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.2019年6月5日;9(1):8307.
doi:10.1038/s41598-019-44407-9。

蛋白激酶A通过磷酸化抑制肿瘤突变子APOBEC3B

附属公司

蛋白激酶A通过磷酸化抑制肿瘤突变子APOBEC3B

Tadahiko Matsumoto公司等。 科学代表. .

摘要

APOBEC3B胞苷脱氨酶(A3B)催化单链DNA中的胞嘧啶转化为尿嘧啶,并诱导各类肿瘤基因组DNA的C-to-T突变。APOBEC标志性突变的累积与乳腺癌或多发性骨髓瘤患者的预后较差相关,这表明A3B活性可能是这些肿瘤中不利的DNA突变和克隆进化的原因。其他胞苷脱氨酶、活化诱导脱氨酶(AID)和APOBEC3G的保守苏氨酸残基的磷酸化抑制了它们的活性。在这里,我们显示蛋白激酶A(PKA)与A3B物理结合并磷酸化Thr214。体外脱氨酶试验和细胞中的外源DNA编辑试验证实,磷酸化A3B突变体T214D和T214E完全失去脱氨酶活性。A3B磷酸化的分子动力学模拟表明,Thr214磷酸化破坏了磷酸化A3B催化核心与ssDNA之间的结合。这些突变体仍然至少部分抑制逆转录病毒的感染性,并且还保留完全的抗逆转录转座子活性。这些结果表明,PKA介导的磷酸化抑制A3B的诱变活性,而不会破坏其先天免疫功能。因此,PKA激活可以减少A3B过度表达肿瘤中突变的进一步累积。

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图1
图1
PKACA磷酸化A3B Thr214体内在体外. ()AID、A3G、A3B及其突变体的示意图。A3B WT CTD和A3B T214A CTD是纯化蛋白结构。(b、 c(c))A3B与PKACA物理结合。用A3B-HA和FLAG-PKACA表达载体转染HEK293T细胞。这些细胞的裂解物与抗HA共同免疫沉淀(b条)或抗FLAG抗体(c(c))然后用所示抗体进行免疫印迹。(d日)PKACA磷酸化HEK293T细胞中的A3B。如上所示,用含有或不含有PKACA的A3B、A3G和A3G DM表达载体转染HEK293T细胞。转染36小时后,我们用免疫沉淀法半纯化APOBEC,用抗RXXS/T-p抗体免疫印迹检测PKA介导的磷酸化。(e、 (f))PKACA磷酸化A3B的Thr214。(e)如图所示,在HEK293T细胞中引入带有或不带有PKACA的A3B丙氨酸突变体的表达载体。36转染后小时,收集细胞,裂解,用抗HA抗体免疫沉淀,并用指示的抗体进行免疫印迹。结果表明,A3B-Thr214是PKA介导磷酸化的关键残基。((f))体外磷酸化分析表明,PKACA直接磷酸化A3B-CTD,但不磷酸化A3B T214A CTD。激活诱导脱氨酶;野生型野生型;DM,双突变体;IP,免疫沉淀。
图2
图2
拟磷酸化A3B突变体失去CDA在体外. ()Thr214处磷酸化A3B突变体的示意图。T214D-CTD和H253R-CTD是纯化的蛋白质结构。(b条)拟磷酸化A3B突变体失去CDA在体外。使用来自HEK293T细胞的裂解物和外源性表达的A3B或其突变体进行基于FRET的CDA分析。每个荧光强度数值代表三个独立实验的平均值,并归一化为WT样品的平均值。横线表示标准误差(SE),星号(*)表示统计显著性差异(p < 0.05)(上面板)。实验中使用的A3B突变体的蛋白质水平具有可比性(下面板)。(c(c))在基于凝胶的CDA测定中,拟磷酸A3B突变体失去了针对TCA序列的CDA。在该分析中,A3B CDA催化底物43b寡聚物向12b寡聚物的转化。转染EV、T214D、T214E或H253R的细胞裂解液中没有CDA,转染T214A的细胞裂解物中CDA含量低于转染WT的细胞(d日)使用纯化蛋白进行基于FRET的CDA分析。净化后的C端子A3B T214D几乎完全失去CDA在体外每个荧光强度数值表示三个独立实验的平均值。(e(电子))使用纯化蛋白的凝胶CDA分析。A3B T214D失去CDA,T214A对TCA序列具有弱CDA。((f))A3B磷酸化降低其胞苷脱氨酶活性。PKACA磷酸化A3B-CTD和T214A-CTD在体外,随后执行在体外CDA分析。值表示两个独立实验的平均值,条形图表示SE。
图3
图3
A3B磷酸化或突变影响ssDNA结合。利用报道的A3B(PDB编号5CQH)和ssDNA(PDB数量5TD5)的X射线晶体结构,构建了ssDNA结合态A3B的结构模型,并按照实验程序部分所述进行了MDS测试。()热力学平衡下ssDNA结合态的结构,80A3B WT-ssDNA复合物模型MDS的ns。酶的活性部位突出显示。A3B残基(T214、H253、E255、C284和C289)位于胞嘧啶和锌附近,可能参与DNA胞苷脱氨基的化学催化作用,如彩条所示。橙色虚线表示Thr214和胞嘧啶之间的氢键。(b条)80后ssDNA与各种A3B(A3B WT、磷酸化、T214D、T214E、T214A和H253R)的结合模式MDS的个数。突出显示了围绕Zn和ssDNA的A3B活性中心。
图4
图4
拟磷酸A3B突变体失去外源DNA编辑活性。()EGFP暴露于WT A3B及其突变体的3D-PCR研究。将A3B或其突变体表达载体与pDON-EGFP和pEF-UGI共同转染HEK293T细胞。转染2天后恢复总DNA,并在指示的变性温度(Td)下通过3D-PCR扩增EGFP基因。(b条)A3B WT及其突变体的表达水平具有可比性。(c(c))在每个样本中以最低Td扩增的PCR产物衍生的EGFP序列的突变矩阵。(d日)外源DNA编辑的二核苷酸背景。显示了所示二核苷酸序列中的C-T转换速率。
图5
图5
拟磷酸化A3B突变体保留抗逆转录病毒活性和逆转录转座子限制。()通过联合转染pNL4-3/Δenv/luc和VSV-G以及A3B或其突变体的表达载体,制备了VSV-G假型NL4-3病毒。HEK293T细胞被产生的病毒感染。测量靶细胞裂解物的萤光素酶活性,并将其表示为EV报告的感染性比率(上图)。裂解物或病毒粒子中A3B和突变体的蛋白质水平具有可比性(下表)(b条)A3B抑制逆转录转位。WT和磷酸拟态突变体,甚至是催化失活的H253R突变体,都抑制逆转录转座子。数值表示三个独立实验的平均值,条形表示SE,匕首(†)和星号(*)表示统计显著差异(p < 0.01和p < 0.05)。

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