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.2019年4月30日;10(1):1981.
doi:10.1038/s41467-019-09852-0。

肝靶向纳米技术促进小檗碱改善心血管疾病

附属公司

肝靶向纳米技术促进小檗碱改善心血管疾病

郭慧慧等。 国家公社. .

摘要

心血管和代谢疾病(CMD)仍然是世界范围内早死的主要原因。小檗碱(BBR)是一种降脂植物化合物,具有多种抗代谢紊乱的功效,是改善CMD的理想候选药物。肝脏是BBR的靶点,因此肝脏的蓄积对于实现其治疗效果至关重要。本研究开发了一种合理设计的胶束(CTA-Mic),由α-生育酚疏水核和现场可分离的聚乙二醇-硫醇壳组成,用于BBR在肝脏的有效沉积。生物分布分析证明,在胶束的辅助下,BBR在肝内的蓄积量增加了248.8%。在HepG2细胞和体内可检测到一系列能量相关基因的上调。在高脂肪饮食小鼠中,BBR-CTA-Mic干预显著改善代谢状况并减少主动脉弓斑块的形成。我们的研究结果为使用纳米技术促进的天然药物改善CMD的肝脏靶向策略提供了概念证明。

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利益冲突声明

作者声明没有相互竞争的利益。

数字

图1
图1
TPGTSA和BBR-CTA-Mic的表征。TPGTSA的物理特性。左:核磁共振氢谱(1核磁共振氢谱);中间:傅里叶变换红外光谱(FTIR);右图:基质辅助激光解吸/电离时间质谱(MALDI-TOF-MS)。b条空CTA-Mics(向上)和BBR-CTA-Mic(向下)的粒度、Zeta电位和形态。c(c)药物释放研究。采用透析法从BBR-CTA-Mic和BBR-TPGS-Mic中释放BBR。对照组为BBR-S。0.4将mL BBR-S或含BBR的麦克风密封在透析袋中并浸没在50中mL空腹状态模拟胃液(SGF,pH 1.6),空腹状态仿真肠液(SIF,5胆汁盐mM,pH 6.8),模拟血清(SS,20%FBS白蛋白,pH 7.4)和模拟肝环境(20%小鼠肝匀浆)。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 5).d日BBR制剂在Caco-2细胞系中的跨上皮转运研究。Up:含BBR配方的双向表观跨上皮渗透率(Papp)以及CsA对不同样品传输的影响;向下:不同含BBR配方对Rho123运输的影响。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 6), *第页<0.05, **第页<0.01, ***第页<0.001,与未经治疗的对照组相比,第页-值由未配对的双边学生t吨-测试。比例尺,100纳米(b条)
图2
图2
细胞内吸收分析。。用各种BBR制剂处理细胞,其等效BBR浓度为1μg毫升−1用于3h、 分别为37岁°C,含5%CO2左:使用CLSM(德国卡尔蔡司)可视化HepG2细胞BBR的代表性荧光图像;右图:HepG2细胞BBR的代表性流式细胞术图。b条用BBR-S或BBR-CTA-Mic处理细胞1、4或8h、 分别是。使用CLSM可视化HepG2细胞BBR的典型荧光图像。c(c)HepG2细胞预先用BBR-S或BBR-CTA-Mic与P-gp siRNA或错配siRNA(mm RNA)(50nM)适用于8h.用PBS冲洗细胞两次,然后用新鲜培养基培养4次h.左:使用C2t尼康荧光显微镜显示HepG2细胞中BBR和P-gp的代表性荧光图像(Morrell,美国);中间:驱散实验前后HepG2细胞BBR沉积的代表性流式细胞术图。右:RNAi前后HepG2细胞P-gp表达的代表性流式细胞术图。实验分五次进行。比例尺,10μm(c(c))
图3
图3
生物分布评估。向C57BL/6J小鼠注射BBR-S或BBR-CTA-Mic(50毫克公斤−1BBR)通过灌胃注射。在每个预定的时间点,每种配方的五只小鼠被安乐死,血液(0.5mL)从眼眶后静脉丛至肝素化管,采集主要器官(心、肝、脾、肺和肾)。在激发/发射时,使用IVIS成像系统对主要器官进行成像n个 = 465/540纳米。(心、肝、脾、肺和肾,从左到右)。b条通过LC/MS/MS实现对C57BL/6J小鼠不同时间点BBR分布的定量分析(n个 = 5,平均值±SEM)。采用活体聚焦评价法进一步检测BBR-S或BBR-CTA-Mic组的肝细胞BBR蓄积。肝脏样品的冷冻切片是通过将肝脏组织切成4块来制备的微米。c(c)使用CLSM LSM710(德国卡尔蔡司)Ex观察BBR的肝细胞聚集 = 365纳米;相对长度单位 = 480纳米。d日采用环境质谱成像方法检测BBR在肝脏的蓄积。实验在配备Q-Orbitrap质谱仪的气流辅助解吸电喷雾电离(AFADESI)-MSI平台上进行。比例尺,50μm(c(c))
图4
图4
