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2020年1月:28:101364。
doi:10.1016/j.redox.2019.101364。 Epub 2019年10月29日。

核转录因子FoxG1通过调节自噬途径影响模拟老化毛细胞对炎症的敏感性

附属公司

核转录因子FoxG1通过调节自噬途径影响模拟老化毛细胞对炎症的敏感性

祖洪河等。 氧化还原生物 2020年1月

摘要

炎症是一种自卫反应,以保护个人免受感染和组织损伤,但过度或持续的炎症会对细胞生存产生不利影响。随着年龄的增长,许多人特别容易受到慢性炎症诱导的感音神经性耳聋的影响,但老年人听力损失风险增加背后的内在分子机制尚不清楚。FoxG1(叉头盒转录因子G1)是一种关键转录因子,通过调节线粒体功能在毛细胞存活中发挥重要作用,但在衰老和炎症条件下FoxG1的功能如何变化尚不清楚。在本研究中,我们首次发现在低浓度脂多糖(LPS)诱导的炎症模型中,FoxG1表达和自噬均逐渐增加,而在高浓度LPS治疗后,FoxG1表达和自吞噬水平均随着LPS浓度的增加而降低。然后我们使用siRNA下调毛细胞样OC-1细胞中Foxg1的表达,发现LPS损伤后细胞死亡和凋亡显著增加。此外,我们使用d-半乳糖(d-gal)建立了毛细胞样OC-1细胞和耳蜗外植体体外培养的衰老模型,发现d-gal和LPS联合治疗后Foxg1的表达和自噬水平均降低。最后,我们在老化炎症条件下下调Foxg1的表达,发现死亡和凋亡细胞数量增加。这些结果共同表明,FoxG1通过调节自噬途径影响模拟老化毛细胞对炎症的敏感性。

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作者声明没有竞争性的经济利益。

数字

图1
图1
15 mg/mL D-gal处理72 h后OC-1细胞的表型变化。(A) TEM分析评估OC1细胞的老化。(B) D-gal治疗后线粒体DNA(mtDNA)共同缺失(CD)的测量。(C) D-gal治疗后流式细胞仪检测细胞凋亡。(D) C.中早期凋亡细胞和死亡细胞的比例(E)D-gal处理后通过流式细胞术进行ROS分析的结果。(F) E中数据的量化。对于所有实验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图2
图2
D-半乳糖诱导的模拟衰老HCs对LPS诱导的炎症反应的敏感性增加。(A) LPS处理后GFP-LC3B小鼠D-gal诱导的老化耳蜗中Myo7a抗体的免疫荧光染色。(B) 定量A中Myo7a-阳性HCs,n=3。对于所有实验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图3
图3
D-半乳糖诱导的模拟衰老细胞对脂多糖诱导的炎症反应的敏感性增加。(A) 流式细胞仪检测不同处理后细胞凋亡 = 3.(B)A.中早期凋亡细胞的比例(C)A.(D)TUNEL和DAPI双重染色显示凋亡OC-1不同处理后的细胞,n = 3.(E)D中TUNEL/DAPI双阳性细胞数量的量化。(F)不同处理后用流式细胞仪分析ROS水平。(G) OC-1中Mito-SOX对F.(H)免疫荧光染色数据的量化细胞。(一) 不同处理后线粒体DNA CD的测定。(J) OC-1细胞凋亡相关基因表达的qPCR分析单元格,n = 3.(K)比率Bcl2公司Bax公司OC-1细胞经不同处理后,n=3。对于qPCR实验,未经处理的对照组的值设置为1*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图4
图4
FoxG1的表达影响OC-1自噬体的形成1后面的单元格μg/mL LPS处理48h.(A)Western blot显示OC-1中SQSTM1/p62和LC3B表达的变化Rap处理后的细胞,n = 3.(B)A中LC3B水平的量化下调后的细胞福克斯11μg/mL LPS处理后的表达。(E) 和(F)D中蛋白质印迹的定量。(G)用于评估OC-1细胞中自噬的透射电子显微镜分析。(H) G中自噬空泡的定量(I)G中自溶体的定量。所有实验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图5
图5
之后HCs中FoxG1表达和自噬被激活反式-鼓室注射LPS。(A) LPS处理后GFP-LC3B小鼠耳蜗HCs中的鬼臼蛋白免疫荧光染色,n=5。(B) HCs中相对GFP-LC3B荧光强度的量化,归一化为控制水平。(C) Western blot显示不同浓度LPS处理后HCs中FoxG1和LC3B表达的变化,n=3。(D) 和(E)C中western blot的定量。对于所有实验,*p<0.05,***p<0.001。
图6
图6
FoxG1的表达影响LPS处理后OC-1细胞的氧化应激和凋亡。(A) 流式细胞术分析不同处理后ROS水平。(B) 通过流式细胞术对不同治疗后的A.(C)细胞凋亡分析中的数据进行量化。(D) C.(E)中早期凋亡细胞的比例C.中死亡细胞的比例*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图7
图7
FoxG1的表达通过调节自噬体的形成,影响D-半乳糖诱导的模拟衰老HCs对LPS诱导的炎症反应的敏感性。(A) Western blot显示不同浓度LPS(0.1μg/mL、0.5μg/mL,1μg/mL和2μg/mL)处理48 h后HCs中FoxG1和LC3B表达的变化。(B) 和(C)定量A.(D)western blot,显示不同浓度D-gal处理(1 mg/mL、5 mg/mL、10 mg/mL、15 mg/mL和20 mg/mL)72 h后HCs中FoxG1和LC3表达的变化。(E) 和(F)在D.(G)western blot中量化western blot,显示LPS治疗后D-gal诱导的老化HCs中FoxG1和LC3表达的变化。(H) (I)用GFP-LC3小鼠耳蜗中的Myo7a抗体进行G(J)免疫荧光染色的western blot定量。(K) J中GFP-LC3斑点数的量化。对于所有实验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。
图8
图8
LPS处理后D-gal诱导的模拟衰老细胞自噬和FoxG1表达的变化。(A) Western blot显示不同处理后OC-1细胞中FoxG1和LC3B表达的变化。(B) 和(C)定量A(D)细胞中的western blot。(D)用mRFP-GFP-LC3质粒转染细胞,并用D-gal和LPS处理。黄点表示自噬体,红点表示自溶体,n=3。(E) D.(F)自噬体的定量D.(G)TEM分析中自溶体的定量以评估OC-1细胞的自噬。(H) G中自噬空泡的定量(I)G中自溶体的定量。所有实验,*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。(对于本图例中颜色参考的解释,请读者参阅本文的Web版本。)
图9
图9
FoxG1的表达影响D-半乳糖诱导的模拟衰老OC-1中的氧化应激和凋亡D-gal和LPS处理后的细胞。(A) 细胞凋亡的流式细胞术分析狐狸g1LPS和D-gal处理后的敲除细胞,n=3。(B) A.早期凋亡细胞比例(C)A.死亡细胞比例(D)不同处理后用流式细胞仪分析ROS水平。(E) A.中数据的量化*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。

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