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.2020年2月;11(2):295-304.
doi:10.1111/1759-7714.13256。 Epub 2019年12月2日。

LncRNA SNHG1通过miR-361-3p/FRAT1轴影响非小细胞肺癌细胞的增殖、迁移、侵袭和凋亡

附属公司

LncRNA SNHG1通过miR-361-3p/FRAT1轴影响非小细胞肺癌细胞的增殖、迁移、侵袭和凋亡

李晓梅等。 胸腔癌. 2020年2月.

摘要

背景:非小细胞肺癌(NSCLC)是最致命的癌症类型。长非编码RNA(lncRNA)和小RNA(miRNAs)已被确定为非小细胞肺癌(NSCLC)发展的关键调节因子。我们的研究目的是探索SNHG1的分子机制,以便更好地治疗非小细胞肺癌患者。

方法:采用定量实时聚合酶链反应(qRT-PCR)检测晚期T细胞淋巴瘤1(FRAT1)中小核仁RNA宿主基因1(SNHG1)、miR-361-3p和频繁重排的表达。western blot法检测FRAT1蛋白水平。通过甲基噻唑四唑(MTT)法评估细胞增殖。流式细胞术检测细胞凋亡。用transwell法计数迁移细胞和侵袭细胞的数量。miR-361-3p与SNHG1或FRAT1之间的关系通过双核糖核酸酶报告分析得到证实。

结果:我们的结果表明,SNHG1和FRAT1在非小细胞肺癌组织和细胞中高度表达。SNHG1沉默可抑制NSCLC细胞的增殖、诱导凋亡并阻断其迁移和侵袭。此外,FRAT1下调抑制了NSCLC细胞的增殖,促进了细胞凋亡,并阻碍了其迁移和侵袭。此外,FRAT1可以恢复SNHG1沉默对NSCLC细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭的影响。SNHG1海绵状miR-361-3p并负调控miR-361-3的表达。同时,miR-361-3p靶向FRAT1并反向调节FRAT1的表达。此外,miR-361-3p抑制减弱了SNHG1敲低对FRAT1表达的影响。

结论:总之,LncRNA SNHG1通过海绵miR-361-3p调节FRAT1的表达,促进NSCLC细胞的增殖,抑制凋亡,增强迁移和侵袭。

关键词:FRAT1;非小细胞肺癌;SNHG1;miR-361-3p。

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数字

图1
图1
SNHG1和FRAT1在NSCLC组织和细胞中的表达上调。()通过qRT-PCR检测非小细胞肺癌组织中SNHG1的表达(n个=40)和正常组织(n个= 40). (b条)通过qRT-PCR检测BEAS‐2B、H23和H1299细胞中SNHG1的表达。(c(c))通过qRT-PCR检测非小细胞肺癌组织和正常组织中FRAT1 mRNA的表达。(d日)western blot法检测NSCLC组织中FRAT1蛋白水平(n个=40)和正常组织(n个= 40). (e(电子))通过qRT-PCR检测BEAS‐2B、H23和H1299细胞中FRAT1的表达。(f) 通过western blot分析检测BEAS‐2B、H23和H1299细胞中FRAT1蛋白的表达*P(P) < 0.05.
图2
图2
沉默的SNHG1抑制非小细胞肺癌细胞的增殖,诱导凋亡,阻碍其迁移和侵袭。()通过qRT-PCR检测转染si-NC或si-SNHG1的H23和H1299细胞中SNHG1的表达。(b条c(c))MTT法检测转染H23和H1299细胞的增殖情况。(d日)流式细胞术检测转染H23和H1299细胞的凋亡情况。(e(电子)(f))转染的H23和H1299细胞的迁移和侵袭采用跨阱实验进行评估*P(P) < 0.05.
图3
图3
FRAT1下调抑制了NSCLC细胞的增殖,促进了细胞凋亡,并抑制了NSCLC细胞的迁移和侵袭。()通过qRT-PCR检测转染si-NC或si-FRAT1的H23和H1299细胞中FRAT1 mRNA的表达。(b条)通过western blot检测转染H23和H1299细胞中FRAT1蛋白的表达。(c(c)d日)MTT法检测转染H23和H1299细胞的增殖情况。(e(电子))流式细胞术检测转染H23和H1299细胞的凋亡情况。((f))转染的H23和H1299细胞的迁移和侵袭通过跨阱实验进行检测*P(P) < 0.05.
图4
图4
SNHG1基因敲除通过调节FRAT1的表达来调节NSCLC细胞的增殖、凋亡、迁移和侵袭。()通过Pearson分析确定SNHG1表达和FRAT1表达之间的相关性。(b条)通过qRT-PCR检测转染si-NC或si-SNHG1的H23和H1299细胞中FRAT1 mRNA的表达。(c(c))通过western blot分析检测转染si-NC或si-SNHG1的H23和H1299细胞中FRAT1蛋白的表达。(d日e(电子))MTT分析用于评估转染si-NC、si-SNHG1、si-SHG1的H23和H1299细胞的增殖 + pcDNA或si-SNHG1 + FRAT1((f))流式细胞术检测转染H23和H1299细胞的凋亡情况。(小时j个)转染的H23和H1299细胞的迁移和侵袭通过跨阱实验进行检测*P(P) < 0.05.
图5
图5
SNHG1直接靶向miR‐361‐3p并反向调节miR‐的表达。()显示了SNHG1和miR‐361‐3p之间的结合位点以及SNHG1的突变序列。(b条c(c))进行双荧光素酶报告试验,检测转染miR‐NC或miR‐)-36p和WT‐SNHG1或MUT‐SNHG1的H23和H1299细胞的荧光素酶活性。(d日)通过qRT‐PCR检测非小细胞肺癌组织中miR‐361‐3p的表达(n个=40)和正常组织(n个= 40). (e(电子))通过qRT‐PCR检测BEAS‐2B、H23和H1299细胞中MiR‐361‐3p的表达。((f))通过Pearson分析确定SNHG1表达和miR‐361‐3p表达之间的相关性。()通过qRT‐PCR检测转染si-NC或si-SNHG1的H23和H1299细胞中miR‐361‐3p的表达*P(P) < 0.05.
图6
图6
FRAT1是miR‐361‐3p的目标。()显示了miR‐361‐3p和FRAT1之间的假定结合序列以及FRAT1的突变序列。(b条c(c))进行双荧光素酶报告分析,以检测转染miR‐NC或miR-361‐3p和FRAT1 3′-UTR‐WT或FRAT1 1 3′-UTR‐MUT的H23和H1299细胞的荧光素酶活性。(d日)通过Pearson分析确定miR‐361‐3p表达与FRAT1表达之间的相关性。(e(电子)(f))在转染miR-NC模拟物或miR-361-3p模拟物的H23和H1299细胞中,通过qRT‐PCR检测miR-361‐3p和FRAT1的表达水平。()通过western blot检测转染H23和H1299细胞中FRAT1蛋白的表达*P(P) < 0.05.
图7
图7
SNHG1敲除通过靶向miR‐361‐4p降低FRAT1表达。(b条)通过qRT-PCR检测转染si-NC、si-SNHG1、si-SHG1的H23和H1299细胞中FRAT1 mRNA的表达 + 抗miR‐NC或si-SNHG1 + 抗miR‐361‐3p。(c(c)d日)通过western blot检测转染H23和H1299细胞中FRAT1蛋白的表达*P(P) < 0.05.

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参考文献

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