体外药理作用。HepG2细胞用各种BBR制剂处理,其等效BBR浓度为1μg毫升−1用于837小时°C,含5%CO2.归纳第页-用抗InsR、LDLR和第页-AMPK抗体,用C2t尼康荧光显微镜观察(莫雷尔,美国)。b条mRNA表达AMPK公司,InsR公司,AKT公司,以及低密度脂蛋白受体基因通过RT-PCR进行评估。将结果归一化为GAPDH。c(c)AMPK的蛋白表达,第页-AMPK、InsR、,第页-InsR、AKT、,第页-用western blot分析检测AKT和LDLR。结果作为密度比归一化为GAPDH。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 6), *第页<0.05, **第页<0.01, ***第页<0.001,与NC组相比,第页-数值通过不成对的双侧Student’s计算t吨-测试。比例尺,100μm()
图5
图5
体内药效学。C57BL/6J小鼠喂HFD 8周,然后随机分为4组:模型对照组(MC)、BBR-S组(BS,50毫克公斤−1BBR的)、空胶束基团(EM,与BBR胶束相同)或BBR-CTA胶束基团(BM,50毫克公斤−1BBR),同时通过灌胃方式再次出现HFD 8周。以喂食标准啮齿动物饲料(NC)的未处理小鼠作为对照。代表性照片第页-使用C2t尼康荧光显微镜(美国莫雷尔),通过抗InsR、LDLR和第页-AMPK抗体同时出现。b条mRNA表达AMPK公司,InsR公司,AKT公司,以及低密度脂蛋白受体基因通过RT-PCR进行评估。将结果归一化为GAPDH。c(c)AMPK的蛋白表达,第页-AMPK、InsR、,第页-InsR、AKT、,第页-用western blot分析检测AKT和LDLR。结果作为密度比归一化为GAPDH。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 10), *第页<0.05, **第页<0.01, ***第页<0.001,与MC组小鼠相比;#第页 < 0.05,##第页 < 0.01,###第页<0.001,与EM组小鼠相比,第页-值由未配对的双边学生t吨-测试。比例尺,200μm()
图6
图6
体内高脂血症、体重和肥胖分析。喂食HFD的C57BL/6J小鼠用各种BBR制剂灌胃治疗。以喂食HFD(MC组)和标准食物(NC组)的未处理小鼠作为对照。生化分析。血浆TG、胆固醇、低密度脂蛋白胆固醇、葡萄糖和肝脏TG用自动生化分析仪用酶法测定。b条全身、肠系膜和附睾脂肪、肝组织和脂肪细胞大小变化的代表性图片和重量变化。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 10), *第页<0.05, **第页<0.01, ***第页<0.001,MC组小鼠;#第页<0.05,##第页<0.01,###第页<0.001与EM组小鼠相比,第页-值由未配对的双边学生t吨-测试。比例尺,100μm(b条)
图7
图7
脂肪肝和肝损伤评估。喂食HFD的C57BL/6J小鼠用不同BBR制剂灌胃治疗(n个 = 每组10个)。喂食HFD或标准食物的未处理小鼠(NC组)作为对照。HE染色肝脏切片的代表性照片。插图包含整个肝组织切片的图像。感兴趣区域(ROI)以白色方框显示,其放大图像显示在右侧。b条油红O染色肝脏切片的代表性照片。感兴趣区域(ROI)以白色方框显示,其放大图像显示在右侧
图8
图8
炎症状况分析。喂食HFD的C57BL/6J小鼠,用不同BBR制剂灌胃治疗。血浆中促炎细胞因子水平。实验结束后,收集血样,并根据制造商的指示,使用490℃的照度计,通过酶联免疫吸附试验(ELISA)测定血浆TNF-α、IL-1β、IL-2、IL-6、IL-10、IL-12、IL-17、MCP-1、MMP-9和IFNγ水平纳米。采集附睾脂肪和肝脏组织。b条免疫荧光染色肝组织IL-6(红色)和TNF-α(绿色)的代表性照片,使用C2t尼康荧光显微镜进行可视化(莫雷尔,美国)。感兴趣区域(ROI)以白色方框显示,其放大图像显示在底部。c(c)使用C2t尼康荧光显微镜(美国莫雷尔)观察免疫荧光染色脂肪组织IL-6(红色)和TNF-a(绿色)的代表性照片。感兴趣区域(ROI)以白色方框显示,其放大图像显示在底部。d日western blot检测肝组织(上)和脂肪(下)中IL-6和TNF-α的蛋白表达。e采用RT-PCR检测肝组织(左侧)和脂肪组织(右侧)IL-6和TNF-αmRNA的表达。数据以平均值表示±扫描电镜(n个 = 10). *第页 < 0.05, **第页 < 0.01, ***第页 < 0.001,MC组小鼠;#第页 < 0.05,##第页 < 0.01,###第页 < 0.001,与EM组小鼠相比,第页值由未配对的双边学生t吨-测试。比例尺,200μm(b条,c(c)左下角)和20μm(b条,c(c),右上)

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引用人

工具书类

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