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.2020年1月;21(1):89-96.
doi:10.3892/mmr.2019.10793。 Epub 2019年11月5日。

抑制miR‑101a‑3p通过调节JAK2/STAT3通路减轻H9C2细胞H/R损伤

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抑制miR‑101a‑3p通过调节JAK2/STAT3通路减轻H9C2细胞H/R损伤

刘晶莹等。 分子医学代表. 2020年1月.

摘要

缺氧/复氧(H/R)被用作缺血/再灌注损伤的体内模型,心肌缺血可导致心脏病。因此,有必要预防心肌H/R损伤,以避免心脏病的风险。本研究的目的是研究抑制microRNA(miR)‑101a‑3p是否减轻H9C2细胞H/R损伤、凋亡机制和关键靶蛋白。通过细胞计数试剂盒-8分析和使用细胞凋亡试剂盒的流式细胞术分别测定细胞活力和凋亡。采用比色法检测肌酸激酶(CK)和乳酸脱氢酶(LDH)的含量。进行双重荧光素酶分析以确定miR‑101a‑3p是否抑制Janus激酶(JAK)2。Western blot分析和逆转录定量PCR用于测定蛋白质水平和mRNA表达。研究发现,在H/R损伤过程中,miR‑101a‑3p的抑制增加了H9C2细胞的生长,并降低了H9C1细胞的凋亡。miR‑101a‑3p的抑制降低了H/R模型H9C2细胞中CK和LDH的数量。miR‑101a‑3p的抑制降低了H9/R损伤处理后H9C2细胞中Bax、白细胞介素‑6和肿瘤坏死因子‑α的水平,但提高了磷酸化(p)‑STAT3和p‑JAK2的水平。发现miR‑101a‑3p模拟物在H/R损伤期间抑制H9C2细胞活性,升高p‑JAK2水平,并略微增加p‑STAT3。AG490诱导H9C2细胞凋亡,降低H/R损伤过程中p‑JAK2和p‑STAT3的水平。数据表明,在H/R损伤期间,抑制miR‑101a‑3p可减少H9C2细胞的H/R损害,并通过Bax/Bcl‑2信号降低细胞凋亡。此外,研究表明,抑制miR‑101a‑3p通过调节JAK2/STAT3信号通路降低H9C2细胞H/R损伤。

关键词:mir-101a-3p;缺氧/复氧损伤;H9c2细胞;aG490。

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数字

图1。
图1。
在H/R损伤期间,I对H9C2细胞凋亡、生存能力以及CK、LDH和miR-101a-3p水平的影响。在h/R模型中,我被转染到H9C2细胞中48小时。通过逆转录定量PCR分析测定H9C2细胞中(A和B)miR-101a-3p的表达水平。(C) 用比色法分析H9C2细胞中CK和(D)LDH的含量。(E) 使用细胞计数试剂盒-8检测H9C2细胞活性。使用死细胞凋亡试剂盒,通过流式细胞术测定(F和G)H9C2细胞凋亡。数据以平均值±标准偏差表示,并使用Tukey-Kramer多重比较检验进行方差分析*与对照组相比,P<0.05,**P<0.01;^P<0.05,^^与H/R相比P<0.01;+P<0.05,++与IC+H/R相比P<0.01;##P<0.01。miR,microRNA;肌酸激酶;乳酸脱氢酶;H/R,缺氧/复氧;一、 miR-101a-3p抑制剂;IC,miR-101a-3p抑制剂控制;M、 miR-101a-3p模拟物;MC,miR-101a-3p模拟控制;LT,左上象限;LB,左下象限;RT,右上象限;RB,右下象限;PI,碘化丙啶。
图2。
图2。
I对H9C2细胞H/R损伤时Bax、Bcl-2、IL-6和TNF-α表达水平的影响。H9C2细胞在h/R环境中用I处理48小时。通过逆转录定量PCR分析测定(A)Bcl-2、(B)Bax、(C)IL-6和(D)TNF-α的mRNA水平。western blot分析检测Bax、Bcl-2、IL-6和TNF-α的(E和F)蛋白水平。数据以平均值±标准差表示,并通过方差分析和Tukey-Kramer多重比较检验进行分析*与对照组相比,P<0.05,**P<0.01;^P<0.05,^^与H/R相比P<0.01;+P<0.05,++与IC+H/R.miR,microRNA相比P<0.01;白细胞介素;肿瘤坏死因子;H/R,缺氧/复氧;一、 miR-101a-3p抑制剂;IC,miR-101a-3p抑制剂控制。
图3。
图3。
I和AG490对H9C2细胞在H/R损伤期间JAK2、p-JAK2,STAT3和p-STAT3表达水平的影响。(A) 使用含有JAK2 3′UTR和M或I的psi-CHECK-2转染细胞,并使用双荧光素酶检测试剂盒检测荧光素酶活性。(B) TargetScan7.2用于预测miR-101a-3p的靶基因。(C) western blot分析检测JAK2、p-JAK2,STAT3和p-STAT3蛋白水平。使用(D)p-JAK2/JAK2和(E)JAK2总量的比值来评估JAK2的激活。(F) 使用p-STAT3/STAT3和(G)总STAT3评估STAT3的激活。数据以平均值±标准偏差表示,并通过方差分析和Tukey-Kramer多重比较进行分析*与空白对照组相比,P<0.05,**P<0.01;#P<0.05,##P<0.01;^P<0.05,^^P<0.01。miR,microRNA;JAK、Janus激酶;H/R,缺氧/复氧;p-,磷酸化;UTR,非翻译区;WT,野生型;MUT,突变体;一、 miR-101a-3p抑制剂;IC,miR-101a-3p抑制剂控制;M、 miR-101a-3p模拟物;MC,miR-101a-3p模拟控制。
图4。
图4。
I和AG490对H9/R损伤时H9C2细胞凋亡的影响。流式细胞术检测H9C2细胞凋亡。数据以平均值±标准差表示,并通过方差分析和Tukey-Kramer多重比较检验进行分析*与对照组相比,P<0.05,**P<0.01;^与H/R相比P<0.05;+与IC+H/R相比,P<0.05;P<0.05,−−与I+H/R.miR,microRNA相比P<0.01;H/R,缺氧/复氧;一、 miR-101a-3p抑制剂;IC,miR-101a-3p抑制剂控制;LT,左上象限;LB,左下象限;RT,右上象限;RB,右下象限;PI,碘化丙啶。
图5。
图5。
AG490抑制H9C2细胞活性。H9C2细胞在35 mm培养皿中以1.5×10的比例培养5细胞/培养皿或在1.5×10的96 well板中细胞/平板。然后在H/R期间用不同的转染剂处理细胞48小时。与对照组相比,P<0.05,**P<0.01;^与H/R相比P<0.05;+与MC+H/R.miR,microRNA相比P<0.05;H/R,缺氧/复氧;M、 miR-101a-3p模拟物;MC,miR-101a-3p模拟控制。

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