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.2019年9月6日17:49-62。
doi:10.1016/j.omtn.2019.05.002。 Epub 2019年5月17日。

miR-15a/-16通过靶向Tie2编码序列抑制血管生成:miR-15a/16诱饵系统在肢体缺血中的治疗潜力

附属公司

miR-15a/-16通过靶向Tie2编码序列抑制血管生成:miR-15a/16诱饵系统在肢体缺血中的治疗潜力

玛丽·贝斯尼尔等。 摩尔核酸. .

摘要

从miR-15a/miR-16-1簇转录的MicroRNA-15a(miR-15a)和miR-16抑制缺血后血管生成。微RNA(miRNA)与mRNA编码序列(CDS)结合是一种新兴的基因表达调控机制。我们的目的是(1)鉴定miR-15a和-16抗血管生成作用的新介质,(2)开发一种基于腺病毒(Ad)的miR-15a/16诱饵系统,该系统携带荧光素酶报告子(Luc)来感知和抑制miR-15a/16的活性,以及(3)研究Ad.Luc-decoy-15a/16在小鼠肢体缺血(LI)模型中的治疗潜力。LI增加小鼠肌肉内皮细胞(EC)中miR-15a和-16的表达。在暴露于血清饥饿但不缺氧的培养人脐静脉内皮细胞(HUVECs)中,miRNAs也增加。利用生物信息学工具和荧光素酶活性测定,我们表征了miR-15a和-16与Tie2 CDS的结合。在HUVEC中,miR-15a或-16过度表达降低了蛋白水平的Tie2,但不降低mRNA水平。相反,miR-15a或-16抑制以Tie2依赖性方式改善血管生成。局部Ad.Luc-Decoy-15a/16递送增加了缺血骨骼肌中的Tie2水平,改善了LI后血管生成和灌注恢复,减少了脚趾坏死。生物发光成像(体内成像系统[IVIS])提供了Ad.Luc-Decoy-15a/16系统对miR-15a/16增加反应的证据。总之,我们提供了局部miR-15a/16抑制LI治疗潜力的新机制证据。

