩短了6.22小时DCST1-AS1型MDA-MB-231细胞缩短3.46小时;18S rRNA被用作内部参考。*,P<0.01。(H)miR-873-5p和DCST1-AS1型在AGO2干扰后的BT-549细胞中,通过RT-qPCR检测。GAPDH被用作DCST1-AS1型,U6被用作miR-873-5p.*的内部参照物,P<0.01。(一)免疫印迹法检测AGO2干扰后BT-549细胞IGF2BP1蛋白水平。(J)金额DCST1-AS1型在miR-873-5p抑制剂或阴性对照存在的情况下,通过RT-qPCR测定与抗AGO2或IgG结合的miR-873-4p。*,P<0.01。
图7
图7
DCST1-AS1型调节miR-873-5p的下游蛋白。(A)利用TCGA数据分析BRCA中IGF2BP1的表达水平。**,P<0.0001。(B)TCGA数据分析表明,IGF2BP1在TNBC和管腔亚型中的表达水平高于正常对照组,具有显著差异,P<0.05,*,P<0.01。(C)利用TCGA数据分析IGF2BP1表达与BRCA患者预后的关系。P=0.0054。(D)Western blotting显示IGF2BP1、MYC、LEF1和CD44在DCST1-AS1型干扰细胞。(E)将miR-873-5p抑制剂转染BT-549-si细胞,通过Western blotting检测IGF2BP1蛋白的表达。(F)将miR-873-5p抑制剂转染到BT-549-si细胞中,并通过CCK8检测细胞增殖。*,P<0.01。(G)将miR-873-5p抑制剂转染到BT-549-si细胞中,并通过伤口愈合试验测量细胞迁移。*,P<0.01。

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