关键词:IVIS;第2级;血管生成;血管生成素;缺血;miR诱饵;miR-15a;miR-16a;微RNA;小鼠缺血模型。

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数字

图1
图1
miR-15a、-15b、-16和-503在人类组织中的表达通过RT-PCR和骨骼肌(E)中每个miRNA的相对表达评估人类组织中miR-15a(A)、miR-16(B)、miR-15b(C)和miR-503(D)的表达。结果被归一化为小核RNA U6(U6)表达(n=1/组织,由三个不同的供体样本汇集而成)。
图2
图2
肢体缺血后小鼠内收肌和肌源性内皮细胞中miR-15a和-16的表达受到不同调节。在手术诱导肢体缺血后1天和3天,收集缺血和对侧(对照)内收肌,通过RT-PCR检测miR-15a和-16在总肌肉组织(A)和肌源性CD146+内皮细胞(EC)(B)中的表达。结果被归一化为相对于正常灌注的对照肌肉或EC的小核RNA U6的表达,并表示为平均值±SEM。每种情况n=3**与对照组相比,p<0.01和***p<0.001,与缺血后时间相匹配。
图3
图3
Tie2被miR-15a和-16通过Tie2 mRNA上的一个异常结合位点靶向,并参与抑制HUVEC中miR-15a-16的促血管生成作用体外试验(A) HEK293T细胞与前miR-15a(miR-15a)、前miR-16(miR-16)、二者的组合(miR-15 A/16)或miR-加扰寡核苷酸(Scr)和含有荧光素酶开放阅读框(pLUC)的质粒共转染后48小时的荧光素瘤活性,然后是围绕假定的miRNA-结合位点(pLUC-TEK)的50 nt TEK编码序列的一部分。使用miRNA结合位点的突变版本作为对照(pLUC-TEKmut)。还提供了质粒结构的示意图*p<0.05,***p<0.001与pLUC-TEK对照Scr;†与pLUC-TEK相比,p<0.05,††p<0.01达到miRNA前匹配条件(n=5)。(B) 用Scramble寡聚物(Scr)、前miR-15a(miR-15a)或前miR-16(miR-16)(5nM)转染人脐静脉内皮细胞(HUVECs),以增加其各自的成熟miRNA表达。通过RT-PCR评估miR-15a和-16的表达,并将其归一化为小核U6表达。通过RT-PCR和western blot评估Tie2 mRNA(C)或蛋白(D)的表达,并分别归一化为18S和β-actin。每种情况下,n=3。(E) 用抗miR-15a、miR-16的Scr寡核苷酸或抗miRNA转染HUVEC,或同时转染两种抗miRNA(总浓度为50 nM)以抑制其活性。通过western blot评估Tie2蛋白表达,并将其归一化为β-肌动蛋白。每种情况下,n=9*与Scr条件相比p<0.05。(F) 在转染了Scramble寡核苷酸(Scr)或抗miR-15a或miR-16的抗miRNA(50 nM)的HUVEC中,评估了Tie2对miR-15a/16抑制诱导的血管生成的抑制作用,并用Tie2抑制剂(Tie2-I,5μM)或DMSO对照进行了处理。血管生成能力通过Matrigel上的网络形成进行测量,计算为总长度(单位:毫米),并表示为Scr和DMSO条件下的百分比。提供了代表性图片(比例尺,200μm)。n=3*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001。所有结果均表示为平均值±SEM。
图4
图4
携带miR-15a和-16诱饵序列的腺病毒(Luc-Decoy广告)传感器活性和抑制效率在体内(A) 在感染HUVEC的IVIS上测定荧光素酶活性广告Luc控制或Luc-Decoy广告病毒在完全(2%FBS)或无血清(0%FBS)培养基下培养24小时。结果按细胞表达,并与Ad.匹配,2%FBS条件相关。结果显示为每种条件±SEM的n=4–5的平均值。*p<0.05,**p<0.01,***p<0.001与Ad.匹配,2%FBS条件#与Ad.-Luc、0%FBS条件、Student t检验相比,p<0.05。(B和C)肢体缺血后,生物发光活性−1●厘米−2●sr−1)使用Xenogen IVIS对缺血腿进行测量和分析。将D-荧光素皮下注射到缺血肢体中,与荧光素酶反应产生的生物发光Ad.Luc公司-或Luc-Decoy广告-从注射病毒后的第1天到第21天,对注射的腿进行测量。展示了具有代表性的图像。数据显示为平均值±SEM(每个条件n≥10)*与时间匹配相比p<0.05广告Luc条件使用Student t检验。(D) miR-15a和-16在表达Luc控制结构的细胞中的抑制、捕获和传感机制的图解解释,缺少miR-15a/16或Luc-Decoy公司构造。
图5
图5
通过股动脉结扎诱导小鼠肢体缺血后,抑制miR-15a/16可改善血流(BF)恢复、缺血后新生血管形成和脚趾存活广告LucLuc-Decoy广告术后立即注入缺血的内收肌。(A和B)折线图显示了注射广告LucLuc-Decoy广告提供了缺血后第0、7、14和21天拍摄的具有代表性的彩色激光多普勒图像。黄色边框显示分析的缺血性足。数据表示为平均值±SEM(每组n≥10)*与时间匹配相比,p<0.05,**p<0.01广告Luc条件。(C) 免疫组织学分析和代表性显微照片显示注射了广告LucLuc-Decoy广告LI后21天和小鼠对侧(对照)肌肉注射广告Luc(每组5例),通过CD31作为内皮细胞标记物的免疫标记进行评估。比例尺,50μm。(D) 免疫组织学分析和典型显微照片显示注射广告LucLuc-Decoy广告肢体缺血后(每组11只或8只),通过α-平滑肌肌动蛋白(αSMA)作为血管平滑肌细胞标记物的免疫标记进行评估。根据血管直径(<20μm或≥20μm)量化小动脉。数据表示为平均值+SEM。比例尺,20μm。(E) 小鼠局部缺血后21天随访中脚趾存活的累积比例广告LucLuc-Decoy广告(n≥10只/组)。p=0.0013,对数秩检验。(F) 肢体缺血手术后3天,缺血内收肌中Tie2的表达及注射广告LucLuc-Decoy广告用RT-PCR和western blot分别在mRNA和蛋白水平上评估病毒。结果归一化为GAPDH用于mRNA分析(n=6)或α/β-微管蛋白用于蛋白质分析(n=9),并表示为平均值±SEM。*p<0.05与广告Luc组。

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引用人

工具书类

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